Name: preparation of developing and adult drosophila brains and retinae for live imaging
Uploaded: 2010-03-15T17:55:00
Duration: 16 min 47 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Preparation of Developing and Adult Drosophila Brains and Retinae for Live Imaging at JoVE.com

وأيد هذا العمل من المنح المقدمة من مؤسسة وولش (I - 1657) ، والمعاهد الوطنية للصحة (RO1EY18884). PRH هو الباحث يوجين مكدرموت في البحوث الطبية الحيوية.

<ol>
	<li>Stewart, B. A., Atwood, H. L., Renger, J. J., Wang, J., Wu, C. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Improved+stability+of+Drosophila+larval+neuromuscular+preparations+in+haemolymph-like+physiological+solutions.">Improved stability of Drosophila larval neuromuscular preparations in haemolymph-like physiological solutions.</a> J Comp Physiol A. 175 (2), 179-191 (1994).</li><li>Walther, R. F., Pichaud, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Immunofluorescent+staining+and+imaging+of+the+pupal+and+adult+Drosophila+visual+system.">Immunofluorescent staining and imaging of the pupal and adult Drosophila visual system.</a> Nat Protoc. 1, 2635-2642 (2006).</li><li>Fischbach, K. F., Hiesinger, P. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Optic+lobe+development.">Optic lobe development.</a> Adv Exp Med Biol. 628, 115-136 (2008).</li><li>Ashburner, M., Golic, K. G., Hawley, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Drosophila+-+A+Laboratory+Handbook.">Drosophila - A Laboratory Handbook.</a> , (2005).</li><li>Featherstone, D. E., Chen, K., Broadie, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Harvesting+and+preparing+Drosophila+embryos+for+electrophysiological+recording+and+other+procedures.">Harvesting and preparing Drosophila embryos for electrophysiological recording and other procedures.</a> J Vis Exp. , (2009).</li><li>Borlinghaus, R. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=MRT+letter:+high+speed+scanning+has+the+potential+to+increase+fluorescence+yield+and+to+reduce+photobleaching.">MRT letter: high speed scanning has the potential to increase fluorescence yield and to reduce photobleaching.</a> Microsc Res Tech. 69, 689-692 (2006).</li><li>Ayaz, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Axonal+injury+and+regeneration+in+the+adult+brain+of+Drosophila.">Axonal injury and regeneration in the adult brain of Drosophila.</a> J Neurosci. 28 (23), 6010-6021 (2008).</li><li>Freeman, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reiterative+use+of+the+EGF+receptor+triggers+differentiation+of+all+cell+types+in+the+Drosophila+eye.">Reiterative use of the EGF receptor triggers differentiation of all cell types in the Drosophila eye.</a> Cell. 87 (4), 651-660 (1996).</li><li>Wucherpfennig, T., Wilsch-Brauninger, M., Gonzalez-Gaitan, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Role+of+Drosophila+Rab5+during+endosomal+trafficking+at+the+synapse+and+evoked+neurotransmitter+release.">Role of Drosophila Rab5 during endosomal trafficking at the synapse and evoked neurotransmitter release.</a> J Cell Biol. 161, 609-624 (2003).</li><li>Merzlyak, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=monomeric+red+fluorescent+protein+with+an+extended+fluorescence+lifetime.">monomeric red fluorescent protein with an extended fluorescence lifetime.</a> Nat Methods. 4 (7), 555-557 (2007).</li><li>Ng, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transmission+of+olfactory+information+between+three+populations+of+neurons+in+the+antennal+lobe+of+the+fly.">Transmission of olfactory information between three populations of neurons in the antennal lobe of the fly.</a> Neuron. 36 (3), 463-474 (2002).</li><li>Brand, A. H., Perrimon, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Targeted+gene+expression+as+a+means+of+altering+cell+fates+and+generating+dominant+phenotypes.">Targeted gene expression as a means of altering cell fates and generating dominant phenotypes.</a> Development. 118 (2), 401-415 (1993).</li><li>Cooper, M. T., Bray, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Frizzled+regulation+of+Notch+signalling+polarizes+cell+fate+in+the+Drosophila+eye.">Frizzled regulation of Notch signalling polarizes cell fate in the Drosophila eye.</a> Nature. 397 (6719), 526-530 (1999).</li><li>Cook, T., Desplan, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Photoreceptor+subtype+specification:+from+flies+to+humans.">Photoreceptor subtype specification: from flies to humans.</a> Semin Cell Dev Biol. 12 (6), 509-518 (2001).</li><li>Gurskaya, N. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Engineering+of+a+monomeric+green-to-red+photoactivatable+fluorescent+protein+induced+by+blue+light.">Engineering of a monomeric green-to-red photoactivatable fluorescent protein induced by blue light.</a> Nat Biotechnol. 24 (4), 461-465 (2006).</li><li>Reinke, R., Krantz, D. E., Yen, D., Zipursky, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chaoptin,+a+cell+surface+glycoprotein+required+for+Drosophila+photoreceptor+cell+morphogenesis,+contains+a+repeat+motif+found+in+yeast+and+human.">Chaoptin, a cell surface glycoprotein required for Drosophila photoreceptor cell morphogenesis, contains a repeat motif found in yeast and human.</a> Cell. 52 (2), 291-301 (1988).</li><li>Richardt, A., Rybak, J., Stortkuhl, K. F., Meinertzhagen, I. A., Hovemann, B. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ebony+protein+in+the+Drosophila+nervous+system:+optic+neuropile+expression+in+glial+cells.">Ebony protein in the Drosophila nervous system: optic neuropile expression in glial cells.</a> J Comp Neurol. 452 (1), 93-102 (2002).</li><li>Beronja, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Essential+function+of+Drosophila+Sec6+in+apical+exocytosis+of+epithelial+photoreceptor+cells.">Essential function of Drosophila Sec6 in apical exocytosis of epithelial photoreceptor cells.</a> J Cell Biol. 169 (4), 635-646 (2005).</li><li>Mehta, S. Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mutations+in+Drosophila+sec15+reveal+a+function+in+neuronal+targeting+for+a+subset+of+exocyst+components.">Mutations in Drosophila sec15 reveal a function in neuronal targeting for a subset of exocyst components.</a> Neuron. 46 (2), 219-232 (2005).</li></ol>

فلوري مجسات مستعملة للتصوير نحن هنا وصف القوة والضعف في النظام ذبابة الفاكهة إعداد البصرية لمجموعة مختارة من تحقيقات الفلورسنت من ثلاث فئات هي : (1) مجسات التي تمت إضافتها إلى إعداد الأنسجة الحية خارجيا ، (2) البروتينات الفلورية التي يتم ترميز وراثيا عن العيش وكلا التصوير ثابتة ، (3) الأصباغ الفلورية التي تمت إضافتها إلى الأنسجة الثابتة للالمناعية. 1. تحقيقات الخارجية : DND Lysotracker الأخضر أو الأحمر - 26 - 99 DND (Invitrogen ، المؤتمر الوطني العراقي) وهذه متاحة تجاريا الفلورسنت نفاذية الأغشية المركبات التي تتراكم في مقصورات يحمض بقوة في الخلية ، وأبرزها lysosomes ، الإندوسومات في وقت متأخر ، وautophagosomes. Lysotracker بتركيزات nanomolar (التي نستخدمها عادة 50 نانومتر) تخترق L3 و ف القرص العين +20 ٪ بالكامل في أقل من دقيقة واحدة. منذ Lysotracker تتراكم باستمرار وتمارس تأثيرا القلوية ، ونحن في صورة أقل من 5 دقائق. على النقيض من أقراص العين ، Lysotracker لا تخترق الدماغ دون انقطاع من الأنسجة. ومع ذلك ، حذرا من تمزق الغشاء الخارجي يسمح اختراق الخلية من أقطار عدة في الفص البصري. Lysosensor DND - 189 (Invitrogen ، المؤتمر الوطني العراقي) وعلى النقيض من Lysotracker ، Lysosensor لا تتراكم في مقصورات يحمض ، ولكن المعارض زيادة درجة الحموضة في مضان الحمضية. وقد تغلغل Lysosensor خصائص مشابهة جدا لLysotracker. نستخدم Lysosensor بتركيز 1μM. 2. المرمزة وراثيا تحقيقات : بالنسبة للعديد من تجارب التصوير الحي ، فإننا نعرب عن الجينات المرتبطة دلاليا مع جزيئات مختلفة مثل الفلورسنت GFP ، TagRFP 10 أو pHluorin الحموضة حساسة لل11 تحت سيطرة نظام ثنائي التعبير Gal4/UAS 12. Gal4 خطوط التي تعبر في مبصرات النامية تشمل GMR - Gal4 (جميع مبصرات) 8 وmDelta0.5 - Gal4 (R4 النامية وR7) 13. العديد من سلالة معينة Gal4 سائق توجد خطوط التي تستخدم مختلف المروجين رودوبسين 14. تحقيقات الفلورية مفيدة بشكل خاص في مجال التصوير تعيش هي بروتينات photoconvertible. وقد استخدمنا بنجاح Dendra2 ، وهو موحودي الأخضر إلى الأحمر البروتين photoconvertable 15. علما بأن صمم Dendra2 أن photoconvertible باستخدام خط ليزر الأرجون 488nm. ومع ذلك ، نحن غير قادرين على تحقيق التحويل باستخدام الضوء الأزرق مرئية باستخدام لدينا مجموعة المتابعة في أي من النمط التقليدي أو مسح مبائر الرنانة. في المقابل ، مع تحويل ليزر الأشعة فوق البنفسجية هو 405nm كفاءة. 3. المناعية : فإن العين لا أخلاقي ثابت ، ونحن غالبا ما تختار إما رودامين phalloidin (Invitrogen ، وشركة) أو المضادة للChaoptin (أ الضد مبصرة محددة 16) لتصور هيكل رابدوميريك (الشكل 1A). وهناك طريقة جيدة لتحليل بنية الصفيحة خرطوشة هو الجمع بين مكافحة chaoptin 16 ، علامة الدبقية المضادة للخشب الأبنوس 17 ، و 18 لمكافحة sec6 (الشكل 1B). كما هو مبين في الشكل. 3 ، وهذا الجمع بين الأضداد يميز الكبرى قبل المشبكي (chaoptin) وبعد المشبكي (sec6) العمليات فضلا عن الدبقية الظهارية (الأبنوس) في الصفيحة 19. تجميع الدائرة الإرواء للتصوير العيش ، ونحن توظيف غرفة نضح تسمح بتبادل البطيء للحلول دون إزعاج إعداد الأنسجة. يتم تضمين مظاهرة التجمع غرفة نضح في شريط الفيديو وأظهرت تخطيطي في الشكل 2. ويتضح من التجمع غرفة نضح في الشكل. 2A. يبدأ وضع طوقا على العينة الأولى ، ويستمر بعد ذلك مع التجمع كما هو مبين. الغرض من طوقا هو خلق مسافة بين قاعدة وغطاء غرفة ، مساحة داخل وهو مختوم النسيج والتي من خلالها سيتم حل التدفق. يجب أن تكون المساحة داخل حشية تشمل مدخل (حل يدخل هنا) ، والإعدادية الأنسجة ، ومنفذ من خلال الحل الذي يترك القاعة. ميزتين من طوقا حاسمة : أولا ، يجب أن تكون سميكة حشية بما يكفي للدماغ بعد رقيقة بما يكفي للسماح التصوير بعدسة ذات دقة عالية. سمك طوقا المثالي يعتمد على مجموعة محددة متابعة المعلمات. الثاني ، وهو الشق في طوقا توفر المقصورة التي تسمح فقاعة بالمرور دون الاتصال العينة (الشكل 2B). التصوير في مجهر نستخدم 63x (الفتحة 1.3) عدسة الغمر الغليسيرين للغرفة أو نضح مياه الغمر عدسة 63x مباشرة في مستنبت على شريحة. العدسات الغليسيرين تقديم المزيد من العمل عن بعد من العدسات النفط. نستخدم مجهر المسح الرنانة مبائر الذي يمسح بمعدلات أسرع بكثير من ماسح ضوئي التقليدية (8000 هرتز هرتز مقابل 1400 ، على التوالي). مسح الرنين يسمح 3 الابعاد التسجيلات على مر الزمن في الصيامإيه معدلات الإطار. بالإضافة إلى ذلك ، سرعات مسح خفض كبير ليزر الضيائية (6) الذي هو مصدر قلق كبير لاجراء الفحوصات المتكررة من الأنسجة الحية. يجب تحقيق التوازن بين كثافة الليزر والجهد PMT (كسب) لتعظيم إشارة مع التقليل من الضجيج وphotobleaching. وهناك اعتبار مهم آخر هو أن يتم تحديد مقدار تأثير الليزر على منطقة معينة في القرار والتكبير. على سبيل المثال ، يتم فحص منطقة الاختيار في القرار نفسه في 256x256 ، 2x التكبير كما في 512x512 ، والتكبير 1X ، ومع ذلك فإن الحد الأقصى الممكن سرعة التصوير الحي 4 مرات أسرع في 256x256 ، والتكبير 2X. لتسجيل نشاط الخلايا مقصورات تتحرك بسرعة ، لقد سجلنا بنجاح مع الإعدادات التالية : 5 لقطة في Z - المكدس بمعدل واحد ض المكدس في 10 ثوان مع سرعة المسح الضوئي من 8000 هرتز و 2x خط المتوسط. لجلسات التصوير الطويلة على مقياس من الساعات ، ونحن في كثير من الأحيان خفض معدل واحد في إطار لعدة دقائق واختيار مناطق أوسع وإعداد أكثر من المرجح أن التحول. ذبابة الفاكهة تشريح الجهاز البصري الشكل 3 يبين تشريح العين الكبار ذبابة الفاكهة (الشكل 3A) ، والدماغ الكبار (الشكل 3B) ، و 20 ٪ -25 ٪ العذراء العين المعقدة القرص / الدماغ (الشكل 3C). ويوضح الشكل 3A العين الكبار على حد سواء مع ودون الصفيحة والخلايا الدهنية المرفقة. أثناء تشريح العين البالغين ، والصفيحة ، والتي هي في وسط العين التي تقع في وعاء يتكون من أجسام الخلايا المستقبلة للضوء (يسار) ، يجب إزالة دون تعطيل الهيئات الخلية تحت (يمين). لتشريح الدماغ الكبار ، وينبغي للمرء أن يكون قادرا على التمييز بين الهيئات خلية مستقبلة للضوء ، الصفيحة ، والفص البصري ، في الدماغ المركزي ، والقصبة الهوائية (الشكل 3B). ومبصرات القصبة الهوائية ويجب إزالتها لهذا التشريح بينما تترك الصفيحة التي تعلق على الفص البصري. للمساعدة في التعرف على 20-25 ٪ العذراء معقدة القرص / الدماغ العين ، وتقدم صورة حية في 3C الشكل. <img src="/files/ftp_upload/1936/1936fig1.jpg" alt="الشكل 1" /> الشكل 1 (أ) في المخ الكبار. (ب) لا أخلاقي العين. (C) 20 ٪ -25 ٪ معقدة eye-disc/brain العذراء. <img src="/files/ftp_upload/1936/1936fig2.jpg" alt="الشكل 2" /> الشكل 2 : (أ) تجميع وغرفة الإرواء (B) طوقا المواقع النسبية للعينة. <img src="/files/ftp_upload/1936/1936fig3.jpg" alt="الشكل 3" /> الشكل 3 : (أ) تلطيخ rhabdomere الكبار استخدام الألغام المضادة للchaoptin. (ب) تلوين الصفيحة الكبار استخدام الألغام المضادة للchaoptin (أخضر ، مبصرات) ، المضادة للخشب الأبنوس (أحمر ، الدبقية) ، وsec6 (أزرق ، interneurons).

معدات خاصة : <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تشريح النطاق : ايكا Mz12.5 مع كاميرا رقمية </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ايكا TCS SP5 متحد البؤر المجهر الماسح ، جنبا الى جنب لمسح الرنين التقليدية ويعيش التصوير المجهري ، بما فيها الأزرق (488nm) ، والأخضر (561nm) ، البرتقال (594nm) وبعيدة الحمراء (633nm) وكذلك ليزر 63x الخاصة ، والغليسيرين 1.4 63x ، غمر المياه العدسات 1.3. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> نموذج هارفارد آلات التصوير غرفة مضخة متحد البؤر RC - 30 وتحوي 720 </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> سوتر الماصة مجتذب P - 97 </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> البرنامج : أميرة 5.2 ، التصوير سيماء </li></ol>

preparation of developing and adult drosophila brains and retinae for live imaging

و<em&gt; ذبابة الفاكهة</emوتستخدم على نطاق واسع&gt; الدماغ والجهاز البصري نظم نموذجية لدراسة تطوير الخلايا العصبية ، وظيفة وانحطاط. نحن هنا المعرض الثلاثة التحضيرية للدماغ والنظام البصري والتي تغطي مجموعة من مجمع تطوير قرص الدماغ العين في العين الشرانق النامية على الفرد وتشريح الدماغ من الذباب الكبار. هي الأمثل لكافة البروتوكولات ثقافة حية من الاستعدادات. ومع ذلك ، فإننا نقدم أيضا شروط المناعية الأنسجة الثابتة حيثما ينطبق ذلك. أخيرا ، وتبين لنا ظروف التصوير الحي لهذه الاستعدادات باستخدام الرنين التقليدية والتصوير مبائر 4D يعيش في غرفة الارواء. معا ، هذه البروتوكولات توفير أساس لتصوير يعيشون على جداول زمنية مختلفة بدءا من الخلايا الوظيفية المقايسات على مقياس من دقيقة لعمليات التنمية أو التنكسية على مقياس من عدة ساعات.

Watch this Scientific Journal Video about Preparation of Developing and Adult Drosophila Brains and Retinae for Live Imaging at JoVE.com

Preparation of Developing and Adult Drosophila Brains and Retinae for Live Imaging

هذا البروتوكول يصف ثلاثة<em&gt; ذبابة الفاكهة</em&gt; التحضير : 1) تشريح الدماغ الكبار ، 2) تشريح الشبكية الكبار و 3) تطوير تشريح العين والدماغ المجمعات القرص. ويتم التشديد على تقنيات إعداد والظروف الخاصة للتصوير الحي ، رغم أنه يمكن استخدام كافة الاستعدادات لالمناعية الأنسجة الثابتة.

إعداد وتطوير الكبار ذبابة الفاكهة الأمخاخ والشبكية للتصوير لايف

The Drosophila brain and visual system are widely utilized model systems to study neuronal development, function and degeneration. Here we show three ...

Research

JoVE Journal

Biology

Preparation of Developing and Adult Drosophila Brains and Retinae for Live Imaging

Primary Neuronal Cultures from the Brains of Late Stage Drosophila Pupae

متعلق بالخلايا العصبية الثقافات الأساسي من الأمخاخ في وقت متأخر من المرحلة ذبابة الفاكهة شرانق

In this video, we demonstrate the preparation of primary neuronal cultures from the brains of late stage Drosophila pupae. The procedure begins with the ...

The Preparation of Drosophila Embryos for Live-Imaging Using the Hanging Drop Protocol

The Preparation of Drosophila Embryos for Live-Imaging Using the Hanging Drop Protocol

لإعداد ذبابة الفاكهة الأجنة لايف التصوير باستخدام بروتوكول إسقاط الشنق

Green fluorescent protein (GFP)-based timelapse live-imaging is a powerful technique for studying the genetic regulation of dynamic processes such as ...

Mesoscopic Fluorescence Tomography for In-vivo Imaging of Developing Drosophila

Mesoscopic Fluorescence Tomography for In-vivo Imaging of Developing Drosophila

جرحشاعثزرحشرتاد الإسفار عن التصوير المقطعي في الجسم الحي. تصوير النامية ذبابة الفاكهة</em

Visualizing  developing organ formation as well as progession and treatment of disease often  heavily relies on the ability to optically interrogate ...

Live Imaging Of Drosophila melanogaster Embryonic Hemocyte Migrations

Live Imaging Of Drosophila melanogaster Embryonic Hemocyte Migrations

يعيش تصوير ذبابة الفاكهة السوداء البطن هجرات كرية دموية الجنينية

Many studies address cell migration using in vitro methods, whereas the physiologically relevant environment is that of the organism itself. Here we ...

Paraffin-Embedded and Frozen Sections of Drosophila Adult Muscles

Paraffin-Embedded and Frozen Sections of Drosophila Adult Muscles

البارافين ، جزءا لا يتجزأ من والمجمدة أقسام ذبابة الفاكهة</emالعضلات الكبار>

The molecular characterization of muscular dystrophies and myopathies in humans has revealed the complexity of muscle disease and genetic analysis of ...

Live Imaging of Cell Extrusion from the Epidermis of Developing Zebrafish

يعيش التصوير من النتوء خلية من البشرة من اسماك الزرد النامية

Homeostatic maintenance of epithelial tissues requires the continual removal of damaged cells without disrupting barrier function.  Our studies have found ...

Preparation of Adult Drosophila Eyes for Thin Sectioning and Microscopic Analysis

Preparation of Adult Drosophila Eyes for Thin Sectioning and Microscopic Analysis

إعداد الكبار ذبابة الفاكهة لعيون Sectioning رقيقة والتحليل المجهري

Drosophila has long been used as model system to study development, mainly due to the ease with which it is genetically tractable. Over the years, a ...

Preparing Individual Drosophila Egg Chambers for Live Imaging

Preparing Individual Drosophila Egg Chambers for Live Imaging

إعداد فردية ذبابة الفاكهة البيض غرف للتصوير لايف

Live cell imaging is an important technique applied to a number of Drosophila tissues used as models to investigate topics such as axis specification, ...

Live Imaging of GFP-labeled Proteins in Drosophila Oocytes

Live Imaging of GFP-labeled Proteins in Drosophila Oocytes

يعيش التصوير من البروتينات التي تحمل علامات GFP في<em&gt; ذبابة الفاكهة</em&gt; البويضات

The  Drosophila oocyte has been established as a versatile system for investigating  fundamental questions such as cytoskeletal function, cell ...

Live Imaging of Apoptotic Cell Clearance during Drosophila Embryogenesis

Live Imaging of Apoptotic Cell Clearance during Drosophila Embryogenesis

يعيش التصوير من تخليص الخلية أفكارك أثناء<em&gt; ذبابة الفاكهة</em&gt; مرحلة التطور الجنيني

The  proper elimination of unwanted or aberrant cells through apoptosis and  subsequent phagocytosis (apoptotic cell clearance) is crucial for normal  ...