Füllen Sie zunächst den Kanister mit flüssigem Stickstoff, platzieren Sie Mörser, Stößel, Mikroschaufeln, Spatel, Glasböden, Edelstahlstößel und automatischen Downer auf der Arbeitsplattform. Die Gläser in einem mit Eis gefüllten Becherglas vorkühlen. Füllen Sie die beiden Mörser mit dem Stößel und dem Spatel mit flüssigem Stickstoff, um die Instrumente abzukühlen.
In der Zwischenzeit einen Milliliter Homogenisierungspuffer in die Glasböden geben. Füllen Sie beide Mörser mit flüssigem Stickstoff und gießen Sie die 50 Milligramm intermuskulärer Fettgewebsprobe in einen der Mörser. Zum Pulverisieren drücken Sie den Stößel vorsichtig auf das Gewebestück, um es in kleine Stücke zu brechen.
Sobald das Gewebe pulverisiert ist, bleibt noch ein Viertel bis die Hälfte eines Mörsers mit flüssigem Stickstoff übrig. Kippen Sie den Mörser, um pulverisiertes Gewebe in der Lippe des Mörsers aufzufangen. Sobald der flüssige Stickstoff verdampft ist, schöpfen Sie das pulverisierte Gewebe in die Glasböden mit dem Homogenisierungspuffer.
Auf dem automatischen Downer. Bewegen Sie das Glas auf dem Edelstahlstößel 10 Mal in Vorwärtsrichtung auf und ab, gefolgt von 10 Hüben in umgekehrter Richtung. Sobald die Lösung trüb und frei von sichtbaren Gewebefragmenten ist, geben Sie sie in ein vorgekühltes 1,7-Milliliter-Röhrchen mit geringer Bindung auf Eis.
Spülen Sie die Daunen mit 400 Mikrolitern Homogenisierungspuffer ab und geben Sie ihn in ein Röhrchen mit geringer Bindung.