まず、麻酔をかけたマウスを仰臥位で手術野に置きます。i-gelを塗布し、ノーズコーンをサージカルテープで固定します。次に、マウスの前足と後足をサージカルテープで固定します。
マウスの下腹部に膀胱がないか調べます。手術中に腹部にスペースを作るために、親指、人差し指、中指の間の膀胱に優しく外圧を加えて排尿を誘発します。ガーゼを使用して尿を吸い取ります。
ヨウ素またはクロルヘキシジンベースのスクラブで腹部を消毒し、中心から外側に向かって円を描くように動かします。次に、70%アルコールで3回繰り返します。つま先をつまんで麻酔の深さを確認します。
次に、外科的に準備された腹部の真上に開口部を持つマウスの上に外科用ドレープを置きます。手袋を滅菌手袋に交換します。メスを使用して、長さ約2〜3センチメートルの腹部正中線切開を行います。
鉗子で直腸筋を持ち上げて、半透明の白筋を特定します。はさみを使用して、linea albaから腹腔内に入ります。次に、alba線に沿って近位および遠位に伸びます。
ガーゼのストリップと2つの綿棒の先端を温かい生理食塩水で湿らせます。ガーゼの一方の端を半分までしっかりと転がして腹部のロールを作成し、たっぷりとした尾を残します。スキンリトラクターを使用して、右腹壁を引っ込めます。
湿らせた綿棒の助けを借りて、小腸と大腸を左上象限に優しく掃き、大動脈と下大静脈を視覚化することにより、右内側内臓回転を実行します。腸を視界から外した後、ガーゼの丸めた端を腸の下に押し込みます。次に、尻尾を体に回したり外に出したりして、腸を優しく包みます。
ガーゼの裾にやさしい張力をかけて、腸を視界から遠ざけます。腹部ロールとスキンリトラクターを調整して、後腹膜器官の最適なビューを取得します。下大静脈と下大動脈が丸見えになっていることを確認したら、後腹膜筋膜に入って分断することで大動脈を露出させます。
前腎下大動脈に沿って平行に走る性腺動脈を特定します。鉗子を使用して、性腺動脈間で筋膜を鈍く分割し、大動脈を前方に露出させるために縦方向に続けます。次に、鉗子の先端を使用して、大動脈と下大静脈の間の結合組織線維をそっと広げ、このレベルで大動脈の周りを円周方向に働き続けます。
大動脈と下大静脈の間の平面を鈍く解剖し続け、大動脈分岐部に向かって尾側に働きかけます。大動脈の右端が下大静脈から分離されたら、左腎静脈のレベルまで近位に戻ります。大動脈の左端の外側から後腹膜筋膜を解剖し、大動脈が完全に分離されるまで円周方向に働きかけます。
孤立した大動脈を調べた後、大動脈の右端と左端に沿って手袋のストリップを置きます。滅菌ハンドヘルドキャリパーを使用して、最も広い大動脈径を測定します。大動脈からの余分な血液や体液を綿の綿棒で軽くたたきます。
大動脈の上に10 x 2ミリメートルの乾燥ガーゼを置きます。ピペットを使用して、ガーゼと大動脈を飽和させるために5マイクロリットルのエラスターゼを追加します。手袋の部分を大動脈の周りに5分間静かに折ります。
5分後、腸の引っ込みをリセットし、手袋の部分を広げます。大動脈からガーゼと手袋を慎重に取り除きながら、1ミリリットルの温かい0.9%滅菌生理食塩水で腹腔を洗浄します。腹部の生理食塩水をガーゼで吸収します。
ハンドヘルドキャリパーを使用して、最も広い大動脈径のポストエラスターゼアプリケーションを再測定します。腹部ロールを腸の下から体外に慎重に取り外します。腸がピンク色に見え、適切に灌流されていることを確認してください。
実行中の 5-0 非吸収性モノフィラメント縫合糸を使用して、腹部筋膜を再近似します。3〜4個のスキンステープルでスキンを閉じます。エラスターゼで処理した雄マウスは、未治療のベースライン大動脈直径と比較して、5分間の曝露後に大動脈直径が43.4%増加したことを示しましたが、治療された雌大動脈は33.6%増加した偽マウスは大動脈直径に比較的変化が見られませんでした。.
雌に治療したマウスのうち、6匹中3匹がAAA破裂で死亡したが、治療を受けた雄にはAAA破裂は観察されなかった。28日後、治療を受けた雄の平均単四径は約2.86ミリメートルで、平均変化率は257であった。一方、生き残った治療を受けた雌マウスのAAA直径は3.6ミリメートルで、平均変化率は417でした。
偽マウスは、大動脈径に比較的変化を示さなかった。
