Name: coronary artery ligation and intramyocardial injection in a murine model of infarction
Uploaded: 2011-06-07T14:00:00
Duration: 7 min 41 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Coronary Artery Ligation and Intramyocardial Injection in a Murine Model of Infarction at JoVE.com

Я хотел бы поблагодарить Департамент исследований и аспирантуры за выделение финансовых средств для поддержки своих исследований и Департамент по сравнительной медицины за бдительность и помощь. Я также хотел бы признать кафедры физиологии за их поддержку и руководство, а также студентов и техников в моей лаборатории за помощь. Наконец, я хотел бы поблагодарить моего после защиты докторской наставник, доктор Чарльз Мурри, для учебной программы в течение которых я узнал, мыши микрохирургии.

<ol><li> Стерильные хирургические инструменты (табл. 1) и 3 &quot;хлопка наконечником аппликаторы кладут на стерильную underpad. Бусинка стерилизатор (Germinator 500) включен. </li><li> Мыши (возраст:&gt; 6 недель, вес:&gt; 18 г) анестезируют с IP-инъекция 20 мкл / г веса тела tribromoethanol (250mg/kg, продолжительность - примерно 40 минут). </li><li> Когда мышь не реагируют до пят-пинча, стерильной смазки (Слезы Обновленный) применяется к глазам, чтобы защитить их от высыхания и левой стороне груди покрыта для удаления волос (например, Наир), чтобы удалить шерсть с поверхности кожи. </li><li> Для удаления волос смывается теплой проточной водой и бетадин / алкоголь моечные используется для дезинфекции хирургических области. </li><li> Мыши помещается на теплых deltaphase изотермические площадки, которая фиксируется на плексиглас таблице. Каждая конечность иммобилизуют с помощью липкой ленты и толстый поток помещается горизонтально под верхние зубы держать верхнюю челюсть на место. </li><li> Таблица расположена вертикально и волоконно-оптических свет сиял непосредственно на область шеи для чреспищеводной освещения. Это требует точного размещения таких, что открытие горла рассматривается как хорошо освещенном отверстия, что позволяет трахеи для визуализации, упрощающий установку трубы PE. </li><li> Трубка затем подключен к ИВЛ (подключен к 95% O 2 / 5% CO 2) для управления постоянной вентиляции с положительным давлением (ТОПО вентилятор; скорость 125 вдохов / мин; пике вдоха давление 10-12 смН 2 O; * примечание : настройки меняются в зависимости от штамма и гендерной 1-3). После вентиляции подтверждается синхронным движениям груди, соединение устанавливается на площадку с лентой, чтобы избежать экстубации во время операции. </li><li> Использование зубчатых щипцов тянуть кожу вверх и в сторону от груди, № 10 стерильный скальпель лезвием придается # 3 скальпель ручкой используется для производства 1,5 см разрез в коже параллельно грудине. </li><li> Изогнутые microscissors Vanna используются для сокращения грудной мышцы и сделать маленькое отверстие в межреберных мышцах. </li><li> Прямое, тупое microscissors используются, чтобы прорваться через 3 ребра. </li><li> 9мм педиатрической зеркало офтальмологических используется, чтобы убрать грудной клетки. </li><li> Использование изогнутых щипцов, вытащить перикард от сердца и использовать зубчатый пинцет, чтобы аккуратно рвать ее открытой. </li><li> Использование держателя Кастровьехо иглы, 6 мм, конические точки 3 / 8 потоков иглу 8-0 полиэтилена шва под левой передней нисходящей коронарной артерии (вдоль длинной оси сердца) перпендикулярно к ней. <ol><li> Для временного вязью, которая может быть снята для реперфузии приурочен, стерильные 0,5-1см кусок PE90 делается на сердце параллельно с коронарной артерии. Шва, которая впервые была петлей под коронарной артерии, затем привязана к труб. В то время он должен быть освобожден, лигатуры ослабляется. Это может повторяться по желанию и время окклюзии / реокклюзии может быть изменен 4. В зависимости от длины протокол и вид анестезии используется, добавки могут оказаться необходимыми. </li><li> Для постоянного прикуса, лигатуры кружевной при коронарной артерии просто связаны. Белая и ​​дискинезии являются очевидными и длинный конец шов режется 5-10. </li><li> Для intramyocardial инъекций (ы), стерильный шприц Гамильтон с 30 калибр стерильной иглой скошенными вводится в базу сердца выше области травмы на правой стороне вязью. Игла затем продвинулся в области повреждения и снят так, чтобы слегка конической можно увидеть примерно в приграничной зоне. Некоторые из раствора в шприц (2-3μl) вводится в сердце и иглой удерживается на месте. Шприц снимается еще на 1-3мм и остальной части решение вводится. Шприц удерживается на месте, пока пузырь, образованный решением рассеивается. Иглу удаляют. Если есть кровотечение, хлопка наконечником аппликатора мягко прижимается месте введения иглы, пока кровотечение не остановится 5-7. </li></ol></li><li> После инфаркта манипуляции будут завершены, ребра преднатяжителями удаляются и грудной полости закрыта с 2-3 матрас швов использованием 6-0 surgipro шва. </li><li> Два-три матраса швы затем сделал, чтобы закрыть грудной мышцы, 1-3 капли 0,25% marcaine 1:10 в стерильного физиологического раствора (0.1ml/25g мыши) применяется к мышце, а затем 2-3 матрас швы делаются близко кожи. </li><li> Мыши удаляется из искусственной вентиляции легких. Как только ритмичный, быстрое, поверхностное дыхание проверяется, мышь можно экстубации. </li><li> 0,5 мл теплого стерильного физиологического раствора вводится в спинной пространство подкожного и мыши помещается на потепление площадку в клетке, пока она вновь обретает подвижность (1 час минимум). </li><li> Для выживания экспериментов, мыши помещаются обратно в их клетках и вернулся в виварий, пока время жертвоприношения. В первые 2 дня, смоченной пищаразмещены на полу клетки для облегчения кормления (так что они не должны достигать, которые могут вызвать боль) и бупренорфин следует вводить каждые 6-12hr. Послеоперационный уход также включает ежедневный мониторинг за первую неделю проверить адекватную подвижность, холить, и в еде. </li><li> Хирургические инструменты протереть спиртом и вставляется в бисер стерилизатора задолго до следующей операции. </li><li> Во время жертвоприношения, мышей под наркозом с натрием фенобарбиталом (65mg/ml; 55-65 мг / кг). При адекватной плоскости анестезии достигается, грудной полости открыт. </li><li> Хотя сердце еще билось, шприц с иглой 23 содержащих холодного хлористого калия (KCl, 30 мм) или 2,3-бутандион monoxime (BDM; 10 мм) используется для прокола задней базальной области желудочка и решения вводят внутривенно медленно в камеру, пока сердце арестован в диастолу. </li><li> Как только сердце удаляется, шприц, содержащий PBS используется для полоскания ретроградно заливать сердце, чтобы удалить кровь, которая остается. При острых исследований, в конце реперфузии период ЛАД повторно лигируют в исходную точку окклюзии. Раствор, содержащий 1% синего Эвана вводят в аорту. Как только сердце добывается, она режется поперек на 3 части одинаковой толщины, инкубировали в 1% 2,3,5-triphenyltetrazolium хлорид и отображаемого для морфометрических анализов 11. Для хронического исследования, сердце затем погружали в фиксатора, затем обрабатывается и встроенных в зависимости от рутинных процедур. Слайды могут быть окрашены гистологически и отображаемого для морфометрического анализа (с использованием Scion, NIH Image J, или Image Pro Plus) 9,10,12. </li></ol> Представитель Результаты: Если все сделано правильно, уровень выживаемости у мышей (мужчины: в возрасте 8-10 недель, 22-28г; женщин: в возрасте 10-12 недель, 20-26г), являются: более 90% при острой ишемии / реперфузии и ишемической предварительной подготовки экспериментов, более 85% в постоянных исследованиях перевязка артерии, и примерно 80% для intramyocardial инъекций. С начала травмы более легко видимыми метаболические изменения, а не структурных, инфаркт определения размера при ишемии / реперфузии и ишемической предварительной подготовки экспериментов осуществляется путем инфузии 1% синего красителя Эванса в аорту который будет заливать сердце, которое не поставляется LAD ( Рис 1А). Как только сердце удаляется и поперек разрезать пополам, ткани инкубировали в 1% растворе 2,3,5-triphenyltetrazolium хлорида для оценки размера инфаркта (рис. 1В). Областей измеряются с помощью Scion или NIH обработки изображений, которые могут быть откалиброван использованием микрометра отображаемого в то же увеличением. Эти цифры используются для расчета площади, подверженной риску / левого желудочка и размер инфаркта / зона риска 11. Штамм различия могут привести к изменениям массы тела и размеров сердца и так следует позаботиться, чтобы нормализовать эти меры к сердцу веса, массы тела, или голени длины для сравнительных целей. Постоянный артерии лигирование приводит к валовой структурные изменения, такие как некроз, утонение стенки, и камера расширения. Сравнение эффектов лечения и / или времени на размер инфаркта и некроза относительно левого желудочка, площади камеры, стены и перегородки левого желудочка свободной толщиной стенки в модели перманентного окклюзии (рис. 2А) также может быть измерена с помощью Scion или NIH изображений программное обеспечение. Коллаген окрашивания picrosirius красный / зеленый быстро (рис. 2Б) может быть использован для измерения insterstitial фиброз, который коррелирует с функциональным показателям 8-10 стены жесткости. Изображение на рисунке 3 представляет распределение 6ul решение (синий Эвана) вводят в пограничной зоне сердца следующие постоянные перевязки артерии. Обратите внимание, что оно происходит в направлении травме, а также к основанию, а также transmurally. <img src="/files/ftp_upload/2581/2581fig1.jpg" alt="Рисунок 1" /> Рисунок 1. А. Эван &#39;Голубой вводят в аорту до удаления. Это изображение показывает перфузии области сердца (пятна) и окклюзии области (неокрашенных). Б. Эван&#39; Голубой и TTC окрашивания после острой ишемии / реперфузии. Это представитель изображение (20x), показывающие распределение синий краситель, который окрашивали unoccluded регионов, а также TTC окрашивание метаболически жизнеспособные ткани (красная). Некротический области не окрашивают и таким образом они остаются бледными (очерчен). <img src="/files/ftp_upload/2581/2581fig2.jpg" alt="Рисунок 2" /> Рисунок 2. А. гематоксилин-эозином пятно. Это представитель изображение (20x) Н &amp; E окрашивание мыши сердце вырезать поперечно через инфаркта области на 4 дня после ИМ (20x). * Означает некроз тканей, стрелки указывают на грануляционной ткани, Р. = правого желудочка и LV = левого желудочка. B. Picrosirius красные и зеленые пятна быстро. ЭтоПредставитель изображения (20x) из picrosirius красный / зеленый быстрого окрашивания сечение мыши сердца в течение 4 недель после ИМ. Зеленые пятна цитоплазме и коллагеновых волокон красные. <img src="/files/ftp_upload/2581/2581fig3.jpg" alt="Рисунок 3" /> Рисунок 3. Синий Эвана красителя пятна распределение следующее 6ul intramyocardial инъекции. Это представитель изображение, показывающее глобальных и трансмуральный распределения Синий краситель Эван на протяжении следующих сердце 6ul intramyocardial инъекции в пограничную зону сразу после перевязки коронарной артерии (12x).

Это животное протокол был одобрен, и в соответствии с руководящими принципами и правилами, установленными Институциональные уходу и использованию животных комитета в Университете Восточной Каролины.

Ишемическая болезнь сердца по-прежнему является эпидемиологически и в финансовом отношении серьезной проблемой общественного здравоохранения. Значительные фундаментальных исследований по-прежнему необходимо, чтобы понять механизмы, посредством которых травмы и реконструкции продолжаются и, как потенциальные терапии может модулировать эти процессы, если они должны быть разработаны для клинического использования. Грызуны являются наиболее распространенным и широкий спектр генетически модифицированных мышей доступны делает этот вид более привлекательным модели. Хотя Есть различия между мышами и другими видами, Есть много преимуществ для мышиной модели. Применение простых рассекает масштаба или увеличительное стекло и хорошо освещены условия позволяют сосудистую, чтобы легко видеть (подробное валовой анатомии сосудистой см. Сальто-Tellez и соавт., 2004 13). Чтобы уменьшить риск послеоперационных смертности, это очень важно, чтобы избежать разрыва крупных сосудов с общим объемом крови 25г мыши меньше 2 мл 14. В том случае, чрезмерное кровотечение, нежный применения давления или определить прижигание может быть использован для остановки кровотечения. Эта процедура также может быть изменен в разному. Например, мыши могут быть под наркозом использованием изофлуран, кетамин / ксилазина, или натрия фенобарбитала и соответствующий выбор определяется длительностью 15-18 протокол. Носок-пинча рефлекс наиболее часто используемых индекс глубины наркоза. Кроме того, для повышения вероятности для долгосрочного выживания, некоторые исследователи используют антиаритмические препараты, такие как лидокаин, чтобы снизить частоту смертельных аритмий 19,20 Однако, следует учитывать, что это недавно было показано, что антиапоптотических свойства в остром Модель 21. Кроме того, чтобы уменьшить послеоперационные боли, анальгетики, такие как бупренорфин может быть введен в течение первых 48 часов после операции 3,16,17,22,23. Для поддержания температуры тела во время операции (особенно на более длительный протоколов), ректальный зонд последовательно с грелку часто используется вместо изотермических площадку. Для ишемии / реперфузии и / или ишемической до или посткондиционирование: продолжительности окклюзии (ов) и реперфузии (ы) может быть изменен, для постоянного прикуса, размер инфаркта может быть изменен путем изменения расположения лигатуры; и для intramyocardial инъекции (например, клеток, белков), не может быть 1-3 места инъекции и объема на инъекцию может быть до 15 мкл 24. Если ячейки внедряемому, датчик иглы используются (обычно 26-30) 5,25,26 следует выбирать в зависимости от размера ячеек так внутренний диаметр иглы достаточно велик, чтобы избежать Шееринг. Чтобы избежать смешивает из-за воспалительных процессов вызвано хирургии, некоторые исследователи сообщили об использовании ловушки, которые манипулируют исключая виво, чтобы закупорить и reperfuse сердца в закрытом мыши грудь в любой момент после хирургии 27-29. Совсем недавно, Гао и др. 30. Показали, что временный и постоянный прикус могут быть выполнены без необходимости вентиляции и несколько лабораторий начали использовать ультразвук для выполнения закрытой грудью intramyocardial инъекции 25,31. С первого исследования демонстрируют возможность лигирования коронарных артерий у мышей был опубликован Джонс и Олсон в 1954 году 32, и многие другие приняли эту модель и изменение его для изучения различных аспектов повреждения миокарда и ремоделирование 3,33-45. Характер мышей с точки зрения размера, репродуктивную способность, и сравнительно меньшими затратами на приобретение и обслуживание делают этот вид привлекательным инструментом для широкого круга физиологических и патофизиологических исследований. Как миниатюризация технологии для работы с изображениями в естественных условиях 46-49 достижений, а также средства для выполнения и анализа больших масштабах геномика и протеомика, скрининга препаратов, эффективность клеточной и / или белка терапии, а также биоматериалов 50-64, в сочетании с все более широкий спектр генетических манипуляций предоставляемых повсеместно или тканей конкретного трансгенных или мутантных / нокаутом мышей, мышиной модели инфаркта миокарда, несомненно, будет продолжать быть бесценным инструментом в оценке острой сердечной травмы и длительный срок реконструкции. Таким образом, существует несомненное значение в возможности выполнения этих экспериментов надежно и воспроизводимо.

<!DOCTYPE html PUBLIC "-//W3C//DTD XHTML 1.0 Transitional//EN" "http://www.w3.org/TR/xhtml1/DTD/xhtml1-transitional.dtd">
<html xmlns="http://www.w3.org/1999/xhtml" xml:lang="en" lang="en">	
		
		<div>
		<table border="1">
		<thead>
		<tr>
		<th>Material Name</th>
		<th>Type</th>
		<th>Company</th>
		<th>Catalogue Number</th>
		<th>Comment</th>
		</tr>
		</thead>
		<tbody>
		
<tr>
<td>Long Vanna Scissors</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>George Tiemann</td>
<td>160-159</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Micro Dissecting Scissors</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>George Tiemann</td>
<td>160-161</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Forceps &#x2013; straight, 1x2 teeth</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>George Tiemann</td>
<td>105-205</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Scalpel handle #3</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>George Tiemann</td>
<td>105-64</td>
<td>#10 sterile blade</td>
</tr>
<tr>
<td>Forceps &#x2013; half curved serrated</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>George Tiemann</td>
<td>160-19</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Tissue Scissors</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>George Tiemann</td>
<td>105-410</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Castroviejo Needle Holder</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Miltex</td>
<td>18-1828</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Cook Eye Speculum</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Miltex</td>
<td>18-63</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Surgipro II 8-0</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Suture Express</td>
<td>VP-900-X</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Prolene 6-0</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Suture Express</td>
<td>8776</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Germinator 500 Bead Sterilizer</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Cellpoint Scientific</td>
<td>65369-1</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Deltaphase isothermal pad</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Braintree Scientific</td>
<td>39DP</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Hamilton syringe - 25&mu;l</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Hamilton</td>
<td>80430</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>30 gauge beveled needle</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Hamilton</td>
<td>7803-07</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Ventilator</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Kent Scientific</td>
<td>TOPO</td>
<td>&nbsp;</td>		</tbody>
		</table>
		</div>

coronary artery ligation and intramyocardial injection in a murine model of infarction

Mouse models are a valuable tool for studying acute injury and chronic remodeling of the myocardium in vivo. With the advent of genetic modifications to the whole organism or the myocardium and an array of biological and/or synthetic materials, there is great potential for any combination of these to assuage the extent of acute ischemic injury and impede the onset of heart failure pursuant to myocardial remodeling. 
Here we present the methods and materials used to reliably perform this microsurgery and the modifications involved for temporary (with reperfusion) or permanent coronary artery occlusion studies as well as intramyocardial injections. The effects on the heart that can be seen during the procedure and at the termination of the experiment in addition to histological evaluation will verify efficacy. 
Briefly, surgical preparation involves anesthetizing the mice, removing the fur on the chest, and then disinfecting the surgical area. Intratracheal intubation is achieved by transesophageal illumination using a fiber optic light. The tubing is then connected to a ventilator. An incision made on the chest exposes the pectoral muscles which will be cut to view the ribs. For ischemia/reperfusion studies, a 1 cm piece of PE tubing placed over the heart is used to tie the ligature to so that occlusion/reperfusion can be customized. For intramyocardial injections, a Hamilton syringe with sterile 30gauge beveled needle is used. When the myocardial manipulations are complete, the rib cage, the pectoral muscles, and the skin are closed sequentially. Line block analgesia is effected by 0.25% marcaine in sterile saline which is applied to muscle layer prior to closure of the skin. The mice are given a subcutaneous injection of saline and placed in a warming chamber until they are sternally recumbent. They are then returned to the vivarium and housed under standard conditions until the time of tissue collection. At the time of sacrifice, the mice are anesthetized, the heart is arrested in diastole with KCl or BDM, rinsed with saline, and immersed in fixative. Subsequently, routine procedures for processing, embedding, sectioning, and histological staining are performed. 
Nonsurgical intubation of a mouse and the microsurgical manipulations described make this a technically challenging model to learn and achieve reproducibility. These procedures, combined with the difficulty in performing consistent manipulations of the ligature for timed occlusion(s) and reperfusion or intramyocardial injections, can also affect the survival rate so optimization and consistency are critical.

Watch this Scientific Journal Video about Coronary Artery Ligation and Intramyocardial Injection in a Murine Model of Infarction at JoVE.com

Coronary Artery Ligation and Intramyocardial Injection in a Murine Model of Infarction

Многочисленные генетические манипуляции и / или intramyocardial инъекции генов, белков, клеток и / или биоматериалов накладываются на измерение времени при исследовании острой ишемии / реперфузии и хронических ремоделирования у мышей. Это видео показывает, микрохирургические процедуры ишемии / реперфузии, постоянные перевязки коронарной артерии, и intramyocardial исследования инъекции.

Коронарных артерий и Лигирование Intramyocardial инъекций в мышиной модели миокарда

Mouse models are a valuable tool for studying acute injury and chronic remodeling of the myocardium in vivo.  With the advent of genetic modifications to ...

Research

JoVE Journal

Medicine

Modified Technique for Coronary Artery Ligation in Mice

Измененный Техника для лигирования коронарной артерии у мышей

Myocardial infarction (MI) is one of the most important causes of mortality in humans1-3. In order to improve morbidity and mortality in patients with MI ...

A Murine Model of Myocardial Ischemia-reperfusion Injury through Ligation of the Left Anterior Descending Artery

Мышиной модели ишемии миокарда-реперфузии через перевязки левой передней нисходящей артерии

Acute or chronic myocardial infarction (MI) are cardiovascular events resulting in high morbidity and mortality. Establishing the pathological mechanisms ...

Ultrasound-guided Transthoracic Intramyocardial Injection in Mice

Ультразвуковая руководствуясь Трансторакальная интрамиокардиальной впрыска у мышей

Murine models of cardiovascular disease are important for investigating pathophysiological mechanisms and exploring potential regenerative therapies. ...

Permanent Ligation of the Left Anterior Descending Coronary Artery in Mice: A Model of Post-myocardial Infarction Remodelling and Heart Failure

Постоянный Лигирование артерии передней нисходящей коронарной у мышей: Модель, перенесших инфаркт миокарда ремоделирования и сердечной недостаточности

Heart failure is a syndrome in which the heart fails to pump blood at a rate commensurate with cellular oxygen requirements at rest or during stress. It ...

Ultrasound Based Assessment of Coronary Artery Flow and Coronary Flow Reserve Using the Pressure Overload Model in Mice

Ультразвук оценки на основе коронарной артерии потока и коронарного кровотока заповедника Использование перегрузки Модель давления у мышей

Transthoracic Doppler echocardiography (TTDE) is a clinically useful, noninvasive tool for studying coronary artery flow velocity and coronary flow ...

Murine Left Anterior Descending (LAD) Coronary Artery Ligation: An Improved and Simplified Model for Myocardial Infarction

Murine Left Anterior Descending LAD Coronary Artery Ligation: An Improved and Simplified Model for Myocardial Infarction

Мышиная левая передняя нисход (ЛАД) аортокоронарное Лигирование: Улучшенная и Простая модель инфаркт миокард

Ischemic heart disease (IHD), or acute coronary syndrome (ACS), is one of the leading causes of death in the United States. IHD is characterized by ...

Percutaneous Contrast Echocardiography-guided Intramyocardial Injection and Cell Delivery in a Large Preclinical Model

Перкутанная контраст Intramyocardial эхокардиография руководствуясь инъекций и доставки клеток в большой доклинических модели

Cell and gene therapy are exciting and promising strategies for the purpose of cardiac regeneration in the setting of heart failure with reduced ejection ...

Isometric Contractility Measurement of the Mouse Mesenteric Artery Using Wire Myography

Изометрические сократимости измерение верхней брыжеечной артерии мыши, с помощью проволоки миография

The wire myograph technique is used to assess the contractility of vascular smooth muscles in response to depolarization, GPCR agonists/inhibitors and ...

Murine Myocardial Infarction Model using Permanent Ligation of Left Anterior Descending Coronary Artery

Модель инфаркта миокарда С использованием постоянной лиги циферблат левой передней спусковой коронарной артерии

Myocardial infarction (MI) and acute coronary diseases are among the most prominent causes of death in population with western lifestyle. The murine ...

Delayed Intramyocardial Delivery of Stem Cells after Ischemia Reperfusion Injury in a Murine Model

Задержка интрамиокарда Доставка стволовых клеток после травмы ишемии реперфузии в модели Murine

There is significant interest in the use of stem cells (SCs) for the recovery of cardiac function in individuals with myocardial injuries. Most commonly, ...