Name: neural-colony forming cell assay: an assay to discriminate bona fide neural stem cells from neural progenitor cells
Uploaded: 2011-03-06T14:00:00
Duration: 6 min 31 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Neural-Colony Forming Cell Assay: An Assay To Discriminate Bona Fide Neural Stem Cells from Neural Progenitor Cells at JoVE.com

Эта работа была поддержана финансирование из Оверстрит Foundation.

1. Объекты, которые должны быть готовы Прежде чем приступить к сотовый Покрытие: <ol><li> Соответствующие объемы полной среде НСК получают путем смешивания NeuroCult НСК базальной среды и NeuroCult НСК распространения дополнений в 9:01 отношения, соответственно. </li><li> Аликвоту NeuroCult NCFC бессывороточной среде без Цитокины не разморозится. </li><li> Средний разогревается в 37 ° С водяной бане. </li><li> Исходные растворы эпидермального фактора роста (ЭФР), основной фактор роста фибробластов (FGF-б) при концентрации 10 мкг / мл и гепарина на 0,2% готовы впереди. </li><li> В зависимости от размера эксперимента, несколько 35-мм блюда культуры ткани необходимы для пластины клеток и один 150-200см пластиковые чашки Петри необходимо также провести дублировать 35 блюд и третий 35 мм блюдо для воды. </li></ol> 2. Сотовые приготовления: В зависимости от вашего эксперимента, клетки могут быть получены из взрослого или эмбриональных источников (первичные диссоциированных тканей или диссоциированных нейросферы). Рассеките тканей взрослого / эмбриональных мыши центральной нервной системы (ЦНС), либо диссоциируют взрослый / эмбрионального происхождения нейросферы, как описано выше 1,2, а затем: <ol><li> Суспензии отдельных клеток проходит через 40-мкм размер ячейки фильтра так, чтобы устранить не-диссоциированных сгустки. </li><li> 10 мкл клеточной суспензии смешивается с 90μl из Трипановый синий выполнять клеток. Примечание: Другие соответствующие разведения клетка может также использоваться. </li><li> При использовании первичных эмбриональных или взрослых производным нервных клеток, разбавленные суспензии клеток в концентрации 6,5 · 10 5 клеток / мл в полной среде НСК. Если с использованием клеток из диссоциированных нейросферы производным от взрослого или эмбриональные нервные клетки, разбавленные суспензии клеток в концентрации 2,2 · 10 5 клеток / мл в полной среде НСК. </li></ol> 3. Покрытие Ячейки в полу-твердый N-ЦАФД среда: <ol><li> Соответствующий объем следующие компоненты смешиваются в порядке, в зависимости от количества дубликатов. Здесь мы смешиваем сумму, необходимую для двух повторяет или дублировать блюд. Дополнительные номера дубликатов, пожалуйста, обратитесь к таблице 1. <ul><li> 1,7 мл NeuroCult NCFC бессывороточной среде без Цитокины </li><li> 330 мкл NeuroCult НСК добавки распространения </li><li> 6,6 мкл EGF (10μg/mL) </li><li> 32 мкл Пенициллин / стрептомицин </li><li> 3,3 мкл б-FGF (10μg/mL) необходимо использовать только при культивировании клеток, полученных от взрослых нервных клеток. </li><li> 3,3 мкл гепарина (0,2%) необходимо использовать только при культивировании клеток, полученных от взрослых нервных клеток. </li><li> 25 мкл суспензии клеток (в 2,2 х 10 5 клеток / мл клетки диссоциированных нейросферы или 6,5 х 10 5 клеток / мл первичных клеток из диссоциированных тканей ЦНС). Примечание: окончательный номера сотовых покрытие должно быть около 2500 клеток на 35 мм блюдо культуры для neurosphere клеток, полученных до 7500 клеток на 35 мм блюдо культуры для первичных клеток. В некоторых случаях конечная плотность покрытия клетка должна быть скорректирована путем проведения эксперимента ячейки титрования. Для статистического анализа, общее количество колоний обнаружены после 21 дней культуры должны быть в пределах не менее 50 - 150 колоний. </li></ul></li><li> Среде, содержащей клетки смешиваются мягко, а затем 1,3 мл холодного раствора коллагена передается клеточной суспензии и хорошо перемешивают, осторожно пипеткой, чтобы избежать введения каких-либо пузыри. </li><li> Смешанный раствор разливают в центре каждого 35мм блюдо культуры (~ 1,5 мл / блюдо) и блюда наконечником мягко использованием круговых движений, чтобы смесь равномерно распределить по поверхности тарелки. . </li><li> Дублировать 35 блюд мм культуры помещают в 100 мм пластины Петри. Крышка новых 35 мм блюдо снимается и открытых блюдо будет также размещена в те же 100 мм блюдо Петри. Стерильная вода добавляется к этой открытой 35 мм блюдо для поддержания оптимальной влажности в течение инкубационного периода. Площадь пластин биопроб (245 мм) используются, когда более 35 мм повторить блюда были созданы. Опять же, включают в себя 2 или 3 открытых 35 мм блюд, содержащих стерильной водой. </li><li> Пластины передается термостат при температуре 37 ° C, 5% СО2 и 95% влажности. Коллагена застывает за счет повышения температуры и образование геля происходит в течение примерно одного часа. Культур не должна быть нарушена в это время. </li><li> Культивируемые клетки инкубируют в течение 21 дней (различия в колонии размер может быть четко отделены после 21 дней). </li></ol> 4. Подготовка Пополнение среднего и кормление Культура: При N-ЦАФД культуры инкубируют в течение длительного периода времени (21 дней), культуры должны быть поданы с соответствующим полным NeuroCult Пополнение среду приготовить свежую следующим образом: <ul><li> 4,5 мл NeuroCult НСК базальной среды, смешивают с 0,5 мЛ NeuroCult НСК добавки распространения и факторов роста, добавляется: </li><li> 250 мкл 10μg/mL EGF (для придания конечной концентрации 0,5 мкг / мл EGF) </li><li> 125 мкл 10μg/mL б-FGF (для придания окончательной концентрации 0.25μg/mL б-FGF) необходимо использовать только при культивировании клеток, полученных от взрослых нервных клеток. </li><li> 125 мкл 0,2% гепарин, необходимо использовать только при культивировании клеток, полученных от взрослых нервных клеток. </li><li> 60 мкл соответствующего полного среднего Пополнение NeuroCult (для эмбриона или взрослой клетки) добавляется в центре каждого NCFC блюдо Пробирной раз в 7 дней, в течение всей NCFC инкубации культуры Пробирной (21 дней). </li></ul> 5. Подсчет очков N-CFC Пробирной Производные колоний и Вычисление частоты добросовестных NSCs и нейронные клетки-предшественники: <ul><li> Каждый 35 мм культуры блюдо делается на сетке блюдо забил с сеткой размером 2,0 мм х 2,0 мм, и тогда оба блюда помещаются на столик микроскопа. </li><li> Использование малой мощности (2.5X - 5X) объектива, каждое блюдо отсканированы и колонии забили в зависимости от их размеров. </li><li> Колонии разделить на две основные категории: <ol><li> Менее 2 мм в диаметре </li><li> ≥ 2 мм в диаметре </li></ol></li></ul> 6. Представитель Результаты: Как и в neurosphere анализа, посеянных клеток в N-CFC анализа начинают размножаться и делать небольшие колонии клеток в течение 3 - 7 дней после покрытия (рис. 1). Через две недели, колонии разных размеров могут быть выделены. Хотя большинство колоний, как правило, перестают расти после 14 дней, некоторые колонии продолжают увеличиваться в размерах. Днем 21, колонии могут быть отнесены к одной из четырех категорий: 1) менее 0,5 мм, 2) 0,5 - 1 мм в диаметре, 3) 1 - 2 мм и 4) ≥ 2 мм в диаметре. Практически, колонии меньше 2 мм в диаметре, называются предшественников производные (рис. 2) и колоний ≥ 2 мм в диаметре, называются НСК производные (рис. 3). Число колоний ≥ 2 мм в диаметре в общем посеянных клеток, представляет собой частоту фактического добросовестных нервные стволовые клетки с долгосрочными самообновлению и несколькими потенциальными возможностями. Общая neurosphere формирования частоты в частности популяции клеток через 7-8 дня в параллельном эксперименте NSA, по оценкам, быть похожими на общую колониеобразующих частота же популяции клеток после 21 дней в N-ЦАФД эксперимента. N-ЦАФД однако, обеспечивает более либеральные состоянии, так как каждая ячейка может показать весь свой пролиферативный потенциал. <table border="1"><tbody><tr><td> Компонент </td><td> 2 воспроизводит </td><td> 3 воспроизводит </td><td> 4 воспроизводит </td></tr><tr><td> NeuroCult NCFC бессывороточной среде без Цитокины </td><td> 1700 </td><td> 2550 </td><td> 3400 </td></tr><tr><td> NeuroCult НСК распространения добавки </td><td> 330 </td><td> 495 </td><td> 660 </td></tr><tr><td> EGF (10 мкг / мл) </td><td> 6,6 </td><td> 9,9 </td><td> 13,2 </td></tr><tr><td> bFGF (10 мкг / мл), только для взрослых клеток </td><td> 3,3 </td><td> 4,95 </td><td> 6,6 </td></tr><tr><td> Раствор гепарина (0,2%), только для взрослых клеток </td><td> 3,3 </td><td> 4,95 </td><td> 6,6 </td></tr><tr><td> Пенициллин / стрептомицин (1:100) </td><td> 32 </td><td> 48 </td><td> 64 </td></tr><tr><td> Клетки по адресу: 2,2 х 10 5 культуре клеток / мл или 6,5 х 10 5 первичных клеток / мл </td><td> 25 </td><td> 37,5 </td><td> 50 </td></tr><tr><td> Коллаген решения </td><td> 1300 </td><td> 1950 </td><td> 2600 </td></tr></tbody></table> Таблица 1. Компоненты полного N-CFC анализа культуры. <img src="/files/ftp_upload/2639/2639fig1.jpg" alt="Рисунок 1" /> Рисунок 1. Представителем колоний в N-ЦАФД культуры прохождения одна E14 NSCs мыши 7 дней после покрытия. Колонии могут отображаться различные морфологии и размера. Оригинальные увеличении; 4x <img src="/files/ftp_upload/2639/2639fig2.jpg" alt="Рисунок 2" /> Рисунок 2. Представителю предшественников производные колоний разного размера в N-ЦАФД культуры прохождения одна E14 мыши NSCs 21 дней после покрытия. Как показала практика, колонии различной морфологией, но и все менее 2 мм. Оригинальные увеличении; 4x <img src="/files/ftp_upload/2639/2639fig3.jpg" alt="Рисунок 3" /> Рисунок 3. Представителю добросовестных стволовых клеток производных колонии в N-ЦАФД культуры прохождения одна E14 NSCs мыши через 21 день после покрытия. Стволовые клетки производные колонии могут отображаться различные морфологии (см.видео), но все они ≥ 2 мм в диаметре. Оригинальные увеличении; 4x

<ol>
	<li>Azari, H., Rahaman, M., Sharififar, S., Reynolds, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolation+and+Expansion+of+the+Adult+Mouse+Neural+Stem+Cells+Using+the+Neurosphere+Assay.">Isolation and Expansion of the Adult Mouse Neural Stem Cells Using the Neurosphere Assay.</a> J Vis Exp. , (2010).</li><li>Azari, H., Sharififar, S., Rahaman, M., Ansari, S., Reynolds, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Establishing+Embryonic+Mouse+Neural+Stem+Cell+Culture+Using+the+Neurosphere+Assay.">Establishing Embryonic Mouse Neural Stem Cell Culture Using the Neurosphere Assay.</a> J Vis Exp. , (2011).</li><li>Reynolds, B. A., Weiss, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Generation+of+neurons+and+astrocytes+from+isolated+cells+of+the+adult+mammalian+central+nervous+system.">Generation of neurons and astrocytes from isolated cells of the adult mammalian central nervous system.</a> Science. 255, 1707-1710 (1992).</li><li>Reynolds, B. A., Rietze, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neural+stem+cells+and+neurospheres--re-evaluating+the+relationship.">Neural stem cells and neurospheres--re-evaluating the relationship.</a> Nat Methods. 2, 333-336 (2005).</li><li>Louis, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Enumeration+of+Neural+Stem+and+Progenitor+Cells+in+the+Neural+Colony+Forming+Cell+Assay.">Enumeration of Neural Stem and Progenitor Cells in the Neural Colony Forming Cell Assay.</a> Stem Cells. , (2008).</li><li>Golmohammadi, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparative+analysis+of+the+frequency+and+distribution+of+stem+and+progenitor+cells+in+the+adult+mouse+brain.">Comparative analysis of the frequency and distribution of stem and progenitor cells in the adult mouse brain.</a> Stem Cells. 26, 979-987 (2008).</li><li>Louis, S. A., Reynolds, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neurosphere+and+Neural+Colony-Forming+Cell+Assays.">Neurosphere and Neural Colony-Forming Cell Assays.</a> Protocols for Neural Cell Culture. 10, 1-28 (2010).</li></ol>

Один из авторов, Шарон А. Луи, является филиалом StemCell Technologies Inc, производитель некоторые реагенты, используемые в данном исследовании.

Хотя neurosphere анализа 3,1,2 является наиболее распространенным методом для изоляции и расширения нервных стволовых клеток из различных источников, таких как взрослых и эмбриональных тканях центральной нервной системы, он не может точно измерить частоту НБК в смешанной популяции нейронных клеток-предшественников (стволовых и прародителей), сколько не один к одному между числом нейросферы и количество добросовестных стволовых клеток 4. Для устранения этого ограничения, оригинальные АНБ была адаптирована таким образом, чтобы позволить нейронных стволовых и прародителей расти на полную мощность распространения в течение трех недель 5-7. В отличие от жидких АНБ, в N-ЦАФД колонии на самом деле клонально получены, как полутвердые коллагеновой матрицы предотвращает миграцию одной посеянных клеток и агрегации колоний. Для последовательные результаты с этого анализа мы рекомендуем: <ol><li> Обеспечить суспензии отдельных клеток в оригинальном клеточной суспензии. Пройди свой суспензии отдельных клеток через 40-мкм размер ячейки фильтра так, чтобы устранить не-диссоциированных сгустки. </li><li> Держите раствора коллагена на льду или в холодильнике +4 ° C. Коллаген является последний пункт для добавления в смесь суспензии клеток, как застывает за счет повышения температуры. </li><li> Не забывайте кормить культуры каждую неделю. Добавление пополнения среде, содержащей фактор роста (а) раз в 7 дней позволит клетки продолжают распространяться на длительный период культуры. </li><li> Конечной плотности покрытия ячейки были оптимизированы для клеток, полученных из первичного или культивированный нервных клеток, так что общее число колоний обнаружены после 21 дней культивирования в NCFC-находится в пределах не менее 50 - 200 колоний. Этот диапазон позволяет обнаружить редкие НСК производные колонии&gt; 2 мм в диаметре в образцах, обеспечивая при этом достаточное количество колоний для статистического анализа. В зависимости от начальной ячейки источника, значительно меньше (&lt;50) и увеличение числа колоний (&gt; 250) иногда получены. Слишком мало колоний приведет к колонии&gt; 2 мм в диаметре были ниже уровней обнаружения, в то время слишком много колоний приведет к переполненности anddepletion роста компонентов среды приводит к неточным подсчетом колонии. Поэтому плотность клеток покрытия должны быть соответствующим образом скорректированы (т.е. увеличение или уменьшение общего количества посеянных клеток) </li></ol>

<!DOCTYPE html PUBLIC "-//W3C//DTD XHTML 1.0 Transitional//EN" "http://www.w3.org/TR/xhtml1/DTD/xhtml1-transitional.dtd">
<html xmlns="http://www.w3.org/1999/xhtml" xml:lang="en" lang="en">	
		
		<div>
		<table border="1">
		<thead>
		<tr>
		<th>Material Name</th>
		<th>Type</th>
		<th>Company</th>
		<th>Catalogue Number</th>
		<th>Comment</th>
		</tr>
		</thead>
		<tbody>
		
<tr>
<td>NeuroCult NSC Basal Medium</td>
<td>Medium</td>
<td>STEMCELL</td>
<td>05700</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>NeuroCult NSC Proliferation Supplements</td>
<td>Medium supplement</td>
<td>STEMCELL</td>
<td>05701</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>NeuroCult NCFC medium</td>
<td>Medium</td>
<td>STEMCELL</td>
<td>05720</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>0.05% 	trypsin-EDTA</td>
<td>Reagent</td>
<td>Gibco</td>
<td>25300-062</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Soybean trypsin inhibitor </td>
<td>Reagent</td>
<td>Sigma</td>
<td>T6522</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Cell strainer </td>
<td>Sieve</td>
<td>BD Falcon</td>
<td>352340</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Pen/Strep </td>
<td>Reagent</td>
<td>Gibco</td>
<td>15140-122</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>T25 flask</td>
<td>Culture ware</td>
<td>Nalge Nunc international</td>
<td>136196</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>T80 flask</td>
<td>Culture ware</td>
<td>Nalge Nunc international</td>
<td>178905</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Collagen</td>
<td>Reagent </td>
<td>STEMCELL</td>
<td>04902</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>EGF</td>
<td>Growth factor</td>
<td>R&amp;D</td>
<td>2028-EG</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>b-FGF</td>
<td>Growth factor</td>
<td>R&amp;D</td>
<td>3139-FB</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Heparin</td>
<td>Growth factor</td>
<td>Sigma</td>
<td>H4784</td>
<td>Reconstituted in PBS</td>
</tr>
<tr>
<td>15 ml tubes</td>
<td>Culture ware</td>
<td>BD Falcon</td>
<td>352096</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>50 ml tubes</td>
<td>Culture ware</td>
<td>BD Falcon</td>
<td>352070</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>35 mm culture dishes</td>
<td>Culture ware</td>
<td>STEMCELL</td>
<td>27100</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Gridded scoring dishes</td>
<td>Culture ware</td>
<td>STEMCELL</td>
<td>27500</td>
<td>&nbsp;</td>		</tbody>
		</table>
		</div>

neural-colony forming cell assay: an assay to discriminate bona fide neural stem cells from neural progenitor cells

Neurosphere анализа (АНБ) является одним из наиболее часто используемые методы для изоляции, расширение и рассчитать частоты нейронных стволовых клеток (NSCs). Кроме того, это бессывороточной культуре система была также использована для расширения стволовых клеток и определить их частоты от различных опухолей и нормальных тканей. Было показано, что недавно один-к-одному не существует между neurosphere формирования и NSCs. Это говорит о том, что АНБ, как в настоящее время применяются, завышенную частоту NSCs в смешанной популяции нейронных клеток-предшественников изолировать от эмбриональных и взрослых мозга млекопитающих. Это видео демонстрирует практически новый коллаген основан полутвердых анализ, нейронные-колониеобразующих анализа клеточной (N-ЦАФД), которая имеет способность различать стволовых из клеток-предшественников в зависимости от их долгосрочного пролиферативный потенциал, и таким образом обеспечивает метод перечислить НСК частоты. В N-ЦАФД, колоний ≥ 2 мм в диаметре получены из клеток, которые отвечают всем функциональным критериям НСК, в то время как колонии &lt;2мм являются производными от прародителей. N-ЦАФД процедура может быть использована для клеток, полученных из различных источников, включая первичный и культурный взрослого или эмбриональные клетки мыши ЦНС. Здесь мы используем клетки получали из проезд один нейросферы генерируется из эмбриональных 14-й день мышей мозг для выполнения N-ЦАФД. Культуры пополнился распространения среду каждые семь дней в течение трех недель, чтобы покрытые клетками, чтобы продемонстрировать свой ​​полный пролиферативный потенциал, а затем частота нейронных предшественников и добросовестных нервные стволовые клетки, рассчитывается соответственно, подсчитывая число колоний, которые являются &lt;2 мм и те, которые ≥ 2 мм в ссылке на количество клеток, которые изначально были покрыты.

Watch this Scientific Journal Video about Neural-Colony Forming Cell Assay: An Assay To Discriminate Bona Fide Neural Stem Cells from Neural Progenitor Cells at JoVE.com

Neural-Colony Forming Cell Assay: An Assay To Discriminate Bona Fide Neural Stem Cells from Neural Progenitor Cells

Это видео демонстрирует, как протокол к дискриминации и перечислить добросовестных нервные стволовые клетки в смешанной популяции нейронных клеток-предшественников помощью нейронных колониеобразующих ячейки анализа.

Neural-колония Формирование анализа клеточной: Пробирной различать Добросовестный нервные стволовые клетки из нервных клеток-предшественников

The neurosphere assay (NSA) is one of the most frequently used methods to isolate, expand and also calculate the frequency of neural stem cells (NSCs). ...

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Isolation and Expansion of the Adult Mouse Neural Stem Cells Using the Neurosphere Assay

Выделение и расширение взрослой мыши нервные стволовые клетки Использование Neurosphere Пробирной

Isolation and expansion of the putative neural stem cells (NSCs) from the adult murine brain was first described by Reynolds and Weiss in 1992 employing a ...

Establishing Embryonic Mouse Neural Stem Cell Culture Using the Neurosphere Assay

Создание эмбриональных Мышь нейронные культуры стволовых клеток Использование Neurosphere Пробирной

In mammalians, stem cells acts as a source of undifferentiated cells to maintain cell genesis and renewal in different tissues and organs during the life ...

Live-cell Imaging of Sensory Organ Precursor Cells in Intact Drosophila Pupae

Live-cell Imaging of Sensory Organ Precursor Cells in Intact Drosophila Pupae

Live-ячейки изображения сенсорных клеток-предшественников органов в интактных Drosophila Куколки

Since the discovery of Green Fluorescent Protein (GFP), there has been a revolutionary change in the use of live-cell imaging as a tool for understanding ...

The Neuroblast Assay: An Assay for the Generation and Enrichment of Neuronal Progenitor Cells from Differentiating Neural Stem Cell Progeny Using Flow Cytometry

Нейробластов Анализ: Анализ для создания и обогащения нейронов клетки-предшественники из Дифференцируя нейронных потомков стволовых клеток методом проточной цитометрии

Neural stem cells (NSCs) can be isolated and expanded in large-scale, using the neurosphere assay and differentiated into the three major cell types of ...

Isolation and Culture of Neural Crest Cells from Embryonic Murine Neural Tube

Выделение и культуры клеток нервного гребня из эмбриональных мышей нервной трубки

The embryonic neural crest (NC) is a multipotent progenitor population that originates at the dorsal aspect of the neural tube, undergoes an epithelial to ...

Feeder-free Derivation of Neural Crest Progenitor Cells from Human Pluripotent Stem Cells

Ф-бесплатно Вывод нервного гребня клеток-предшественников из человеческих плюрипотентных стволовых клеток

Human pluripotent stem cells (hPSCs) have great potential for studying human embryonic development, for modeling human diseases in the dish and as a ...

Cell Sorting of Neural Stem and Progenitor Cells from the Adult Mouse Subventricular Zone and Live-imaging of their Cell Cycle Dynamics

Сотовый Сортировка нейронных стволовых и прогениторных клеток из взрослых мышей субвентрикулярной зоны и Live-визуализация клеточного цикла динамика

Neural stem cells (NSCs) in the subventricular zone of the lateral ventricles (SVZ) sustain olfactory neurogenesis throughout life in the mammalian brain. ...

Enumeration of Neural Stem Cells Using Clonal Assays

Перечень нервных стволовых клеток, с помощью клоновых Assays

Neural stem cells (NSCs) have the ability to self-renew and generate the three major neural lineages &#8212; astrocytes, neurons and oligodendrocytes. ...

Development of a Refined Protocol for Trans-scleral Subretinal Transplantation of Human Retinal Pigment Epithelial Cells into Rat Eyes

Разработка изысканный протокола для транс склеры субретинальное трансплантации эпителиальных клеток человека пигмента сетчатки глаза крыс

Degenerative retinal diseases such as age-related macular degeneration (AMD) are the leading cause of irreversible vision loss worldwide. AMD is ...

Identifying Cell Surface Markers of Primary Neural Stem and Progenitor Cells by Metabolic Labeling of Sialoglycan

Определение клеточных поверхностных маркеров первичных нейронных стволовых и клеток-прародителей путем метаболической маркировки сиалогликан

Neural stem and progenitor cells (NSPCs) are the cellular basis for the complex structures and functions of the brain. They are located in specialized ...