Name: manual restraint and common compound administration routes in mice and rats
Uploaded: 2012-09-26T12:00:00
Duration: 14 min 10 s
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La ricerca qui presentata è stata sostenuta da Charles River.

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	<li>Turner, P. V., Brabb, T., Pekow, C., Vasbinder, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Administration+of+substances+to+laboratory+animals:+routes+of+administration+and+factors+to+consider.">Administration of substances to laboratory animals: routes of administration and factors to consider.</a> JAALAS. 50, 600-613 (2011).</li><li>Diehl, K. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+good+practice+guide+to+the+administration+of+substances+and+removal+of+blood,+including+routes+and+volumes.">A good practice guide to the administration of substances and removal of blood, including routes and volumes.</a> J. Appl. Toxicol. 21, 15-23 (2001).</li><li>Hurst, J. L., West, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Taming+anxiety+in+laboratory+mice.">Taming anxiety in laboratory mice.</a> Nat. Methods. 7, 825-826 (2010).</li><li>Maurer, B. M., D&#246;ring, D., Scheipl, F., K&#252;chenhoff, H., Erhard, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+a+gentling+programme+on+the+behaviour+of+laboratory+rats+towards+humans.">Effects of a gentling programme on the behaviour of laboratory rats towards humans.</a> Appl. Anim. Behav. Sci. 111, 329-341 (2008).</li><li>Cloutier, S., Newberry, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Use+of+a+conditioning+technique+to+reduce+stress+associated+with+repeated+intra-peritoneal+injections+in+laboratory+rats.">Use of a conditioning technique to reduce stress associated with repeated intra-peritoneal injections in laboratory rats.</a> Appl. Anim. Behav. Sci. 112, 158-173 (2008).</li><li>Romanovsky, A. A., Kulchitsky, V. A., Simons, C. T., Sugimoto, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Methodology+of+fever+research:+why+are+polyphasic+fevers+often+thought+to+be+biphasic.">Methodology of fever research: why are polyphasic fevers often thought to be biphasic.</a> Am. J. Physiol. 275, 332-338 (1998).</li><li>Turner, P. V., Pekow, C., Vasbinder, M. A., Brabb, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Administration+of+substances+to+laboratory+animals:+equipment+considerations,+vehicle+selection,+and+solute+preparation.">Administration of substances to laboratory animals: equipment considerations, vehicle selection, and solute preparation.</a> JAALAS. 50, 614-627 (2011).</li><li>Lukas, G., Brindle, S. D., Greengard, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+route+of+absorption+of+intraperitoneally+administered+compounds.">The route of absorption of intraperitoneally administered compounds.</a> J. Pharmacol. Exp. Ther. 178, 562-564 (1971).</li><li>AALAS. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Laboratory Mouse Handbook. , (2009).</li><li>AALAS. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> LAT Training Manual. , (2009).</li><li>AALAS. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> LATg Training Manual. , (2009).</li><li>Barnett, S. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Manual of Animal Technology. , 440 (2007).</li><li>Baumans, V., Pekow, C. A., Hau, J., Schapiro, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Handbook of Laboratory Animal Science. 1, 401-446 (2010).</li><li>Bogdanske, J. J., Hubbard-Van Stelle, S., Riley, M. R., Schiffman, B. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Laboratory Mouse Procedural Techniques. , (2011).</li><li>Danneman, P., Suckow, M. A., Brayton, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> The Laboratory Mouse. , (2000).</li><li>Sharp, P. E., La Regina, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> The Laboratory Rat. , (1998).</li></ol>

Gli autori sono dipendenti di Charles River.

Questo protocollo dovrebbe essere considerata come una introduzione alla movimentazione degli animali e somministrazione della sostanza lo scopo di completare una formazione pratica fornito presso lo stabilimento del ricercatore. I mezzi di contenzione che saranno utilizzati e le vie di somministrazione della sostanza dovrebbero essere considerati nel disegno sperimentale e quando il protocollo di ricerca o del comitato etico il protocollo è scritto. La formazione in procedure connesse agli animali è vitale per il successo della ricerca. Per eseguire la maggior parte degli esperimenti, gli animali devono essere trattati da personale di ricerca, e il migliore è il trattamento degli animali, tanto meno ha sottolineato l&#39;animale 3. Abituando gli animali per gentile contatto umano può ridurre lo stress e rendere gli animali soggetti di ricerca più trattabili 4,5. Gestione dello stress ha mostrato di influenzare alcuni tipi di ricerca 6 ed è possibile che può influenzare altri. Sistema di ritenuta dei roditori deve essere effettuata con attenzione, ma la gestione dell&#39;impresa (un tentativopresa può causare lesioni a roditori e gestore) e dovrebbe essere per il minor tempo pratico. Metodi di ritenuta di solito sono scelti in base alle dimensioni dell&#39;animale o la richiesta di accesso. Per esempio, la movimentazione ratti adulti per la nuca, anche se possibile, è spesso incontrato con forte resistenza dal ratto, soprattutto se il gestore è inesperto. In possesso di un topo o ratto a mano può rendere l&#39;accesso alle vene coda difficile e di un dispositivo di ritenuta è spesso scelto di mantenere l&#39;animale più fermo possibile. Quando i ricercatori di gestire gli animali, sono spesso cercano di amministrare un composto o biologico per ulteriori studi. La via di somministrazione di sostanze può influenzare l&#39;assorbimento, la biodisponibilità e idoneità per un particolare esperimento. La familiarità con vari percorsi devono fornire ai ricercatori la possibilità di amministrare la loro sostanza nel miglior modo possibile, per le loro ricerche. Per esempio, un percorso che promuove assorbimento rapido di una sostanza, Ad esempio endovenosa o intraperitoneale, non deve essere utilizzato se il ricercatore vuole somministrare il farmaco in un modo più lento effetto. Recensioni recenti di alcune di queste tecniche e considerazioni per il volume, attrezzature, e soluto si può trovare in due articoli da Turner et al. 1,7 Quando le sostanze devono essere somministrate per roditori da laboratorio, occorre tenere in considerazione la dimensione corretta del materiale e volume di sostanza (indicato in tabella 1). Non correttamente attrezzature di altra dimensione o grandi quantità può provocare disagio, lesioni o morte dell&#39;animale. In generale, le sostanze somministrate per via parenterale sono sterili, se gli obiettivi di ricerca renderebbe ciò impossibile (ad esempio, gli studi batteriche). Composti biologici e dovrebbe essere in un soluto o veicolo che avrà il minimo effetto sull&#39;animale. A pH fisiologico (7,3 -7,4) è generalmente ben accettato, soprattutto per via sottocutanea, intramuscolare, e intrapepercorsi ritoneal. Non fisiologici livelli di pH in sostanze somministrate attraverso queste vie può causare dolore o necrosi e danni ai tessuti. Più ampie gamme di pH sono tollerati con percorsi intragastrici ed endovenosa 7. In piccoli roditori, un&#39;altra considerazione importante è la possibilità di rilassarsi, se grandi quantità di liquidi a temperatura ambiente sono dati. Se i liquidi sono stati somministrati per via endovenosa o intraperitoneale, specialmente a sostegno di un animale malato, che deve essere riscaldato a temperatura corporea (37 ° C). Le vie di somministrazione discussi in questo protocollo sono quelli comunemente utilizzati in molti programmi di ricerca, sono semplici da padroneggiare, e generalmente non richiede anestesia. Una varietà quasi infinita di vie di somministrazione sono possibili, tuttavia, compreso intracranica, intratecale, epidurale, intratracheale, intraossea, e intra-solo per citarne alcuni. Formazione in questi percorsi specializzati di somministrazione dovrebbe essere cercato da persone who hanno una vasta esperienza con il percorso e buoni risultati. Nei roditori, la via intranasale è in genere utilizzato per studiare le sostanze introdotte per i polmoni attraverso una più &quot;naturale&quot;, metodo di instillazione. Topi e ratti sono obbligati naso-respiratori, così inducendoli a inalare piccole quantità di liquido non è difficile, anche in animali coscienti. Poiché la mucosa nasale è ben fornito con vasi sanguigni, la somministrazione intranasale di alcune sostanze può essere simile alla somministrazione endovenosa. Questo percorso è sconsigliato in animali con rinite, tuttavia, come che possono compromettere l&#39;assorbimento. I tentativi di amministrare grandi volumi per via endonasale può causare dispnea o annegamento dell&#39;animale. Iniezioni intramuscolari di fornire un rapido assorbimento delle sostanze. Iniezioni intramuscolari può essere difficile in ratti e topi a causa delle loro piccole dimensioni e di conseguenza i muscoli piccoli. Sono eseguiti nella zampa posteriores. A causa del rischio di danni del nervo sciatico, il quadricipite femorale è il muscolo della scelta. Sebbene sia il sottocutanea e intradermica coinvolgono la pelle, ci sono differenze tra la biodisponibilità di sostanze immesse nella pelle contro il sottocute. La somministrazione sottocutanea è spesso considerato un percorso &quot;deposizione&quot;, con più lento assorbimento di altre vie, ad esempio per via endovenosa o intraperitoneale. Somministrazione intradermica viene utilizzato per volumi molto piccoli di sostanze, tipicamente sostanze immunostimolanti come adiuvante-antigene miscele. In entrambi i casi, le sostanze somministrate devono essere di pH fisiologico e non irritante. Intradermica o sottocutanea iniezioni non deve essere eseguita nel nuca, poiché questo è un sito comunemente usato per trattenere il roditore. Somministrazione endovenosa e intraperitoneale sono spesso considerati equivalenti nei roditori. Endovenosa di dosaggio fornire maggiori rApID assorbimento di composti, tuttavia, mentre somministrazione intraperitoneale deve essere considerata approssimativamente equivalente a somministrazione orale 8. Si deve prestare attenzione per via intraperitoneale con composti somministrati in quanto possono causare dolore se impropriamente tamponata. Il percorso comune di somministrazione in bolo per via endovenosa nei roditori è attraverso le vene della coda. Se cronica somministrazione endovenosa di una sostanza è desiderato, l&#39;impianto di venosa o arteriosa cannule devono essere considerati. Le sostanze somministrate per via endovenosa deve essere consegnato in modo asettico e deve essere dimostrato di essere sicuro per somministrare per via endovenosa. Ad esempio, le sostanze che possono indurre emolisi, trombosi, vasculite o non sono adatte per la somministrazione per via endovenosa. Il percorso gavage intragastrico o orale è spesso utilizzato per simulare un percorso comune somministrazione nell&#39;uomo. Ciò consente inoltre di dosaggio preciso di sostanze rispetto alla somministrazione per via orale attraverso il cibo o acqua. Biodisponibilità dei compostisomministrato tramite gavage varierà in base allo stato alimentato / digiuno dell&#39;animale, nonché il soluto o veicolo del composto o biologiche. Aghi sonda gastrica o con l&#39;alimentazione devono essere di dimensioni adeguate per gli animali in uso, e deve essere pulita tra gli animali, se gli aghi monouso sonda gastrica non sono pratici. Infortuni causati da sonda gastrica non sono rari e includono la deposizione della sostanza nei polmoni o rottura dello stomaco o dell&#39;esofago. La formazione deve essere controllata da un soggetto esperto e intrapresi sugli animali eutanasia, poi animali anestetizzati (che saranno sacrificati) prima sonda gastrica su animali svegli è tentato. Primi tentativi di gavage sugli animali svegli dovrebbe coinvolgere medie dimensioni animali e piccoli volumi di una sostanza, come soluzione salina, che non provocano lesioni se la procedura va storto. Gli animali devono essere attentamente valutati per segni di sofferenza, come senza fiato, diventando blu, sanguinamento, o salivazione eccessiva, dopo sonda gastrica e eutanasia, se necessario. Se euthanasia è necessaria, l&#39;animale deve essere sottoposti a necroscopia per determinare perché la procedura di sonda gastrica non è riuscita.

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome del reagente </td><td> Azienda </td><td> Numero di catalogo </td><td> Commenti </td></tr><tr><td> Aghi </td><td> Vario </td><td> Vario </td><td> Gli aghi sono venduti sia da calibro e la lunghezza. Controllare sia prima di ordinare. </td></tr><tr><td> Siringhe </td><td> Vario </td><td> Vario </td><td> Sempre scegliere una dimensione appropriata per il volume da somministrare. </td></tr><tr><td> DecapiCones </td><td> Braintree scientifico </td><td> DC-200, DCL-120, MDC-200 </td><td> Disponibile in topo e ratto dimensioni. </td></tr><tr><td> Roditori restrainer </td><td> Harvard Apparatus, Braintree scientifico, Plas-Labs, altri </td><td></td><td> Disponibile in plexiglas trasparente, in plastica regolabile, e dimensionati per topi e ratti. </td></tr><tr><td> Provetta da 50 ml </td><td> Vario </td><td> &amp; Nbsp; </td><td></td></tr><tr><td> Aghi di alimentazione </td><td> VWR, Popper and Sons </td><td> Vario </td><td> Montare l&#39;ago calibro e la lunghezza per gli animali come descritto sopra. Entrambi gli aghi di alimentazione monouso e riutilizzabili sono disponibili. </td></tr></tbody></table>

manual restraint and common compound administration routes in mice and rats

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Manual Restraint and Common Compound Administration Routes in Mice and Rats

Lavorare in sicurezza ed umanità con roditori di ricerca richiede una competenza di base nei metodi di gestione e di moderazione. Questo articolo presenta i principi fondamentali necessari per gestire in modo sicuro ed efficace somministrare composti a topi e ratti.

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