Name: preparing e18 cortical rat neurons for compartmentalization in a microfluidic device
Uploaded: 2007-10-01T00:00:00
Duration: 12 min
Description: Watch this Scientific Journal Video about Preparing E18 Cortical Rat Neurons for Compartmentalization in a Microfluidic Device at JoVE.com

<p class="jove_title" style=";text-align:right;direction:rtl"> הכנת E18 נוירונים עכברוש עוברית קליפתיים עבור מידור </p><p class="jove_content" style=";text-align:right;direction:rtl"> לפני שמתחילים החוצה, חשוב לחמם את כל התקשורת הדרושים ריאגנטים ל 37 ° C. </p><p class="jove_content" style=";text-align:right;direction:rtl"> חשוב גם לעקר הכל המשמש להכנת תאים (לדוגמה, נורות גומי, מתלים צינור, בקבוקי התקשורת, וכו &#39;), אשר ממוקם מכסה המנוע, על ידי מנגב עם אתנול 70%. </p><ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים שתי פיסות Cortex E18 עכברוש עוברית (אחד במוח, גזור בעבר) בתוך שפופרת המכילה 15 מ&quot;ל 1 קר כקרח מ&quot;ל סידן ללא מגנזיום ללא דיסקציה חיץ. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף 1 מ&quot;ל של 0.25% טריפסין-EDTA לקליפת המוח במאגר לנתיחה, כדי להביא את נפח סופי 2 מ&quot;ל ריכוז טריפסין הסופי 0.125%. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את הצינור 15 מ&quot;ל אמבטיה 37 מעלות צלזיוס מים במשך 8 דקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> במהלך תקופה זו, אש פולנית 3 כוס פסטר pipets, ויצרו פתחים קטנים ברציפות, בארון biosafety כדי לעזור לשמור על סטריליות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר דגירה 8 דקות של קליפת המוח, להוסיף 10 מ&quot;ל של DMEM FBS המכיל 10% עד קליפת המוח כדי לעזור לעצור את התגובה טריפסין. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> צנטריפוגה שפופרת המכילה 15 מ&quot;ל קליפת ו DMEM/10% FBS בסל&quot;ד 2500 למשך 2 דקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בארון biosafety, להסיר את supernatant מהקורטקס באמצעות pipet פסטר זכוכית עם יניקה ואקום המצורפת. היזהר שלא להפריע או לעקור את גלולה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף 1 מ&quot;ל של NMB אל קליפת המוח גלולה pipet בעדינות מעלה ומטה. חשוב מאוד כדי למנוע יצירת בועות אוויר בזמן pipeting למעלה ולמטה, כמו בועות אוויר עלול לגרום נזק לתאים על ידי חמצון. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש אש מלוטש pipet פסטר עם פתיחת רחב כדי triturate קליפת המוח על ידי הצמדת נורה גומי סטרילי עד הסוף pipeting למעלה ולמטה 5 פעמים, שוב נזהר שלא להכניס בועות אוויר. המשך בתהליך זה עם 2 pipets אחרים זכוכית, כל אחד עם גודל הפתח ירד. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר טחינה דקה, צנטריפוגה את התאים שוב בסל&quot;ד 2500 למשך 2 דקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר צנטריפוגה, שוב להסיר את supernatant ו resuspend התא גלולה ב 2 מ&quot;ל של NBM. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> סנן הפתרון תא resuspended דרך מסננת 45 תא אממ. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכתם התאים עם Trypan כחול, לספור, נטען לתוך המכשירים. אנחנו בדרך כלל עומס 20 ul של תאים לכל מכשיר. </li></ol><p class="jove_content" style=";text-align:right;direction:rtl"> <em>הערה:</em> את הריכוז הסופי של התאים הוא בדרך כלל בין 2.5 מיליון תאים / מ&quot;ל ו - 8,000,000 תאים / מ&quot;ל </p><p class="jove_title" style=";text-align:right;direction:rtl"> טוען את התאים </p><p class="jove_content" style=";text-align:right;direction:rtl"> אחרי תאים נספרו, זה הזמן לטעון את התאים המכשיר: </p><ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תביאו את המכשירים מוכנים בעבר המכיל NBM לארון biosafety לשמור על סטריליות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר מדיה עודף מבארות באמצעות יניקה ואקום. עם זאת, להיזהר הסרת כל אמצעי התקשורת - בטח יש ערוץ התקשורת העיקרי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> החל 20 ul של תאים למאגר היד בפינה השמאלית העליונה של המכשיר (ראה תרשים במידת הצורך). זרימת התאים לתוך המכשיר ולצרף אל פני השטח טופלו PLL. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר הטעינה, במקום מכשירים המכיל תאים בחזרה באינקובטור במשך 10 דקות כדי לאפשר לתאים לצרף. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר 10 דקות, למלא את המאגרים עם התקשורת והתקנים מקום בחזרה בחממה. </li></ol>

<ol>
	<li>Park, J. W., Vahidi, B., Taylor, A. M., Rhee, S. W., Jeon, N. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Microfluidic+culture+platform+for+neuroscience+research.">Microfluidic culture platform for neuroscience research.</a> <em style='font-style: italic'>Nat Protoc</em>. <b>1</b>, 2128-2136 (2006).</li><li>Taylor, A. M., Blurton-Jones, M., Rhee, S. W., Cribbs, D. H., Cotman, C. W., Jeon, N. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+microfluidic+culture+platform+for+CNS+axonal+injury,+regeneration+and+transport.">A microfluidic culture platform for CNS axonal injury, regeneration and transport.</a> <em style='font-style: italic'>Nat Methods</em>. <b>2</b>, 599-605 (2005).</li></ol>

<p style=";text-align:right;direction:rtl"> צפיפות תאים יכולים להיות מגוונים בהתאם ליישום. עם זאת, זריעת נוירונים העיקרי בבית נמוך מדי של צפיפות בדרך כלל מוביל מוות של תאים. בהתאם החממה ועל רמת לחות, מדיה ייתכן שיהיה צורך לשנות את המכשירים כל 2 עד 3 ימים. בעת שינוי התקשורת, חשוב לאחר הסרת התקשורת ממאגרים, מעולם לא להסיר את ערוצי התקשורת העיקריים. יתר על כן, זהו תרגול טוב למקום התקשורת טרי בארות העליון לאפשר כמה התקשורת טרי לזרום דרך המכשיר לתוך ערוצים עיקריים לפני ממלא את כל המאגרים. </p>

<!DOCTYPE html PUBLIC "-//W3C//DTD XHTML 1.0 Transitional//EN" "http://www.w3.org/TR/xhtml1/DTD/xhtml1-transitional.dtd">
<html xmlns="http://www.w3.org/1999/xhtml" xml:lang="en" lang="en">	
		
		<div>
		<table border="1">
		<thead>
		<tr>
		<th>Material Name</th>
		<th>Type</th>
		<th>Company</th>
		<th>Catalogue Number</th>
		<th>Comment</th>
		</tr>
		</thead>
		<tbody>
		
<tr>
<td>NBM</td>
<td>medium</td>
<td>Invitrogen</td>
<td>21103-049</td>
<td>Neural Basal Media is obtained by Invitrogen under their Gibco line of cell culture reagents.</td>
</tr>
<tr>
<td>E18 rat embryos</td>
<td>Animal</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Obtained from pregnant Sprague Dawley Rats.  The pregnant rat is sacrificed and the E18 fetal rat pups dissected to obtain the E18 fetal rat cortex.</td>
</tr>
<tr>
<td>CMFM dissection buffer HBSS</td>
<td>buffer</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>ice-cold Calcium-free Magnesium-free dissection buffer HBSS based.</td>
</tr>
<tr>
<td>15 ml Tube</td>
<td>Tool</td>
<td>BD Falcon</td>
<td>Falcon No. 352097</td>
<td>Available through Fisher Scientific catalog number 14-959-70C</td>
</tr>
<tr>
<td>0.25% Trypsin-EDTA</td>
<td>Reagent</td>
<td>Invitrogen</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>37&#x02DA;C water bath</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Pasteur pipets</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Fisher Scientific</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>glass</td>
</tr>
<tr>
<td>DMEM</td>
<td>medium</td>
<td>Invitrogen</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>FBS</td>
<td>Reagent</td>
<td>Invitrogen</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>serum, used at 10% in DMEM</td>
</tr>
<tr>
<td>centrifuge</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>set at 2500 rpm </td>
</tr>
<tr>
<td>Trypan Blue</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Invitrogen</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>for counting live/dead cells</td>
</tr>
<tr>
<td>BD Falcon Cell Strainer 40 um</td>
<td>Tool</td>
<td>BD Falcon</td>
<td>Falcon cat# 352340</td>
<td>Available through Fisher Scientific.  Fisher catalog# 08-771-1</td>
</tr>
<tr>
<td>B27</td>
<td>Reagent</td>
<td>Invitrogen</td>
<td>17504-044</td>
<td>B27 is a proprietary supplement available through Invitrogen under their Gibco line of cell culture reagents.</td>
</tr>
<tr>
<td>Glutamax</td>
<td>Reagent</td>
<td>Invitrogen</td>
<td>35050-061</td>
<td>Glutamax is available through Invitrogen under their Gibco line of celll culture reagents.</td>
</tr>		</tbody>
		</table>
		</div>
	

preparing e18 cortical rat neurons for compartmentalization in a microfluidic device

<p style=";text-align:right;direction:rtl"> בסרטון הזה אנחנו מדגימים הכנת E18 נוירונים בקליפת המוח עכברוש. E18 נוירונים בקליפת המוח עכברוש מתקבלים קליפת E18 עכברוש העובר גזור בעבר מוכן. קליפת E18 הוא, על לנתיחה, ניתק מיד נוירונים בודדים. אפשר לאחסן E18 קליפת במאגר E שינה המכיל B27 על 4 מעלות צלזיוס עד שבוע לפני הניתוק מתבצע. עם זאת, תהיה ירידה כדאיות התא. בדרך כלל אנו מקבלים E18 שלנו Cortex טריים. זה מועבר למעבדה של סידן קרים כקרח חינם המאגר מגנזיום לנתיחה בחינם (CMFM). עם ההגעה, טריפסין מתווסף בקליפת לריכוז סופי של 0.125%. קליפת המוח היא מודגרות אז במשך 8 דקות ב 37 מעלות צלזיוס. DMEM FBS המכיל 10% מתווסף בקליפת להפסיק את התגובה. קליפת המוח היא centrifuged אז בסל&quot;ד 2500 למשך 2 דקות. Supernatant יוסר 2 מ&quot;ל של מדיה בסל עצבית (NBM) המכיל 2% B27 (כרך / כרך א) ו - 0.25% Glutamax (כרך / כרך) נוסף בקליפת המוח אשר מחדש הושעה על ידי pipetting למעלה ולמטה. בשלב הבא, בקליפת הוא triturated בעבר עם מלוטש אש pipettes זכוכית, כל אחד עם פתח קטן רצופים. לאחר triturating, בקליפת הוא centrifuged שוב ב 2500 סל&quot;ד במשך 2 דקות. Supernatant מוסר אז גלולה קליפת מחדש מושעה עם 2 מ&quot;ל של NBM המכיל B27 ו Glutamax. ההשעיה התא לאחר מכן עבר דרך מסננת 40 ניילון אממ התא. הבא התאים נספרים. הנוירונים מוכנים כעת לטעינה לתוך המכשיר נוירון microfluidic. </p>

Watch this Scientific Journal Video about Preparing E18 Cortical Rat Neurons for Compartmentalization in a Microfluidic Device at JoVE.com

Preparing E18 Cortical Rat Neurons for Compartmentalization in a Microfluidic Device

<p class="jove_content">בסרטון הזה אנחנו מדגימים הכנת E18 עכברוש נוירונים בקליפת המוח.</p>

הכנת E18 נוירונים עכברוש קליפתיים עבור מידור בתוך המכשיר microfluidic

In this video, we demonstrate the preparation of E18 cortical rat neurons. E18 cortical rat neurons are obtained from E18 fetal rat cortex previously ...

Research

JoVE Journal

Biology

Organotypic Slice Culture of E18 Rat Brains

פורסים תרבות Organotypic של E18 מוח החולדה

Organotypic slice cultures from embryonic rodent brains are widely used to study brain development. While there are often advantages to an in-vivo system, ...

Fabrication of a Microfluidic Device for the Compartmentalization of Neuron Soma and Axons

המצאה של המכשיר microfluidic עבור מידור של Neuron סומה האקסונים

In this video, we demonstrate the technique of soft lithography with polydimethyl siloxane (PDMS) which we use to fabricate a microfluidic device for ...

A Microfluidic Device with Groove Patterns for Studying Cellular Behavior

מכשיר microfluidic עם דפוסי Groove לחקר התנהגות נייד

We describe a microfluidic device with microgrooved patterns for studying cellular behavior.  This microfluidic platform consists of a top fluidic channel ...

A Gradient-generating Microfluidic Device for Cell Biology

התקן Gradient מניבות Microfluidic עבור ביולוגיה של התא

 The fabrication and operation of a gradient-generating microfluidic device for studying cellular behavior is described.  A microfluidic platform is an ...

CD4+ T-Lymphocyte Capture Using a Disposable Microfluidic Chip for HIV

CD4 + T-לימפוציטים לכידת באמצעות שבב Microfluidic פנויה ל-HIV

Cell Capture Using a Microfluidic Device

תא לכידת באמצעות מכשיר microfluidic

Preparing T Cell Growth Factor from Rat Splenocytes

הכנת פקטור T צמיחת תאים מן Splenocytes עכברוש

Maintenance of antigen-specific T cell lines or clones in culture requires rounds of antigen-induced activation separated by phases of cell expansion 1,2. ...

Assessing Neural Stem Cell Motility Using an Agarose Gel-based Microfluidic Device

הערכת תנועתיות עצבי לתאי גזע באמצעות התקן הג&#39;ל מבוסס agarose Microfluidic

While microfluidic technology is reaching a new level of maturity for macromolecular assays, cell-based assays are still at an infant stage1. This is ...

Protocol for Culturing Sympathetic Neurons from Rat Superior Cervical Ganglia (SCG)

Protocol for Culturing Sympathetic Neurons from Rat Superior Cervical Ganglia SCG

פרוטוקול נוירונים culturing הסימפתטית מן הגרעינים עכברוש צוואר הרחם מעולה (SCG)

The superior cervical ganglia (SCG) in rats are small, glossy, almond-shaped structures that contain sympathetic neurons.  These neurons provide ...

Use of Rotorod as a Method for the Qualitative Analysis of Walking in Rat

השימוש Rotorod כשיטה לניתוח איכותי של הליכה עכברוש

High speed videoanalysis of the details of movement can provide a source of information about qualitative aspects of walking movements. When walking on a ...