Name: specimen preparation, imaging, and analysis protocols for knife-edge scanning microscopy
Uploaded: 2011-12-09T13:00:00
Duration: 10 min 25 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Specimen Preparation, Imaging, and Analysis Protocols for Knife-edge Scanning Microscopy at JoVE.com

Dette prosjektet ble finansiert av NIH / NINDS (# 1R01-NS54252), NSF (# 0,905,041, # 0,079,874), Texas Advanced Technology Program (# ATP-000512-0146-2001, # ATP-000512-0261-2001), Texas A &amp; M Research Foundation, Department of Computer Science and Engineering ved Texas A &amp; M University, og 3Scan. Vi ønsker å takke Bernard Mesa (Micro stjerne Technologies) for teknisk konsultasjon og støtte for KESM instrumentering. Store deler av design og implementering av KESM ble gjort av Bruce H. McCormick, som døde i 2007.

1. Prøve tilberedning: Golgi-Cox <ol><li> Denne protokollen følger nøye protokollen fra Mayerich et al. Syv. </li><li> Den C57BL/6J musen er dypt anesthetized bruker isofluran inhalant anestesi og deretter halshugget. </li><li> Hjernen er fjernet og plassert i en Golgi-Cox fiksering løsning (1% kalium kromat, 1% kalium dichromate, og 1% kvikksølv klorid i avionisert vann). </li><li> Hjernen er igjen i Golgi-Cox løsning i mørket, ved romtemperatur, 10 til 16 uker. </li><li> Hjernen skylles i avionisert vann over natten i mørket. </li><li> Det skylles hjernen er nedsenket i 5% ammoniumhydroksid løsning i avionisert vann i 7 til 10 dager i mørke ved romtemperatur. Denne lange forberedelser tiden var å sikre infiltrasjon av hele hjernen, slik at det svarte bunnfallet hadde en sjanse til å fullstendig form i vevet. </li><li> Hjernen er skylles igjen i avionisert vann ved romtemperatur i 4 timer og thøne dehydrert gjennom en gradert serie ethyl alkoholer: 50% og 70% i kjøleskap (4 ° C), og 85%, 95% (3 endringer), og 100% (4 til 5 endringer) i romtemperatur. Hjernen er igjen i hver løsning i 24 timer. </li><li> Den dehydrert hjernen er deretter satt i aceton (3 til 4 endringer, hver på én dag), etterfulgt av en Araldite-aceton blanding med Araldite til aceton forholdet 1:2, 1:1, 2:1, og til slutt i 100% Araldite (3 endringer, hver gang over natten), i kjøleskap (4 ° C). </li><li> Endelig er behandlet hjernen innebygd i 100% Araldite og oppvarmet til 60 ° C i 3 dager (jfr. innebygging protokollen i Abbott og Sotelo 2). Dersom prøvene er innebygd i LR Hvite da prøvene overføres fra de siste 100% etanol løsning gjennom tre endringer av LR Hvite løsning som er hver oppbevares i kjøleskap over natten, som er en standard prosedyre før polymerisasjon. Tre endringer er gjort for å sikre full infiltrasjon. Prøven er thøne overføres til frisk LR hvite som er polymerisert i en lukket beholder ved 60 ° C i 24 timer, som er den nødvendige mengden av tid og temperatur for riktig polymerisasjon. </li><li> Fig. 1 viser et Golgi-Cox beiset hjernen innebygd i Araldite. </li><li> Det herdede prøveblokken er da montert på metall prøven ringen med epoxy, og sidene av blokken trimmet som nødvendig (se fig. 2). </li></ol> 2. Prøve forberedelser: Nissl <ol><li> Musen er sterkt bedøvet med ketamin og xylazin (1,7 mg ketamin / 0,26 mg xylazin per 20 gram kroppsvekt) injisert intraperitonealt og deretter perfused transcardially bruke 50 ml av romtemperatur fosfat-bufret saltvann (pH 7,4), fulgt av 250 mL av rom temperatur 10% nøytral bufret formalin (pH 7,4). og til slutt med 3,0 cc av ufortynnet tusj. </li><li> Hele kroppen perfusjon med saltvannsoppløsning og festing er nødvendig å fjerne blodet fra det kardiovaskulære systemet og å fikse TI<html> ssues. Perfusjon med tusj er nødvendig for å fylle blodkar av det kardiovaskulære systemet. </li><li> Den resulterende Hjernen er så dehydrert gjennom en serie av gradert ethyl alkoholer (25% -100%) og deretter innebygd i Araldite plast følge protokollen i 1.8 til 1.9 ovenfor. Hvis LR hvite er innebygging medium da protokollen i 1.10 ovenfor er fulgt. </li></ol> Fire. Prøve forberedelser: Generic arter, generisk organer <ol><li> For det generiske tilfellet kan feste gjøres med enten 10% nøytral bufret formalin eller 4% Paraformaldehyde. </li><li> For små vev volumer, er diffusjon istedenfor perfusjons anbefales for fiksering og farging. I tilfelle av små organismer eller organer, kan flekker også gjøres i løpet av dehydrering prosessen. </li><li> Den embedding-protokollen er den samme som ovenfor, selv om tidene for løsningen infiltrasjon kan reduseres for organer eller organismer som er mye mindre enn hele musen hjernen. </li></ol>jove_title &quot;&gt; 5. KESM oppsett og bildebehandling <ol><li> Slå av pumpen, slå på scenen, slå på kameraet, slå på lyset. </li><li> Raise kniv og objektiv. </li><li> Installer prøven ring. </li><li> Mål prøven dimensjon og lage en konfigurasjonsfil for KESM Stage Controller2 søknad. </li><li> Begynn KESM Stage Controller2 og initialisere scenen. </li><li> Lavere kniv / objektiv, slå på pumpen. </li><li> Fokus objektiv og kamera, ved å dreie fokus knotten på den optiske toget og justere kameraets synsfelt i forhold til kniveggen. </li><li> Trykk på [GO] for å initiere bildebehandling. </li><li> Se fig. 3-8. Se 9, 7 for tekniske detaljer. </li></ol> Seks. Bildebehandling og data forberedelse <ol><li> Kopier KESM Stack Processor kjørbare inn i data-mappen under konfigurasjonsfilen mappen (00000, 00001, etc.). </li><li> Kjør KESM Stack Processor å fjerne belysning artefakt og normalisere bakgrunnen intensiteten i allebilder. Gjenta for alle data undermapper. </li><li> Forbered Multiskala fliser fra datasettet og laste opp og satt opp filene i KESM Brain Atlas web server. </li><li> Se fig. 9. </li></ol> 7. Data visualisering og analyse <ol><li> Visualisering bruker KESM Brain Atlas. Gå til <a href="http://kesm.cs.tamu.edu">http://kesm.cs.tamu.edu</a> og velg riktig atlas. <ol><li> Naviger som i Google maps. </li><li> Zoom inn og ut som i Google maps. </li><li> Å gå til en annen dybde, velg hvor dypt til å gå på hvert trinn fra rullegardinmenyen, og klikk deretter på enten [+] eller [-] for å øke eller redusere z dybde. </li><li> Juster overlay nummeret ved å bruke rullegardinmenyen. </li><li> Juster overlay intervall ved å bruke rullegardinmenyen. </li><li> Se fig. 11. </li></ol></li><li> Visualisering ved hjelp MeVisLab. <ol><li> Launch MeVisLab. </li><li> Opprett et nytt prosjekt. </li><li> I det følgende kan nye moduler kan skape ved å typing i modulen navn i kommandoen esken. </li><li> Lag modul [Compose3Dfrom2DFiles], og gå til ønsket mappe. Enter file streng og klikk på [GetFileList]. Sørg for at de valgte bildene kan passe i minnet. Klikk på [Create3D] for å skape volum. </li><li> Lag modul [SetWorldMatrix], og angi &quot;Scale&quot; under &quot;Elementary Transforms&quot; x, y, z til riktig voxel størrelse (0,6, 0,7, 1,0 for en 10X 0.45NA mål). Link [Compose3Dfrom2DFiles] til [SetWorldMatrix]. </li><li> Still Matrix og forvandler under &quot;Matrix Komposisjon&quot; til &quot;Ignorer&quot;, &quot;Ignorer&quot;, &quot;Forward&quot;. </li><li> Lag modul [Arithmetic1] og sett &quot;Function&quot; til &quot;Inverter (Max-Img)&quot;. Link [SetWorldMatrix] til [Arithmetic1]. </li><li> Lag modul [View3D] og koble [Arithmetic1]. </li><li> I View3D, mens høyre musknapp trykkes, beveger musen rundt for å justere terskelen. Du kan beskjære regioner, endre orientering (flytte musen mens venstre museknapp er trykket), endre belysning (volum rendering eller MIP), slå på / av bakgrunn, etc. </li><li> Se fig. 10. </li></ol></li></ol> 8. Representant Resultater: Her presenterer vi hel-hjerne data og detaljer. Fiken. 12-15 viser hel-hjerne India Ink, Golgi og Nissl datasett 1, 4, 3. <img alt="Figur 1" src="/files/ftp_upload/3248/3248fig1.jpg" /> Figur 1. Faste, beiset, og innebygd mus hjernen <img alt="Figur 2" src="/files/ftp_upload/3248/3248fig2.jpg" /> Figur 2. Innebygd mus hjernen prøven montert på prøven ring. <img alt="Figur 3" src="/files/ftp_upload/3248/3248fig3.jpg" /> Figur 3. The Knife Edge Scanning Microscope (KESM). Et bilde av KESM er vist med sine hovedkomponenter merket: (1) high-speed line-scan kamera, (2) mikroskop objektiv, (3) diamant kniv montering og lys collimator, (4) SPEcimen tank (for vann nedsenking imaging), (5) med tre akser Precision Air-bærende scenen, (6) med hvitt lys mikroskop illuminator, (7) vannpumpe (i ryggen) for fjerning av seksjonert vev, (8) PC-server for scene kontroll og bilde oppkjøpet, (9) granitt base, og (10) granitt bro. <img alt="Figur 4" src="/files/ftp_upload/3248/3248fig4.jpg" /> Figur 4. Imaging prinsipper KESM. Rektor ved drift av KESM er illustrert. Målet og kniven holdes på plass, mens prøven festet på posisjonering scenen trekk (pil med heltrukket linje) på oppløsning på 20 nm og kjørehastighet på 1-5, og får skrapet mot diamond kniv (5 mm bred for 10X objektiv), genererer en tynn del flyter over kniven (pil med heltrukket linje). Line-scan bildebehandling er gjort nær svært spissen av kniven. <img alt="Figur 5" src="/files/ftp_upload/3248/3248fig5.jpg" /> Figur 5. KESM kamera og objektiv fokusere kontroller. <img alt="Figur 6" src="/files/ftp_upload/3248/3248fig6.jpg" /> Figur 6. KESM kniv montering og kontroller. <img alt="Figur 7" src="/files/ftp_upload/3248/3248fig7.jpg" /> Figur 7.. Initial fokus gjennom observasjon porten. <img alt="Figur 8" src="/files/ftp_upload/3248/3248fig8.jpg" /> Figur 8. KESM Stage Controller to program (skjermbilde). <img alt="Figur 9" src="/files/ftp_upload/3248/3248fig9.jpg" /> Figur 9. KESM stack prosessor program (skjermbilde). <img alt="Figur 10" src="/files/ftp_upload/3248/3248fig10.jpg" /> Figur 10. MeVisLab program (skjermbilde). <img alt="Figur 11" src="/files/ftp_upload/3248/3248fig11.jpg" /><br/&gt; Figur 11 KESM Brain Atlas:. Web-grensesnitt (screenshot). <img alt="Figur 12" src="/files/ftp_upload/3248/3248fig12.jpg" /> Figur 12. KESM hel-hjerne tusj data. Volum visualiseringer av KESM data stabler vises for vaskulære datasettet. (A) Nærbilde av vaskulære data. Bredde ~ 100 UM. (Bd) Tre standard utsikt over hele musen hjernen blodkar (subsampled fra høyoppløselige data). Bredde ~ 10mm. <img alt="Figur 13" src="/files/ftp_upload/3248/3248fig13.jpg" /> Figur 13. KESM hel-hjerne mus Golgi data. <img alt="Figur 14" src="/files/ftp_upload/3248/3248fig14.jpg" /> Figur 14. KESM Golgi data detaljer. <img alt="Figur 15" src="/files/ftp_upload/3248/3248fig15.jpg" /> Figur 15. KESM hel-hjerne Nissl data. (A) Nærbilde av Nissl data. ~ 300 UM 3. (Bd) Tre standard utsikt over hele musen hjernen Nissl data (subsampled fra høyoppløselige data). Tverrsnitt vises for et klart syn av den interne strukturer.

<ol>
	<li>Abbott, L. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High-throughput+imaging+of+whole+small+animal+brains+with+the+knife-edge+scanning+microscope.">High-throughput imaging of whole small animal brains with the knife-edge scanning microscope.</a> Neuroscience Meeting Planner. Program No. 504.2, (2008).</li><li>Abbott, L. C., Sotelo, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ultrastructural+analysis+of+catecholaminergic+innervation+in+weaver+and+normal+mouse+cerebellar+cortices.">Ultrastructural analysis of catecholaminergic innervation in weaver and normal mouse cerebellar cortices.</a> Journal of Comparative Neurology. 426, 316-329 (2000).</li><li>Choe, Y., Abbott, L. C., Miller, D. E., Han, D., Yang, H. -. F., Chung, J. R., Sung, C., Mayerich, D., Kwon, J., Micheva, K., Smith, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Multiscale+imaging,+analysis,+and+integration+of+mouse+brain+networks.">Multiscale imaging, analysis, and integration of mouse brain networks.</a> Neuroscience Meeting Planner. Program No. 516.3, (2010).</li><li>Choe, Y., Han, D., Huang, P. -. S., Keyser, J., Kwon, J., Mayerich, D., Abbott, L. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Complete+submicrometer+scans+of+mouse+brain+microstructure:+Neurons+and+vasculatures.">Complete submicrometer scans of mouse brain microstructure: Neurons and vasculatures.</a> Neuroscience Meeting Planner. Program No. 389.10, (2009).</li><li>Choe, Y., Abbott, L. C., Han, D., Huang, P. S., Keyser, J., Kwon, J., Mayerich, D., Melek, Z., McCormick, B. H., Ravi Rao, A., Cecchi, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Knife-edge+scanning+microscopy:+High-throughput+imaging+and+analysis+of+massive+volumes+of+biological+microstructures.">Knife-edge scanning microscopy: High-throughput imaging and analysis of massive volumes of biological microstructures.</a> High-Throughput Image Reconstruction and Analysis: Intelligent Microscopy Applications. , 11-37 (2008).</li><li>Choe, Y., Abbott, L. C., Ponte, G., Keyser, J., Kwon, J., Mayerich, D., Miller, D., Han, D., Grimaldi, A. M., Fiorito, F., Edelman, D. B., McKinstry, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Charting+out+the+octopus+connectome+at+submicron+resolution+using+the+knife-edge+scanning+microscope.">Charting out the octopus connectome at submicron resolution using the knife-edge scanning microscope.</a> BMC Neuroscience. 11, 136-136 (2010).</li><li>Mayerich, D., Abbott, L. C., McCormick, B. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Knife-edge+scanning+microscopy+for+imaging+and+reconstruction+of+three-dimensional+anatomical+structures+of+the+mouse+brain.">Knife-edge scanning microscopy for imaging and reconstruction of three-dimensional anatomical structures of the mouse brain.</a> Journal of Microscopy. 231, 134-143 (2008).</li><li>Mayerich, D., Kwon, J., Sung, C., Abbott, L. C., Keyser, J., Choe, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fast+macro-scale+Transmission+Imaging+of+Microvascular+Networks+Using+KESM.">Fast macro-scale Transmission Imaging of Microvascular Networks Using KESM.</a> Biomedical Optics Express. 2, 2888-2896 (2008).</li><li>McCormick, B. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+the+Brain+Tissue+Scanner.">Development of the Brain Tissue Scanner.</a> Technical Report. , (2002).</li><li>Sporns, O., Tononi, G., K&#246;tter, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+human+connectome:+A+structural+description+of+the+human+brain.">The human connectome: A structural description of the human brain.</a> PLoS Computational Biology. 1, 42-42 (2005).</li></ol>

Todd Huffman er med 3Scan, et kommersielt selskap som produserer og markedsfører KESM Technology (US patent # 6,744,572).

Den KESM gir en submicrometer nivå undersøkelse av store mengder biologisk prøvemateriale (~ 1 cm 3). Denne typen volumet er nok til å holde hele små dyr organer, som hjerne, lunger, hjerter, nyrer, Skannede etc. bilder fra slike organer kan gi enestående kvantitativ informasjon om strukturelle organiseringen av disse organene, og aktivere beregningsorientert modellering av ulike funksjonelle aspekter av disse organene, inklusive krets og nettverk dynamikk, elektriske egenskaper, væske og luft flow dynamikk, og muskuløs dynamikk. Prøven forberedelse protokoll og post-analyse protokoll beskrevet i denne artikkelen er forventet å bidra utenfor forskningsmiljøene til å ha lettere tilgang til KESM og den resulterende data. Den KESM drift protokollen vil hjelpe disse eksterne forskere til å verdsette fordelene og begrensninger av denne unike imaging modalitet.

A correction was made to <a href="http://www.jove.com/video/3248">Specimen Preparation, Imaging, and Analysis Protocols for Knife-edge Scanning Microscopy</a>. Important modifications were made to the Nissl staining protocol.

A correction was made to <a href="http://http://www.jove.com/video/3248">Specimen Preparation, Imaging, and Analysis Protocols for Knife-edge Scanning Microscopy</a>. Important modifications were made to the Nissl staining protocol.

Erratum: Specimen Preparation, Imaging, and Analysis Protocols for Knife-edge Scanning Microscopy

specimen preparation, imaging, and analysis protocols for knife-edge scanning microscopy

Store fremskritt i high-throughput, høy oppløsning, 3D mikroskopi teknikker har muliggjort oppkjøp av store mengder nevroanatomi data på submicrometer oppløsning. En av de første slike instrumenter som produserer hel-hjerne-skala data er Knife-Edge Scanning Microscope (KESM) 7, 5, 9, utviklet og hostet i forfatternes lab. KESM har blitt brukt til seksjonen og bilde hel mus hjerner på submicrometer oppløsning, avslører den intrikate detaljer om nevrale nettverk (Golgi) 1, 4, 8, vaskulære nettverk (tusj) 1, 4 og cellen kroppen distribusjon (Nissl) 3 . Bruken av KESM er ikke begrenset til musen eller hjernen. Vi har klart å avbildes blekkspruten hjernen 6, mus lunge og rotte hjernen. Vi jobber for tiden på hele sebrafisk embryoer. Data som disse i stor grad kan bidra til connectomics forskning 10; til mikrosirkulasjonen og hemodynamiske forskning, og å stereology forskning ved proviDing en eksakt bakken sannheten. I denne artikkelen vil vi beskrive rørledningen, inkludert prøven forberedelse (festing, flekker, og embedding), KESM konfigurering og oppsett, seksjonering og bildebehandling med KESM, bildebehandling, data forberedelser og data visualisering og analyse. Hovedvekten vil være på prøven forberedelse og visualisering / analyse av innhentet KESM data. Vi forventer at detaljert protokoll som presenteres i denne artikkelen for å bidra til å utvide tilgangen til KESM og øke sin utnyttelse.

Watch this Scientific Journal Video about Specimen Preparation, Imaging, and Analysis Protocols for Knife-edge Scanning Microscopy at JoVE.com

Specimen Preparation, Imaging, and Analysis Protocols for Knife-edge Scanning Microscopy

Hele prosessen fra hjernen prøven forberedelse til seriell seksjonering bildebehandling bruker Knife-Edge Scanning Microscope, til data visualisering og analyse er beskrevet. Denne teknikken er for tiden benyttes til å erverve mus hjernen data, men det er anvendelig til andre organer, andre arter.

Prøven Forberedelse, Imaging, og analyse protokoller for Knife-edge Scanning Mikroskopi

Major advances in high-throughput, high-resolution, 3D microscopy techniques have enabled the acquisition of large volumes of neuroanatomical data at ...

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Three-dimensional Optical-resolution Photoacoustic Microscopy

Optical microscopy, providing valuable insights at the cellular and organelle levels, has been widely recognized as an enabling biomedical technology. As ...

Bacterial Immobilization for Imaging by Atomic Force Microscopy

AFM is a high-resolution (nm scale) imaging tool that mechanically probes a surface.  It has the ability to image cells and biomolecules, in a liquid ...

Video-rate Scanning Confocal Microscopy and Microendoscopy

Confocal microscopy has become an invaluable tool in biology and the biomedical sciences, enabling rapid, high-sensitivity, and high-resolution optical ...

Creating Adhesive and Soluble Gradients for Imaging Cell Migration with Fluorescence Microscopy

Opprette Lim og Løselig overgangar for Imaging Cell Migration med fluorescens mikroskopi

Cells can sense and migrate towards higher concentrations of adhesive cues such as the glycoproteins of the extracellular matrix and soluble cues such as ...

High-resolution Spatiotemporal Analysis of Receptor Dynamics by Single-molecule Fluorescence Microscopy

Høyoppløselig Spatiotemporal Analyse av Receptor Dynamics av ​​Single-molekyl fluorescens mikroskopi

Single-molecule microscopy is emerging as a powerful approach to analyze the behavior of signaling molecules, in particular concerning those aspect (e.g., ...

Preparation of Mica Supported Lipid Bilayers for High Resolution Optical Microscopy Imaging

Utarbeidelse av Mica Støttet Lipid bilayers for High Resolution Optical Mikros Imaging

Supported lipid bilayers (SLBs) are widely used as a model for studying membrane properties (phase separation, clustering, dynamics) and its interaction ...

Hybrid &#181;CT-FMT imaging and image analysis

Hybrid Ãƒâ€šÃ‚ÂµCT-FMT imaging and image analysis

Hybrid μCT-FMT bildebehandling og bildeanalyse

Fluorescence-mediated tomography (FMT) enables longitudinal and quantitative determination of the fluorescence distribution in vivo and can be used to ...

Atomic Force Microscopy Imaging and Force Spectroscopy of Supported Lipid Bilayers

Atomic Force Microscopy Imaging and Force spektroskopi av Supported lipidbilag

Atomic force microscopy (AFM) is a versatile, high-resolution imaging technique that allows visualization of biological membranes. It has sufficient ...

Correlative Light Electron Microscopy (CLEM) for Tracking and Imaging Viral Protein Associated Structures in Cryo-immobilized Cells

Correlative Light Electron Microscopy CLEM for Tracking and Imaging Viral Protein Associated Structures in Cryo-immobilized Cells

Correlative lys elektronmikroskop (CLEM) for sporing og Imaging Viral Protein forbundet strukturer i Cryo-immobilisert celler

Due to its high resolution, electron microscopy (EM) is an indispensable tool for virologists. However, one of the main difficulties when analyzing ...

Visualizing Adhesion Formation in Cells by Means of Advanced Spinning Disk-Total Internal Reflection Fluorescence Microscopy

Visualisere vedheft formasjon i celler ved hjelp av avansert spinner disken totalt interne refleksjon fluorescens mikroskopi

In living cells, processes such as adhesion formation involve extensive structural changes in the plasma membrane and the cell interior. In order to ...