Name: a murine model of muscle training by neuromuscular electrical stimulation
Uploaded: 2012-05-09T13:00:00
Duration: 8 min 24 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about A Murine Model of Muscle Training by Neuromuscular Electrical Stimulation at JoVE.com

وقد تم تمويل هذا العمل من قبل المعاهد الوطنية للصحة (NIH) K12 الفرص المعالجون-الشامل المادية والمهنية في التدريب على البحث التأهيل (K12 HD055931)، ومؤسسة للعلاج الطبيعي وكلود بيتسبرغ D. الفلفل الاستقلال الأميركيين مركز أقدم (P30 AG024827 ).

1. قطب كهربائي التحضير <ul style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> قطع (أ) 1 سم x 1 سم من الباب المتجه لوحات الدارات الكهربائية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استقرار دبابيس wirewrap 2 باستخدام قبضة الرذيلة، مع دبابيس متباعدة حوالي 3.5 ملم بعيدا. وينبغي أن ينتهي ذات الشعبتين من المسامير يمكن مواجهة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ينحني wirewrap دبابيس بزاوية 90 درجة، في منتصف المسافة تقريبا طول امتدادها، وذلك باستخدام كماشة needlenose. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> كشف الأسلاك النحاسية من الروابط، وحوالي 7 سم من الرصاص الصدد، عن طريق تجريد العزل الأسلاك. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> جندى واحد من الأسلاك النحاسية وحتى نهاية ذات الشعبتين واحدة من العلامات wirewrap. كرر الخطوة لحام للدبوس wirewrap الأخرى. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> سحب تنكمش الأنابيب في اتصال ملحوم بين الأسلاك النحاسية ودبابيس ذهبية من أجل عزل وتحقيق الاستقرار. تسخين الأنابيب باستخدام طرف لحام. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إدراج unsoldered نصائح من المسامير في الفتحات المجاورة wirewrap من لوحة الدارات اللوح. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تأكد من أن العلامات wirewrap موازية لبعضها البعض وسانتإك من خلال اللوح تلك التي تقع على نصائح على مسافة واحدة عند وضعها من خلال المجلس. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تضمين نهايات ملحوم من المسامير في الايبوكسي واضح. السماح للالايبوكسي لعلاج لمدة 10 دقائق تقريبا، أو حتى تجف تماما. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> كرر تطبيق الايبوكسي حتى هي جزء لا يتجزأ تماما من المسامير وناقلات لوحات الدارات الكهربائية من أجل توفير السلامة الهيكلية وتخفيف الضغط عن أسلاك من الرصاص. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الرمال أسفل الايبوكسي باستخدام ملف معدنية لكشف نصائح من المسامير الذهب. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استخدام المتعدد لضمان يؤدي هما لا قلل كهربائيا وأن أسلاك من الرصاص لها الاستمرارية السليم </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> نعلق الكهربائي يؤدي من الجهاز NMES إلى الإناث موصل سلك 2-الطريق (بومونا التصحيح الحبل). </li></ul> 2. حيوان التحضير <ul style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الحيوانات هي تخدير عن طريق الاستنشاق باستخدام isofluorane 2٪ (مختبرات أبوت، شمال شيكاغو، IL) في 100٪ غاز 2 O. وينبغي أن تظل تخدير الحيوان في جميع أنحاء رانه NMES الدورة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> قبل البدء في تنفيذ بروتوكول NMES قرصة اصبع القدم للتأكد من أن هذا الحيوان هو تخدير كامل. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وينبغي فحصها بانتظام للحيوان ردا على التحفيز من أجل ضمان مستوى مخدر يكفي. ينبغي تعديل تخدير حسب الحاجة. ينبغي لجميع حركة غير ذلك من المحطة حفز، والتغيرات في عمق الجهاز التنفسي، ولون الأغشية المخاطية يتم تقييمها بانتظام لرصد عمق التخدير. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع الحيوان في الاستلقاء الجانبي. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تطبيق مواد التشحيم العيون للعيون من أجل منع جفاف القرنية أثناء العملية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> حلق منطقة hindlimb أن يعامل، والقضاء مع الكحول. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> مسح القطب مع مبيض 3٪، ثم تشطف بالماء. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تطبيق طبقة من الهلام إجراء اكثر من موقع حيث سيتم تطبيق الكهربائي. تطبيق عند الضرورة في جميع أنحاء بروتوكول NMES لضمان تدفق التيار الكهربائي بين والجلد. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> حرارة مصباح سوينبغي استخدام آر بطانية المياه المنتشرة على الحفاظ على طبيعي يتراوح الجسم الأساسية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ملاحظة: تم استعراض جميع الإجراءات والتي وافق عليها رعاية جامعة بيتسبرغ الحيوان المؤسسية والاستخدام وأداء اللجنة في PHS أكد وAAALAC كثافة العمليات. برنامج معتمد والمرافق. </li></ul> 3. تنبيه <ul style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع قطب كهربائي: <ul style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> لتنشيط عضلات المقصورة الأمامية، بما في ذلك الأمامية الظنبوبي والطويلة لأصابع العضلات الباسطة، وضع قطب كهربائي سطح مباشرة على العصب الحيوان إبزيمي العميقة، التي هي فرع البعيدة الخروج من العصب الشظوي المشترك، ويقع الأمامي فقط إلى أن الشظوية الرأس. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> لتنشيط عضلات المقصورة الأمامية، ويتأكد من وضع القطب الكهربائي عندما التحفيز يثير عطف ظهري كامل الكاحل والإرشاد الكامل للأرقام. من ناحية أخرى، عطف ظهري، في حال عدم وجود أرقام تشير إلى أن التمديد فقط الظنبوبي ما كان عليه سابقاويتم تحفيز العضلات rior. ربما مثل هذه الاستجابة المستهدفة مقلص يكون من المرغوب فيه، اعتمادا على تصميم الدراسة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وينقسم إلى تقلص العضلات 2 مراحل من التحفيز: حر الحركة المرحلة متحدة المركز، والذي يحدث خلال الأولية ~ 0.5 ثانية. خلال هذه المرحلة الأولى، ومخلب ينتقل من موقف إلى الراحة القصوى وعطف ظهري تمديد أرقام. المرحلة الثانية من التحفيز هو انكماش متساوي القياس المطرد في نهاية المدى عطف ظهري والإرشاد أرقام. </li></ul></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تحفيز المعلمات: <ul style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> هذا النموذج يستخدم NMES 300 PV الكهربائي متعدد الوظائف Empi الجهاز، الذي يوفر 2 قنوات NMES التقليدية (انظر الجدول). لأغراض هذا النموذج، يستخدم فقط 1 قناة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وتشمل المعايير المستخدمة متماثل الموجي، ومدة النبضة إلى 150 ميكرو ثانية ومعدل تكرار 50HZ. تم تعيين وقت تنبيه إلى 5 ثوان، وذلك بنسبة 0.5 التعلية الثانية ومنحدر 0.5 ثانية إلى أسفل. وهذا سوف يسمح للعضلة إلى أكثر تدريجيا accliلم إلى التحفيز. في البروتوكول الحالي، من وقت في ما بين الانقباضات كان من المقرر ان 10 ثانية، ولكن يمكن تعديل هذا يتوقف على النتيجة المرجوة. وانخفضت من الأوقات يؤدي إلى بدء أسرع من العضلات والارهاق. واستندت هذه المعايير التحفيز على البروتوكولات السريرية المصممة لتعزيز قوة العضلات باستخدام التنبيه الكهربائي العضلي العصبي، من دون إحداث أضرار كبيرة في العضلات والهيكل العظمي 1، 15، 16. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الفئران إكمال مجموعتين من 10 تقلصات، مع فترة راحة لمدة 5 دقائق في ما بين مجموعات. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بالنسبة للحيوانات الكبار، ويبدأ عادة NMES كثافة في 9 مللي أمبير. من تجربتنا، وهذا هو تقريبي لكثافة القصوى البداية التي لا تحفز على ضعف مشية ملحوظا فورا بعد التحفيز. بالنسبة للدورات NMES لاحقة، وتزداد كثافة من 1 مللي أمبير في كل مرة من الحيوانات قادرة على إكمال 20 dorsiflexions كامل. </li></ul></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بعد الانتهاء من بروتوكول التحفيز وريكوجدا من التخدير، والحيوانات تظهر عادة مشية طبيعية والموقف. وينبغي عدم المساس مشية طوال مدة البرنامج NMES. </li></ul> 4. ممثل النتائج تم تنفيذ بروتوكول NMES الموضحة في هذه المقالة في سلالات الفئران عدة، بما في ذلك: نوع وايلد (B6/10)، وB6.SCID MDX / الفئران SCID. نتائج ممثل NMES أجرى أكثر من 4 أسابيع (20 دورات) في 3-5 الشهر القديمة وتعرض MDX / SCID. والموت الرحيم إنسانية الحيوانات عن طريق التفكك عنق الرحم في حين تحت التخدير. وكان حصاد عضلة الظنبوبي الأمامي وتجميدها على الفور في C. 2 ميثيل البيوتان مسبقا تبرد في النتروجين السائل، وتخزينها في -80 درجة وقد تم الحصول على المسلسل المقاطع العرضية (10 ميكرون)، والتي شنت على الشرائح. وأجريت التحليلات الإحصائية باستخدام معيار حزم البرامج الإحصائية (SPSS، v19.0 البرمجيات). أولا، تم استخدام اختبار ليفين لتقييم ما إذا كانت هناك واق المساواة بين الفروق. وقد أجريت بعد ذلك عينات المستقلة اختبار t للتحقيق في الخلافات بين NMES ومجموعات التحكم. وأجريت هيماتوكسيلين ويوزين (H &amp; E) البقع للتحقيق في ما اذا كان البروتوكول NMES من شأنه أن يؤدي إلى الإصابة ازداد في عضلة التصنع. وقد تم اختيار قسم واحد، وتم الحصول على الصور باستخدام مجهر الضوء (نيكون الكسوف E800، نيكون، واليابان). احصي يدويا العدد الكلي للألياف، وعدد من الألياف مع نوى موقعا مركزيا باستخدام المعاهد الوطنية للصحة (NIH) - وضعت برامج تحليل الصور، صورة J. لم يكن هناك زيادة كبيرة في مؤشر التجدد (عدد الألياف الأنوية مركزيا / العدد الكلي للألياف) في الحيوانات التي قدمت إلى NMES، بالمقارنة مع الضوابط (P = 0.802، الشكل 1). هذا يشير إلى أن تطبيق NMES لا يزيد من تتالي انحطاط، تجديد لوحظ في الحيوانات التصنع، وبالتالي فهو لا يحتمليجب حمل اصابة في العضلات المتزايد. تم تنفيذ تلطيخ مناعي لCD31 للتحقيق في تأثير بروتوكول NMES التي تستمر 4 أسابيع على الأوعية الدموية في العضلات. لفترة وجيزة، تم إصلاح أجزاء عضلة في 4٪ من الفورمالين، ومنعت استخدام 5٪ مصل الحصان (HS). وحضنت المقاطع مع الأجسام المضادة لمكافحة فأر فأر الابتدائي (1:300 في تخفيف HS 5٪) وتعامل مع الأجسام المضادة 555 المسمى مكافحة فأر عنزة الثانوية (1:300 في تخفيف HS 5٪). لتحديد العدد الكلي للخلايا CD31 إيجابي، وقد تم اختيار قسم واحد، وتصويرها باستخدام المجهر فلوري (نيكون الكسوف E800، اليابان). وقد عدها يدويا إجمالي عدد الشعيرات الدموية باستخدام الشمالية الكسوف البرمجيات (Empix التصوير شركة). كانت هناك زيادة كبيرة في عدد من خلايا CD31 إيجابي في الحيوانات التي قدمت إلى NMES بالمقارنة مع الضوابط (P &lt;0.01، الشكل 2)، مشيرا الى ان بروتوكول NMES صفها بأنها تشجع على الهيكل العظمي الأوعية الدموية في العضلات. <stroنانوغرام&gt; في الموضع اختبار مقلص: بعد أربعة أسابيع من الانتهاء من وضع بروتوكول NMES فقد تم اختبار مقلص للعضلات المقصورة الأمامية باستخدام جهاز الفحص في الوضع الطبيعي (الموديل 809B، أورورا العلمي المؤتمر الوطني العراقي، كندا)، ومشجعا على (النموذج 701C، أورورا العلمية خفيفة وكندا)، وقوة محول (أورورا العلمي المؤتمر الوطني العراقي، كندا). لفترة وجيزة، تم عزل العصب الشظوي تخدير الحيوانات من خلال شق صغير الوحشي في الركبة. ثم وضعت الفئران مستلق على منصة وكان وضعه القدم التي يجري اختبارها على الصفيحة القدمية. وقد استقر hindlimb لإجراء تجارب مع شريط من القماش على الركبة والقدم. وقد حفزت العضلات باستخدام أقطاب هوك إدراجها تحت الجلد. تم اختبار عضلة تقلص تكززي على تردد 150Hz ل350ms للتحقيق في ما اذا كان البروتوكول NMES التي تستمر 4 أسابيع قد يحفز تحسن في قوة العضلات. وتم تطبيع النتائج لوزن العضلات رطبة. كانت هناك زيادة بنسبة 30٪ تقريبا في الكزازIC تقلص من الحيوانات التي قدمت إلى NMES، بالمقارنة مع الضوابط (P = 0.005) (الشكل 3)، مما يدل على بروتوكول وصف يحسن قوة العضلات الهيكلية في MDX / SCID الحيوانات. <img alt="الشكل 1" src="/files/ftp_upload/3914/3914fig1.jpg" /> . الشكل 1 هيماتوكسيلين ويوزين تلطيخ العضلات والهيكل العظمي من التصنع (MDX) / الفئران العوز المناعي (4-5 أشهر) (التكبير 10x): أ الضوابط) غير المعالجة، B) بعد 4 أسابيع من NMES. <img alt="الشكل 2" src="/files/ftp_upload/3914/3914fig2.jpg" /> الشكل 2. CD31 المناعي (الحمراء)، كعلامة من الأوعية الدموية الهيكل العظمي والعضلات، في العضلات والهيكل العظمي من التصنع (MDX) / الفئران العوز المناعي (4-5 أشهر) (20x والتكبير) أ) رقابة علاجية، B) بعد 4 أسابيع من NMES. <img alt="الشكل (3)" src="/files/ftp_upload/3914/3914fig3.jpg" /> الشكل 3. اختبار مقلصمن العضلات مقصورة الأمامية في السيطرة والحيوانات تعامل مع NMES لمدة 4 أسابيع. MNM = ملي متر نيوتن. <a href="http://www.jove.com/files/ftp_upload/3914/3914fig3large.jpg">انقر هنا لعرض أكبر شخصية</a> .

<ol>
	<li>Snyder-Mackler, L., Delitto, A., Bailey, S. L., Stralka, S. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Strength+of+the+quadriceps+femoris+muscle+and+functional+recovery+after+reconstruction+of+the+anterior+cruciate+ligament.+A+prospective,+randomized+clinical+trial+of+electrical+stimulation.">Strength of the quadriceps femoris muscle and functional recovery after reconstruction of the anterior cruciate ligament. A prospective, randomized clinical trial of electrical stimulation.</a> Journal of Bone &#38; Joint Surgery - American. 77, 1166-1173 (1995).</li><li>Gibson, J. N., Smith, K., Rennie, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Prevention+of+disuse+muscle+atrophy+by+means+of+electrical+stimulation:+maintenance+of+protein+synthesis.">Prevention of disuse muscle atrophy by means of electrical stimulation: maintenance of protein synthesis.</a> Lancet. 2, 767-770 (1988).</li><li>Malatesta, D., Cattaneo, F., Dugnani, S., Maffiuletti, N. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+electromyostimulation+training+and+volleyball+practice+on+jumping+ability.">Effects of electromyostimulation training and volleyball practice on jumping ability.</a> Journal of Strength &#38; Conditioning Research. 17, 573-579 (2003).</li><li>Maffiuletti, N. A., Dugnani, S., Folz, M., Di Pierno, E., Mauro, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+combined+electrostimulation+and+plyometric+training+on+vertical+jump+height.">Effect of combined electrostimulation and plyometric training on vertical jump height.</a> Med. Sci. Sports Exerc. 34, 1638-1644 (2002).</li><li>Pichon, F., Chatard, J. C., Martin, A., Cometti, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Electrical+stimulation+and+swimming+performance.">Electrical stimulation and swimming performance.</a> Med. Sci. Sports Exerc. 27, 1671-1676 (1995).</li><li>Gondin, J., Guette, M., Ballay, Y., Martin, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Electromyostimulation+training+effects+on+neural+drive+and+muscle+architecture.">Electromyostimulation training effects on neural drive and muscle architecture.</a> Med. Sci. Sports Exerc. 37, 1291-1299 (2005).</li><li>Mathieu-Costello, O., Agey, P. J., Wu, L., Hang, J., Adair, T. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Capillary-to-fiber+surface+ratio+in+rat+fast-twitch+hindlimb+muscles+after+chronic+electrical+stimulation.">Capillary-to-fiber surface ratio in rat fast-twitch hindlimb muscles after chronic electrical stimulation.</a> Journal of Applied Physiology. 80, 904-909 (1996).</li><li>Ebina, T., Hoshi, N., Kobayashi, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Physiological+angiogenesis+in+electrically+stimulated+skeletal+muscle+in+rabbits:+characterization+of+capillary+sprouting+by+ultrastructural+3-D+reconstruction+study.">Physiological angiogenesis in electrically stimulated skeletal muscle in rabbits: characterization of capillary sprouting by ultrastructural 3-D reconstruction study.</a> Pathology International. 52, 702-712 (2002).</li><li>Zhao, M., Huai, B., Wang, E., Forrester, J. V., McCaig, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Electrical+stimulation+directly+induces+pre-angiogenic+responses+in+vascular+endothelial+cells+by+signaling+through+VEGF+receptors.">Electrical stimulation directly induces pre-angiogenic responses in vascular endothelial cells by signaling through VEGF receptors.</a> Journal of Cell Science. 117, 397-405 (2004).</li><li>Nagasaka, M., Kohzuki, M., Fujii, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+low-voltage+electrical+stimulation+on+angiogenic+growth+factors+in+ischaemic+rat+skeletal+muscle.">Effect of low-voltage electrical stimulation on angiogenic growth factors in ischaemic rat skeletal muscle.</a> Clinical &#38; Experimental Pharmacology &#38; Physiology. 33, 623-627 (2006).</li><li>Brutsaert, T. D., Gavin, T. P., Fu, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Regional+differences+in+expression+of+VEGF+mRNA+in+rat+gastrocnemius+following+1+hr+exercise+or+electrical+stimulation.">Regional differences in expression of VEGF mRNA in rat gastrocnemius following 1 hr exercise or electrical stimulation.</a> BMC Physiology. 2, 8 (2002).</li><li>Putman, C. T., Dusterhoft, S., Pette, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Changes+in+satellite+cell+content+and+myosin+isoforms+in+low-frequency-stimulated+fast+muscle+of+hypothyroid+rat.">Changes in satellite cell content and myosin isoforms in low-frequency-stimulated fast muscle of hypothyroid rat.</a> Journal of Applied Physiology. 86, 40-51 (1999).</li><li>Monaghan, B., Caulfield, B., O'Mathuna, D. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Surface+neuromuscular+electrical+stimulation+for+quadriceps+strengthening+pre+and+post+total+knee+replacement.">Surface neuromuscular electrical stimulation for quadriceps strengthening pre and post total knee replacement.</a> Cochrane Database Syst. Rev. CD007177, (2010).</li><li>Jubeau, M., Gondin, J., Martin, A., Sartorio, A., Maffiuletti, N. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Random+motor+unit+activation+by+electrostimulation.">Random motor unit activation by electrostimulation.</a> Int. J. Sports Med. 28, 901-904 (2007).</li><li>Piva, S. R., Goodnite, E. A., Azuma, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neuromuscular+electrical+stimulation+and+volitional+exercise+for+individuals+with+rheumatoid+arthritis:+a+multiple-patient+case+report.">Neuromuscular electrical stimulation and volitional exercise for individuals with rheumatoid arthritis: a multiple-patient case report.</a> Physical Therapy. 87, 1064-1077 (2007).</li><li>Delitto, A., Rose, S. J., McKowen, J. M., Lehman, R. C., Thomas, J. A., Shively, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Electrical+stimulation+versus+voluntary+exercise+in+strengthening+thigh+musculature+after+anterior+cruciate+ligament+surgery.[erratum+appears+in+Phys+Ther+1988+Jul;68(7):1145].">Electrical stimulation versus voluntary exercise in strengthening thigh musculature after anterior cruciate ligament surgery.[erratum appears in Phys Ther 1988 Jul;68(7):1145].</a> Physical Therapy. 68, 660-663 (1988).</li></ol>

ليس لدينا ما يكشف.

هذه النتائج تشير الى ان نموذجنا الفئران المتقدمة من NMES يعزز الهيكل العظمي والعضلات الأوعية الدموية (الشكل 2) وتعزيز (الشكل 3)، ولكن لا يسبب الضرر الهيكل العظمي والعضلات (الشكل 1). وتجدر الإشارة إلى أنه تم تصميم المعلمات التحفيز وصفها هنا للحث على عضلة الحمولة الزائدة للعضلات مقصورة الأمامية. تماما كما هو الحال بالنسبة لسيناريوهات السريرية، يمكن تعديل وضع قطب كهربائي لتنشيط المجموعات العضلية الأخرى، على الرغم من استجابة العضلات لNMES قد تكون مختلفة، اعتمادا على تكوين نوع من الألياف. يجوز تعديل NMES مدة، إجمالي عدد جلسات العلاج، وعدد من حالات التكرار وفقا لدراسة تصميم. كما هو الحال مع أي بروتوكول، وهذه الطريقة والقيود التي ينبغي أن يلاحظ. في هذه الدراسة، تم تنفيذ أكثر من تحفيز العصب الشظوي العميق. ومع ذلك، في العيادة، والتحفيز أناق تديرها عادة في وحدة المحرك. في نموذج حيواني، وتحفيز العصب تتطلب أقل كثافة من أجل انتزاع كامل تقلص العضلات. آخر حصر للنموذج كما قدم هو أننا غير قادرين على الحصول على المعلومات على مستوى الراحة أثناء بشأن تطبيق NMES، بالنظر إلى أن الحيوانات هي تخدير. ولذلك، فإن التحمل من شدة مماثلة في عدد السكان السريرية ومن الصعب تقدير. ومع ذلك، تشير نتائجنا النسيجية لدينا NMES النموذج، كما وصفها، لا يسبب اصابة في العضلات. تطوير نماذج الحيوانات التي تحاكي أساليب تنفيذها عادة في عيادة توفر لنا أدوات مختبر مفيد يسمح لتحسين فهم الاستجابات الخلوية والجزيئية لتدخلات العلاج. وبالإضافة إلى ذلك، مثل هذه النماذج مفيدة لإجراء دراسات ما قبل السريرية على حد سواء لصقل البروتوكولات إعادة التأهيل القائمة ووضع مؤشرات جديدة.

<table border="1" style=";text-align:right;direction:rtl"><tbody><tr><td> اسم كاشف </td><td> شركة </td><td> فهرس العدد </td></tr><tr><td> المشاركات ناقلات لف سلك مع محطة لحام ذات الشعبتين </td><td> نيوارك </td><td> T68 </td></tr><tr><td> ناقلات لوحة الدوائر </td><td> نيوارك </td><td> 3662-2 </td></tr><tr><td> بومونا رقعة الحبل </td><td> نيوارك </td><td> ف 36-0 </td></tr><tr><td> 5 الايبوكسي دقيقة </td><td> VO شركة بيكر </td><td> 4001 </td></tr><tr><td> أطياف جل 360 الكهربائي </td><td> ميليكين الطبية </td><td> MR41217 </td></tr><tr><td> جهاز محمول التحفيز العصبي العضلي </td><td> EMPI </td><td> 300pv </td></tr></tbody></table>

a murine model of muscle training by neuromuscular electrical stimulation

التحفيز الكهربائي العصبي العضلي (NMES) هو أسلوب شائع السريرية التي يتم استخدامها على نطاق واسع لاستعادة 1، 2 أو الحفاظ على تعزيز قدرة العضلات وظيفية 3-5. التنبيه سطح الهيكل العظمي والعضلات ينطوي على تدفق الحالية بين الكاثود والأنود 1، الأمر الذي أدى بالتالي إثارة للوحدة الحركية وألياف العضلات المحيطة بها. NMES هي طريقة جذابة لتقييم الاستجابات التكيفية العضلات والهيكل العظمي لعدة أسباب. أولا، فإنه يقدم نموذجا للتكرار التجارب التي تم توثيقها جيدا التكيفات الفسيولوجية، مثل تضخما myofiber وتقوية العضلات 6، الأوعية الدموية 7-9، إفراز عامل النمو 9-11، وتنشيط عضلة الخلية السلائف 12. قد تكون هذه الاستجابات الفسيولوجية معاير بعناية باستخدام معايير مختلفة من التحفيز (للمراجعة كوكرين، انظر 13). وبالإضافة إلى ذلك، NMES المجندينالوحدات الحركية غير انتقائي، وبطريقة ثابتة مكانيا وزمانيا متزامن 14، وتقدم ميزة لممارسة تأثير العلاج على جميع الألياف، وبغض النظر عن نوع من الألياف. بالرغم من وجود موانع الاستعمال المحدد لNMES السكان في سريري، بما في ذلك الاضطرابات وريدي محيطي أو خبيثة، على سبيل المثال، NMES آمنة وقابلة للتنفيذ، حتى بالنسبة لأولئك الذين يعانون من سوء و / أو طريح الفراش، وبالنسبة للسكان في أي ممارسة صارم قد يكون أمرا صعبا. هنا، علينا أن نبرهن على بروتوكول للتكيف مع الأقطاب الكهربائية المتاحة تجاريا وتنفيذ بروتوكول NMES باستخدام نموذج الفئران. هذا نموذج حيواني لديه ميزة الاستفادة من جهاز متوفر سريريا وتقديم ردود الفعل الفورية بشأن المواقع من قطب كهربائي للحصول على تأثير مقلص عضلة المرجوة. لهذا الغرض من هذه المخطوطة، فإننا سوف تصف البروتوكول لتنشيط عضلة من عضلات المقصورة الأمامية من hindlimb الماوس.

Watch this Scientific Journal Video about A Murine Model of Muscle Training by Neuromuscular Electrical Stimulation at JoVE.com

A Murine Model of Muscle Training by Neuromuscular Electrical Stimulation

يوصف نموذج الفئران من التحفيز الكهربائي العصبي العضلي (NMES)، وهي طريقة آمنة وغير مكلفة السريرية، إلى العضلات الأمامية للمقصورة. هذا النموذج في الاستفادة من تعديل جهاز متاحة بسهولة السريرية لغرض انتزاع تقلصات العضلات المستهدفة والمحددة في الفئران.

نموذج الفئران من تدريب عضلات بواسطة التنبيه الكهربائي العصبي العضلي

Neuromuscular electrical stimulation (NMES) is a common clinical modality that is widely used to restore1, maintain2 or enhance3-5 muscle functional ...

Research

JoVE Journal

Medicine

Programmed Electrical Stimulation in Mice

التحفيز الكهربائية المبرمجة في الفئران

Genetically-modified mice have emerged as a preferable animal model to study the molecular mechanisms underlying conduction abnormalities, atrial and ...

Utilizing Transcranial Magnetic Stimulation to Study the Human Neuromuscular System

استخدام التنشيط المغناطيسي عبر الجمجمة لدراسة النظام العصبي العضلي الإنسان

Transcranial magnetic stimulation (TMS) has been in use for more than 20 years 1, and has grown exponentially in popularity over the past decade.  While ...

Breathing-controlled Electrical Stimulation (BreEStim) for Management of Neuropathic Pain and Spasticity

Breathing-controlled Electrical Stimulation BreEStim for Management of Neuropathic Pain and Spasticity

التنفس التي تسيطر عليها تحفيز الكهربائية (BreEStim) لإدارة ألم الأعصاب والتشنج

Electrical stimulation (EStim) refers to the application of electrical current to muscles or nerves in order to achieve functional and therapeutic goals. ...

Murine Model of Wound Healing

نموذج الفئران من التئام الجروح

Wound healing and repair are the most complex biological processes that occur in human life. After injury, multiple biological pathways become activated. ...

A Murine Model of Subarachnoid Hemorrhage

A نموذج من الفئران تحت العنكبوتية نزف

In this video publication a standardized mouse model of subarachnoid  hemorrhage (SAH) is presented. Bleeding is induced by endovascular Circle of  Willis ...

Reproducable Paraplegia by Thoracic Aortic Occlusion in a Murine Model of Spinal Cord Ischemia-reperfusion

Reproducable الشلل النصفي عن طريق الشريان الأورطي الصدري انسداد في نموذج الفئران من الحبل الشوكي نقص التروية، ضخه

Background
Lower extremity paralysis continues to complicate aortic interventions. The lack of understanding of the underlying pathology has hindered ...

Assessment of Right Ventricular Structure and Function in Mouse Model of Pulmonary Artery Constriction by Transthoracic Echocardiography

تقييم البطين الأيمن هيكل وظيفة في نموذج الفأر من الشريان الرئوي عبر الصدر عن طريق انقباض ضربات القلب

Emerging clinical data support the notion that RV dysfunction is critical to the pathogenesis of cardiovascular disease and heart failure1-3. Moreover, ...

Excitotoxic Stimulation of Brain Microslices as an In vitro Model of Stroke

Excitotoxic Stimulation of Brain Microslices as an In vitro Model of Stroke

excitotoxic المواد تحفيز الدماغ باعتبارها Microslices<em&gt; في المختبر</em&gt; نموذج من السكتة الدماغية

Examining molecular mechanisms involved in neuropathological conditions, such as ischemic stroke, can be difficult when using whole animal systems. As ...