Name: agarose gel electrophoresis for the separation of dna fragments
Uploaded: 2012-04-20T12:00:00
Duration: 7 min 10 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Agarose Gel Electrophoresis for the Separation of DNA Fragments at JoVE.com

1. הכנת ג&#39;ל <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשקול את המסה המתאימה של agarose לתוך הבקבוק Erlenmeyer. ג &#39;ל agarose מוכנים באמצעות aw / פתרון V אחוז. ריכוז agarose ב ג&#39;ל יהיה תלוי בגדלים של קטעי דנ&quot;א להיפרד, עם רוב הג&#39;לים שנעו בין 0.5% -2%. נפח המאגר לא צריך להיות גדול מ 1/3 של קיבולת של הבקבוק. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף פועל חיץ כדי agarose בקבוק המכיל. מערבולת לערבב. ג&#39;ל הנפוץ ביותר הם פועל מאגרים טה (40 מ&quot;מ טריס, אצטט, 1 mM EDTA) ו TBE (45 מ&quot;מ טריס-borate, 1 mM EDTA). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ממיסים את תערובת agarose / חיץ. הדבר נעשה בדרך כלל על ידי חימום במיקרוגל, אבל יכול להיעשות גם על אש בונזן. ב 30 מרווחי ים, להסיר את הבקבוק ו מערבולת התוכן לערבב היטב. חזור על הפעולה עד agarose נמס לגמרי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף ethidium ברומיד (EtBr) לריכוז של 0.5 מיקרוגרם / מ&quot;ל. לחלופין, ג&#39;ל עשוי גם להיות מוכתם לאחר אלקטרוphoresis בניהול מאגר המכיל 0.5 מיקרוגרם / מ&quot;ל ​​EtBr במשך 15-30 דקות, ואחריו destaining בניהול חיץ לאורך שווה של זמן. </li></ol> הערה: EtBr הוא קרצינוגן חשד חייב להיות מסולק כראוי לכל התקנות של המוסד. כפפות תמיד צריך להיות משוחק בעת טיפול ג&#39;לים המכילים EtBr. צבעים חלופיים צביעה של ה-DNA זמינים, אך EtBr נשאר אחד הפופולריים ביותר וזאת עקב רגישותה ואת העלות. <ol start="5" style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אפשר agarose להתקרר גם על benchtop או הדגירה של אמבט מים 65 מעלות צלזיוס. אי ביצוע הוראה זו יהיה עיוות מגש ג&#39;ל. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את המגש הג&#39;ל לתוך מנגנון הליהוק. לחלופין, ניתן גם להדביק את הקצוות הפתוחים של מגש ג&#39;ל ליצור עובש. מניחים מסרק מתאימה לתבנית ג&#39;ל ליצור את הבארות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> יוצקים את agarose מותכת לתוך תבנית ג&#39;ל. אפשר agarose להגדיר בטמפרטורת החדר. הסר את המסרק ואת המקום ג&#39;ל בתיבה ג&#39;ל. לחילופין, ה-Gאל ניתן גם עטוף בניילון ולאחסן ב 4 ° C עד השימוש (איור 1). </li></ol> 2. הקמת מנגנון ג&#39;ל והפרדה של שברי ה-DNA <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף טעינת צבע על דגימות דנ&quot;א להיפרד (איור 2). ג&#39;ל טעינת צבע מורכב בדרך כלל בריכוז 6X (0.25% bromphenol כחול, cyanol קסילן 0.25%, 30% גליצרול). טוען הצבע עוזר כדי לעקוב אחר כמה רחוק דגימת DNA שלך נסעה, וגם מאפשר דגימה לשקוע ג&#39;ל. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תוכנית כבל חשמל למתח הרצוי (1-5V/cm בין האלקטרודות). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף חוצץ פועל מספיק כדי לכסות את פני השטח של ג&#39;ל. חשוב להשתמש המאגר פועל זהה לזה המשמש להכנת ג&#39;ל. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> צרף את תיבת הפניות של ג&#39;ל על ספק הכוח. הפעל את אספקת החשמל ולוודא כי הן תיבת ג&#39;ל ואת אספקת החשמל פועלים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר את המכסה. לאטבזהירות לטעון את דגימת DNA (ים) לתוך הג&#39;ל (איור 3). סמן המתאים לגודל ה-DNA תמיד צריך להיות טעון יחד עם דגימות מעבדה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> החזר את מכסה התיבה ג&#39;ל. הקתודה (מוביל שחורים) צריך להיות קרוב יותר בארות מאשר מוביל (אדומים) האנודה. בדוק את האלקטרודות מחוברים לאותה החריצים הנכונים באספקת החשמל. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הפעילו את המחשב. הפעל את הג&#39;ל עד צבע העביר את המרחק המתאים. </li></ol> 3. התבוננות שברי ה-DNA מופרדים <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כאשר אלקטרופורזה השלימה, לכבות את החשמל והסר את המכסה של תיבת ג&#39;ל. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר ג&#39;ל מתיבת ג&#39;ל. מסננים את עודפי חיץ מפני השטח של ג&#39;ל. מניחים את המגש ג&#39;ל על מגבות נייר כדי לספוג את כל המאגר פועל נוסף. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר את הג&#39;ל ממגש ג&#39;ל ולחשוף את הג&#39;ל לאור UV. הדבר נעשה בדרך כלל באמצעות תיעוד ג&#39;ל המערכת (איור 4). להקות ה-DNA צריך להראותבתור להקות ניאון כתומות. לצלם את הג&#39;ל (איור 5). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כמו שצריך להיפטר ג&#39;ל ו חיץ פועל לפי תקנות המוסד. </li></ol> 4. נציג תוצאות איור 5 מייצג את התוצאה בדרך כלל אחרי אלקטרופורזה בג&#39;ל agarose של מוצרי ה-PCR. לאחר ההפרדה, את שברי ה-DNA וכתוצאה מכך נראים כמו פסים ברורים. תקן ה-DNA או סולם יש להפריד במידה המאפשרת קביעת שימושית של גדלים של להקות לדוגמה. בדוגמה המוצגת, שברי ה-DNA של 765 נ&quot;ב, 880 נ&quot;ב ו 1022 BP מופרדים על 1.5% agarose ג&#39;ל יחד עם סולם 2-log-DNA. <img alt="באיור 1." src="/files/ftp_upload/3923/3923fig1.jpg" /> באיור 1. הקרושה agarose ג&#39;ל לאחר הסרת מסרק. <img alt="איור 2." src="/files/ftp_upload/3923/3923fig2.jpg" /> איור 2. תלמיד הוספת צבע טוען את דגימות ה-DNA שלה. <img alt="איור 3." src="/files/ftp_upload/3923/3923fig3.jpg" /> איור 3. התלמיד טוען דגימת DNA לתוך באר ג&#39;ל. <img alt="באיור 4." src="/files/ftp_upload/3923/3923fig4.jpg" /> איור 4. דוגמה של מערכת תיעוד ג&#39;ל. <img alt="איור 5." src="/files/ftp_upload/3923/3923fig5.jpg" /> איור 5. התמונה אלקטרופורזה של ג&#39;ל הודעה. EtBr נוספה ג&#39;ל אלקטרופורזה לפני לריכוז סופי של 0.5 מיקרוגרם / מ&quot;ל, ואחריו ההפרדה V 100 במשך שעה 1. ג&#39;ל נחשף לאור UV ו תמונה לקחה עם מערכת תיעוד ג&#39;ל.

<ol>
	<li>Sambrook, J., Russell, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Molecular Cloning. , (2001).</li><li>Kirkpatrick, F. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Overview+of+agarose+gel+properties.">Overview of agarose gel properties.</a> Electrophoresis of large DNA molecules: theory and applications. , 9-22 (1991).</li><li>Helling, R. B., Goodman, H. M., Boyer, H. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Analysis+of+endonuclease+R&#8226;EcoRI+fragments+of+DNA+from+lambdoid+bacteriophages+and+other+viruses+by+agarose-gel+electrophoresis.">Analysis of endonuclease R&#8226;EcoRI fragments of DNA from lambdoid bacteriophages and other viruses by agarose-gel electrophoresis.</a> J. Virol. 14, 1235-1244 (1974).</li><li>Smith, S. B., Aldridge, P. K., Callis, J. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Observation+of+individual+DNA+molecules+undergoing+gel+electrophoresis.">Observation of individual DNA molecules undergoing gel electrophoresis.</a> Science. 243, 203-206 (1989).</li><li>Aaji, C., Borst, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+gel+electrophoresis+of+DNA.">The gel electrophoresis of DNA.</a> Biochim. Biophys. Acta. 269, 192-200 (1972).</li><li>Lai, E., Birren, B. W., Clark, S. M., Simon, M. I., Hood, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pulsed+field+gel+electrophoresis.">Pulsed field gel electrophoresis.</a> Biotechniques. 7, 34-42 (1989).</li><li>Devor, E. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> IDT tutorial: gel electrophoresis. , (2010).</li><li>Serwer, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Agarose+gels:+properties+and+use+for+electrophoresis.">Agarose gels: properties and use for electrophoresis.</a> Electrophoresis. 4, 375-382 (1983).</li><li>Dea, I. C. M., McKinnon, A. A., Rees, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tertiary+and+quaternary+structure+and+aqueous+polysaccharide+systems+which+model+cell+wall+adhesion:+reversible+changes+in+conformation+and+association+if+agarose,+carrageenan+and+galactomannans.">Tertiary and quaternary structure and aqueous polysaccharide systems which model cell wall adhesion: reversible changes in conformation and association if agarose, carrageenan and galactomannans.</a> J. Mol. Biol. 68, 153-172 (1972).</li><li>Sharp, P. A., Sugden, B., Sambrook, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Detection+of+two+restriction+endonuclease+activities+in+H.+parainfluenzae+using+analytical+agarose-ethidium+bromide+electrophoresis.">Detection of two restriction endonuclease activities in H. parainfluenzae using analytical agarose-ethidium bromide electrophoresis.</a> Biochemistry. 12, 3055-3063 (1973).</li></ol>

אין לנו מה למסור.

אלקטרופורזה agarose ג&#39;ל הוכיח את עצמו באופן יעיל ואפקטיבי של הפרדת חומצות גרעין. כוח ג&#39;ל גבוהה של agarose מאפשרת טיפול של ג&#39;ל שיעור נמוך להפריד את שברי דנ&quot;א גדולים. סנון מולקולרית נקבעת על ידי גודל של הנקבוביות שנוצר על ידי צרורות של agarose 7 במטריצה ​​ג&#39;ל. באופן כללי, ככל שעולה ריכוז agarose, קטן יותר גודל הנקבוביות. מסורתית ג&#39;ל agarose יעילים ביותר ההפרדה של שברי ה-DNA בין 100 נ&quot;ב ו -25 KB. להפריד בין שברי דנ&quot;א גדולים יותר מ -25 קילו, 1 תצטרך להשתמש בג&#39;ל הדופק בתחום אלקטרופורזה 6, הכוללת את היישום של זרם חילופין משני כיוונים שונים. בדרך זו יותר שברי דנ&quot;א בגודל מופרדות המהירות שבה הם לכוון את עצמם עם שינויים בכיוון הנוכחי. קטעי דנ&quot;א קטנות יותר מ -100 נ&quot;ב מופרדים בצורה יעילה יותר באמצעות ג&#39;ל אלקטרופורזה polyacrylamide. שונהagarose ג&#39;ל, ג&#39;ל מטריקס polyacrylamide נוצר באמצעות תגובה כימית רדיקלים חופשיים מונע. ג&#39;ל אלו הם דקים יותר של ריכוז גבוה יותר, מופעלים אנכית יש רזולוציה טובה יותר. ב-DNA המודרנית רצף אלקטרופורזה נימי משמש, לפיה צינורות נימי מלאים מטריקס ג&#39;ל. השימוש צינורות נימי מאפשר יישום של מתח גבוה, ובכך שהיא מאפשרת את ההפרדה בין שברי דנ&quot;א (וקביעת רצף ה-DNA) במהירות. Agarose יכול להיות שונה כדי ליצור התכה נמוכה agarose דרך hydroxyethylation. התכה נמוכה agarose משמש בדרך כלל כאשר הבידוד של שברי הדנ&quot;א המופרדים הרצוי. Hydroxyethylation מפחיתה את צפיפות האריזה של חבילות agarose, ובכך מפחיתה ביעילות גודל הנקבוביות שלהם 8. משמעות הדבר היא כי קטע DNA באותו גודל ייקח זמן רב יותר כדי לעבור התכה נמוכה agarose ג&#39;ל בניגוד ג&#39;ל agarose סטנדרטי. כי החבילות לקשר זה עם זהדרך לא קוולנטיים אינטראקציות 9, ניתן להמיס מחדש ג&#39;ל agarose לאחר הקימה. EtBr הוא מגיב הנפוץ ביותר להכתים-DNA agarose ג&#39;ל 10. בעת חשיפה לאור UV, האלקטרונים טבעת ארומטית של המולקולה ethidium מופעלים, מה שגורם לשחרור של האנרגיה (אור) כחזרה אלקטרונים למצב בשטח. EtBr עובד על ידי intercalating עצמו מולקולת ה-DNA באופן תלוי ריכוז. זה מאפשר הערכה של כמות ה-DNA בלהקה כל ה-DNA מסוים על בסיס עוצמתו. בגלל מטען חיובי שלו, את השימוש EtBr מפחית את שיעור ההגירה DNA ב -15%. EtBr הוא mutagen החשוד כמסרטן, ולכן יש לנקוט בזהירות בעת הטיפול ג&#39;ל agarose המכילים אותו. בנוסף, EtBr נחשב פסולת מסוכנת וצריך להיות מסולק כראוי. כתמים חלופיים-DNA ג&#39;ל agarose כוללים SYBR זהב, SYBR ירוק, קריסטל ויולט מתיל כחול. מבין אלה,מתיל כחול קריסטל ויולט אינם דורשים חשיפת הג&#39;ל לאור UV להדמיה של להקות ה-DNA, ובכך להפחית את הסיכוי של מוטציה אם ההחלמה של שבר דנ&quot;א בג&#39;ל הוא הרצוי. עם זאת, הרגישות שלהם נמוכה מזו של EtBr. SYBR זהב SYBR ירוק, שניהם רגישים מאוד, צבעים תלויים סגול עם רעילות נמוכה EtBr, אבל הם הרבה יותר יקר. יתר על כן, כל צבעי חלופיים או לא יכול להיות או לא עובדים טוב כאשר הוסיף ישירות ג&#39;ל, ג&#39;ל ולכן יהיה חייב להיות מוכתם הודעה לאחר אלקטרופורזה. בגלל הקלות עלות, תועלת, ורגישות, EtBr עדיין הצבע המועדף על חוקרים רבים. עם זאת, במצבים מסוימים, כגון כאשר סילוק פסולת מסוכנת או קשה כאשר תלמידים צעירים מבצעים ניסוי, צבע פחות רעיל עשוי להיות מועדף. צבעים טוען המשמשים ג&#39;ל אלקטרופורזה לשרת שלוש מטרות עיקריות. ראשית הם מוסיפים צפיפות מדגם, שמאפשר לו לשקוע ג&#39;ל. שנית, צובעת את לספק צבע ולפשט את תהליך הטעינה. לבסוף, צבעים נעות במחירים סטנדרטיים באמצעות ג&#39;ל, המאפשר הערכה של מרחק כי שברי דנ&quot;א היגרו. בגדלים המדויקים של קטעי דנ&quot;א מופרדות ניתן לקבוע על ידי התוויית יומן של משקל מולקולרי של להקות שונות של תקן ה-DNA על המרחק של הלהקה כל אחד. תקן ה-DNA מכיל תערובת של קטעי דנ&quot;א של שנקבעו מראש בגדלים שניתן בהשוואה מול דגימות ה-DNA ידועים. חשוב לציין כי צורות שונות של ה-DNA לעבור ג&#39;ל בקצב שונה. ה-DNA פלסמיד Supercoiled, בגלל קונפורמציה קומפקטית שלה, עובר דרך ג&#39;ל המהירה ביותר, ואחריו קטע DNA ליניארי באותו גודל, עם צורה עגולה פתוח נסיעה האיטי ביותר. לסיכום, מאז אימוץ agarose ג&#39;ל בשנות ה -1970 להפריד את ה-DNA, יש לוהוכחה אחת הטכניקות הכי שימושי צדדי במחקר מדעי ביולוגי.

<table border="1" style=";text-align:right;direction:rtl"><tbody><tr><td> שם מגיב </td><td> חברה </td><td> מספר קטלוגי </td><td> תגובות </td></tr><tr><td> אני agarose </td><td> Amresco </td><td> 0710 </td><td></td></tr><tr><td> בור חומצה </td><td> סיגמא </td><td> B7901 </td><td></td></tr><tr><td> Bromophenol כחול </td><td> סיגמא </td><td> B8026 </td><td></td></tr><tr><td> EDTA </td><td> סיגמא </td><td> E9884 </td><td></td></tr><tr><td> Ethidium ברומיד </td><td> סיגמא </td><td> E7637 </td><td> מסרטנים, צריך להיות מסולק כמו פסולת מסוכנת </td></tr><tr><td> חומצה אצטית קרחונית </td><td> דיג </td><td> BP2401-212 </td><td> מאכל </td></tr><tr><td> גליצרול </td><td> דיג </td><td> G33-1 </td><td></td></tr><tr><td> Xylenדואר cyanol FF </td><td> סיגמא </td><td> X4126 </td><td></td></tr><tr><td> טריס בסיס </td><td> סיגמא </td><td> T1503 </td><td></td></tr><tr><td> החוקר / FX ג&#39;ל מערכת תיעוד </td><td> Fotodyne </td><td></td><td></td></tr><tr><td> ינשוף Easycast B1 מיני ג&#39;ל אלקטרופורזה מערכת </td><td> Thermo Scientific </td><td> B1-PTM </td><td></td></tr><tr><td> EPS 301 ספק כוח </td><td> GE Healthcare </td><td> 18-1130-01 </td><td></td></tr></tbody></table>

agarose gel electrophoresis for the separation of dna fragments

אלקטרופורזה agarose ג&#39;ל הוא הדרך היעילה ביותר להפרדת קטעי ה-DNA בגדלים שונים הנעים בין BP 100-25 KB 1. Agarose מבודד סוגים אצות Gelidium ו Gracilaria, והוא מורכב agarobiose חזר (L-ו-D-גלקטוז) יחידות משנה 2. במהלך gelation, פולימרים agarose לקשר לא קוולנטית וליצור רשת של חבילות אשר גודל הנקבוביות לקבוע מאפיינים מולקולריים של ג&#39;ל סנון. השימוש בג&#39;ל אלקטרופורזה agarose מהפכה ההפרדה של ה-DNA. לפני אימוץ agarose ג&#39;לים, ה-DNA הופרדו בעיקר באמצעות צפיפות סוכרוז שיפוע צנטריפוגה, שרק סיפק הערכה של גודל. להפריד בין ה-DNA באמצעות אלקטרופורזה agarose ג&#39;ל, ה-DNA הוא נטען לתוך מראש יצוק בארות ג&#39;ל ו יישומי הנוכחי. עמוד השדרה של ה-DNA פוספט (ו-RNA) הוא מולקולה טעונים שלילית, ולכן כאשר הניח שדה חשמלי, שברי דנ&quot;א יהיה להגר עמ &#39;טעונה ositively האנודה. כי ה-DNA יש יחס אחיד המונית / תשלום, מולקולות ה-DNA מופרדים לפי גודל בתוך ג&#39;ל agarose בדפוס כזה המרחק הוא ביחס הפוך יומן של משקל מולקולרי שלה 3. הדגם המוביל של תנועת ה-DNA באמצעות ג&#39;ל agarose הוא &quot;מוטה reptation&quot;, לפיו החדשנית נע קדימה ומושך את שאר המולקולה יחד 4. שיעור ההגירה של מולקולת הדנ&quot;א דרך ג&#39;ל נקבעת על ידי הבאות: גודל 1) של מולקולת הדנ&quot;א, 2) ריכוז agarose; 3) קונפורמציה DNA 5, 4) יישומית, 5) מתח נוכחות ethidium ברומיד, 6) סוג מאגר agarose ו 7) אלקטרופורזה. לאחר ההפרדה, את מולקולות ה-DNA יכול להיות דמיינו תחת אור UV לאחר מכתים עם הצבע המתאים. על ידי ביצוע בפרוטוקול זה, התלמידים צריכים להיות מסוגלים: <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להבין את המנגנון שבאמצעותו שברי ה-DNA מופרדים בתוך מטריצת הג&#39;ל </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להבין כיצד קונפורמציה שלמולקולת ה-DNA תקבע הניידות שלה באמצעות מטריצת הג&#39;ל </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> זהה את הפתרון agarose הריכוז המתאים לצרכיהם </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן ג&#39;ל agarose על אלקטרופורזה של דגימות דנ&quot;א </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הגדרת ג&#39;ל אלקטרופורזה מנגנון אספקת החשמל </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בחר המתח המתאים להפריד את שברי ה-DNA </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להבין את המנגנון שבאמצעותו ברומיד ethidium מאפשר הדמיה של להקות ה-DNA </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> קבע את הגדלים של שברי הדנ&quot;א המופרדים </li></ol>

Watch this Scientific Journal Video about Agarose Gel Electrophoresis for the Separation of DNA Fragments at JoVE.com

Agarose Gel Electrophoresis for the Separation of DNA Fragments

פרוטוקול בסיסי להפריד את שברי דנ&quot;א באמצעות אלקטרופורזה agarose ג&#39;ל מתואר.

ג&#39;ל אלקטרופורזה agarose להפריד את קטעי ה-DNA

Agarose gel electrophoresis is the most effective way of separating DNA fragments of varying sizes ranging from 100 bp to 25 kb1. Agarose is isolated from ...

Research

JoVE Journal

Biology

Denaturing Gradient Gel Electrophoresis (DGGE)

Denaturing Gradient Gel Electrophoresis DGGE

Denaturing ג&#39;ל אלקטרופורזה Gradient (DGGE)

Optimized Fibrin Gel Bead Assay for the Study of Angiogenesis

אופטימליים הפיברין ג&#39;ל ביד Assay לחקר אנגיוגנזה

Angiogenesis is a complex multi-step process, where, in response to angiogenic stimuli, new vessels are created from the existing vasculature.  These ...

Assessing Neural Stem Cell Motility Using an Agarose Gel-based Microfluidic Device

הערכת תנועתיות עצבי לתאי גזע באמצעות התקן הג&#39;ל מבוסס agarose Microfluidic

While microfluidic technology is reaching a new level of maturity for macromolecular assays, cell-based assays are still at an infant stage1. This is ...

Screening for Amyloid Aggregation by Semi-Denaturing Detergent-Agarose Gel Electrophoresis

הקרנת עבור צבירת עמילואיד על ידי חצי Denaturing אלקטרופורזה דטרגנט-agarose ג&#39;ל

Amyloid aggregation is associated with numerous protein misfolding pathologies and underlies the infectious properties of prions, which are ...

Denaturing Urea Polyacrylamide Gel Electrophoresis (Urea PAGE)

Denaturing Urea Polyacrylamide Gel Electrophoresis Urea PAGE

Denaturing polyacrylamide דשן ג&#39;ל אלקטרופורזה (עמוד דשן)

Urea PAGE or denaturing urea polyacrylamide gel electrophoresis employs 6-8 M urea, which denatures secondary DNA or RNA structures and is used for their ...

Electroeluting DNA Fragments

Electroeluting קטעי DNA

Purified DNA fragments are used for different purposes in Molecular Biology and they can be prepared by several procedures. Most of them require a ...

Blue Native Polyacrylamide Gel Electrophoresis (BN-PAGE) for Analysis of Multiprotein Complexes from Cellular Lysates

Blue Native Polyacrylamide Gel Electrophoresis BN-PAGE for Analysis of Multiprotein Complexes from Cellular Lysates

ג&#39;ל כחול Native polyacrylamide אלקטרופורזה (BN-PAGE) עבור ניתוח של מתחמי multiprotein מ lysates נייד

Multiprotein complexes (MPCs) play a crucial role in cell signalling, since most proteins can be found in functional or regulatory complexes with other ...

Visualization of UV-induced Replication Intermediates in E. coli using Two-dimensional Agarose-gel Analysis

Visualization of UV-induced Replication Intermediates in E. coli using Two-dimensional Agarose-gel Analysis

ויזואליזציה של UV-Induced ביניים שכפול א coli באמצעות דו מימדי agarose ג&#39;ל ניתוח

Inaccurate replication in the presence of DNA damage is responsible for the majority of cellular rearrangements and mutagenesis observed in all cell types ...

Selective Capture of 5-hydroxymethylcytosine from Genomic DNA

לכידה סלקטיבית של 5-hydroxymethylcytosine מהדנ&quot;א הגנומי

5-methylcytosine (5-mC) constitutes ~2-8% of the total cytosines in human genomic DNA and impacts a broad range of biological functions, including gene ...

Robust 3D DNA FISH Using Directly Labeled Probes

דגי ה-DNA 3D חזקים באמצעות בדיקות שכותרתו ישירות

3D DNA FISH has become a major tool for  analyzing three-dimensional organization of the nucleus, and several variations  of the technique have been ...