Name: analyzing the effects of stromal cells on the recruitment of leukocytes from flow
Uploaded: 2015-01-07T15:00:00
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Umbilical cords were collected with the assistance of the Birmingham Women's Health Care NHS Trust. HMM was supported by an Arthritis Research UK Career Development Fellowship (19899) and Systems Science for Health, University of Birmingham (5212).

1. Isolierung und Kultivierung von primären humanen Endothelzellen und mesenchymalen Stammzellen <ol><li> Isolierung und Kultur von humanen Nabelschnurvenen-Endothelzellen (HUVEC): <ol><li> Setzen Nabelschnur auf einem Tablett mit Papiertüchern und Spray mit 70% Ethanol. Platzieren Sie in einer Gewebekultur Kapuze. Identifizieren Sie die Vene und kanülieren an beiden Enden. Legen Sie einen Kabelbinder um die Kanüle eingeführt Ende zu sichern. </li><li> Waschen Sie die venöse Blut mit PBS mit einer Spritze. Füll...

<ol>
	<li>Springer, T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Traffic+signals+on+endothelium+for+lymphocyte+recirculation+and+leukocyte+emigration.">Traffic signals on endothelium for lymphocyte recirculation and leukocyte emigration.</a> Ann. Rev. Physiol. 57, 827-872 (1995).</li><li>Ley, K., Laudanna, C., Cybulsky, M. I., Nourshargh, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Getting+to+the+site+of+inflammation:+the+leukocyte+adhesion+cascade+updated.">Getting to the site of inflammation: the leukocyte adhesion cascade updated.</a> Nature reviews. Immunology. 7 (9), 678-689 (2007).</li><li>McGettrick, H. M., Butler, L. M., Buckley, C. D., Rainger, G. E., Nash, G. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tissue+stroma+as+a+regulator+of+leukocyte+recruitment+in+inflammation.">Tissue stroma as a regulator of leukocyte recruitment in inflammation.</a> Journal of leukocyte biology. 91 (3), 385-400 (2012).</li><li>Serhan, C. N., Savill, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Resolution+of+inflammation:+the+beginning+programs+the+end.">Resolution of inflammation: the beginning programs the end.</a> Nature immunology. 6 (12), 1191-1197 (2005).</li><li>Schmidt, S., Moser, M., Sperandio, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+molecular+basis+of+leukocyte+recruitment+and+its+deficiencies.">The molecular basis of leukocyte recruitment and its deficiencies.</a> Molecular immunology. 55, 49-58 (2013).</li><li>Luu, N. T., Rainger, G. E., Nash, G. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differential+Ability+of+Exogenous+Chemotactic+Agents+to+Disrupt+Transendothelial+Migration+of+Flowing+Neutrophils.">Differential Ability of Exogenous Chemotactic Agents to Disrupt Transendothelial Migration of Flowing Neutrophils.</a> The Journal of Immunology. 164 (11), 5961-5969 (2000).</li><li>Smith, C. W., Rothlein, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Recognition+of+an+endothelial+determinant+for+CD+18-dependent+human+neutrophil+adherence+and+transendothelial+migration.">Recognition of an endothelial determinant for CD 18-dependent human neutrophil adherence and transendothelial migration.</a> The Journal of clinical investigation. 82 (5), 1745-1756 (1988).</li><li>Luscinskas, F. W., Brock, A. F., Arnaout, M. A., Gimbrone, M. 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B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Each+step+during+transendothelial+migration+of+flowing+neutrophils+is+regulated+by+the+stimulatory+concentration+of+tumour+necrosis+factor-alpha.">Each step during transendothelial migration of flowing neutrophils is regulated by the stimulatory concentration of tumour necrosis factor-alpha.</a> Cell adhesion and communication. 6 (6), 491-501 (1998).</li><li>Piali, L., Weber, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+chemokine+receptor+CXCR3+mediates+rapid+and+shear-resistant+adhesion-induction+of+effector+T+lymphocytes+by+the+chemokines+IP10+and+Mig.">The chemokine receptor CXCR3 mediates rapid and shear-resistant adhesion-induction of effector T lymphocytes by the chemokines IP10 and Mig.</a> European journal of immunology. 28 (3), 961-972 (1998).</li><li>McGettrick, H. M., Smith, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fibroblasts+from+different+sites+may+promote+or+inhibit+recruitment+of+flowing+lymphocytes+by+endothelial+cells.">Fibroblasts from different sites may promote or inhibit recruitment of flowing lymphocytes by endothelial cells.</a> European journal of immunology. 39 (1), 113-125 (2009).</li><li>McGettrick, H. M., Hunter, K., Moss, P. a., Buckley, C. D., Rainger, G. E., Nash, G. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Direct+observations+of+the+kinetics+of+migrating+T+cells+suggest+active+retention+by+endothelial+cells+with+continual+bidirectional+migration.">Direct observations of the kinetics of migrating T cells suggest active retention by endothelial cells with continual bidirectional migration.</a> Journal of leukocyte biology. 85 (1), 98-107 (2009).</li><li>McGettrick, H. M., Buckley, C. D., Filer, A., Rainger, G. E., Nash, G. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Stromal+cells+differentially+regulate+neutrophil+and+lymphocyte+recruitment+through+the+endothelium.">Stromal cells differentially regulate neutrophil and lymphocyte recruitment through the endothelium.</a> Immunology. 131 (3), 357-370 (2010).</li><li>Tull, S. P., Yates, C. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Omega-3+Fatty+acids+and+inflammation:+novel+interactions+reveal+a+new+step+in+neutrophil+recruitment.">Omega-3 Fatty acids and inflammation: novel interactions reveal a new step in neutrophil recruitment.</a> PLoS biology. 7 (8), e1000177 (2009).</li><li>Ahmed, S. R., McGettrick, H. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Prostaglandin+D2+regulates+CD4++memory+T+cell+trafficking+across+blood+vascular+endothelium+and+primes+these+cells+for+clearance+across+lymphatic+endothelium.">Prostaglandin D2 regulates CD4+ memory T cell trafficking across blood vascular endothelium and primes these cells for clearance across lymphatic endothelium.</a> Journal of immunology. 187 (3), 1432-1439 (2011).</li><li>Bradfield, P. F., Amft, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rheumatoid+fibroblast-like+synoviocytes+overexpress+the+chemokine+stromal+cell-derived+factor+1+(CXCL12),+which+supports+distinct+patterns+and+rates+of+CD4++and+CD8++T+cell+migration+within+synovial+tissue.">Rheumatoid fibroblast-like synoviocytes overexpress the chemokine stromal cell-derived factor 1 (CXCL12), which supports distinct patterns and rates of CD4+ and CD8+ T cell migration within synovial tissue.</a> Arthritis and rheumatism. 48 (9), 2472-2482 (2003).</li><li>Filer, A., Parsonage, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differential+survival+of+leukocyte+subsets+mediated+by+synovial,+bone+marrow,+and+skin+fibroblasts:+site-specific+versus+activation-dependent+survival+of+T+cells+and+neutrophils.">Differential survival of leukocyte subsets mediated by synovial, bone marrow, and skin fibroblasts: site-specific versus activation-dependent survival of T cells and neutrophils.</a> Arthritis and rheumatism. 54 (7), 2096-2108 (2006).</li><li>Lally, F., Smith, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+novel+mechanism+of+neutrophil+recruitment+in+a+coculture+model+of+the+rheumatoid+synovium.">A novel mechanism of neutrophil recruitment in a coculture model of the rheumatoid synovium.</a> Arthritis and rheumatism. 52 (11), 3460-3490 (2005).</li><li>Chakravorty, S. J., McGettrick, H. M., Butler, L. M., Buckley, C. D., Rainger, G. E., Nash, G. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+in+vitro.+model+for+analysing+neutrophil+migration+into+and+away+from+the+sub-endothelial+space:+Roles+of+flow+and+CD31.">An in vitro. model for analysing neutrophil migration into and away from the sub-endothelial space: Roles of flow and CD31.</a> Biorheology. 43 (1), 71-82 (2006).</li><li>Rainger, G. E., Nash, G. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cellular+Pathology+of+Atherosclerosis+Smooth+Muscle+Cells+Prime+Cocultured+Endothelial+Cells+for+Enhanced+Leukocyte+Adhesion.">Cellular Pathology of Atherosclerosis Smooth Muscle Cells Prime Cocultured Endothelial Cells for Enhanced Leukocyte Adhesion.</a> Circulation Research. 88 (6), 615-622 (2001).</li><li>Kuravi, S. J., McGettrick, H. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Podocytes+regulate+neutrophil+recruitment+by+glomerular+endothelial+cells+via+IL-6-mediated+crosstalk.">Podocytes regulate neutrophil recruitment by glomerular endothelial cells via IL-6-mediated crosstalk.</a> Journal of immunology. 193 (1), 234-243 (2004).</li><li>Parsonage, G., Filer, A. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+stromal+address+code+defined+by+fibroblasts.">A stromal address code defined by fibroblasts.</a> Trends in immunology. 26 (3), 150-156 (2005).</li><li>Luu, N. T., McGettrick, H. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Crosstalk+between+mesenchymal+stem+cells+and+endothelial+cells+leads+to+downregulation+of+cytokine-induced+leukocyte+recruitment.">Crosstalk between mesenchymal stem cells and endothelial cells leads to downregulation of cytokine-induced leukocyte recruitment.</a> Stem cells. 31 (12), 2690-2702 (2013).</li><li>Bevilacqua, M. P., Nelson, R. M., Mannori, G., Cecconi, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Endothelial-leukocyte+adhesion+molecules+in+human+disease.">Endothelial-leukocyte adhesion molecules in human disease.</a> Annual review of medicine. 45, 361-378 (1994).</li><li>Stanness, K. A., Beatty, P. G., Ochs, H. D., Harlan, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+endothelial+cell+surface+factor(s)+induced+in+vitro.">An endothelial cell surface factor(s) induced in vitro.</a> 136 (12), 4548-4553 (1986).</li><li>Burton, V. J., Butler, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Delay+of+migrating+leukocytes+by+the+basement+membrane+deposited+by+endothelial+cells+in+long-term+culture.">Delay of migrating leukocytes by the basement membrane deposited by endothelial cells in long-term culture.</a> Experimental cell research. 317 (3), 276-292 (2011).</li><li>Luu, N. T., Rainger, G. E., Buckley, C. D., Nash, G. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CD31+Regulates+Direction+and+Rate+of+Neutrophil+Migration+over+and+under+Endothelial+Cells.">CD31 Regulates Direction and Rate of Neutrophil Migration over and under Endothelial Cells.</a> Journal of Vascular Research. 40 (5), 467-479 (2003).</li><li>McGettrick, H. M., Buckley, C. D., Ed Rainger, G., Nash, G. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Influence+of+stromal+cells+on+lymphocyte+adhesion+and+migration+on+endothelial+cells.">Influence of stromal cells on lymphocyte adhesion and migration on endothelial cells.</a> Methods in molecular biology. 616, 49-68 (2010).</li><li>Butler, L. M., McGettrick, H. M., Nash, G. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Static+and+dynamic+assays+of+cell+adhesion+relevant+to+the+vasculature.">Static and dynamic assays of cell adhesion relevant to the vasculature.</a> Methods in molecular biology. 467, 211-228 (2009).</li><li>Jeffery, H. C., Buckley, C. D., Moss, P., Rainger, G. E., Nash, G. B., McGettrick, H. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Analysis+of+the+effects+of+stromal+cells+on+the+migration+of+lymphocytes+into+and+through+inflamed+tissue+using+3-D+culture+models.">Analysis of the effects of stromal cells on the migration of lymphocytes into and through inflamed tissue using 3-D culture models.</a> Journal of immunological methods. 400-401, 45-57 (2013).</li></ol>

Hier beschreiben wir zwei in vitro &quot;vaskuläre&quot; Modelle für die Untersuchung der Rekrutierung von zirkulierenden Neutrophilen durch entzündete Endothel. Ein wesentlicher Vorteil dieser Modelle ist die Fähigkeit, jeden Schritt in der Leukozytenadhäsion Kaskade zu analysieren, wie es in vivo auftreten. Wir haben bereits festgestellt, eine Dosis-abhängige Zunahme der Neutrophilen-Adhäsion an und Transmigration durch TNF-stimulierte EC 9,29. Wir beschreiben auch, wie die beiden M...

Die Entzündung ist eine schützende Immunantwort gegen mikrobielle Infektionen oder Gewebeverletzung, die strenge Regulierung von Leukozyten-Eingangs- und Ausgangs aus dem entzündeten Gewebe benötigt, um die Auflösung 1,2 erlauben. Übersprechen zwischen Endothelzellen (EC), dass Leitungsblutgefäße, zirkulierenden Leukozyten und gewebe Wohnsitz Stromazellen ist für die Koordinierung dieses Prozesses 3. , Unkontrollierte Rekrutierung von Leukozyten und deren unwirksam Freiheit zu untermauern jedoch die Entwicklung von chronischen Entzündungskrankheiten 4. Unser gegenwärtiges Verständnis der Rekrutierung von Leukozyten in Gesundheit und Krankheit ist unvollständig und robustere Modelle sind erforderlich, um diesen Prozess zu untersuchen. Die Mechanismen, die die Unterstützung der Rekrutierung von Leukozyten aus Blut durch Gefäß EG in post Venolen sind gut beschrieben 1,2,5 worden. Zirkulierende Leukozyten werden von spezialisierten Rezeptoren (zB VCAM-1, E-Selektin, P-Selektin) erfasst dieauf entzündete Endothel hochreguliert. Diese transienten Interaktionen ermöglichen Leukozyten mit Oberfläche gebunden Chemokinen und Lipid abgeleiteten Mediatoren (entweder endothelialen oder Stroma Ursprungs), die Integrine durch Leukozyten 6- 11 ausgedrückt aktivieren interagieren. Dies wiederum stabilisiert die Haftung und Antriebe Migration über das Endothelium in das Gewebe 12 bis 15. Im Gewebe rekrutiert Leukozyten zu Stroma stammenden Mittel, die ihre Beweglichkeit, Funktion und das Überleben 16,17 beeinflussen unterzogen. Immer deutlicher, deutet stark darauf hin, dass die Signale in jeder Phase der Rekrutierung von Leukozyten Bedingungen für die nächste erhalten. Jedoch bleibt das Verständnis der Leukozytenrekrutierung unvollständig und sehr wenig über die Komponenten Formgebungs Leukozytenbewegung im Gewebe bekannt. In Birmingham haben wir mehrere in vitro &quot;vaskuläre&quot; Modelle entwickelt, um die Rekrutierung von Leukozyten aus studierenfließen 9,18,19. Wir verstehen jetzt, dass Gefäß EG fungieren als unmittelbare Regulatoren der Rekrutierung von Leukozyten reagieren auf Veränderungen in ihrer lokalen Mikroumgebung. Insbesondere können gewebe Wohnsitz Stromazellen aktiv reguliert die Entzündungsreaktion, teilweise im Gespräch mit benachbarten Gefäß EG, ihre Rolle bei der Einstellung 3 beeinflussen. Wir haben zuvor gezeigt, dass verschiedene Stromazellen modulieren die Fähigkeit von EG-Adhäsion und Migration von Leukozyten in einer gewebespezifischen Art und Weise zu unterstützen, und dass diese Effekte sich veränderten chronischer Erkrankungen 13,16,20,21. So Stromazellen etablieren Gewebe &quot;Adresse-Codes&quot;, die den Kontext der einzelnen Entzündungsreaktion 22 zu definieren. In letzter Zeit haben wir gezeigt, dass aus dem Knochenmark MSC (BMMSC) potent herunterregulieren die Reaktion der EG auf Zytokine, was zu einer Verringerung in der Rekrutierung von Neutrophilen und Lymphozyten beiden 23. Die Mechanismen govErning Rekrutierung aufgeklärt in vitro-Assays wurden weitgehend verwendet, das eine Zelltyp (zB EG) oder Protein isoliert. Allerdings sind diese Studien nicht berücksichtigt die Auswirkungen der lokalen Gewebeumgebung (dh die Anwesenheit von Stromazellen) auf Rekrutierung von Leukozyten und deren anschließende Migration in das Gewebe. Hier beschreiben wir zwei flussbasierte Verfahren, bei denen Stromazellen, insbesondere mesenchymale Stammzellen (MSC), co-kultiviert, das mit EC 23. Solche Modelle ermöglichen es uns, die Wirkung von Stromazellen auf endothelialen Reaktionen, insbesondere ihre Fähigkeit zur Rekrutierung von Leukozyten aus Fluss unterstützen zu untersuchen.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" >
	<tbody>
		<tr >
			<td >Collagenase Type Ia</td>
			<td >Sigma</td>
			<td>C2674</td>
			<td>Dilute in 10ml PBS to get a final concentration of 10mg/ml. Store at -20&#176;C in 1ml aliquots.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Dulbecco&#39;s PBS</td>
			<td >Sigma</td>
			<td >D8662</td>
			<td>With calcium and magnesium chloride. Keep sterile and store at room temperature.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >1X Medium M199</td>
			<td >Gibco</td>
			<td >31150-022</td>
			<td>Warm in 37 &#176;C water bath before use.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Gentamicin sulphate</td>
			<td >Sigma</td>
			<td >G1397</td>
			<td>Store at 4&#176;C. Add to M199 500ml bottle.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Human epidermal growth factor</td>
			<td >Sigma</td>
			<td >E9644</td>
			<td>Store at -20&#176;C in 10&#181;l aliquots.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Fetal calf serum (FCS)</td>
			<td >Sigma</td>
			<td >F9665</td>
			<td >FCS must be batch tested to ensure the growth and viability of isolated EC. Heat inactivate at 56&#176;C. Store in 10ml aliquots at -20&#176;C.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Amphotericin B</td>
			<td >Gibco</td>
			<td >15290-026</td>
			<td >Potent and becomes toxic within a week so fresh complete HUVEC medium must be made up every week. Store at -20&#176;C in 1ml aliquots.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Hydrocortisone</td>
			<td >Sigma</td>
			<td >H0135</td>
			<td>Stock is in ethanol. Store at -20&#176;C in 10&#181;l aliquots.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Collagenase Type II</td>
			<td >Sigma</td>
			<td >C6885</td>
			<td>Dilute stock in PBS to a final concentration of 100mg/ml. Store at -20&#176;C in 100&#181;l aliquots.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Hyaluronidase</td>
			<td >Sigma</td>
			<td >H3631</td>
			<td>Dilute stock in PBS to a final concentration of 20,000U/ml. Store at -20&#176;C in 100&#181;l aliquots.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >100&#181;m cell strainer for 50ml centifuge tube</td>
			<td >Scientific Lab Supplies (SLS)</td>
			<td >352360</td>
			<td >Other commercially available cell strainers (e.g. Greiner bio-one) can also be used.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >DMEM low glucose</td>
			<td >Biosera</td>
			<td >LM-D1102/500</td>
			<td>Warm in 37 &#176;C water bath before use.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Penicillin/Streptomycin mix</td>
			<td >Sigma</td>
			<td >P4333</td>
			<td>Store at -20&#176;C in 1ml aliquots.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >25cm2 tissue culture flask</td>
			<td >SLS</td>
			<td >353109</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >75cm2 tissue culture flask</td>
			<td >SLS</td>
			<td >353136</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Bone marrow mesenchymal stem cells vial</td>
			<td >Lonza</td>
			<td >PT-2501</td>
			<td >Store in liquid nitrogen upon arrival. Cells are at passage 2 upon arrival but are designated passage 0. Exapand to passage 3 and store in liquid nitrogen for later use.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Mesenchymal stem cell growth medium (MSCGM)</td>
			<td >Lonza</td>
			<td >PT-3001</td>
			<td>Warm in 37 &#176;C water bath before use. For Cell Tracker Green staining use medium without FCS.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >EDTA (0.02%) solution</td>
			<td >Sigma</td>
			<td >E8008</td>
			<td>Store at 4&#176;C. Warm in 37&#176;C water bath before use.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Trypsin solution</td>
			<td >Sigma</td>
			<td >T4424</td>
			<td>Store at -20&#176;C in 2ml aliquots. Thaw at room temperature and use immediately.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Cryovials</td>
			<td >Greiner bio-one</td>
			<td>2019-02</td>
			<td>Keep on ice before adding before adding cell suspension.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Mr. Frosty Freezing Container</td>
			<td >Nalgene</td>
			<td >5100-0001</td>
			<td >Store at room temperature. When adding cryovials with cells store at -80&#176;C for 24h before transfrring cells to liquid nitrogen.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Ibidi u-Slide VI (0.4), T/C treated, sterile</td>
			<td >Ibidi</td>
			<td >IB-80606</td>
			<td >Alternative models include glass capillaries, Cellix Biochips (www.cellixltd.com), BioFlux Plates (www.fluxionbio.com/bioflux/) and GlycoTech parallel plate flow chambers (http://www.glycotech.com/apparatus/parallel.html).</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Cell tracker green dye</td>
			<td >Life technologies</td>
			<td >C2925</td>
			<td>Store in 5&#181;l aliquots at -20&#176;C. Dilute in 5ml prewarmed (at 37&#176;C) MSCGM.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Cell counting chambers</td>
			<td >Nexcelom</td>
			<td >SD-100</td>
			<td>Alternatively a haemocytometer can be used.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Cellometer auto T4 cell counter</td>
			<td >Nexcelom</td>
			<td >Auto T4-203-0238</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Tumor necrosis factor &#945; (TNF&#945;)</td>
			<td >R&#38;D Systems</td>
			<td >210-TA-100</td>
			<td>Dilute stock in PBS to a final concentration of 100,000U/ml. Store at -80&#176;C in 10&#181;l aliquots.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >6-well, 0.4&#181;m PET Transwell filters</td>
			<td >SLS</td>
			<td >353090</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >K2-EDTA in 10ml tubes</td>
			<td >Sarstedt</td>
			<td ></td>
			<td>Store at room temperature.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Histopaque 1119</td>
			<td >Sigma</td>
			<td >11191</td>
			<td>Store at 4&#176;C. Warm to room temperature before use.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Histopaque 1077</td>
			<td >Sigma</td>
			<td >10771</td>
			<td>Store at 4&#176;C. Warm to room temperature before use.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >10ml round bottomed tube</td>
			<td >Appleton Woods</td>
			<td >SC211 142 AS</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >7.5% BSA Fraction V solution</td>
			<td >Life technologies</td>
			<td >15260-037</td>
			<td>Store at 4&#176;C.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >20ml Plastipak syringes</td>
			<td >BD falcon</td>
			<td >300613</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >5ml Plastipak syringes</td>
			<td >BD falcon</td>
			<td >302187</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >2ml Plastipak syringes</td>
			<td >BD falcon</td>
			<td >300185</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >3M hypo-allergenic surgical tape 9m x 2.5cm</td>
			<td >Micropore</td>
			<td >1530-1</td>
			<td>Use to secure the syringe tap onto the wall of the perspex chamber.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Silicon rubber tubing, internal diameter/external diameter (ID/OD) of 1/3mm (thin tubing)</td>
			<td >Fisher Scientific</td>
			<td >FB68854</td>
			<td >Cut silicon tubing to the appropriate size. All tubing leading directly to the electronic microvalve must be thin.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Silicon rubber tubing ID/OD of 2/4mm (thick tubing)</td>
			<td >Fisher Scientific</td>
			<td >FB68855</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Portex Blue Line Manometer tubing</td>
			<td>Smiths</td>
			<td >200/495/200</td>
			<td>Tubing leading to the syringe pump.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >3-way stopcock</td>
			<td >BOC Ohmeda AB</td>
			<td ></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Glass 50ml syringe for pump</td>
			<td >Popper Micromate</td>
			<td >550962</td>
			<td>Must be primed prior to use by removing any air bubbles.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Glass coverslip</td>
			<td >Raymond A Lamb</td>
			<td ></td>
			<td>26x76mm coverslips made to order. Lot number 2440980.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Parafilm gasket</td>
			<td >American National Can Company</td>
			<td ></td>
			<td >Cut a 26x76mm piece of parafilm using an aluminium template and cut a 20x4mm slot into it using a scalpel 10a. Gasket thickness is approximately 133&#181;m.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Two perspex parallel plates</td>
			<td >Wolfson Applied Technology Laboratory</td>
			<td ></td>
			<td >Specially designed chamber consisting of parallel plates held together by 8 screws. The lower plate has a viewing slot cut out in the middle and a shallow recess milled to allow space for the coverslip, filter and gasket. The upper perspex plate has an inlet and outlet hole positioned over the flow channel.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Electronic 3-way microvalve with min. dead space</td>
			<td >Lee Products Ltd.</td>
			<td >LFYA1226032H</td>
			<td>Electronically connected to a 12 volt DC power supply.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Syringe pump for infusion/withdrawal (PHD2000)</td>
			<td >Harvard Apparatus</td>
			<td >70-2001</td>
			<td>Set the diameter to 29mm and refill (flow) rate.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >L-shaped connector</td>
			<td >Labhut</td>
			<td >LE876</td>
			<td>To attach to the inlet and outlet ports onto the Ibidi microslide channel.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Video camera</td>
			<td >Qimaging</td>
			<td >01-QIC-F-M-12-C</td>
			<td>Connected to a computer which enables digitall videos to be recorded.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Image-Pro Plus 7.0</td>
			<td >Media Cybernetics</td>
			<td >41N70000-61592</td>
			<td >For data analysis. Manually tag cells displaying the different behaviors. Track cells for analysis of rolling and migration velocities.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td ></td>
			<td ></td>
			<td ></td>
			<td>Refer to product datasheets for details on hazards of using the reagents described here.</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

analyzing the effects of stromal cells on the recruitment of leukocytes from flow

Stromazellen wird über die Einstellung der zirkulierenden Leukozyten bei Entzündungen durch Übersprechen mit benachbarten Endothelzellen. Hier beschreiben wir zwei in vitro &quot;vaskuläre&quot; Modelle für die Untersuchung der Rekrutierung von zirkulierenden Neutrophilen von Flow von entzündeten Endothelzellen. Ein wesentlicher Vorteil dieser Modelle ist die Fähigkeit, jeden Schritt in der Leukozytenadhäsion Kaskade zu analysieren, wie es in vivo auftreten. Wir beschreiben auch, wie die beiden Modelle angepasst werden, um die Rolle von Stromazellen, in diesem Fall von mesenchymalen Stammzellen (MSC) zu untersuchen, bei der Regulierung der Leukozytenrekrutierung werden. Primäre Endothelzellen wurden allein oder zusammen mit menschlicher MSC in direktem Kontakt auf Ibidi Mikroglaschen oder auf gegenüberliegenden Seiten eines Transwell-Filter für 24 h kultiviert. Die Kulturen wurden mit den Tumornekrosefaktor alpha (TNF &amp; agr;) für 4 Stunden stimuliert und in eine flussbasierte Adhäsionsassay eingebaut. Bolus von Neutrophilen perfundiertüber das Endothel für 4 min. Die Erfassung des fließenden Neutrophilen und ihre Wechselwirkungen mit dem Endothel wurde durch Phasenkontrastmikroskopie visualisiert. In beiden Modellen erhöhte Zytokin-Stimulation endothelialer Rekrutierung von Neutrophilen fließt in einer Dosis-abhängige Weise. Analyse des Verhaltens der rekrutierten Neutrophile zeigten eine dosisabhängige Abnahme der Walzen und eine Dosis-abhängige Zunahme der Transmigration durch das Endothel. Bei Co-Kultur, unterdrückt MSC neutrophile Adhäsion an TNF-stimulierte Endothelzellen. Unsere flussbasierten Haftmodelle imitieren die ersten Phasen der Rekrutierung von Leukozyten aus dem Kreislauf. Neben Leukozyten, können sie verwendet werden, um die Einstellung von anderen Zelltypen, wie beispielsweise therapeutisch verabreicht MSC oder zirkulierenden Tumorzellen zu untersuchen. Unsere mehrschichtigen Co-Kulturmodelle haben gezeigt, dass MSC kommunizieren Endothel ihre Reaktion auf proinflammatorische Cytokine modifizieren altering die Rekrutierung von Neutrophilen. Weitere Untersuchungen mit Hilfe solcher Modelle ist erforderlich, um zu verstehen, wie Stromazellen aus verschiedenen Geweben und Bedingungen (entzündliche Erkrankungen oder Krebs) Einfluss auf die Rekrutierung von Leukozyten während der Entzündung.

Zunächst untersuchten wir den Effekt der Stimulierung mit TNF EG über die Rekrutierung von Neutrophilen aus Fluss mit dem Ibidi Mikroobjektmodell (Abschnitt 7-9). In Abwesenheit von TNF &amp; alpha;, wenig oder gar keine Neutrophilen an der endothelialen Monoschicht anhaftet (2A). Dies war zu erwarten, da nicht behandelte / Ruhe EG nicht über die erforderliche Adhäsionsmoleküle (Selektine) oder Chemokine Ausdruck zu unterstützen verbindlich 25,26. Im Gegensatz dazu deut...

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Analyzing the Effects of Stromal Cells on the Recruitment of Leukocytes from Flow

Die Fähigkeit von entzündetem Endothel Leukozyten aus Strömungs Rekrutierung von mesenchymalen Stromazellen geregelt. Wir beschreiben zwei in vitro Modelle mit primären humanen Zellen, die verwendet werden können, um neutrophilen Rekrutierung von Flow zu bewerten und zu prüfen, welche Rolle die mesenchymalen Stromazellen bei der Regulierung dieses Prozesses spielen.

Analyse der Auswirkungen von Stromazellen an der Rekrutierung von Leukozyten von Flow

Stromal cells regulate the recruitment of circulating leukocytes during inflammation through cross-talk with neighboring endothelial cells. Here we ...

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Isolation and Analysis of Brain-sequestered Leukocytes from Plasmodium berghei ANKA-infected Mice

Isolation and Analysis of Brain-sequestered Leukocytes from Plasmodium berghei ANKA-infected Mice

Isolierung und Analyse von Brain-sequestered Leukozyten aus<em&gt; Plasmodium berghei</em&gt; ANKA-infizierte Mäuse

We describe a method for isolation and  characterization of adherent inflammatory cells from brain blood vessels of P. berghei ANKA-infected mice. ...

Forschung

Immunologie und Infektion

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Immune tolerance in pregnancy requires that the immune system of the mother undergoes distinctive changes in order to accept and nurture the developing ...

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Biofilms consist of groups of bacteria encased in a self-secreted matrix. They play an important role in industrial contamination as well as in the ...

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The recruitment of leukocytes upon injury or inflammation to sites of injury or tissue damage has been investigated during recent decades and has resulted ...