Name: establishment and characterization of uti and cauti in a mouse model
Uploaded: 2015-06-23T15:00:00
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この作業のための資金はORWH SCORのP50のDK064540、RO1 DK 051406、RO1 AI 108749から01、F32 DK 101171、およびF32 DK 104516から01によって提供されました。

倫理文：ワシントン大学動物実験委員会は、2013年1月11日に承認され、2016年1月11日に満了したプロトコル番号20120216の一部としてすべてのマウスの感染と手順を承認しました。動物の全体的なケアが国家研究評議会と米国農務省動物ケアリソースガイドから実験動物の管理と使用に関するガイドと一致しました。安楽死手順はと一致している「安楽死動物の2013年版のAVMAガイドライン」。 <p...

合併症のない社会は、UTIは毎年46万人のいくつかのプライマリケアの訪問を占める一般的であり、コストのかかる感染症で取得しました。また、CAUTIsはもはやCAUTI 45院内に起因する治療の追加費用のためのプロバイダを払い戻すメディケアおよびメディケイド·サービスのセンターとしての医療サービス提供者に非常に高価ななっていない一般的なヘルスケア取得感染していま...

An erratum was issued for: <a href="https://www.jove.com/video/52892/establishment-and-characterization-of-uti-and-cauti-in-a-mouse-model">Establishment and Characterization of UTI and CAUTI in a Mouse Model</a>. The Protocol section has been updated.
The ethics statement has been updated from:
Ethics statement: The Washington University Animal Studies Committee approved all mouse infections and procedures as part of protocol number 20120216, which was approved 01/11/2013 and expires 01/11/2016. Overall care of the animals was consistent with The guide for the Care and Use of Laboratory Animals from the National Research Council and the USDA Animal Care Resource Guide. Euthanasia procedures are consistent with the &#8220;AVMA guidelines for the Euthanasia of Animals 2013 edition.&#8221;
to:
Ethics statement: The Washington University Animal Studies Committee approved all mouse infections and procedures as part of protocol number 20150226, which expires 12/10/2018. Overall care of the animals was consistent with The Guide for the Care and Use of Laboratory Animals from the National Research Council and the USDA Animal Care Resource Guide. Euthanasia procedures are consistent with the &#8220;AVMA guidelines for the Euthanasia of Animals 2013 edition.&#8221;
Step 3 has been updated from:
3. Bacterial Inoculation
<ol>
	<li>Clean the workstation with 70% ethanol and cover area with absorbent paper (or use sterile flow hood).</li>
	<li>Draw up to 0.9 ml of the prepared bacterial inoculum into a 1 ml (TB) syringe (remove air bubbles). Attach a prepared sterile inoculation needle with PE10 tubing, onto the syringe containing the inoculum, then sterilely trim the polyethylene tubing. 
	NOTE: Leave 1 mm of tubing above the tip of the needle to avoid puncturing the bladder.</li>
	<li>Cut a 1 inch square piece of parafilm and put a dab of surgical lubricant (approximately the size of a dime) on top.</li>
	<li>Anesthetize female C3H/HeN mice by putting them in a 32 ounce glass jar containing a tea-infuser ball with cotton balls soaked with 3 ml of isoflurane or vaporizer chamber (following manufactures protocol) until unconscious but still breathing normally (1 breath/sec). 
	NOTE: Some IACUC committees do not approve the use of a jar or vaporizer. Please follow the indication of the IACUC committee of your institution. 
	NOTE: If glass jar with tea-ball and/or nose cone with isoflurane-soakd cotton balls are used, the animal must be carefully observed to avoid anesthetic overdose and death. The advantage of using a vaporizer and anesthesia chamber is that it provides controlled isoflurane administration that avoids accidental overdoses. CAUTION: Isoflurane is an inhalation anesthetic. Use in a well-ventilated area and minimize inhalation.</li>
	<li>Remove the mouse from the jar/vaporizer and place it on its back on a paper towel and spread the legs.</li>
	<li>Cover the nose of the mouse with a nose cone (a tube connected to the vaporizer that provides a controlled isoflurance dose that comes equipped on some vaporizer units) or 50 ml conical tube with a cotton ball containing a small amount (approximately 1-2 ml) of isoflurane.</li>
	<li>Gently palpitate the bladder to induce urination and ensure a voided bladder. Wipe the periurethral area with 100% ethanol wipe. Dab the inoculation needle/syringe, point first, into the surgical lubricant.</li>
	<li>Inoculate each mouse with 50 &#181;l of the bacteria solution by inserting the inoculation needle transurethrally, approximately 12 mm, and pressing down on the syringe plunger gently to dispense the inoculum into the bladder gently (10 &#181;l/sec). Remove the inoculation needle from the mouse. 
	NOTE: Immediate return of inoculum at the urethral opening when beginning to inoculate indicates improper or incomplete insertion of the needle.</li>
	<li>Remove the mouse from nose cone and return it to its cage. Repeat steps 3.3-3.8 for each mouse. When/if switching inoculum conditions/strains, dispose of the syringe and inoculation needle in an approved sharps container and start again step 3.2.&#160;&#160; 
	NOTE: Inoculation with uropathogenic organisms generally does not cause severe pain symptoms. However, in rare instances, administering large doses of pathogens may cause fever, reduction in food and water intake and abnormal behavior. Animal health should be monitored throughout the experiment. If overt pain symptoms are notice, an analgesic, such as Buprenorphine (0.05&#8722;0.1 mg/kg given subcutaneously), can be applied. Procedures should be in accordance with each institution&#8217;s IACUC.</li>
</ol>
to:
3. Bacterial Inoculation
<ol>
	<li>Clean the workstation with 70% ethanol and cover area with absorbent paper (or use sterile flow hood).</li>
	<li>Draw up to 0.9 ml of the prepared bacterial inoculum into a 1 ml (TB) syringe (remove air bubbles). Attach a prepared sterile inoculation needle with PE10 tubing, onto the syringe containing the inoculum, then sterilely trim the polyethylene tubing. 
	NOTE: Leave 1 mm of tubing above the tip of the needle to avoid puncturing the bladder.</li>
	<li>Cut a 1 inch square piece of parafilm and put a dab of surgical lubricant (approximately the size of a dime) on top.</li>
	<li>Anesthetize female C3H/HeN mice by putting them in a vaporizer chamber (following manufactures protocol) until unconscious but still breathing normally (1 breath/sec). 
	NOTE: Some IACUC committees do not approve the use of a vaporizer. Please follow the indication of the IACUC committee of your institution. 
	CAUTION: Isoflurane is an inhalation anesthetic. Use in a well-ventilated area and minimize inhalation.</li>
	<li>Remove the mouse from the vaporizer and place it on its back on a paper towel and spread the legs.</li>
	<li>Cover the nose of the mouse with a nose cone (a tube connected to the vaporizer that provides a controlled isoflurance dose that comes equipped on some vaporizer units) to maintain anesthetization.</li>
	<li>Gently palpitate the bladder to induce urination and ensure a voided bladder. Wipe the periurethral area with 100% ethanol wipe. Dab the inoculation needle/syringe, point first, into the surgical lubricant.</li>
	<li>Inoculate each mouse with 50 &#181;l of the bacteria solution by inserting the inoculation needle transurethrally, approximately 12 mm, and pressing down on the syringe plunger gently to dispense the inoculum into the bladder gently (10 &#181;l/sec). Remove the inoculation needle from the mouse. 
	NOTE: Immediate return of inoculum at the urethral opening when beginning to inoculate indicates improper or incomplete insertion of the needle.</li>
	<li>Remove the mouse from nose cone and return it to its cage. Repeat steps 3.3-3.8 for each mouse. When/if switching inoculum conditions/strains, dispose of the syringe and inoculation needle in an approved sharps container and start again step 3.2.&#160;&#160; 
	NOTE: Inoculation with uropathogenic organisms generally does not cause severe pain symptoms. However, in rare instances, administering large doses of pathogens may cause fever, reduction in food and water intake and abnormal behavior. Animal health should be monitored throughout the experiment. If overt pain symptoms are notice, an analgesic, such as Buprenorphine (0.05&#8722;0.1 mg/kg given subcutaneously), can be applied. Procedures should be in accordance with each institution&#8217;s IACUC.</li>
</ol>

An erratum was issued for: <a href="https://www.jove.com/video/52892/establishment-and-characterization-of-uti-and-cauti-in-a-mouse-model">Establishment and Characterization of UTI and CAUTI in a Mouse Model</a>. The Protocol section has been updated.

Erratum: Establishment and Characterization of UTI and CAUTI in a Mouse Model

尿路感染症（UTI）の最も一般的な細菌感染症の一つであり、UTI取得し、取得、コミュニティと院内のメカニズムに基づいて、2つのカテゴリーに分けることができます。市中のUTIは、多くの場合、女性の約50％が一生の1に少なくとも一つのUTIを有することを示しているそうでなければ健康な女性との研究で発生します。さらに、再発の主要な問題です。初期の急性感染症を持っている女性は、適切な抗生物質治療にもかかわらず、6カ月以内に第二の感染症を有する25〜40％の確率を持っており、多くの女性が頻繁に再発2を持ち続けます。これらの感染症の原因菌も3-6ますます抗生物質耐性をさらに交絡治療プロトコルになっています。 UTIは、疾患の影響と有病率を強調し、米国のヘルスケア関連費用が約25億ドルで数百万人を毎年影響を及ぼし1,7 .Nosocomialは主に、留置カテーテルなどの異物の存在に関連しているのUTIを取得しました。カテーテル関連尿路感染症（CAUTI）は、このような感染症の8〜70〜80％を占め、UTI取得し、最も一般的な院内のまま。また、CAUTIを増加罹患率と死亡率に関連付けられている、それが二次血流感染9の最も一般的な原因です。 UPEC関連するコミュニティは尿路感染を取得し、性交中に機械的操作を介して消化管における貯留層から膀胱への細菌の導入によって引き起こされることが異なるホスト·ニッチ10との間に不衛生または他の微生物個体群動態を考えられています。一旦膀胱内部、UPECは、カプセル、鉄獲得システム、毒素、病原性プラスミドのtRNA、病原性島および病因に役割を果たすことが示されているコロニー形成因子を含む多数の病原性因子を使用します&lt;SUP&gt; 11-14。 UPECの定着の確立に重要な、UPECは、接着剤シャペロンアッシャー経路の複数のタイプの立体特異性15と受容体を認識する（CUP）線毛をコードします。 FimHアドヘシンでチップソー1型線毛は、UPECで表現され、マンノシルウロプラキン16とα-1、ヒトおよびマウスの膀胱18の内腔表面上に発現されたβ-3インテグリン17を結合しています。これらのFimH媒介性の相互作用は、細菌のコロニー形成および表在上皮細胞19,20の侵入を容易にします。一旦細胞の内部に、UPECは、単一の細菌が急速に成熟すると、〜10 4の細菌21を含めることができ、細胞内細菌群集（IBC）を形成するために分割することができる細胞質に脱出することができます。 IBCの形成は、少なくとも6つの異なるマウス系統において実証されている、C3H / HEN、C3H / HEJ、C57BL / 6、CBA、FVB / NJおよびBALB / c、および異なるUPEの多種多様なC株および他の腸内細菌科22-24。しかし、IBC形成の時間的、空間的な違いは、マウスの背景と感染UPEC株に応じて変えることができます。原型UPECはUTI89またはCFT073の株に感染したC3H / HeNマウスでは、IBCの形成は、早ければ3 HPI（時間後の感染症）のような細菌の小さなバイオマスとして可視化することができます。このコミュニティは拡大し続けており、棒状の細菌が、最終分化表面的な傘の細胞の細胞質領域の大きな割合を占めているときに、開発の約6 HPIの「中間点」に達する同様の寸法を表示過半数と比較的同期した方法でこれらの初期のIBCSフォームおよび形態。 〜8 HPI桿菌からのIBCの変更中の細菌は形態を球菌します。 IBCSは、本質的に一時的です。したがって、細菌集団の継続的な拡大で12〜18 HPI結果からIBC成熟、細胞のWiのうち、それらのフィラメント化と分散が続きます隣接セル23に目以降の広がり。このように、IBCのニッチは、宿主免疫応答および抗生物質25から保護された環境の急速な細菌の増殖を可能にします。マウスで見られるUPEC感染の異なる段階は、ヒト22,26-28にUTIをモデル化するために使用することができる有益なツールとしてUTIのマウスモデルをサポートする、例えば、IBCSおよびフィラメンテーションのように、ヒトにおいて観察されます。 大多数の女性が一生の間にUTIを経験しているが、これらの感染症の結果は、無再発急性自己限定感染から、頻繁な再発性膀胱炎の範囲とすることができます。また、研究では、遺伝的要素がUTI感受性29に貢献を示唆し、UTIの強い家族発生を示しています。私たちは、診療所で見られる異なるUTIの成果は、近交系マウス系統30のうち、実験UPEC感染の異なる成果によりミラーリングすることができることを見出しました。例えば、C3H / HEN、CBA、DBA、およびC3H / HeOuJマウスは感染用量依存的に、永続的な、高力価の細菌（&gt; 10 4コロニー形成単位（CFU）/ ml）を、高力価の細菌によって特徴付けられる長期的な、慢性膀胱炎に、影響を受けやすいです犠牲に膀胱負担&gt; 4週間後に感染（WPI）、慢性炎症、および尿路上皮壊死。これらのマウスは、慢性膀胱炎の開発のためのバイオマーカーとして働く第24 HPI内のIL-6、G-CSF、KC、およびIL-5の上昇した血清レベルを示します。プラセボ研究は抗生物質治療31が与えられていない場合はUTIを経験した女性の大部分は、膀胱炎の最初の症状の後に数週間のために彼らの尿中の細菌の高いレベルを保持することが示されているように、これは正確に、何人かの女性にUTIの自然経過を表すことができます、32。また、C3H / HeNマウスを使用して、我々は慢性膀胱炎の歴史はその後の深刻な再発感染の重要な危険因子であることがわかりました。再発UTIは、最もSiでありますgnificant臨床UTIの症状およびC3H / HENマウスは現在、以前の曝露後に増加した素因を再現するだけで勉強したモデルです。第UTIの結果は、急性UPEC感染はほぼ週間以内に膀胱炎と細菌の解像度で、自己制限であるC57BL / 6マウスに再現されています。興味深いことに、このモデルでは、UPECは、容易に潜在的に人間33、34で同系統の再発UTIのための1つのメカニズムを説明する、アクティブUTIを再開するために休止状態から出現することが可能であるUPECから膀胱組織内の静止状態の細胞内貯蔵部を形成します。 UTIの感受性に遺伝的影響に加えて、膀胱へのカテーテルの導入は、非常に感染を有するだけでなく、感染症を引き起こすことができる細菌の範囲を増加させる可能性を増大させます。これは、人間の尿カテーテルは、組織学的を引き起こすことが実証されていると堅牢な炎症反応、剥離、粘膜固有層とsubmucusaの浮腫、尿路上皮間伐、および尿路上皮および腎臓35,36の粘膜病変をもたらす機械的ストレスに起因する膀胱内の免疫学的変化。さらに、カテーテルによりCAUTIを引き起こすために、いくつかの種によって利用環境を作り出す細菌の付着のための表面を提供します。 UPECは依然として主要な原因であるが、 エンテロコッカスフェカリスは、これらのCAUTI 37の15％を占めています。E.フェカリスは、深刻な健康問題38を装った、バンコマイシン耐性出現と抗生物質に対してますます耐性になってきている。E.フェカリスは、毒素やカテーテルおよび上皮38の両方に取り付けるために必要なアドヘシンを含む多数の病原性因子を有しています。尿カテーテルの間に、ホストは、尿路39,40における微生物付着性、乗算と普及に対して脆弱である。E. faecaLISは、膀胱に持続し、マウスCAUTIモデル41で再現された腎臓、に普及するための機構の一部として、カテーテル上のバイオフィルムを形成しています。最近、それは尿カテーテル挿入中に示されており、フィブリノーゲン（FG）は、炎症応答の一部として膀胱内に放出されます。 FGがコートカテーテル、膀胱内に蓄積し、 大腸菌のために不可欠ですフェカリスバイオフィルム形成、取付足場として機能します。 CAUTIのC57BL / 6マウスモデルでは、E.ことを発見しましたフェカリスバイオフィルムカテーテルに形成し、したがって膀胱内の持続性は、EBPの線毛、特にその先端付着EBPAに依存していました。我々はEBPAのN末端ドメインは、特にカテーテルを被覆FGに結合することがわかりました。さらに、それがすることが見出されたE.フェカリスは、このようにバイオフィルムの形成42を高め、感染の間に代謝物源としてのFgを利用しています。 マウスモデルは、アンダーに重要であることが証明されていますtandingならびにUTIとCAUTI 41の臨床症状を予測します。この記事では、膀胱炎UPECの接種材料の準備を実証UTI89およびC3H / HeNマウスの経尿道的接種を分離します。さらに、当社は、C57BL / 6マウスおよびEの接種にカテーテル挿入のためのプロトコルを示していますフェカリス OG1RF株。これらの技術の両方が、マウスにおいて一貫性と信頼性UTIやCAUTIにつながります。我々はまた、慢性または再発性膀胱炎の分析のための急性膀胱炎や尿収集中IBCの形成を観察するために使用される技術を表示します。 C3H / HeNマウスは、最初の細菌の侵入、IBCの形成、フィラメンテーションおよび慢性膀胱炎23,33,43の開発などUPECの病因の側面を研究するために使用されてきました。これらの病原性パラメータは、他のマウスの背景22,33の様々な研究されています。 CAUTIのために、C57BL / 6モデルは、その後の細菌共同で膀胱内に異物の注入を可能にします7日間維持することができlonizationは、感染41を投稿してください。これらのモデルは、UTIとメカニズムに対する宿主応答は、宿主応答を破壊するために、細菌の病原性メカニズムを評価するために有用で、その多くは、その後に再現し、または臨床的ヒト集団において観察されたています。

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0">
	<tbody>
		<tr>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Material for catheter and needle preparation:</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>30ga needles</td>
			<td>BD Precision Glide</td>
			<td>305106</td>
			<td>30Gx &#189; (0.3 mm x 13mm)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PE10 polyethylene tubing</td>
			<td>BD</td>
			<td>427400</td>
			<td>Inside diameter -0.011 in (0.28 mm); outside diameter &#8211; 0.024 in (0.61 mm)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>RenaSIL 025 platinum cured silicon tubing</td>
			<td>Braintree Scientific, Inc</td>
			<td>SIL 025</td>
			<td>inside diameter-0.012 x outside diameter 0.025, 25 ft coil</td>
		</tr>
		<tr>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Material for infections:</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isoflourane &#8211; Isothesia</td>
			<td>Butler Schein</td>
			<td>29405</td>
			<td>250 mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Clear Glass Straight-Sided Jar</td>
			<td>Kimble Chase</td>
			<td>5413289V 21</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stainless Steel Tea Infuser</td>
			<td>Schefs-Amazon</td>
			<td></td>
			<td>Premium Loose Leaf Tea Infuser By Schefs - Stainless Steel - Large Capacity -</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Non-sterile cotton balls</td>
			<td>Fisherbrand</td>
			<td>22-456-880</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>50 ml Falcon tubes</td>
			<td>VWR</td>
			<td>89039-660</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isotec 3 -vaporizer</td>
			<td>Ohmeda</td>
			<td>1224478</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ear punch</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>13-812-201</td>
			<td>(when necessary)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Betadine solution</td>
			<td>Betadine solution</td>
			<td></td>
			<td>10% Povidie-iodine topical solution</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Q-tips</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>22-037-924</td>
			<td>6 in</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Diapers for bench</td>
			<td>Fisherbrand</td>
			<td>14206 63</td>
			<td>Absorbent Underpads (20&#8221;X36&#8221;mats)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical lubricant</td>
			<td>Surgilube</td>
			<td>0281-0205-36</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dissecting scissor</td>
			<td>Fine Science tools, INC</td>
			<td>14084-08</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micro-Adson Forceps</td>
			<td>Fine Science tools, INC</td>
			<td>11018-12</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1 ml syringe</td>
			<td>BD</td>
			<td>309659</td>
			<td>Tuberculin slip tip</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Parafilm</td>
			<td>Bemis</td>
			<td>PM996</td>
			<td>4 in x 125 FT</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Eppendorf rack</td>
			<td>Fisherbrand</td>
			<td>05-541-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Eppendorf tubes</td>
			<td>MIDSCI</td>
			<td>AVX-T-17-C</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Harvesting catheters, bladders and kidneys:</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Homogenizer</td>
			<td>PRO Scientific INC</td>
			<td>Bio-Gen Pro 200</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>5 ml polypropylene round-bottom tube</td>
			<td>BD</td>
			<td>352063</td>
			<td>for organ homogenization</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Paper towel</td>
			<td>Georgia-Pacific</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ethanol</td>
			<td>Pharmco-AAPER</td>
			<td>11100020S</td>
			<td>200 proof</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Costar&#8482; Clear Polystyrene 96-Well Plates</td>
			<td>Corning</td>
			<td>3788</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1X Phosphate sodium saline</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>P3813</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BRANSONIC Ultrasonic cleaner 1210</td>
			<td>Branson Ultrasonics Corporation</td>
			<td>1210</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>IBC materials:</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>6-well tissue culture test plate</td>
			<td>Techno Plastic Products</td>
			<td>92006</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pins</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>26002-20</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sylgard 184</td>
			<td>Dow Corning</td>
			<td>3097358-1004</td>
			<td>Silicone Elastomer Kit</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>X-gal (5-bromo-4-chloro-3-indolyl-b-D-galactoside)</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>15520-034</td>
			<td>Ultrapure</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>N, N-Dimethylformamide</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>D4551</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MgCl2 (Magnesium chloride)</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>M8266</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium deoxycholate</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>D6750</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nonidet-P40</td>
			<td>Roche</td>
			<td>11754599001</td>
			<td>Octylphenolpoly(ethyleneglycolether)n</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Potassium hexacyanoferrate(II) trihydrate (K-ferrOcyanide)</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>P3289</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Potassium hexacyanoferrate(III) (K-ferrIcyanide)</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>60299</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

establishment and characterization of uti and cauti in a mouse model

尿路感染症（UTI）、罹患率の重要な原因で非常に流行しており、抗生物質による治療に対してますます耐性があります。女性は不釣り合いUTIに罹患している：すべての女性の50％が彼らの一生の間にUTIを持っています。さらに、初期のUTIを持ってこれらの女性の20〜40％は生活、痛みや不快感の質の深刻な悪化といくつかの苦しみ頻繁に再発して再発を被るだろう、毎日の活動、増加医療費、およびその他のいくつかの治療法の選択肢の破壊長期的な抗生物質の予防より。尿路病原性大腸菌 （UPEC）は、UTI取得コミュニティの主な原因物質です。カテーテル関連UTI（CAUTI）は百万年間、米国での発生と劇的な医療費の会計処理の最も一般的な院内感染です。 UPECもCAUTIの主な原因であるが、他の原因物質は、 腸球菌などの増加に重要ですフェカリス。ここでは、これらのヒト疾患の臨床的特徴の多くを再現する2つのよく確立されたマウスモデルを利用しています。 UTIは、C3H / HENモデルは、宿主応答、IBCの形成及びフィラメンテーションを含む、ヒトで観察されたUPEC病原性の機能の多くを再現します。 CAUTI、カテーテル膀胱インプラントを保持C57BL / 6マウスを用いたモデルについて、E.に感受性であることが示されていますフェカリス膀胱感染。これらの代表的なモデルは、新規な治療薬および管理や予防戦略の開発につながっているUTI疾患の病因、に印象的な新しい洞察を得るために使用されています。

単純およびカテーテル関連UTIの膀胱内のモデルは、これらの共通および高価な感染症を管理するために、細菌の病原性、宿主組織上のこれらの疾患の影響、および開発および新規のアプローチのテストの分子機構を解明するための柔軟なプラットフォームを提供します。マウス系統および病原体に応じて、膀胱内接種（ 図1及び3）、慢性または再発性（ 図2）</...

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Establishment and Characterization of UTI and CAUTI in a Mouse Model

The ability to model urinary tract infections (UTI) is crucial in order to be able to understand bacterial pathogenesis and spawn the development of novel therapeutics. This work&#8217;s goal is to demonstrate mouse models of experimental UTI and catheter associated UTI that recapitulate and predict findings seen in humans.

マウスモデルにおけるUTIとCAUTIの樹立とその性状

Urinary tract infections (UTI) are highly prevalent, a significant cause of morbidity and are increasingly resistant to treatment with antibiotics. ...

Research

JoVE Journal

Medicine

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A Mouse Model of in Utero Transplantation

のマウスモデル子宮内で移植

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