Name: biomembrane fabrication by the solvent-assisted lipid bilayer (salb) method
Uploaded: 2015-12-01T13:00:00
Duration: 9 min 38 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Biomembrane Fabrication by the Solvent-assisted Lipid Bilayer SALB Method at JoVE.com

Forfatterne ønsker at anerkende støtte fra National Research Foundation (NRF -NRFF2011-01 og NRF2015NRF-POC0001-19), National Medical Research Council (NMRC / CBRG / 0005/2012), og Nanyang Technological University til NJC

1. Dannelse af understøttede lipiddobbeltlag på en hydrofil Solid Support <ol><li> Forbered lipid stamopløsninger på 10 mg / ml 1,2-dioleoyl--sn-glycero-3-phosphocholin (DOPC) og 1 mg / ml 1,2-dioleoyl--sn-glycero-3-phosphoethanolamine- N - (lissamin rhodamin B sulfonyl) (Rh-PE) ved at opløse de respektive lipid pulvere (passende vejet på forhånd med en analytisk massebalance) i isopropanolopløsning. </li><li> Fortynde og blande stamopløsninger i isopropanol med henblik på at forberede den ønskede lipid blandingen ved slutkoncentrationen. Til fluorescens mikroskopi og FRAP forsøg, bør 0,5 vægt% Rh-PE indgå i lipidblandingen. </li><li> Injicere lipidblandingen i isopropanol ind i mikrofluid kanal, indtil den er fyldt. </li><li> Inkuber lipidblandingen på glasoverfladen i ca. 10 minutter. </li><li> Gradvist erstatte lipidopløsningen med vand eller pufferopløsning ved hjælp af en peristaltisk pumpe ved en meget lav strømningshastighed(10-50 pl / min). Alternativt erstatter lipidblandingen ved gentagen pipettering. </li><li> Skyl kanalen grundigt med overskydende buffer med henblik på at fjerne den resterende isopropanol. </li></ol> 2. Dannelse af cholesterol-beriget Understøttede Membraner Bemærk: Det faste overflade (SiO2) støtter vesikelfusion, men membranen sammensætning (højt kolesterol) inhiberer vesikelfusion fordi kolesterol beriget vesikler højt har bøjningsstivhed 30. <ol><li> Der fremstilles en stamopløsning indeholdende 10 mg / ml lipid DOPC, 10 mg / ml cholesterol og 1 mg / ml Rh-PE ved først at opløse de respektive pulvere i isopropanol. </li><li> Gentag trin 1,2-1,6 ved hjælp af stamopløsninger forberedt i trin 2.1. </li></ol> 3. membranfluiditet Assay <ol><li> Nedsænk objektglasset i natriumdodecylsulfat (SDS) opløsning (1%) i 10 minutter. </li><li> Vask dias grundigt med deioniseret vand og skyl Vidh ethanol. </li><li> Blow-tørre dias ved hjælp af en blid strøm af nitrogen. </li><li> Expose dias til ilt plasma til 30 sekunder ved maksimal radiofrekvens magt i ilt plasma kammeret. </li><li> Fjern den beskyttende film belægning af den bundløse kommercielle microfluidic kammer (figur 1A) ved hjælp af en pincet og vedhæfte objektglasset på den klæbende side af kammeret (figur 1B). </li><li> Saml stik og slanger ind i indløbs- og ud- stillinger kammeret og placer mikrofluid kanal på mikroskopbordet (figur 1C). </li><li> Danner en fluorescens-mærket understøttet lipiddobbeltlag i mikrofluid kanal [gentage trin 1 under anvendelse af den ønskede lipidsammensætning (f.eks 0,5 mg / ml DOPC), herunder 0,5 vægt% Rh-PE i organisk opløsningsmiddel]. </li><li> Find dobbeltlaget plan med en 60X oliebestandighedsobjektet (NA 1,49) med henblik på at tage billeder. </li><li> Tag to pre-blegemiddel billeder, så foto-blege en 301 m bred cirkelformet stedet med en 532 nm, 100 mW laserstråle. Før fotoblegning, varme op laseren indtil dens intensitet er blevet stabil. Umiddelbart efter fotoblegning, fange en serie af billeder hver 1 sek i 2 min for at følge opsvinget i fluorescensintensiteten på bleget stedet. </li></ol> 4. Kolesterol Kvantificering Assay <ol><li> Udsætte siliciumdioxid-coatede kvartskrystal sensor chip for oxygen plasma i 30 sekunder ved maksimal radiofrekvens magt i oxygen plasma kammeret. Fjern chippen fra kammeret og straks montere chip i målekammeret. </li><li> Før forsøget, først erhverve hyppigheden og bortledning af sensorchippen i luft med henblik på at sikre korrekt montering. <ol><li> For kommercielle Q-Sense E1 eller E4 QCM-D instrument, køre Q-Soft program og klik på &quot;Acquisition&quot; og vælg &quot;Setup måling&quot;. </li><li> I det nye vindue, der vises, skal du kontrollere 3, 5, 7, 9, 11 og 13 overtoner, og klik derefter på Søg og Kør for at kontrollere resonans spektre. Indstil temperaturen på 24 ° C. Hvis en eller flere resonansfrekvenser ikke er enig med de forventede værdier, skal du kontrollere chippen montering og re-udføre dette trin, indtil der indgås en aftale. </li></ol></li><li> Start den peristaltiske pumpe og flow pufferopløsning (10 mM Tris, 150 mM NaCl, pH 7,5) i målekammeret ved en strømningshastighed på 100 ul / min. </li><li> I softwareprogrammet, klik på &quot;Acquisition&quot; og vælg &quot;Genstart måling&quot; for at registrere resonansfrekvensen og energispredning signaler. Gentag dette trin, indtil en stabil basislinje opnås for frekvens og spredning skift. Bemærk: trin herefter vil der være yderligere frekvens og spredning forskydninger, der kan registreres som en funktion af tiden. </li><li> Injicer isopropanol (uden lipid) i 10 minutter. </li><li> Injicer blanding af DOPC lipid / kolesterol påønskede molforhold med en samlet lipidkoncentration på 0,5 mg / ml i isopropanol i 10 minutter. </li><li> Injicere buffer i 20 minutter ved en strømningshastighed på 100 ul / min. </li><li> Indsprøjte en opløsning af 1 mM methyl-β-cyclodextrin (MβCD) fremstillet i buffer (strømningshastighed 100 pl / min) indtil frekvensen signal når en stabil værdi. </li><li> Mål relative positive frekvensskift, der er forårsaget af trin MβCD behandling og beregne massen af kolesterol og DOPC lipider ved at konvertere Af-cho og △ f DOPC værdier til masseværdier ved hjælp af Sauerbrey ligningen [AM = - (C / n) × bf, hvor C = 17,7 ng / cm2, n: overtone]. </li><li> Beregn molbrøken af ​​kolesterol i SLB under hensyntagen molekylvægtene af DOPC lipid (786,1 g / mol) og cholesterol (386,6 g / mol). </li></ol>

The authors have no competing financial interests to disclose.

I dette arbejde, er en opløsningsmiddelfri udvekslingsprotokol præsenteret i hvilken lipider i alkohol (isopropanol, ethanol eller n-propanol) inkuberes med en fast bærer og derefter alkoholen gradvist erstattet med en vandig pufferopløsning med henblik på at drive en række faseovergange sidst producerer lamellar fase lipiddobbeltlag 24. Det er vist, at fremgangsmåden muliggør fremstilling af understøttede lipiddobbeltlag på overflader, såsom guld, som er intraktabel til vesikelfusion metode. En optimal lipid koncentrationsområde (0,1 - 0,5 mg / ml) er blevet bestemt til fuldstændig dobbeltlagsformation i standardeksperimentelle testet hidtil formater. Ved lipid koncentrationer under 0,1 mg / ml, adskilte, mikroskopiske pletter af dobbeltlag dannet. På den anden side, ved koncentrationer over 0,1 mg / ml og lavere end 0,5 mg / ml, er en fuldstændig og ensartet dobbeltlag dannet. Ved lipidkoncentrationer over dette område, blev en flydende dobbeltlag stadig udformet som verifikationed af FRAP analyse imidlertid fluorescensmikroskopi afslører tilstedeværelsen af ​​yderligere lipid strukturer på toppen af ​​dobbeltlaget. Påfaldende, morfologien af ​​disse yderligere lipidstrukturer, som bestemt ved QCM-D-analyse, afhang af alkohol, som blev anvendt under inkubationstrinnet. I tilfælde af ethanol, de relativt høje A f og Δ D skift ligne QCM-D signatur opnået for en adsorberet vesikel lag. Når isopropanol eller n-propanol i stedet anvendt, Δ f var lidt højere end værdien forventet for et dobbeltlag (endelig Δ f mellem -30 til -40 Hz), mens Δ D var mærkbart højere. Sådanne QCM-D reaktioner ville forventes for udvidede lipidstrukturer (f.eks ormelignende miceller), der rager udad fra membranens overflade (så synlig ved fluorescensmikroskopi i nogle tilfælde). Hastigheden for udskiftning af opløsningsmiddel er en anden vigtig parameter, som kan være kritisk, especially når lavere lipidkoncentrationer (f.eks 0,1 mg / ml) anvendes. Hurtig udveksling opløsningsmiddel ved lav lipidkoncentration kan føre til dannelse af ufuldstændige dobbeltlag. I standard målekammeret bruges til QCM-D målinger i dette papir (Q-Sense E4 måling Afdeling) strømningshastigheder af omkring 100 ul / min, var egnet til meget reproducerbar komplet dobbeltlagsformation. For flow celler med andre geometrier og volumen, kan det optimale flow varierer og skal bestemmes empirisk baseret på de skridt foreslåede heri. Ud over dannelse af understøttede lipiddobbeltlag på overflader, der er uløselige med vesikelfusion kan Salb anvendes til at omgå behovet for lipidvesikler, som kan gå i stykker og dermed åbne døren til fremstilling af understøttede membraner med komplekse sammensætninger. Som et illustrativt eksempel sammensætning, blev lipid blandinger med en høj fraktion af kolesterol undersøgt. Kolesterol er en vigtig bestanddel af MammAlian cellemembraner, og dens fraktion kan nærme 45-50 mol-% af membranen lipidsammensætning (fx i erytrocytter). Således bør selv en simpel model af et lipiddobbeltlag, der repræsenterer en human celle membran omfatter cholesterol. Mens vesikelfusion kunne anvendes til at fremstille fluide lipiddobbeltlag, der kun indeholder 10-15% kolesterol, Salb muliggør fremgangsmåden dannelsen af fluide lipiddobbeltlag indeholdende høje fraktioner af cholesterol (op til 57 mol%, som kvantificeret ved QCM-D målinger) 36. Men når niveauet af kolesterol blev yderligere forhøjet (op til 63 mol%), blev stribe-shape domæner observeret 37. De sameksisterende domæner var væske, der minder om dem, der observeres i β-regionen i fasediagrammet af kolesterol / phospholipider monolag ved luft-vand-grænsefladen. Samlet set er Salb metoden vist sig at være en enkel og effektiv metode til dannelse af understøttede lipiddobbeltlag, især in sager uden for rammerne af den traditionelle vesikel fusion metoden. Hidtil er der QCM-D teknik og fluorescens mikroskopi hovedsageligt anvendes til at karakterisere de understøttede lipiddobbeltlag dannet ved Salb metode. Fremadrettet en bred vifte af overfladeaktive følsomme analytiske målinger teknikker, herunder overflade (SPR) 38, atomic force mikroskopi (AFM) 39,40, Fourier-transform infrarød spektroskopi 41, X-ray 42 og neutron refleksivitet 43, kan anvendes til yderligere at karakterisere og studere simple og komplekse dobbeltlag konfigurationer Fremstilles ved metoden Salb. Disse nye kapaciteter åbner døren til et større antal forskere, der kan udforske kunstige cellemembraner ved at udnytte en enkel og robust forsøgsprotokol.

Det faste stof-støttede lipiddobbeltlag 1 (SLB) er en alsidig platform, som bevarer de væsentlige egenskaber ved biomembraner såsom dobbeltlaget tykkelse, todimensional lipid diffusivitet, og evnen til at være vært membran-associerede biomolekyler. På grund af kompleksiteten af naturlige cellemembraner, har vist denne enkle platform til at fungere som en effektiv platform for in vitro-undersøgelser af membran-processer såsom klumpdannelse 2, proteinbinding 3, virus og viruslignende partikel binding 4,5 og celle signalering 6. Dannet i umiddelbar nærhed til en fast bærer, SLBs platformen er kompatibel med en række overfladeaktive følsomme målinger teknikker, såsom total indre refleksion mikroskopi (TIRF), kvartskrystalmikrovægt-dissipation (QCM-D), og impedans spektroskopi. Der er blevet udviklet flere metoder til at fremstille forskellige typer af SLBs, herunder luftboblekollaps 7 og dip-pen nanolithography 8 for submicron mellemstore lipid pletter, spin-belægning 9 til dobbeltlag stakke og Langmuir-Blodgett (LB) 10 og vesikelfusion (VF) 11 for fuld spænder, enkelt lipiddobbeltlag belægninger. VF metode består i adsorption af små unilamellare vesikler til en fast bærer og efterfølgende spontane brud og fusion til dannelse af en kontinuert lipiddobbeltlag. Men under fysiologiske betingelser, spontan vesikel brud er hovedsageligt begrænset til silicium-baserede materialer såsom siliciumdioxid, glas og glimmer. Hertil kommer, at vesikel brud ikke opstå spontant til vesikler af komplekse lipidsammensætninger såsom dem der indeholder høje fraktioner af cholesterol eller negativt ladede lipider. Afhængigt af systemet, kan vesikel brud induceres ved yderligere at skræddersy de eksperimentelle betingelser, såsom temperatur 12, opløsning pH 13, og saltindhold 14, osmotisk chok 15 </sop&gt; eller tryk 16, eller tilsætning af divalente ioner, såsom Ca2 + 17. Alternativt kan membranen-aktive AH peptid indføres med henblik på at destabilisere et lag af adsorberede vesikler, hvilket fører til vesikel brud og dobbeltlagsformation på en række overflader 18-22. Endvidere vellykket dobbeltlagsformation kræver fremstilling af en velkontrolleret population af små unilamellare vesikler, som kan være tidskrævende og vanskelig at opnå for visse membran sammensætninger. Derfor på trods af sin høje effektivitet i optimale tilfælde (f.eks efter omfattende fryse-tø forbehandling af vesikler 23), den generelle anvendelse af vesikelfusion er begrænset af omfanget af egnede substrater og membran sammensætninger. Opløsningsmidlet-assisteret lipiddobbeltlag (Salb) metode 24-28 er en alternativ fremstillingsteknik, som ikke kræver lipidvesikler. Metoden er baseret på aflejring of lipidmolekyler på en fast overflade i nærværelse af et med vand blandbart organisk opløsningsmiddel efterfulgt af en gradvis udveksling af dette opløsningsmiddel med en vandig pufferopløsning for at udløse SLB formation. Under opløsningsmiddel-udveksling trin, den ternære blanding af lipider, organisk opløsningsmiddel og vand gennemgår en serie faseovergange med stigende vand fraktion, hvilket fører til dannelsen af ​​lamellare fase strukturer i bulkopløsningen og en SLB på det faste substrat. Vigtigere er det, denne selv-samling rute omgår behovet for vesikel brud, som normalt er det begrænsende trin for omdannelsen af ​​adsorberede vesikler i en SLB. Protokollen er anvendelig til en lang række overflader, herunder siliciumdioxid, aluminiumoxid, krom, indiumtinoxid, og guld. I dette dokument, og i den ledsagende video, er en sammenligning af lipiddeponering af Salb og vesikelfusion metoder fremlagt. Især påvirkning af eksperimentelle parametre, herunder lipidkoncentration, Strømningshastighed, og valget af vand blandbart organisk opløsningsmiddel, om kvaliteten af ​​dobbeltlaget dannet ved Salb fremgangsmåden drøftes. Analytisk karakterisering af færdige SLBs udføres af QCM-D, fluorescensmikroskopi og fluorescens bedring efter fotoblegning (FRAP) teknikker. QCM-D overvågning er en overflade-sensitive masse måleteknik, som siden pionerarbejde udført af Keller og Kasemo 29, er blevet grundigt anvendes til kvantitativ undersøgelse dobbeltlagsformation. Fluorescensmikroskopi tillader inspektion af membranen homogenitet samt visualisering af membrandomæner. FRAP teknik er et standardværktøj at bestemme den laterale mobilitet lipidmolekyler i et SLB, hvilket er en væsentlig egenskab ved fluide membraner. Den første del af denne undersøgelse indebærer QCM-D analyse af Salb og vesikelfusion metoder anvendes til at forsøge dobbeltlagsformation på siliciumdioxid og guld. I den anden del,fremstilling og karakterisering af understøttede membraner indeholdende en række kolesterol koncentration i Salb metoden er påvist, og resultaterne sammenlignes med dem, der opnås ved vesikelfusion metode.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="1459">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:719px;">QCM-D silicon dioxide-coated substrates</td>
			<td style="width:356px;">QSense AB,&#160; Sweden</td>
			<td style="width:217px;"></td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">QCM-D gold-coated substrates</td>
			<td style="width:356px;">QSense AB,&#160; Sweden</td>
			<td style="width:217px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Q-Sense E4 module</td>
			<td>QSense AB,&#160; Sweden</td>
			<td style="width:217px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">Plasma Cleaner, PDC-32G</td>
			<td>Harrick Plasma, Ithaca, NY</td>
			<td>PDC-001 (115V)&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:719px;">1,2-dioleoyl-sn-glycero-3-phosphocholine (DOPC)</td>
			<td>Avanti Polar Lipids</td>
			<td>850375P</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">1,2-dioleoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine-N-(lissamine rhodamine B sulfonyl) (ammonium salt) (Rh-PE)</td>
			<td>Avanti Polar Lipids</td>
			<td>810150P</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">cholesterol</td>
			<td>Avanti Polar Lipids</td>
			<td style="width:217px;">700000P</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Methyl-&#946;-cyclodextrin</td>
			<td style="width:356px;">Sigma&#160;</td>
			<td style="width:217px;">C4555</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Isopropanol</td>
			<td style="width:356px;">Sigma&#160;</td>
			<td align="right">673773</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:719px;">Ethanol</td>
			<td style="width:356px;">Sigma&#160;</td>
			<td align="right" style="width:217px;">459844</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:719px;">n-propanol</td>
			<td style="width:356px;">Sigma&#160;</td>
			<td align="right">279544</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:719px;">Sticky-Slide I 0.1 Luer</td>
			<td style="width:356px;">IBIDI</td>
			<td align="right" style="width:217px;">81128</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:719px;">Male elbow 1/8&#8221;</td>
			<td style="width:356px;">Cole-Parmer</td>
			<td style="width:217px;">30505-70</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:719px;">Silicon tubing 1.6mm ID</td>
			<td style="width:356px;">IBIDI</td>
			<td align="right" style="width:217px;">10842</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:719px;">Glass coverslip No. 1.5H, 25 mm x 75 mm</td>
			<td style="width:356px;">IBIDI</td>
			<td align="right" style="width:217px;">10812</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:719px;">Reglo Digital M2-2/12 Peristaltic Pump</td>
			<td style="width:356px;">Ismatec</td>
			<td style="width:217px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:719px;">Sodium dodecyl sulfate</td>
			<td style="width:356px;">Sigma&#160;</td>
			<td align="right" style="width:217px;">71725</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

biomembrane fabrication by the solvent-assisted lipid bilayer (salb) method

For at efterligne cellemembraner, den understøttede lipiddobbeltlaget (SLB) er en attraktiv platform, som muliggør in vitro undersøgelse af membran-processer samtidig giver biokompatibilitet og biofunctionality til faste substrater. Den spontane adsorption og sprængning af phospholipidvesikler er den mest almindeligt anvendte metode til dannelse SLBs. Men under fysiologiske betingelser, er vesikelfusion (VF) er begrænset til en delmængde af lipidsammensætninger og faste bærere. Her beskriver vi en ettrinsprocedure generelle fremgangsmåde kaldes opløsningsmiddelbaserede assisteret lipiddobbeltlag (Salb) dannelse metode for at danne SLBs som ikke kræver vesikler. Den Salb fremgangsmåde involverer aflejring af lipidmolekyler på en fast overflade i nærværelse af vandblandbare organiske opløsningsmidler (fx isopropanol) og efterfølgende opløsningsmiddel-udveksling med vandig pufferopløsning med henblik på at udløse SLB formation. Den løbende skridt udveksling opløsningsmiddel muliggør anvendelsen af ​​denFremgangsmåde i et flow-through konfiguration er egnet til overvågning dobbeltlag dannelse og efterfølgende ændringer ved hjælp af en lang række overfladeaktive følsomme biosensorer. Den Salb fremgangsmåde kan anvendes til at fremstille SLBs på en bred vifte af hydrofile faste overflader, herunder dem, der er intraktabel til vesikelfusion. Desuden muliggør fremstilling af SLBs sammensat af lipid sammensætninger, som ikke kan fremstilles ved hjælp af vesikelfusion metode. Heri vi sammenlign resultaterne opnået med de Salb og konventionelle vesikelfusion metoder på to illustrative hydrofile overflader, siliciumdioxid og guld. For at optimere de eksperimentelle betingelser for udarbejdelse af kvalitet dobbeltlag høj forberedt via Salb metode effekten af ​​forskellige parametre, herunder typen af ​​organisk opløsningsmiddel i deposition trin, satsen af ​​opløsningsmiddel udveksling, og lipidkoncentrationen diskuteret sammen med tip til fejlfinding . Dannelse af understøttede membraner indeholdende høje fraktioner af cholesterol er også dæmonertreret med Salb metoden, fremhæver de tekniske muligheder i Salb teknik til en bred vifte af membran konfigurationer.

Watch this Scientific Journal Video about Biomembrane Fabrication by the Solvent-assisted Lipid Bilayer SALB Method at JoVE.com

Biomembrane Fabrication by the Solvent-assisted Lipid Bilayer SALB Method

Vi præsenterer en forsøgsprotokol for at danne en understøttet lipiddobbeltlag på faste substrater uden brug lipidvesikler. Vi demonstrerer en ettrins fremgangsmåde til dannelse af et lipiddobbeltlag på siliciumdioxid og guld samt understøttede membraner med kolesterol-beriget domæne for forskellige biologiske anvendelser.

Biomembran Fabrication med opløsningsmidlet-assisteret lipiddobbeltlag (Salb) Metode

In order to mimic cell membranes, the supported lipid bilayer (SLB) is an attractive platform which enables in vitro investigation of membrane-related ...

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Biomembrane Fabrication by the Solvent-assisted Lipid Bilayer (SALB) Method

Constant Pressure-controlled Extrusion Method for the Preparation of Nano-sized Lipid Vesicles

Konstant tryk-styret Ekstrudering fremgangsmåde til fremstilling af nano-størrelse lipidvesikler

Liposomes are artificially prepared vesicles consisting of natural and synthetic phospholipids that are widely used as a cell membrane mimicking platform ...

Microfluidic Chip Fabrication and Method to Detect Influenza

Mikrofluid chip fabrikation og metode til at påvise Influenza

Fast  and effective diagnostics play an important role in controlling infectious  disease by enabling effective patient management and treatment. Here, we ...

Formation of Biomembrane Microarrays with a Squeegee-based Assembly Method

Dannelse af Biomembrane Microarrays med en svaber-baserede Assembly Method

Lipid bilayer membranes form the plasma membranes of cells and define the boundaries of subcellular organelles. In nature, these membranes are ...

Lipid Bilayer Vesicle Generation Using Microfluidic Jetting

Lipiddobbeltlaget Vesikel Generation Brug Mikrofluid højtryksspuler

Bottom-up synthetic biology presents a novel approach for investigating and reconstituting biochemical systems and, potentially, minimal organisms. This ...

Polymeric Microneedle Array Fabrication by Photolithography

Polymere mikronålarray Fabrication ved Fotolitografi

This manuscript describes the fabrication of polymeric microneedle (MN) arrays by photolithography. It involves a simple mold-free process by using a ...

Solid Lipid Nanoparticles (SLNs) for Intracellular Targeting Applications

Solid Lipid Nanoparticles SLNs for Intracellular Targeting Applications

Solid lipidnanopartikler (SLNs) til intracellulær målretning Applications

Nanoparticle-based delivery vehicles have shown great promise for intracellular targeting applications, providing a mechanism to specifically alter ...

Automated Lipid Bilayer Membrane Formation Using a Polydimethylsiloxane Thin Film

Automatiseret lipiddobbeltlagsmembranen Formation Ved hjælp af en Polydimethylsiloxan Thin Film

An artificial lipid bilayer, or black lipid membrane (BLM), is a powerful tool for studying ion channels and protein interactions, as well as for ...

Ligand Nano-cluster Arrays in a Supported Lipid Bilayer

Ligand Nano-klynge Arrays i et understøttet lipid-dobbeltlag

Currently there is considerable interest in creating ordered arrays of adhesive protein islands in a sea of passivated surface for cell biological ...

A Simple and Scalable Fabrication Method for Organic Electronic Devices on Textiles

En simpel og skalerbar Fabrication Metode til Økologisk Elektroniske enheder om tekstiler

Today, wearable electronics devices combine a large variety of functional, stretchable, and flexible technologies. However, in many cases, these devices ...

Fabrication of Decellularized Cartilage-derived Matrix Scaffolds

Fabrikation af Decellularized brusk-afledte Matrix stilladser

Osteochondral defects lack sufficient intrinsic repair capacity to regenerate functionally sound bone and cartilage tissue. To this extent, cartilage ...