Name: biomembrane fabrication by the solvent-assisted lipid bilayer (salb) method
Uploaded: 2015-12-01T13:00:00
Duration: 9 min 38 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Biomembrane Fabrication by the Solvent-assisted Lipid Bilayer SALB Method at JoVE.com

Авторы хотели бы выразить признательность поддержку от Национального исследовательского фонда (ПЗФ -NRFF2011-01 и NRF2015NRF-POC0001-19), Национального Медицинского исследовательского совета (NMRC / CBRG / 0005/2012), и Nanyang технологический университет в НСК

1. Формирование поддерживаемых липидного бислоя на гидрофильных твердых поддержки <ol><li> Подготовка липидов Маточные растворы 10 мг / мл 1,2-dioleoyl- SN глицеро-3-фосфохолин (ДОФХ) и 1 мг / мл 1,2-dioleoyl- SN глицеро-3-phosphoethanolamine- N - (lissamine родамин В сульфонил) (Rh-PE) растворением соответствующих липидов порошки (соответственно взвешены заранее с аналитическим массового баланса) в изопропаноле раствора. </li><li> Развести и смешивать растворы в изопропаноле с целью подготовки желаемого липидной смеси в конечной концентрации. Для флуоресцентной микроскопии и FRAP экспериментов, 0,5 мас% Rh-PE должны быть включены в липидной смеси. </li><li> Вводят липидной смеси в изопропаноле в микрожидкостных канала, пока не будет заполнена. </li><li> Инкубируйте липидной смеси на поверхности стекла в течение приблизительно 10 мин. </li><li> Постепенно заменить липидный раствор с водой или буферным раствором с использованием перистальтического насоса при скорости потока очень низкой(10-50 мкл / мин). Кроме того, заменить липидной смеси повторным пипетированием. </li><li> Промыть канал водой с избыточным буфера, чтобы удалить остаточный изопропанол. </li></ol> 2. Формирование холестерина, обогащенного поддерживаемых мембран Примечание: твердую поверхность (SiO 2) поддерживает слияния пузырьков, но состав мембраны (высокий уровень холестерина) ингибирует синтез везикул, потому что холестерин, обогащенный везикулы высокой жесткостью при изгибе 30. <ol><li> Подготовка исходного раствора, содержащего 10 мг / мл липида, DOPC 10 мг / мл холестерина и 1 мг / мл Rh-PE сначала растворением соответствующих порошков в изопропаноле. </li><li> Повторите шаги 1.2-1.6 с помощью растворы, приготовленные в шаге 2.1. </li></ol> 3. Мембрана Текучесть Анализ <ol><li> Опустить предметное стекло в растворе додецилсульфата натрия (SDS) (1%) в течение 10 мин. </li><li> Вымойте слайды тщательно деионизированной водой и ополосните остроумиеч этанол. </li><li> Blow-сухие слайды, используя мягкий поток азота. </li><li> Expose слайды в кислородной плазме в течение 30 сек при максимальной мощности радиочастотного в плазме кислорода камеры. </li><li> Снимите защитную пленку из бездонной коммерческой Микрожидкостных камеры (рис 1А), используя пинцет и прикрепите предметное стекло на липкой стороне камеры (рис 1B). </li><li> Сборка соединителей и труб в впускных и выпускных позиций камеры и поместить микрожидкостных канал на столик микроскопа (рис 1С). </li><li> Форма флуоресцентно-меченного поддерживает липидный бислой в микрожидкостных канала [Повторите шаг 1 с использованием нужного липидный состав (например, 0,5 мг / мл ДОФХ), включая 0,5 мас% RH-PE в органическом растворителе]. </li><li> Найдите плоскости бислоя с 60X нефти иммерсионного объектива (NA 1.49) для того, чтобы захватить изображения. </li><li> Возьмите два предварительно отбеливатель изображения, то фото-отбелить 301; м широкий круговой пятно с мВт лазерного луча 532 нм, 100. Перед фотообесцвечивания, разогреть лазер, пока его интенсивность не будет стабильным. Сразу же после фотообесцвечивания, захватить ряд изображений каждую 1 сек в течение 2 мин для того, чтобы следить за восстановление интенсивности флуоресценции на беленой месте. </li></ol> 4. Холестерин Количественное Анализ <ol><li> Подвергать диоксид кремния покрытием кристалл кварца сенсорный чип для кислородной плазмы в течение 30 сек при максимальной мощности радиочастотного в плазме кислорода камеры. Удалить чип из камеры и сразу же установить чип в измерительной камере. </li><li> Перед экспериментом, сначала получить частоту и рассеивание микросхемы датчика в воздухе, чтобы обеспечить надлежащую установку. <ol><li> Для коммерческого Вопрос-Sense E1 или Е4 QCM-D инструмент, запустите Q-Софт программу и нажмите кнопку &quot;Приобретение&quot; и выберите &quot;Настройка Измерение&quot;. </li><li> В новом появившемся окне проверьте 3, 5, 7, 9, 11 и 13 обертоны, а затем нажмите кнопку Найти и запустить, чтобы проверить спектры резонанса. Установите температуру на 24 ° С. Если один или несколько резонансных частот не согласны с ожидаемыми значениями, проверить чип монтажа и повторно выполнить этот шаг до тех пор, соглашение не будет достигнуто. </li></ol></li><li> Начало перистальтического насоса и поток буферного раствора (10 мМ Трис, 150 мМ NaCl, рН 7,5) в измерительной камере при скорости потока 100 мкл / мин. </li><li> В программе, нажмите &quot;приобретение&quot; и выберите &quot;Restart&quot; Измерение для того, чтобы записывать резонансная частота и диссипация энергии сигналов. Повторите этот шаг, пока стабильная базовая линия не получается для частотных и рассеивания сдвигов. Примечание: Для шагов далее, будет дополнительные частоты и рассеивания сдвиги, которые могут быть записаны как функции времени. </li><li> Вводят изопропанол (без липида) в течение 10 мин. </li><li> Вводите смесь липидов ДОФХ / холестерина нажелаемый мольное отношение общей концентрации липидов в 0,5 мг / мл в изопропаноле в течение 10 мин. </li><li> Вводят буфер в течение 20 мин при скорости потока 100 мкл / мин. </li><li> Вводят раствор 1 мМ метил-бета-циклодекстрина (MβCD), полученного в буфере (расход 100 мкл / мин), пока сигнал частоты достигает стабильного значения. </li><li> Измерения относительной положительные сдвиги частоты, что вызвано стадии обработки MβCD и рассчитать массу холестерина и DOPC липидов путем преобразования значения; F чо; F DOPC в массовых значений с помощью уравнения Сауэрбрей [Δm = - (C / N) × ; F, где С = 17,7 нг / см 2, п: обертон]. </li><li> Вычислить мольную долю холестерина в SLB, принимая во внимание молекулярные массы DOPC липидов (786,1 г / моль) и холестерина (386,6 г / моль). </li></ol>

The authors have no competing financial interests to disclose.

В этой работе, протокол растворителей обмен представлен в котором липиды в спирте (изопропанол, этанол или н-пропанол) инкубируют с твердой подложкой, а затем спирт заменен постепенно с водным буферным раствором, чтобы вести серию фазовых переходов в конечном итоге производить пластинчатые фазы липидных двойных 24. Показано, что метод позволяет изготавливать поддерживаемых липидных бислоев на поверхностях, таких как золото, которое неразрешимыми методом слияния пузырьков. Оптимальный диапазон концентраций липидов (0,1 - 0,5 мг / мл) была определена для полного формирования двухслойной в стандартных форматах экспериментальных проверенных сих пор. При концентрациях липидов ниже 0,1 мг / мл, дискретных, микроскопических пятен бислоями формируется. С другой стороны, при концентрации выше 0,1 мг / мл и меньше, чем 0,5 мг / мл, полное и равномерное бислой формируется. При концентрациях липидов выше этого диапазона, двухслойная жидкость еще формируется Verifiред анализа FRAP, однако, флуоресцентной микроскопии показывает наличие дополнительных структур липида в верхней части двойного слоя. Поразительно, морфология этих дополнительных липидов структур, как определено QCM-D анализа, зависит от спирта, который был использован в ходе стадии инкубации. В случае этанола, относительно высокие Д F Δ и D сдвиги напоминают QCM-D сигнатуру, полученную на адсорбированной пузырьков слоя. При изопропанол или н-пропанол вместо этого используется, Δ F была несколько выше, чем значение ожидаемой для двухслойной (конечная Д F между -30 до -40 Гц), в то время как Δ D была значительно выше. Такие QCM-D реакции можно было бы ожидать в течение длительных структур липида (например, червеобразные мицеллы), выступающие наружу от поверхности мембраны (как видно с помощью флуоресцентной микроскопии в некоторых случаях). Скорость обмена растворителем является еще одним важным параметром, который может иметь решающее значение, ESPECially, когда более низкие концентрации липидов (например, 0,1 мг / мл) используются. Система быстрой смены растворителя при низкой концентрации липидов может привести к образованию неполных бислоев. В стандартной измерительной камеры, используемой для измерения QCM-D в этой статье (измерительная камера Q-Sense Е4), скорости потока около 100 мкл / мин, были пригодны для высокой воспроизводимостью полного формирования двухслойной. Для проточных с другими геометрии и объема, оптимальный расход может варьироваться и должны быть определены эмпирически на основе этапов, предложенных в настоящем документе. Кроме того, чтобы сформировать поддерживаемые бислоев на поверхностях, которые неразрешимыми слияния пузырьков, то САЛБ могут быть использованы, чтобы обойти потребность в липидных везикул, которые могут разрыва, открывая тем самым дверь в изготовлении мембран с поддерживаемых сложных композиций. В качестве иллюстративного примера композиции, липидные смеси с высокой долей холестерина были изучены. Холестерин является важным компонентом MammАлеан клеточные мембраны, и его доля может приблизиться к 45-50 мол% от мембранных липидов композиции (например, в эритроцитах). Таким образом, даже простая модель липидного бислоя мембраны, представляющий клеток человека должна включать в себя холестерин. В то время как слияния пузырьков может быть использовано для изготовления жидкостных бислоев, содержащих только 10-15% холестерина, причем способ включает САЛБ образование жидкостных липидных бислоев, содержащих высокие доли холестерина (до 57% мол, а количественно QCM-D измерений) 36. Однако, когда уровень холестерина был повышен дополнительно (до 63% мол), полоса-формы домены наблюдались 37. Сосуществующих домены были жидкость, напоминающая те, в регионе наблюдается бета на фазовой диаграмме монослоя холестерина / фосфолипидов на границе воздух-вода. В целом, способ САЛБ Показано, что простой и эффективный подход к образуют поддерживаемые бислоев, особенно яN случаев выходит за рамки обычного метода слияния пузырьков. До сих пор, в QCM-D техника и флуоресцентной микроскопии, в основном, используется для характеристики поддерживаемых бислоев, сформированные методом SALB. Заглядывая вперед, широкий диапазон поверхностно-чувствительных методов аналитических измерений, в том числе поверхностного плазмонного резонанса (SPR) 38, атомно-силовой микроскопии (АСМ) 39,40, Фурье-ИК-спектроскопии 41, рентген 42 и нейтронов отражения 43, может быть использованы для дальнейшего изучения свойств и простые и сложные конфигурации двухслойные подготовить методом SALB. Эти новые возможности открывают двери для большего числа ученых, которые можно исследовать мембраны клеток искусственные, воспользовавшись простой и надежной экспериментальной протокола.

Сплошная поддержке липидный бислой 1 (SLB) является универсальной платформой, которая сохраняет основные характеристики биомембран, такие как толщина двухслойной, двумерной диффузии липидов и способностью принять ассоциированных с мембранами биомолекул. Из-за сложности природных клеточных мембран, это простая платформа была показана функционировать в качестве платформы для эффективного обучения в пробирке в мембранных процессов, связанных с такими, как плот формирования 2, 3 связывания с белками, вирус и вирус связывания частица 4,5 и сотовый сигнализации 6. Сформированный в непосредственной близости от твердой подложке, платформа SLB совместим с различными поверхностно-чувствительных методов измерения, такие как полное внутреннее отражение микроскопии (TIRF), Пьезокварцевые-диссипации (QCM-D), и импедансной спектроскопии. Некоторые методы были разработаны для получения разных типов, в том числе SLBS пузырька воздухаКрах 7 и ближнего пера нанолитографии 8 для субмикронных липидов пятен, спин-покрытие 9 для двухслойных труб и Ленгмюра-Блоджетт (ЛБ) 10 и слияния пузырьков (VF) 11 для полного Spanning, однослойных покрытий липидного бислоя. Метод В. Ф. состоит из адсорбции небольшие однослойные пузырьки в твердом носителе и последующее спонтанного разрыва и слияния с образованием непрерывной липидный бислой. Тем не менее, в физиологических условиях, разрыв спонтанное пузырьков в основном ограничивается на основе кремния материалов, таких как диоксид кремния, стекла и слюды. Кроме того, разрыв пузырьков не происходит спонтанно в течение пузырьков сложных липидных композиций, таких как те, которые содержат высокие доли холестерина или отрицательно заряженных липидов. В зависимости от системы, разрыв пузырьков может быть вызвано тем, что дополнительно пошива экспериментальных условий, таких как температура 12, рН раствора 13 и солености 14 осмотического шока 15 </sдо&gt; или давлением 16 или добавлением двухвалентных ионов, таких как Са2 + 17. В качестве альтернативы, мембрана-активные АГ пептид может быть введен с целью дестабилизации слоя адсорбированных пузырьков, что приводит к разрыву пузырьков и формирования двухслойной по ряду поверхности 18-22. Кроме того, успешное формирование двухслойной требует подготовки хорошо контролируемых населения малых однослойных везикул, которые могут занять много времени, и трудно достичь определенных мембранных композиций. Таким образом, несмотря на его высокую эффективность в оптимальных случаях (например, после обширного замораживания-оттаивания предварительной пузырьков 23), общее применение слияния пузырьков будет ограничиваться рамками соответствующих субстратов и мембранных композиций. Способ 24-28 растворителе при содействии липидный бислой (САЛБ) является альтернативой технология изготовления, которая не требует липидные пузырьки. Метод основан на осаждения OМолекулы липидов F на твердую поверхность в присутствии водорастворимого органического растворителя с последующей постепенной обмена этом растворителе с водным буферным раствором, чтобы вызвать образование SLB. В растворителей стадии обмена, тройной смеси липидов, органическом растворителе, и вода претерпевает фазовый переход серии с увеличением доли воды, что приводит к образованию слоистых структур в фазовых объеме раствора и SLB на твердой подложке. Важно отметить, что это самосборка маршрут обходит необходимость пузырьков разрыва, который, как правило, предельный шаг для превращения адсорбированных пузырьков в SLB. Протокол применим к широкому разнообразию поверхностей в том числе диоксида кремния, оксида алюминия, хрома, индия и олова, оксид и золота. В этой статье и в прилагаемом видео, сравнение липидного отложения в SALB и методов слияния пузырьков представлена. В частности, влияние параметров эксперимента, в том числе концентрации липидов, Скорость потока, и выбор смешивающегося с водой органического растворителя, от качества двухслойной, образованной методом SALB обсуждаются. Аналитическую характеристику изготовленного SLBS осуществляется QCM-D, флуоресцентной микроскопии, и восстановление флуоресценции после фотообесцвечивания (FRAP) методы. QCM-D мониторинг техника измерения массы поверхности чувствительной, которые с новаторской работы, проведенной Келлер и Kasemo 29, широко используется для количественного исследования формирование двухслойной. Флуоресцентная микроскопия позволяет осмотр мембраны однородности, а также визуализацию мембранных доменов. Методика FRAP является стандартным инструментом для определения боковой подвижности липидных молекул в SLB, который является существенным свойством жидкостных мембран. Первая часть этого исследования предполагает QCM-D анализ SALB и методы слияния пузырьков применяется, чтобы попытаться образование двухслойной диоксида кремния и золота. Во второй части,подготовка и характеристика поддерживаемых мембран, содержащих различные концентрации холестерина с использованием метода SALB продемонстрированы и результаты сравнивают с результатами, полученными с помощью метода слияния пузырьков.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="1459">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:719px;">QCM-D silicon dioxide-coated substrates</td>
			<td style="width:356px;">QSense AB,&#160; Sweden</td>
			<td style="width:217px;"></td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">QCM-D gold-coated substrates</td>
			<td style="width:356px;">QSense AB,&#160; Sweden</td>
			<td style="width:217px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Q-Sense E4 module</td>
			<td>QSense AB,&#160; Sweden</td>
			<td style="width:217px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">Plasma Cleaner, PDC-32G</td>
			<td>Harrick Plasma, Ithaca, NY</td>
			<td>PDC-001 (115V)&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:719px;">1,2-dioleoyl-sn-glycero-3-phosphocholine (DOPC)</td>
			<td>Avanti Polar Lipids</td>
			<td>850375P</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">1,2-dioleoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine-N-(lissamine rhodamine B sulfonyl) (ammonium salt) (Rh-PE)</td>
			<td>Avanti Polar Lipids</td>
			<td>810150P</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">cholesterol</td>
			<td>Avanti Polar Lipids</td>
			<td style="width:217px;">700000P</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Methyl-&#946;-cyclodextrin</td>
			<td style="width:356px;">Sigma&#160;</td>
			<td style="width:217px;">C4555</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Isopropanol</td>
			<td style="width:356px;">Sigma&#160;</td>
			<td align="right">673773</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:719px;">Ethanol</td>
			<td style="width:356px;">Sigma&#160;</td>
			<td align="right" style="width:217px;">459844</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:719px;">n-propanol</td>
			<td style="width:356px;">Sigma&#160;</td>
			<td align="right">279544</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:719px;">Sticky-Slide I 0.1 Luer</td>
			<td style="width:356px;">IBIDI</td>
			<td align="right" style="width:217px;">81128</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:719px;">Male elbow 1/8&#8221;</td>
			<td style="width:356px;">Cole-Parmer</td>
			<td style="width:217px;">30505-70</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:719px;">Silicon tubing 1.6mm ID</td>
			<td style="width:356px;">IBIDI</td>
			<td align="right" style="width:217px;">10842</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:719px;">Glass coverslip No. 1.5H, 25 mm x 75 mm</td>
			<td style="width:356px;">IBIDI</td>
			<td align="right" style="width:217px;">10812</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:719px;">Reglo Digital M2-2/12 Peristaltic Pump</td>
			<td style="width:356px;">Ismatec</td>
			<td style="width:217px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:719px;">Sodium dodecyl sulfate</td>
			<td style="width:356px;">Sigma&#160;</td>
			<td align="right" style="width:217px;">71725</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

biomembrane fabrication by the solvent-assisted lipid bilayer (salb) method

Для того, чтобы имитировать клеточные мембраны, поддерживаемой липидный бислой (SLB) является привлекательной платформой, которая позволяет в пробирке исследования мембранных процессов, связанных в то время придания биосовместимости и biofunctionality с твердыми подложками. Спонтанное адсорбции и разрыв пузырьков фосфолипида является наиболее широко используемым методом для формирования SLBS. Тем не менее, в физиологических условиях, слияния пузырьков (VF) ограничена только подмножество липидных композиций и твердых подложках. Здесь мы описываем один шаг общую процедуру называют методом формирования растворителей помощь липидный бислой (САЛБ), чтобы сформировать SLBS, который не требует везикулы. Способ САЛБ включает нанесение липидных молекул на твердую поверхность в присутствии смешивающихся с водой органических растворителей (например, изопропанол) и последующего растворителя обмена с водном буферном растворе, чтобы вызвать образование SLB. Непрерывный процесс обмена растворителя позволяет применениеСпособ в конфигурации проточного подходящей для формирования двухслойной мониторинг и последующих изменений с использованием широкого спектра поверхностных чувствительных биосенсоров. Способ САЛБ может быть использован для изготовления SLBS по широкому кругу гидрофильных твердых поверхностей, в том числе те, которые неразрешимыми слияния пузырьков. Кроме того, это дает возможность изготавливать SLBS, состоящих из липидных композиций, которые не могут быть получены с помощью метода слияния пузырьков. Здесь мы сравним результаты, полученные с SALB и традиционными методами слияния пузырьков на двух иллюстративных гидрофильных поверхностей, диоксид кремния и золота. Для оптимизации условий эксперимента для приготовления высококачественных бислоев, полученных с помощью метода SALB, влияние различных параметров, в том числе типа органического растворителя на стадии осаждения, скорости обмена растворителя и концентрации липидов рассматривается наряду с советы по устранению неисправностей , Формирование поддерживаемых мембран, содержащих высокие фракций холестерина также демоныtrated с методом SALB, выделяя технические возможности техники SALB для широкого диапазона конфигураций мембран.

Watch this Scientific Journal Video about Biomembrane Fabrication by the Solvent-assisted Lipid Bilayer SALB Method at JoVE.com

Biomembrane Fabrication by the Solvent-assisted Lipid Bilayer SALB Method

Мы представляем экспериментальный протокол для формирования поддерживаемый липидный бислой на твердых подложках без использования липидные пузырьки. Покажем способ одностадийного сформировать липидный бислой на диоксид кремния и золота, а также поддерживаемые мембраны с холестерином обогащенного области для различных биологических приложений.

Биомембрана Изготовление растворителем-помощь липидного бислоя (SALB) метод

In order to mimic cell membranes, the supported lipid bilayer (SLB) is an attractive platform which enables in vitro investigation of membrane-related ...

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Biomembrane Fabrication by the Solvent-assisted Lipid Bilayer (SALB) Method

Constant Pressure-controlled Extrusion Method for the Preparation of Nano-sized Lipid Vesicles

Постоянное давление контролируемый методом экструзии для приготовления наноразмерных липидных везикул

Liposomes are artificially prepared vesicles consisting of natural and synthetic phospholipids that are widely used as a cell membrane mimicking platform ...

Microfluidic Chip Fabrication and Method to Detect Influenza

Микрофлюидных Изготовление Чип и метод для выявления гриппа

Fast  and effective diagnostics play an important role in controlling infectious  disease by enabling effective patient management and treatment. Here, we ...

Formation of Biomembrane Microarrays with a Squeegee-based Assembly Method

Формирование биомембрана Microarrays с Ракель основе метода Ассамблеи

Lipid bilayer membranes form the plasma membranes of cells and define the boundaries of subcellular organelles. In nature, these membranes are ...

Lipid Bilayer Vesicle Generation Using Microfluidic Jetting

Липидов Bilayer везикул поколения Использование микрофлюидных струйное

Bottom-up synthetic biology presents a novel approach for investigating and reconstituting biochemical systems and, potentially, minimal organisms. This ...

Polymeric Microneedle Array Fabrication by Photolithography

Полимерные микроиглы массив Изготовление по фотолитографии

This manuscript describes the fabrication of polymeric microneedle (MN) arrays by photolithography. It involves a simple mold-free process by using a ...

Solid Lipid Nanoparticles (SLNs) for Intracellular Targeting Applications

Solid Lipid Nanoparticles SLNs for Intracellular Targeting Applications

Твердые липидов Наночастицы (SLNS) для внутриклеточного Ориентация Приложения

Nanoparticle-based delivery vehicles have shown great promise for intracellular targeting applications, providing a mechanism to specifically alter ...

Automated Lipid Bilayer Membrane Formation Using a Polydimethylsiloxane Thin Film

Автоматизированная двухслойной липидной мембраной, Образование Использование тонкой пленки полидиметилсилоксана

An artificial lipid bilayer, or black lipid membrane (BLM), is a powerful tool for studying ion channels and protein interactions, as well as for ...

Ligand Nano-cluster Arrays in a Supported Lipid Bilayer

Лигандом Нано-кластер Массивы в поддерживаемому липидный бислой

Currently there is considerable interest in creating ordered arrays of adhesive protein islands in a sea of passivated surface for cell biological ...

A Simple and Scalable Fabrication Method for Organic Electronic Devices on Textiles

Простой и масштабируемый способ изготовления для органических электронных устройств по текстилю

Today, wearable electronics devices combine a large variety of functional, stretchable, and flexible technologies. However, in many cases, these devices ...

Fabrication of Decellularized Cartilage-derived Matrix Scaffolds

Изготовление подмостей Decellularized хряща производные матрица

Osteochondral defects lack sufficient intrinsic repair capacity to regenerate functionally sound bone and cartilage tissue. To this extent, cartilage ...