Name: biomembrane fabrication by the solvent-assisted lipid bilayer (salb) method
Uploaded: 2015-12-01T13:00:00
Duration: 9 min 38 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Biomembrane Fabrication by the Solvent-assisted Lipid Bilayer SALB Method at JoVE.com

Författarna vill erkänna stöd från National Research Foundation (NRF -NRFF2011-01 och NRF2015NRF-POC0001-19), National Medical Research Council (NMRC / CBRG / 0005/2012), och Nanyang Technological University till NJC

1. Bildning av stöds lipiddubbelskikt på en hydrofil fast bärare <ol><li> Bered lipid stamlösningar av 10 mg / ml 1,2-dioleoyl- sn-glycero-3-fosfokolin (DOPC) och 1 mg / ml 1,2-dioleoyl- sn-glycero-3-phosphoethanolamine- N - (lissaminrodamin B sulfonyl) (Rh-PE) genom att lösa respektive lipid pulver (lämpligt vägd i förväg med en analytisk massbalans) i isopropanol lösning. </li><li> Späd och blanda förrådslösningar i isopropanol i syfte att framställa den önskade lipidblandningen vid den slutliga koncentrationen. För fluorescensmikroskopi och FRAP experiment bör 0,5 vikt-% Rh-PE inkluderas i lipidblandningen. </li><li> Injicera lipidblandningen i isopropanol i mikroflödessystem kanal tills den är fylld. </li><li> Inkubera lipidblandningen på glasytan under ca 10 minuter. </li><li> Gradvis ersätta lipidlösningen med vatten eller buffertlösning med användning av en peristaltisk pump med en mycket låg flödeshastighet(10-50 | j, l / min). Alternativt, byt lipidblandningen genom upprepad pipettering. </li><li> Skölj kanalen noggrant med överskott av buffert för att avlägsna kvarvarande isopropanol. </li></ol> 2. Bildning av kolesterol-berikad Membran stöds Obs: Den fasta ytan (SiO 2) stöder vesikelfusion, men membrankompositionen (högt kolesterol) hämmar vesikelfusion eftersom kolesterolberikade vesiklar har hög böjstyvhet 30. <ol><li> Bered en stamlösning innehållande 10 mg / ml DOPC lipid, 10 mg / ml kolesterol, och ett mg / ml Rh-PE genom att först lösa de respektive pulvren i isopropanol. </li><li> Upprepa steg 1,2-1,6 med hjälp av stamlösningarna som framställts i steg 2.1. </li></ol> 3. membranfluiditet analys <ol><li> Doppa glasskiva i natriumdodecylsulfat (SDS) -lösning (1%) under 10 min. </li><li> Tvätta bilderna noggrant med avjoniserat vatten och skölj intelligenstim etanol. </li><li> Föna diabilder med hjälp av en svag ström av kväve. </li><li> Exponera glasen till syreplasma under 30 sekunder vid maximal högfrekvent effekt i den syreplasmakammaren. </li><li> Ta bort skyddsfilmen beläggning av botten kommersiella mikroflödessystem kammare (Figur 1A) med hjälp av en pincett och bifoga glasskiva på den klibbiga sidan av kammaren (Figur 1B). </li><li> Montera kontaktdonen och slangar till inlopps- och utloppslägen hos kammaren och placera mikroflödeskanalen på mikroskopsteget (Figur 1C). </li><li> Bilda en fluorescensmärkt stöd lipiddubbelskikt i mikroflödessystem kanal [upprepa steg 1 med önskad lipidkompositionen (t.ex. 0,5 mg / ml DOPC) inklusive 0,5 vikt% Rh-PE i organiskt lösningsmedel]. </li><li> Leta reda på dubbelskiktet planet med en 60X oljeimmersion mål (NA 1,49) för att ta bilder. </li><li> Ta två pre-blekmedels bilder, då foto bleka en 301; m bred cirkulär fläck med en 532 nm, 100 mW laserstråle. Innan fotoblekning, värma upp lasern tills dess intensitet har blivit stabil. Omedelbart efter fotoblekning, ta en serie bilder varje 1 sekund under 2 minuter för att följa återhämtningen i fluorescensintensiteten på blekt plats. </li></ol> 4. Kolesterol Kvantifiering Analys <ol><li> Exponera kiseldioxiden belagda kvartskristall sensorchipet till syrgasplasma under 30 s vid maximal högfrekvent effekt i den syreplasmakammaren. Avlägsna chipet från kammaren och omedelbart montera chip i mätkammaren. </li><li> Före experiment, först förvärvar frekvensen och försvinnande av sensorchip i luft för att säkerställa korrekt montering. <ol><li> För den kommersiella Q-Sense E1 eller E4 QCM-D instrument, kör Q-Soft program och klicka på &quot;Förvärv&quot; och välj &quot;Setup Measurement&quot;. </li><li> I det nya fönstret som visas, kontrollera 3, 5, 7, 9, 11 och 13 övertoner och klicka på Sök och springa för att kontrollera resonansspektra. Ställ in temperaturen på 24 ° C. Om en eller flera resonansfrekvenser inte överens med de förväntade värdena, kontrollera chip montering och åter utföra detta steg tills en överenskommelse har nåtts. </li></ol></li><li> Starta den peristaltiska pumpen och flödesbuffertlösning (10 mM Tris, 150 mM NaCl, pH 7,5) in i mätkammaren med en flödeshastighet av 100 ul / min. </li><li> I programmet, klicka på &quot;Förvärv&quot; och välj &quot;Starta mätning&quot; för att registrera resonansfrekvensen och energiupptagning signaler. Upprepa detta steg tills en stabil baslinje erhålls för frekvens och avlednings skift. Obs: För steg nedan, kommer det att finnas ytterligare frekvens och försvinnande skift som kan registreras som en funktion av tiden. </li><li> Injicera isopropanol (utan lipid) under 10 min. </li><li> Injicera blandning av DOPC lipid / kolesterol påönskade molförhållandet med en total lipidkoncentration av 0,5 mg / ml i isopropanol under 10 min. </li><li> Injicera buffert under 20 min vid en flödeshastighet av 100 ul / min. </li><li> Injicera en lösning av 1 mM metyl-β-cyklodextrin (MβCD) framställd i buffert (flödeshastighet 100 ul / min) tills frekvenssignalen når ett stabilt värde. </li><li> Mät den relativa positiva frekvensskift som orsakas av MβCD behandlingssteget och beräkna massan av kolesterol och DOPC lipider genom att omvandla Af cho och Af DOPC värden till mass värden med hjälp av Sauerbrey ekvationen [AM = - (C / n) × Af, där C = 17,7 ng / cm 2, n: överton]. </li><li> Beräkna molfraktionen av kolesterol i SLB, med hänsyn till molekylvikterna för DOPC lipid (786,1 g / mol) och kolesterol (386,6 g / mol). </li></ol>

The authors have no competing financial interests to disclose.

I detta arbete, är ett lösningsmedel-utbytesprotokollet presenterades i vilka lipider i alkohol (isopropanol, etanol eller n-propanol) inkuberas med en fast bärare och därefter alkoholen ersattes gradvis med en vattenhaltig buffertlösning för att driva en serie av fasövergångar så småningom producera lamellär fas lipiddubbelskikt 24. Det är visat att metoden möjliggör tillverkning av uppburna lipidbiskikt på ytor såsom guld, vilket är svår till vesikelfusion metoden. En optimal lipidkoncentration intervall (0,1 - 0,5 mg / ml) har bestämts för fullständig dubbelskiktsbildning i experimentella standardformat som testats hittills. Vid lipidkoncentrationer under 0,1 mg / ml, diskreta, mikroskopiska fläckar av dubbellager bildas. Å andra sidan, vid koncentrationer över 0,1 mg / ml och lägre än 0,5 mg / ml, är en komplett och enhetlig dubbelskikt bildas. Vid lipidkoncentrationer över detta intervall, var en fluid biskikt fortfarande formade som verifikationed av FRAP analys, men avslöjar fluorescensmikroskopi närvaron av ytterligare lipidstrukturer ovanpå dubbelskiktet. Påfallande, morfologin för dessa ytterligare lipidstrukturer, bestämt genom QCM-D-analys, beroende på alkoholen som användes under inkubationssteget. I fallet med etanol, de relativt höga ö f och Δ D skift likna QCM-D signatur erhålls för en adsorberad vesikel skikt. När isopropanol eller n-propanol i stället används, Δ f var något högre än det värde som förväntas för ett dubbelskikt (slut Δ f mellan -30 till -40 Hz), medan Δ D var betydligt högre. Sådana QCM-D responser skulle förväntas under längre lipidstrukturer (t.ex. maskliknande miceller) utskjutande utåt från membranytan (som synligt genom fluorescensmikroskopi i vissa fall). Hastigheten för lösningsmedelsutbyte är en annan viktig parameter, som kan vara kritisk, especially när lägre lipidkoncentrationer (t.ex., 0,1 mg / ml) används. Snabb lösningsmedelsutbyte vid låg lipidkoncentration kan leda till bildandet av ofullständiga biskikt. I standard mätkammaren används för QCM-D mätningar i detta dokument (Q-Sense E4 mätkammare), flödeshastigheter på cirka 100 pl / min, var lämpliga för mycket reproducerbara komplett dubbelskiktsbildning. För flödesceller med andra geometrier och volym, kan den optimala flödeshastigheten variera och måste bestämmas empiriskt baserat på trappan föreslås häri. Förutom att bilda stöds lipiddubbelskikt på ytor som är svår till vesikelfusion kan SALB användas för att kringgå behovet lipidvesiklar som kan brista, vilket öppnar dörren för tillverkning av stöd membran med komplexa kompositioner. Som ett illustrativt exempel komposition, var lipidblandningar med hög fraktion av kolesterol undersöktes. Kolesterol är en viktig del av MammAlian cellmembran, och dess fraktion kan närma 45-50 mol-% av membranets lipidsammansättning (t.ex., i erytrocyter). Sålunda bör även en enkel modell av ett lipiddubbelskikt som representerar en human cellmembran innefattar kolesterol. Medan vesikelfusion skulle kunna användas för att tillverka fluidiska lipiddubbelskikt innehållande endast 10-15% kolesterol, möjliggör SALB metoden bildandet av fluid lipiddubbelskikt innehållande höga fraktioner av kolesterol (upp till 57 mol-%, såsom kvantifierades genom QCM-D måtten) 36. När emellertid nivån av kolesterol var ytterligare förhöjd (upp till 63 mol-%), var rand-form domäner observer 37. De samexisterande domäner var vätska, som påminner om dem som observerats i β-regionen i fasdiagrammet av kolesterol / fosfolipider monolager vid luft-vattengränsytan. Sammantaget är SALB metoden visat sig vara ett enkelt och effektivt sätt att bilda stöds lipiddubbelskikt, särskilt in fall utanför ramen för konventionell vesikelfusion metod. Hittills var mikroskopi QCM-D Teknik och fluorescens främst används för att karakterisera de stöds lipiddubbelskikt bildade genom SALB metoden. Ser fram emot, ett brett utbud av ytkänsliga analytiska mätningar tekniker, inklusive ytplasmonresonans (SPR) 38, atomkraftsmikroskopi (AFM) 39,40, Fourier-transform infraröd spektroskopi 41, röntgen 42 och neutron reflektivitet 43, kan användas för att ytterligare karakterisera och studera enkla och komplexa dubbelskiktskonfigurationer Ställdes enligt SALB metoden. Dessa nya funktioner öppnar dörren till ett större antal forskare som kan utforska artificiella cellmembran genom att dra nytta av en enkel och robust försöksprotokoll.

Den fasta stödda lipidbiskiktet 1 (SLB) är en mångsidig plattform som bevarar de grundläggande egenskaperna hos biomembraner såsom biskiktet tjocklek, tvådimensionell lipid diffusivitet, och förmågan att vara värd för membranassocierade biomolekyler. På grund av komplexiteten av naturliga cellmembran, har denna enkla plattform visats fungera som en effektiv plattform för in vitro-studier av membranrelaterade processer såsom flotte bildning 2, proteinbindning 3, virus och virusliknande partikelbindning 4,5 , och cellsignalering 6. Bildat i nära anslutning till en fast bärare, är SLB plattformen kompatibel med en rad av ytkänsliga mätningar tekniker såsom total inre reflektion mikroskopi (TIRF), kvartskristallmikrovåg upptagnings (QCM-D), och impedans-spektroskopi. Flera metoder har utvecklats för att producera olika typer av SLBs, inklusive luftbubblakollaps 7 och dopp penna nanolithography 8 för submicron stora lipid fläckar, spin-beläggning 9 för dubbelskikts stackar och Langmuir-Blodgett (LB) 10 och vesikelfusion (VF) 11 för full-spänner, enstaka lipiddubbelskikt beläggningar. VF metod består i adsorption av små unilamellära vesiklar till en fast bärare och efterföljande spontan bristning och fusion till bildning av en kontinuerlig lipiddubbelskikt. Men under fysiologiska förhållanden, spontan vesikler bristning huvudsakligen begränsad till kiselbaserade material, såsom kiseldioxid, glas och glimmer. Dessutom har vesikel bristning inte ske spontant för vesiklar av komplexa lipid-kompositioner, såsom de som innehåller höga andelar av kolesterol eller negativt laddade lipider. Beroende på systemet, kan vesikel bristning induceras genom ytterligare skräddarsy de experimentella betingelserna såsom temperatur 12, lösningens pH 13, och salthalt 14, osmotisk chock 15 </supp&gt; eller tryck 16, eller tillägg av tvåvärda joner, såsom Ca2 + 17. Alternativt kan den membran aktiva AH-peptiden införas för att destabilisera ett skikt av absorberade blåsor, vilket leder till vesikler bristning och tvåskikts bildning på en rad ytorna 18-22. Dessutom kräver en framgångsrik dubbellager bildning framställning av en välkontrollerad population av små unilamellära vesiklar som kan vara tidskrävande och svårt att uppnå för vissa membrankompositioner. Därför, trots dess höga effektivitet i optimala fall (t.ex. efter omfattande frysning-tining förbehandling av vesiklar 23), den allmänna tillämpningen av vesikelfusion begränsas av omfattningen av lämpliga substrat och membrankompositioner. Lösningsassisterade lipiddubbelskikt (SALB) metod 24-28 är en alternativ tillverkningsteknik, som inte kräver lipidvesiklar. Metoden bygger på deponerings of lipidmolekyler på en fast yta i närvaro av ett med vatten blandbart organiskt lösningsmedel, följt av gradvis utbyte av detta lösningsmedel med en vattenhaltig buffertlösning för att utlösa SLB bildning. Under den lösningsmedelsväxlingssteg, den ternära blandningen av lipider, organiskt lösningsmedel och vatten undergår en serie fasövergångar med ökande vattenfraktionen, vilket leder till bildningen av lamellära fasstrukturer i bulklösningen och en SLB på det fasta substratet. Viktigt är detta självmontering rutt kringgår behovet av vesikel bristning, som vanligtvis är den begränsande steget för omvandlingen av adsorberade vesiklar i en SLB. Protokollet är tillämpbar på en mängd olika ytor, inklusive kiseldioxid, aluminiumoxid, krom, indiumtennoxid, och guld. I detta dokument och i den medföljande videon, är en jämförelse av lipid nedfall av SALB och vesikelfusion metoder presenteras. I synnerhet påverkan av experimentella parametrar, inklusive lipidkoncentration, Flödeshastighet, och valet av vattenblandbart organiskt lösningsmedel, på kvaliteten av dubbelskiktet som bildas av SALB metoden diskuteras. Analytisk karakterisering av de fabricerade SLBs utförs av QCM-D, fluorescensmikroskopi, och fluorescens återhämtning efter fotoblekning (FRAP) tekniker. QCM-D övervakning är en yta känslig teknik mass mätning som sedan den banbrytande arbete som utförts av Keller och Kasemo 29, har i stor utsträckning använts för att kvantitativt undersöka biskiktet bildning. Fluorescensmikroskopi medger inspektion av membranets homogenitet samt visualisering av membrandomäner. FRAP tekniken är ett standardverktyg för att bestämma den laterala rörligheten hos lipidmolekyler i en SLB, vilket är en väsentlig egenskap hos fluid membran. Den första delen av denna studie omfattar QCM-D analys av SALB och vesikelfusion metoder som används för att försöka dubbelskiktsbildning på kiseldioxid och guld. I den andra delen,framställning och karakterisering av stöd membran innehållande en rad av kolesterolkoncentrationer med SALB metoden demonstreras och resultaten jämförs med de som uppnås genom vesikelfusion metoden.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="1459">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:719px;">QCM-D silicon dioxide-coated substrates</td>
			<td style="width:356px;">QSense AB,&#160; Sweden</td>
			<td style="width:217px;"></td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">QCM-D gold-coated substrates</td>
			<td style="width:356px;">QSense AB,&#160; Sweden</td>
			<td style="width:217px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Q-Sense E4 module</td>
			<td>QSense AB,&#160; Sweden</td>
			<td style="width:217px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">Plasma Cleaner, PDC-32G</td>
			<td>Harrick Plasma, Ithaca, NY</td>
			<td>PDC-001 (115V)&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:719px;">1,2-dioleoyl-sn-glycero-3-phosphocholine (DOPC)</td>
			<td>Avanti Polar Lipids</td>
			<td>850375P</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">1,2-dioleoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine-N-(lissamine rhodamine B sulfonyl) (ammonium salt) (Rh-PE)</td>
			<td>Avanti Polar Lipids</td>
			<td>810150P</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">cholesterol</td>
			<td>Avanti Polar Lipids</td>
			<td style="width:217px;">700000P</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Methyl-&#946;-cyclodextrin</td>
			<td style="width:356px;">Sigma&#160;</td>
			<td style="width:217px;">C4555</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Isopropanol</td>
			<td style="width:356px;">Sigma&#160;</td>
			<td align="right">673773</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:719px;">Ethanol</td>
			<td style="width:356px;">Sigma&#160;</td>
			<td align="right" style="width:217px;">459844</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:719px;">n-propanol</td>
			<td style="width:356px;">Sigma&#160;</td>
			<td align="right">279544</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:719px;">Sticky-Slide I 0.1 Luer</td>
			<td style="width:356px;">IBIDI</td>
			<td align="right" style="width:217px;">81128</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:719px;">Male elbow 1/8&#8221;</td>
			<td style="width:356px;">Cole-Parmer</td>
			<td style="width:217px;">30505-70</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:719px;">Silicon tubing 1.6mm ID</td>
			<td style="width:356px;">IBIDI</td>
			<td align="right" style="width:217px;">10842</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:719px;">Glass coverslip No. 1.5H, 25 mm x 75 mm</td>
			<td style="width:356px;">IBIDI</td>
			<td align="right" style="width:217px;">10812</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:719px;">Reglo Digital M2-2/12 Peristaltic Pump</td>
			<td style="width:356px;">Ismatec</td>
			<td style="width:217px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:719px;">Sodium dodecyl sulfate</td>
			<td style="width:356px;">Sigma&#160;</td>
			<td align="right" style="width:217px;">71725</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

biomembrane fabrication by the solvent-assisted lipid bilayer (salb) method

För att efterlikna cellmembranen, är den uppburna lipiddubbelskiktet (SLB) en attraktiv plattform som möjliggör in vitro undersökning av membranrelaterade processer samtidigt ge biokompatibilitet och biofunctionality till fasta substrat. Den spontana adsorption och ruptur av fosfolipidvesiklar är den mest använda metoden för att bilda SLBs. Men under fysiologiska betingelser, är vesikelfusion (VF) begränsad till endast en delmängd av lipidkompositioner och fasta bärare. Här beskriver vi ett steg allmänna förfarande kallas lösningsmedelsassisterad lipiddubbelskikt (SALB) bildande metoden för att bilda SLBs som inte kräver blåsor. Den SALB metoden involverar avsättning av lipidmolekyler på en fast yta i närvaro av vattenblandbara organiska lösningsmedel (t.ex. isopropanol) och efterföljande lösningsmedelsutbyte med vattenhaltig buffertlösning för att utlösa SLB bildning. Den kontinuerliga lösningsmedelsväxlingssteg möjliggör tillämpning avmetod i ett genomflödes konfiguration som är lämplig för övervakning dubbelskiktsbildning och efterföljande förändringar med användning av ett brett spektrum av ytkänsliga biosensorer. Den SALB metod kan användas för att tillverka SLBs på ett brett spektrum av hydrofila fasta ytor, inklusive sådana som är svår till vesikelfusion. Dessutom möjliggör det framställning av SLBs sammansatta av lipidkompositioner som inte kan framställas med användning vesikeln fusionsmetoden. Häri vi jämför resultat erhållna med de SALB och konventionella vesikel fusionsmetoder på två illustrativa hydrofila ytor, kiseldioxid och guld. För att optimera de experimentella betingelserna för beredning av högkvalitativa bilayers framställda via SALB metoden effekten av olika parametrar, bland annat vilken typ av organiska lösningsmedel i avsättningssteget, graden av lösningsmedelsutbyte, och lipidkoncentrationen diskuteras tillsammans med felsökningstips . Bildandet av stöds membran innehållande höga fraktioner av kolesterol är också demonerkoncentrerat med SALB metoden, med fokus på tekniska kapacitet SALB tekniken för ett brett spektrum av membrankonfigurationer.

Watch this Scientific Journal Video about Biomembrane Fabrication by the Solvent-assisted Lipid Bilayer SALB Method at JoVE.com

Biomembrane Fabrication by the Solvent-assisted Lipid Bilayer SALB Method

Vi presenterar ett experimentellt protokoll för att bilda en uppburen lipiddubbelskikt på fasta substrat utan att använda lipidvesiklar. Vi visar en en-stegsmetod för att bilda ett lipiddubbelskikt på kiseldioxid och guld samt membran som stöds med kolesterol-anrikad domän för olika biologiska tillämpningar.

Biomembran Fabrication av lösningsmedel assisterad lipiddubbelskiktet (SALB) Metod

In order to mimic cell membranes, the supported lipid bilayer (SLB) is an attractive platform which enables in vitro investigation of membrane-related ...

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Biomembrane Fabrication by the Solvent-assisted Lipid Bilayer (SALB) Method

Constant Pressure-controlled Extrusion Method for the Preparation of Nano-sized Lipid Vesicles

Konstant tryck kontrollerad Extrusion metod för framställning av Nano-storlek lipidvesiklar

Liposomes are artificially prepared vesicles consisting of natural and synthetic phospholipids that are widely used as a cell membrane mimicking platform ...

Microfluidic Chip Fabrication and Method to Detect Influenza

Mikroflödessystem Chip Fabrication och metod för att upptäcka influensa

Fast  and effective diagnostics play an important role in controlling infectious  disease by enabling effective patient management and treatment. Here, we ...

Formation of Biomembrane Microarrays with a Squeegee-based Assembly Method

Bildning av Biomembrane Microarrays med en gummiskrapa baserade Assembly Method

Lipid bilayer membranes form the plasma membranes of cells and define the boundaries of subcellular organelles. In nature, these membranes are ...

Lipid Bilayer Vesicle Generation Using Microfluidic Jetting

Lipiddubbelskiktet Blås Generation Använda Microfluidic Jetting

Bottom-up synthetic biology presents a novel approach for investigating and reconstituting biochemical systems and, potentially, minimal organisms. This ...

Polymeric Microneedle Array Fabrication by Photolithography

Polymera mikronålmatris Fabrication genom fotolitografi

This manuscript describes the fabrication of polymeric microneedle (MN) arrays by photolithography. It involves a simple mold-free process by using a ...

Solid Lipid Nanoparticles (SLNs) for Intracellular Targeting Applications

Solid Lipid Nanoparticles SLNs for Intracellular Targeting Applications

Solid lipid Nanopartiklar (SLNs) för Intracellulär Targeting Tillämpningar

Nanoparticle-based delivery vehicles have shown great promise for intracellular targeting applications, providing a mechanism to specifically alter ...

Automated Lipid Bilayer Membrane Formation Using a Polydimethylsiloxane Thin Film

Automatiserad lipidbiskiktmembranet bildning med användning av en Polydimetylsiloxan Thin Film

An artificial lipid bilayer, or black lipid membrane (BLM), is a powerful tool for studying ion channels and protein interactions, as well as for ...

Ligand Nano-cluster Arrays in a Supported Lipid Bilayer

Ligand Nano-kluster arrayer i en stöds lipiddubbelskikt

Currently there is considerable interest in creating ordered arrays of adhesive protein islands in a sea of passivated surface for cell biological ...

A Simple and Scalable Fabrication Method for Organic Electronic Devices on Textiles

En enkel och skalbar tillverkningsmetod för Organic Electronic Devices på textilier

Today, wearable electronics devices combine a large variety of functional, stretchable, and flexible technologies. However, in many cases, these devices ...

Fabrication of Decellularized Cartilage-derived Matrix Scaffolds

Tillverkning av cell-lösa brosk-derived Matrix ställningar

Osteochondral defects lack sufficient intrinsic repair capacity to regenerate functionally sound bone and cartilage tissue. To this extent, cartilage ...