Name: repeated blood collection from tail vein of non-anesthetized rats with a vacuum blood collection system
Uploaded: 2017-12-10T13:00:00
Duration: 5 min 12 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Repeated Blood Collection from Tail Vein of Non-Anesthetized Rats with a Vacuum Blood Collection System at JoVE.com

De auteurs hebben geen bevestigingen te maken.

Alle procedures werden goedgekeurd door de Tongji Medical College Council op het Animal Care Comité van Huazhong Universiteit voor wetenschap en technologie (Wuhan, China). Het manuscript werd voorbereid volgens aankomen (dier onderzoek: rapportage van In Vivo experimenten) richtsnoeren6.
1. veehouderij
<ol><li>Gebruik van Sprague-Dawley (SD) ratten (n = 20, 10 mannen, 8 weken oude, gewicht 261 tot 291 g, betekenen = 272.85 ±9.07 g) uit de experimentele dieren Center van Huazhong Universiteit van wetenschap en technologie en onderhouden van ratten volgens de richtsnoeren voor de zorg en het gebruik van Proefdieren die worden gepubliceerd door de ons National Institute of Health (NIH publicatie No.85-23, herziene versie van 1996)</li>
	<li>Huis onder standaardomstandigheden met gratis toegang tot voedsel en drinkwater. Houden beddengoed ratten in 530 cm2 kooien met hout-scheren. Huis twee ratten in elke kooi. Alle kooien open te houden voor het milieu van de kamer (geen micro-isolatie of geventileerde kooien)</li>
	<li>Zorgen dat het personeel dat betrokken is in de experimentele protocol regelmatig behandelen de ratten.</li>
	<li>Handhaven van de kamertemperatuur tussen 21 ° C en 23 ° C. Tarieven geven een normale zout dieet (0,3% NaCl) tijdens de studie.</li>
</ol>2. bloed verzameling Procedure
Opmerking: Het systeem voor het verzamelen van vacuüm bloed bestaat uit een dubbel-puntige naald [22 G (0.7 mm x 25 mm)], een plastic houder, en een reeks van vacuümbuizen (2 mL) met rubberen stoppen (Figuur 1).
<ol><li>Plaats de rat in een kunststof beteugeling houder en wassen van de staart met warme (20-30 ° C) water te verwijderen van zichtbaar vuil of ontlasting. Terwijl een assistent de staart in een verlengde positie houdt, veeg de staart met 70% ethanol, en reinig met gaas om de ader die duidelijk.</li>
	<li>Breng de tip van 22 G vlinder naald in een van de laterale staart nerven (ongeveer 5 mm) op een positie ongeveer 2-3 cm afstand van het puntje van de staart onder hoek van ongeveer 20 ° (Figuur 2). Het verzamelen van bloed in de buis vacuüm collectie door het invoegen van het einde van de rubber van de vlinder naald in de vacuüm bloed collectie buis (Figuur 3). Opmerking: De maximale collectie bloed volumewaarde bedraagt 1,2 mL7.</li>
	<li>Na de bloedinzameling, verwijder de naald en zachtjes druk uitoefenen op de site van de punctie met gaas voor 15-30 s om te stoppen met de doorstroming van het bloed. Vervolgens laat de rat van de kunststof houder van de beteugeling en de rat terug naar haar kooi.</li>
	<li>Gebruik buizen die EDTA als een antistollingsmiddel bevatten voor het verzamelen van bloed plasma. Voorzichtig omkeren de buis meerdere malen te mengen antistollingsmiddel in het bloed en leg de monsters op ijs verticaal.</li>
	<li>Centrifugeer het bloed monster collectie buizen in een gekoelde centrifuge bij 2.000 x g gedurende 10 minuten om te scheiden van plasma of serum.</li>
	<li>Pak de plasma/serum, verzorgen niet te storen van de rode en witte bloedcellen lagen. Gebruik voor het verzamelen van bloedserum, buizen zonder antistollingsmiddel. Beide soorten monster kunnen worden onmiddellijk gebruikt of opgeslagen bij-80 ° C voor maximaal één jaar. Opmerking: Succesvolle bloedinzameling werd gedefinieerd als het verkrijgen van 1,2 mL bloed elke keer. Maximale punctie tijd was ingesteld naar drie proeven, als het volume van de totale bloed lager dan 1,2 mL na de derde lekke band was, was het gedefinieerd als een mislukte bloedinzameling. De duur van de bemonstering begint vanaf de staart ader punctie voor de verwijdering van de vlinder naald na bloed-collectie.</li>
	<li>
Het verzamelen van bloed twee keer binnen twee weken7.
	<ol>
<li>Om te testen en controleren van de haalbaarheid van deze methode, trainen twee medische studenten (beginners) voor 2 h alvorens dit bloed collectie protocol uit te voeren. Gebruik van twintig ratten en bloed trekken uit 10 ratten van 2 ervaren fellows (experimentele groep) en 10 ratten door de 2 medische studenten (beginner groep).</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. statistische analyse
<ol><li>Express-gegevens als een gemiddelde ± standaardafwijking en analyseren met PASW Statistics 17. Een α-waarde van 0.05 werd daarom gekozen voor p < 0.05 werd beschouwd als een statistisch significant.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Brown, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Blood+collection+from+the+tail+of+a+rat.">Blood collection from the tail of a rat.</a> Lab Anim (NY). 35 (8), 24-25 (2006).</li><li>Parasuraman, S., Raveendran, R., Kesavan, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Blood+sample+collection+in+small+laboratory+animals.">Blood sample collection in small laboratory animals.</a> J Pharmacol Pharmacother. 1 (2), 87-93 (2010).</li><li>Staszyk, C., Bohnet, W., Gasse, H., Hackbarth, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Blood+vessels+of+the+rat+tail:+a+histological+re-examination+with+respect+to+blood+vessel+puncture+methods.">Blood vessels of the rat tail: a histological re-examination with respect to blood vessel puncture methods.</a> Lab Anim. 37 (2), 121-125 (2003).</li><li>Lee, G., Goosens, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sampling+blood+from+the+lateral+tail+vein+of+the+rat.">Sampling blood from the lateral tail vein of the rat.</a> J. Vis. Exp. (99), (2015).</li><li>. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> WHO Guidelines on Drawing Blood: Best Practices in Phlebotomy WHO Guidelines Approved by the Guidelines Review Committee. , (2010).</li><li>Kilkenny, C., Altman, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Improving+bioscience+research+reporting:+ARRIVE-ing+at+a+solution.">Improving bioscience research reporting: ARRIVE-ing at a solution.</a> Lab Anim. 44 (4), 377-378 (2010).</li><li>Diehl, K. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+good+practice+guide+to+the+administration+of+substances+and+removal+of+blood,+including+routes+and+volumes.">A good practice guide to the administration of substances and removal of blood, including routes and volumes.</a> J Appl Toxicol. 21 (1), 15-23 (2001).</li><li>Eder, J. M., Cutter, G. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+new+device+for+collecting+cord+blood.">A new device for collecting cord blood.</a> Obstet Gynecol. 86 (5), 850-852 (1995).</li><li>Reynolds, B. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+a+new+device+for+blood+sampling+in+cats+with+a+vacuum+tube+collection+system+-+plasma+biochemistry,+haematology+and+practical+usage+assessment.">Comparison of a new device for blood sampling in cats with a vacuum tube collection system - plasma biochemistry, haematology and practical usage assessment.</a> J Feline Med Surg. 9 (5), 382-386 (2007).</li><li>Wiwanitkit, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+blood+specimens+from+plain+and+gel+vacuum+blood+collection+tubes.">Comparison of blood specimens from plain and gel vacuum blood collection tubes.</a> J Med Assoc Thai. 84 (5), 723-726 (2001).</li><li>Wollowitz, A., Bijur, P. E., Esses, D., John Gallagher, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Use+of+butterfly+needles+to+draw+blood+is+independently+associated+with+marked+reduction+in+hemolysis+compared+to+intravenous+catheter.">Use of butterfly needles to draw blood is independently associated with marked reduction in hemolysis compared to intravenous catheter.</a> Acad Emerg Med. 20 (11), 1151-1155 (2013).</li></ol>

De auteurs hebben niets te onthullen

Dit verslag beschrijft een methode collectie easy-to-learn bloed bij ratten. Onze resultaten toonden aan dat deze methode haalbaar is voor herhaaldelijk het verzamelen van een grote hoeveelheid bloed van ratten. Bovendien, deze methode gemakkelijk kan worden beheerst met een korte leercurve. Deze procedure kan worden uitgevoerd bij ratten niet-verdoofd en veroorzaakt alleen minimale stress voor de dieren.
Bloed kunnen worden verzameld van ratten op verschillende locaties. De ader van de staart is een superieure locatie voor bloed bemonstering4. Het is echter niet altijd eenvoudig te verkrijgen genoeg bloed volume van de dunne en lage bloed stroom staart ader van de ratten. Het systeem voor het verzamelen van vacuüm bloed wordt meestal gebruikt voor het verzamelen van bloedmonsters van patiënten in de dagelijkse klinische praktijk. Dit systeem voor het verzamelen van vacuüm bloed is bij patiënten en onderzoek dieren gebruikt voor een lange tijd8,9,10. Dit systeem bestaat uit een vacuüm bloed collectie buis met siliconen gecoate binnenband muur en vlinder naald. Het was gebaseerd op het beginsel van de vacuüm onderdruk en laat de continue tekening van bloed zonder het risico van het verzamelen van bloed, dat ook de kans op besmetting en hemolyse11 vermindert. De hoeveelheid bloedmonster in de katheter is ongeveer 0.3 mL. Na de terugtrekking van de naald uit de staart ader, zullen het bloed geblokkeerd in de katheter vloeien in de verzamelen vacuüm buis als gevolg van het vacuüm. Deze methode is ook van toepassing voor het verzamelen van bloed van ratten met een gewicht van minder dan 100 g met het gebruik van een kleinere naald punctie.
Dit bloed collectie methode heeft verschillende voordelen. Deze procedure slechts minimale schade toebrengt aan ratten en bloedinzameling kan worden uitgevoerd zonder het gebruik van verdoving, dus de invloed van de stress-respons en de verdoving op het bloedmonster kan worden vermeden. Onze observaties bleek dat ratten stil in de plastic houder van de matigende tijdens de procedure en er geen doden tijdens deze experimenten waren. Ten tweede, herhaalde bloedinzameling elke één of twee dagen is mogelijk, waardoor frequente bemonstering van bloed met een voldoende volume voor verschillende onderzoeksdoeleinden. Ten slotte, deze methode is eenvoudig te leren en was gemakkelijk onder de knie door beginners na een periode van korte (2 h) leren, zoals aangegeven door de soortgelijke slagingspercentages en de punctie tijden tussen de groepen van het experimentele en beginners in dit verslag. In een vorig rapport, Lee et al. aangetoond een gelijkaardige methode voor de bemonstering van bloed uit de ader van de laterale staart van de rat-4. Onze methode is eenvoudiger dan die gerapporteerd door Lee et al. 4 in dat we direct de naald punctie in de ader van de staart en het andere uiteinde van de buis invoegen is direct verbonden met de vacuüm buis voor het verzamelen van het bloed, zonder het gebruik van een extra spuit en handmatige aspiratie van het bloed en zonder de noodzaak van ' melk ING' de ader ter vergemakkelijking van de bloedstroom. Het verzamelen van bloed met dit gesloten systeem vermindert de kans op besmetting van bloed. Gebruik van de plastic beteugeling houder ook vermindert de stress aan de rat en bevordert de fixatie van de staart.
De volgende twee stappen zijn cruciaal voor de succesvolle toepassing van deze methode. 1) het uitbreiden van de staart en te voorkomen dat het verkeer van de staart; 2) voorzichtig doorprikken de ader onder een hoek van 20 ° te voorkomen van lekke band via de ader en houd de naald punctie in de ader.
Kortom, is de aangenomen vacuüm bloed collectie methode bij ratten veilig, haalbaar en makkelijk om te oefenen. Deze methode kan regelmatige bemonstering van bloed met een volume van voldoende bloed verkregen uit niet-verdoofd ratten.

Bloedmonsters van ratten is vereist voor een breed scala aan experimentele studies. Technieken voor de bloedinzameling van de rat omvatten aanprikken van het hart, retro-orbitaal plexus halsslagader, saphenous ader, staart bloedvaten, halsslagader, abdominale aorta en vena cava. De meeste technieken (behalve saphenous ader en staart bloedvat punctie) vereisen verdoving1,2. Aderen van de staart van de rat zijn routinematig doorboord voor bloedmonsters en vasculaire injectie. Na behandeling van de staart met warm water, zijn de bloedvaten goed verwijde en geschikt voor manipulatie, zelfs wanneer er ratten zijn narcose3.
Ondanks de ontwikkeling van nieuwe en verbeterde technieken voor het verkrijgen van bloedmonsters in kleine laboratorium dieren2, is het niet altijd gemakkelijk te verkrijgen van voldoende bloed bij de bemonstering van kleine dieren. De ader van de staart van ratten is een superieure locatie voor bloed bemonstering4. Echter, de ader van de staart is dun, dus het is soms moeilijk te doorprikken en lang zou duren om genoeg bloed als gevolg van zijn lage bloedtoevoer. Bloedinzameling via een opzuigen buis systeem is een typische methode in de dagelijkse klinische praktijk. Dit gesloten systeem voor het verzamelen van bloed vermindert het risico van directe blootstelling aan bloed en gemakkelijker meerdere monsters van een enkele Venapunctie5te nemen. Het onderhavige verslag wordt een eenvoudige staart veneuze bloedmonsters methode bij niet-verdoofd ratten met behulp van het opzuigen buis systeem beschreven. Deze methode is gemakkelijk te beheersen en kan worden gebruikt voor het verkrijgen van een grote hoeveelheid bloed herhaaldelijk bij ratten.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="634">
	<tbody>
		<tr height="71">
			<td height="71" style="height:71px;width:192px;">a double-pointed needle</td>
			<td style="width:244px;">Shanghai Kang Nong medical instrument co., LTD, China</td>
			<td style="width:120px;">22G&#160;</td>
			<td style="width:79px;">(0.7&#215;25mm)</td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:192px;">vacuum tubes</td>
			<td style="width:244px;">Wuhan Zhi Yuan, medical science and technology co., LTD, China</td>
			<td style="width:120px;">2 ml</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:192px;">rat restraining holder&#160;</td>
			<td style="width:244px;">Shanghai Kang Nong medical instrument co., LTD, China</td>
			<td style="width:120px;">250g rat hoder model</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="140">
			<td height="140" style="height:140px;width:192px;">normal salt diet for rats</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td style="width:79px;">Rats received a normal salt diet (0.3% NaCl) throughout the study</td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:192px;">SPSS software for statistical analysis</td>
			<td>SPSS Inc,&#160; Chicago; USA&#160;</td>
			<td style="width:120px;">Version 17.0.&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

repeated blood collection from tail vein of non-anesthetized rats with a vacuum blood collection system

Bloed kunnen worden verzameld van ratten in een aantal locaties van de bemonstering. Bijvoorbeeld, is de staart-ader een superieure locatie voor bloedmonsters. Echter is de ader van de staart dun zodat het is soms moeilijk te doorprikken. Bovendien, de staart-ader heeft lage bloedtoevoer en vereist een lange bemonsteringstijdstip om voldoende bloed. Dit verslag beschrijft een eenvoudig bloed bemonsteringsmethode, de vacuüm bloed collectie methode, die meestal gebruikt wordt om het verkrijgen van bloedmonsters van patiënten, hier gebruikt voor niet-verdoofd ratten. De 22 G vlinder naald tip is ingevoegd in een van de aders van de laterale staart ongeveer 2-3 cm vanaf het puntje van de staart onder een hoek van ongeveer 20°, en bloed in de buis vacuüm collectie werd verzameld door het invoegen van het einde van de rubber van de vlinder naald in de va cuum bloed collectie buis. De huidige experimentele resultaten blijkt dat het slagingspercentage 95% in de experimentele groep en 90% in de groep van de beginner. Het slagingspercentage en punctie tijden waren vergelijkbaar tussen twee groepen. De bemonstering duur was aanzienlijk korter in de experimentele groep ten opzichte van beginner groep. Kortom, is deze methode vacuüm bloed collectie voor sequentiële bloedmonsters van de ader van de staart van niet - narcose ratten haalbaar en easy-to-learn, die kan dienen als een betrouwbare alternatief voor andere conventioneel bloed sampling technieken voor gebruikt ratten.

Duur van de bemonstering, lichaamsgewicht en bloed collectie volume van de twee groepen Bloed werd bijeengezocht uit 10 ratten (5 reutjes) tweemaal binnen twee weken in elke groep. Het gemiddelde lichaamsgewicht in beide groepen gelijkaardig was (272.00 ±9.66 g en 273.70 ±8.87 g). Bemonstering van duur was aanzienlijk korter in de experimentele groep ten opzichte van beginner groep (2,77 ±0.53 min vs. 3,28 ±0.83 min, p < 0.05) (tabel 1).
Succes tarief en perforaties van de tijden van twee groepen Het slagingspercentage was 95% (19/20) in de experimentele groep en 90% (18/20) in de beginner groep (p > 0,05). Punctie tijden waren niet significant verschillend tussen de twee groepen (1,50 ±0.61 min vs. 1.85 ±0.75 min, p > 0,05) (tabel 2). Deze resultaten geven aan deze methode is eenvoudig te leren, en de techniek onder de knie kan worden na de training voor 2 h.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55852/55852fig1.jpg"> Figuur 1 : vacuüm blood collection tube 2 mL (links); 22 G vlinder naald (midden); de kunststof beteugeling houder (rechts). <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/55852/55852fig1large.jpg" target="_blank">Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55852/55852fig2.jpg"> Figuur 2 : De naald tip was de laterale staart ader (ongeveer 5 mm) ingevoegd op de positie ongeveer 2-3 cm afstand van het puntje van de staart onder hoek van ongeveer 20 °. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/55852/55852fig2large.jpg" target="_blank">Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55852/55852fig3.jpg"> Figuur 3 : Succesvol Venapunctie. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/55852/55852fig3large.jpg" target="_blank">Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.</a>
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td colspan="5">Experimentele groep</td>
			<td></td>
			<td colspan="5">Beginner groep</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td>Geslacht</td>
			<td>Lichaamsgewicht (g)</td>
			<td>Verzamelde bloed volume (mL)</td>
			<td>bemonstering duur (min)</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Geslacht</td>
			<td>Lichaamsgewicht (g)</td>
			<td>Verzamelde bloed volume (mL)</td>
			<td>bemonstering duur (min)</td>
		</tr>
<tr>
<td>E1-1</td>
			<td>man</td>
			<td>291</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.12</td>
			<td></td>
			<td>B1-1</td>
			<td>man</td>
			<td>282</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.18</td>
		</tr>
<tr>
<td>E1-2</td>
			<td>man</td>
			<td>291</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.73</td>
			<td></td>
			<td>B1-2</td>
			<td>man</td>
			<td>282</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.18</td>
		</tr>
<tr>
<td>E2-1</td>
			<td>man</td>
			<td>276</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.3</td>
			<td></td>
			<td>B2-1</td>
			<td>man</td>
			<td>264</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3,73</td>
		</tr>
<tr>
<td>E2-2</td>
			<td>man</td>
			<td>276</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.37</td>
			<td></td>
			<td>B2-2</td>
			<td>man</td>
			<td>264</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2,47</td>
		</tr>
<tr>
<td>E3-1</td>
			<td>man</td>
			<td>267</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.73</td>
			<td></td>
			<td>B3-1</td>
			<td>man</td>
			<td>265</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.52</td>
		</tr>
<tr>
<td>E3-2</td>
			<td>man</td>
			<td>267</td>
			<td>1.0</td>
			<td>3,88</td>
			<td></td>
			<td>B3-2</td>
			<td>man</td>
			<td>265</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2,53</td>
		</tr>
<tr>
<td>E4-1</td>
			<td>man</td>
			<td>263</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.41</td>
			<td></td>
			<td>B4-1</td>
			<td>man</td>
			<td>289</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.32</td>
		</tr>
<tr>
<td>E4-2</td>
			<td>man</td>
			<td>263</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2,52</td>
			<td></td>
			<td>B4-2</td>
			<td>man</td>
			<td>289</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.62</td>
		</tr>
<tr>
<td>E5-1</td>
			<td>man</td>
			<td>265</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.61</td>
			<td></td>
			<td>B5-1</td>
			<td>man</td>
			<td>277</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.48</td>
		</tr>
<tr>
<td>E5-2</td>
			<td>man</td>
			<td>265</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.42</td>
			<td></td>
			<td>B5-2</td>
			<td>man</td>
			<td>277</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.12</td>
		</tr>
<tr>
<td>E6-1</td>
			<td>vrouw</td>
			<td>285</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3,33</td>
			<td></td>
			<td>B6-1</td>
			<td>vrouw</td>
			<td>274</td>
			<td>0.9</td>
			<td>4.87</td>
		</tr>
<tr>
<td>E6-2</td>
			<td>vrouw</td>
			<td>285</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.03</td>
			<td></td>
			<td>B6-2</td>
			<td>vrouw</td>
			<td>274</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.37</td>
		</tr>
<tr>
<td>E7-1</td>
			<td>vrouw</td>
			<td>271</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2,82</td>
			<td></td>
			<td>B7-1</td>
			<td>vrouw</td>
			<td>268</td>
			<td>1.0</td>
			<td>3.93</td>
		</tr>
<tr>
<td>E7-2</td>
			<td>vrouw</td>
			<td>271</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.42</td>
			<td></td>
			<td>B7-2</td>
			<td>vrouw</td>
			<td>268</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.82</td>
		</tr>
<tr>
<td>E8-1</td>
			<td>vrouw</td>
			<td>268</td>
			<td>1.2</td>
			<td>1.93</td>
			<td></td>
			<td>B8-1</td>
			<td>vrouw</td>
			<td>262</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.07</td>
		</tr>
<tr>
<td>E8-2</td>
			<td>vrouw</td>
			<td>268</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3,05</td>
			<td></td>
			<td>B8-2</td>
			<td>vrouw</td>
			<td>262</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.67</td>
		</tr>
<tr>
<td>E9-1</td>
			<td>vrouw</td>
			<td>273</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2,52</td>
			<td></td>
			<td>B9-1</td>
			<td>vrouw</td>
			<td>281</td>
			<td>1.2</td>
			<td>4,38</td>
		</tr>
<tr>
<td>E9-2</td>
			<td>vrouw</td>
			<td>273</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3.17</td>
			<td></td>
			<td>B9-2</td>
			<td>vrouw</td>
			<td>281</td>
			<td>1.2</td>
			<td>4.57</td>
		</tr>
<tr>
<td>E10-1</td>
			<td>vrouw</td>
			<td>261</td>
			<td>1.2</td>
			<td>1.82</td>
			<td></td>
			<td>B10-1</td>
			<td>vrouw</td>
			<td>275</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2,53</td>
		</tr>
<tr>
<td>E10-2</td>
			<td>vrouw</td>
			<td>261</td>
			<td>1.2</td>
			<td>3,25</td>
			<td></td>
			<td>B10-2</td>
			<td>vrouw</td>
			<td>275</td>
			<td>1.2</td>
			<td>2.28</td>
		</tr>
<tr>
<td>Gemiddelde</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>2,77</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>3.28</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="11">Nl-1: serienummer van ratten in de experimentele groep voor de eerste collectie van bloed.</td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="11">Nl-2: serienummer van ratten in de experimentele groep voor de tweede collectie van bloed.</td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="11">Bn-1: serienummer van ratten in de groep van de beginner voor het eerste bloed-collectie.</td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="11">Bn-2: serienummer van ratten in de groep van de beginner voor de tweede collectie van bloed.</td>
		</tr>
</tbody></table>Tabel 1: Resultaten van bloed opgevangen in de experimentele groep en de groep van de beginner.
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td></td>
			<td>Bloed collectie keer</td>
			<td>Gemiddelde punctie keer</td>
			<td>Een punctie van de tijd</td>
			<td>Twee keer perforaties</td>
			<td>Driemaal perforaties</td>
			<td>Mislukt</td>
			<td>Slagingspercentage</td>
		</tr>
<tr>
<td>Experimentele groep</td>
			<td>20</td>
			<td>1,50 ±0.61</td>
			<td>11</td>
			<td>8</td>
			<td>0</td>
			<td>1</td>
			<td>95%</td>
		</tr>
<tr>
<td>Beginner groep</td>
			<td>20</td>
			<td>1.85 ±0.75</td>
			<td>7</td>
			<td>9</td>
			<td>2</td>
			<td>2</td>
			<td>90%</td>
		</tr>
<tr>
<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="6">Een punctie van de tijd: aantal ratten met succesvolle bloedinzameling na de eerste lekke band</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="6">Twee keer lek: aantal ratten met succesvolle bloedinzameling na de tweede lekke band</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="6">Drie keer een lekke band: aantal ratten met succesvolle bloedinzameling na de derde lekke band</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="5">Mislukt: ratten met het aantal mislukte bloedinzameling na de derde lekke band</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
</tbody></table>Tabel 2: Vergelijking van de punctie times en slagingspercentages van de experimentele groep en de groep van de beginner.

Watch this Scientific Journal Video about Repeated Blood Collection from Tail Vein of Non-Anesthetized Rats with a Vacuum Blood Collection System at JoVE.com

Repeated Blood Collection from Tail Vein of Non-Anesthetized Rats with a Vacuum Blood Collection System

Hier beschrijven we een eenvoudige staart veneuze bloedmonsters methode bij niet-verdoofd ratten met behulp van een systeem van de buisjes opzuigen. Deze methode vermindert het risico van directe blootstelling aan bloed en vereenvoudigt meerdere bemonstering van een enkele Venapunctie.

Herhaald bloedinzameling van staart ader van niet-verdoofd ratten met een systeem voor het verzamelen van vacuüm bloed

Blood can be collected from rats in a number of sampling locations. For instance, the tail vein is a superior location for blood sampling. However, the ...

Research

JoVE Journal

Medicine

Dried Blood Spot Collection of Health Biomarkers to Maximize Participation in Population Studies

Gedroogde Blood Spot Collectie van Volksgezondheid Biomarkers voor deelname aan Population Studies maximaliseren

Biomarkers are directly-measured biological indicators of disease, health, exposures, or other biological information. In population and social sciences, ...

Subclavian Vein Puncture As an Alternative Method of Blood Sample Collection in Rats

Subclavian ader punctie als een alternatieve methode van bloed monster collectie bij ratten

Blood collection with enough blood volume is essential in animal experiments. Blood collection from the tail vein of rats is popular and less stressful ...

Blood Collection Through Subclavian Vein Puncture in Mice

Bloedafname door Subclavia ader punctie bij muizen

The mouse is the foremost mammalian model for studying human disease and human health. However, blood sample collection from mice is challenging in ...

Microsurgical Skills of Establishing Permanent Jugular Vein Cannulation in Rats for Serial Blood Sampling of Orally Administered Drug

Microchirurgische vaardigheden voor het vaststellen van permanente jugulaire ader cannulatie bij ratten voor seriële bloedafname van oraal toegediend geneesmiddel

Blood sampling in small laboratory animals is necessary for pharmaceutical lead optimization but can cause great harm and stress to experimental animals, ...

Repetitive Blood Sampling from the Subclavian Vein of Conscious Rat

Repetitieve bloedafname uit de subclavia-ader van bewuste rat

Rats are widely used in pharmacokinetics (PK) and toxicokinetic (TK) studies that need to collect a certain amount of blood at specific time points to ...

Comparative Study of Blood Collection Techniques in Rats

Modified Tail Vein and Penile Vein Puncture for Blood Sampling in the Rat Model

Context Dependent Blood Collection Methods in Rats (Video) | JoVE

Gemodificeerde staartader en penisaderpunctie voor bloedafname in het rattenmodel

Blood samples are required in most experimental animal designs to assess various hematological parameters. This paper presents two procedures for blood ...

A Massager Based on Ding’s Roll Manipulation to Treat Muscle Injury in a Rat Model

Mimicking Ding's Roll Method on Notexin-Induced Muscle Injury in Rats

Performing Tuina Massage in Rats Using a Self-Made Massager (Video) | JoVE

Nabootsing van Ding's Roll-methode op door notexine geïnduceerde spierblessure bij ratten

Ding's roll method is one of the most commonly used manipulations in traditional Chinese massage (Tuina) clinics and one of the most influential ...

Tail Vein Puncture Without Anesthesia

Tail Vein Puncture Without Anesthesia (Video) | JoVE 

Staartaderpunctie zonder anesthesie

Drawing Blood from the Penile Vein

Drawing Blood from the Penile Vein (Video) | JoVE 

Bloed afnemen uit de penisader

Subclavian Vein Puncture Method for Repeated Blood Collection in Conscious Rats

Subclavian Vein Blood Sampling in Conscious Rats

Developing an Efficient Blood Collection Method in Non-Anesthetized Rats (Video) | JoVE

Bloedafname van subclavia-aderen bij bewuste ratten

There are several established methods for obtaining repeated blood samples from rats, with the most commonly employed methods being lateral tail vein ...