Name: efficient generation and editing of feeder-free ipscs from human pancreatic cells using the crispr-cas9 system
Uploaded: 2017-11-08T13:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Efficient Generation and Editing of Feeder-free IPSCs from Human Pancreatic Cells Using the CRISPR-Cas9 System at JoVE.com

Trabajo en el laboratorio fue apoyado por beca de postdoctorado para Dr. Anjali Nandal y concesión exploración del fondo de investigación de la célula de vástago de Maryland a BT (TEDCO).

1. Protocolo de reprogramación <ol><li>generación de iPSC humana de las células pancreáticas humanas primarias <ol><li>capa un pozo de 6 placa con 1,5 mg/mL de colágeno fría y déjelo gel a 37 ° C por 1 h.</li>
		<li>Paso temprano humanas células pancreáticas primarias en medio de la Prigrow III (~ 1-1.5 × 10 5 células) en un colágeno cubierta placa de 6 pozos en día -2 para lograr aproximadamente 2.5 × 10 5 células o al menos el 60% de la placa confluency por bien...

<ol>
	<li>Malik, N., Rao, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+review+of+the+methods+for+human+iPSC+derivation.">A review of the methods for human iPSC derivation.</a> Methods Mol. Biol. 997, 23-33 (2013).</li><li>Yu, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Induced+pluripotent+stem+cell+lines+derived+from+human+somatic+cells.">Induced pluripotent stem cell lines derived from human somatic cells.</a> Science. 318, 1917-1920 (2007).</li><li>Takahashi, K., Yamanaka, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Induction+of+pluripotent+stem+cells+from+mouse+embryonic+and+adult+fibroblast+cultures+by+defined+factors.">Induction of pluripotent stem cells from mouse embryonic and adult fibroblast cultures by defined factors.</a> Cell. 126, 663-676 (2006).</li><li>Sommer, C. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Induced+pluripotent+stem+cell+generation+using+a+single+lentiviral+stem+cell+cassette.">Induced pluripotent stem cell generation using a single lentiviral stem cell cassette.</a> Stem cells. 27, 543-549 (2009).</li><li>Macarthur, C. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Generation+of+human-induced+pluripotent+stem+cells+by+a+nonintegrating+RNA+Sendai+virus+vector+in+feeder-free+or+xeno-free+conditions.">Generation of human-induced pluripotent stem cells by a nonintegrating RNA Sendai virus vector in feeder-free or xeno-free conditions.</a> Stem cells Int. , 564612 (2012).</li><li>Li, H. O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+cytoplasmic+RNA+vector+derived+from+nontransmissible+Sendai+virus+with+efficient+gene+transfer+and+expression.">A cytoplasmic RNA vector derived from nontransmissible Sendai virus with efficient gene transfer and expression.</a> J Virol. 74, 6564-6569 (2000).</li><li>Fusaki, N., Ban, H., Nishiyama, A., Saeki, K., Hasegawa, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Efficient+induction+of+transgene-free+human+pluripotent+stem+cells+using+a+vector+based+on+Sendai+virus,+an+RNA+virus+that+does+not+integrate+into+the+host+genome.">Efficient induction of transgene-free human pluripotent stem cells using a vector based on Sendai virus, an RNA virus that does not integrate into the host genome.</a> Proc. Jpn. Acad. Ser. B, PhysBiol. Sci. 85, 348-362 (2009).</li><li>Nakagawa, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+novel+efficient+feeder-free+culture+system+for+the+derivation+of+human+induced+pluripotent+stem+cells.">A novel efficient feeder-free culture system for the derivation of human induced pluripotent stem cells.</a> Sci. Rep. 4, 3594 (2014).</li><li>Hockemeyer, D., Jaenisch, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Induced+Pluripotent+Stem+Cells+Meet+Genome+Editing.">Induced Pluripotent Stem Cells Meet Genome Editing.</a> Cell stem cell. 18, 573-586 (2016).</li><li>Komor, A. C., Badran, A. H., Liu, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CRISPR-Based+Technologies+for+the+Manipulation+of+Eukaryotic+Genomes.">CRISPR-Based Technologies for the Manipulation of Eukaryotic Genomes.</a> Cell. 169, 559 (2017).</li><li>Komor, A. C., Badran, A. H., Liu, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CRISPR-Based+Technologies+for+the+Manipulation+of+Eukaryotic+Genomes.">CRISPR-Based Technologies for the Manipulation of Eukaryotic Genomes.</a> Cell. 168, 20-36 (2017).</li><li>Sander, J. D., Joung, J. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CRISPR-Cas+systems+for+editing,+regulating+and+targeting+genomes.">CRISPR-Cas systems for editing, regulating and targeting genomes.</a> Nat. Biotech. 32, 347-355 (2014).</li><li>McElroy, S. L., Reijo Pera, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Preparation+of+mouse+embryonic+fibroblast+feeder+cells+for+human+embryonic+stem+cell+culture.">Preparation of mouse embryonic fibroblast feeder cells for human embryonic stem cell culture.</a> CSH Protoc. 2008, (2008).</li><li>Lian, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Robust+cardiomyocyte+differentiation+from+human+pluripotent+stem+cells+via+temporal+modulation+of+canonical+Wnt+signaling.">Robust cardiomyocyte differentiation from human pluripotent stem cells via temporal modulation of canonical Wnt signaling.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 109, E1848-E1857 (2012).</li><li>Rezania, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reversal+of+diabetes+with+insulin-producing+cells+derived+in+vitro+from+human+pluripotent+stem+cells.">Reversal of diabetes with insulin-producing cells derived in vitro from human pluripotent stem cells.</a> Nat. Biotech. 32, 1121-1133 (2014).</li><li>Shi, Y., Inoue, H., Wu, J. C., Yamanaka, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Induced+pluripotent+stem+cell+technology:+a+decade+of+progress.">Induced pluripotent stem cell technology: a decade of progress.</a> Nat. Rev. Drug Discov. 16, 115-130 (2017).</li><li>Wang, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Highly+efficient+CRISPR/HDR-mediated+knock-in+for+mouse+embryonic+stem+cells+and+zygotes.">Highly efficient CRISPR/HDR-mediated knock-in for mouse embryonic stem cells and zygotes.</a> BioTechniques. 59, (2015).</li><li>Liang, X., Potter, J., Kumar, S., Ravinder, N., Chesnut, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Enhanced+CRISPR/Cas9-mediated+precise+genome+editing+by+improved+design+and+delivery+of+gRNA,+Cas9+nuclease,+and+donor+DNA.">Enhanced CRISPR/Cas9-mediated precise genome editing by improved design and delivery of gRNA, Cas9 nuclease, and donor DNA.</a> J Biotech. 241, 136-146 (2017).</li></ol>

Reprogramación de células somáticas humanas iPSCs ha proporcionado un gran impulso a los campos de investigación de la biología básica, medicina personalizada, enfermedades modelado, desarrollo de medicamentos y medicina regenerativa16. Muchos métodos actuales y ampliamente utilizados de generación de iPSC humano requieren el uso de virus con el riesgo de la integración en el genoma del anfitrión o episomal vectores con baja eficiencia de reprogramación. Aquí, presentamos un método ef...

La reprogramación de células somáticas humanas para el estado de pluripotencialidad por la sobreexpresión de factores de reprogramación ha revolucionado la investigación con células madre con aplicaciones en modelado de enfermedad, medicina regenerativa y desarrollo de medicamentos. Varios métodos de reprogramación no están disponibles para la entrega de factores de reprogramación y generar iPSCs, pero el proceso es mano de obra intensiva y no muy eficiente1. Los métodos virales, aunque eficiente, están asociados con problemas de integración de virus y tumorigenicidad2,3,4. En este manuscrito, Divulgamos el uso de virus Sendai citoplásmico entrega factores y establecer líneas de huella libre iPSC que carecen de integración de cualquier secuencia de vectores virales en sus genomas5. El virus Sendai es un virus ARN que se diluye de pasajes de la célula citoplasma ~ 10 después de la infección y produce factores de reprogramación en abundancia, llevando a la rápida y eficaz reprogramación6,7. IPSCs establecido puede ser transición fácilmente al medio sin alimentador para evitar el uso de fibroblastos embrionarios de ratón (MEFs) como células de alimentador8.
En esta publicación, además de que el virus de Sendai mediada por reprogramación, también Describimos un protocolo mejorado para la edición de iPSCs, que tiene el potencial para suministrar células humanas ilimitadas con modificaciones genéticas deseadas para la investigación. Hemos utilizado tecnología CRISPR/Cas9 para la modificación de iPSCs, que ahora está siendo usada para una amplia gama de aplicaciones incluyendo knock-ins y nocauts, deleciones genómicas a gran escala, combinado biblioteca de descubrimiento de genes, ingeniería genética de numerosos organismos modelo y gene terapia9,10,11. Esta técnica consiste en la formación de complejos de Streptococcus pyogenes-derivadas Cas9 nucleasa y 20-mer guía RNAs que logran el reconocimiento de destino a través de bases con secuencia de genomic destino junto a 3' nucleótido protospacer adyacente secuencia de adorno (PAM). La nucleasa Cas9 induce un nucleótidos rotura trenzado doble ~ 3 desde el sitio de PAM, que es posteriormente reparado predominante por no homóloga se terminan uniendo vía (NHEJ) a inserciones o deleciones en el marco de lectura abierto y lo funcional Knockout de genes12.
Nuestro protocolo mejorado incluye los detalles para el cultivo de las células pancreáticas humanas, su reprogramación en mitotically inactivado fibroblastos embrionarios de ratón (MEFs) para lograr una mayor eficiencia de reprogramación, la posterior adaptación a la cultura libre de alimentador sobre Matrigel, caracterización de iPSCs establecida, guiada por CRISPR RNA diseño y preparación, entrega en iPSCs como complejos de RNP, única célula clasificación para generar líneas clonales de iPSCs editado, fácil detección e identificación de ediciones y caracterización de clones de la célula. Deleciones genómicas eficientemente se obtuvieron en este estudio por la introducción de la proteína Cas9 y dos complejos CRISPR sgRNA RNP para inducir roturas trenzados doble (distritales) y supresión de la intervención del segmento. Este método capitaliza el uso de dos guías para generar deleciones en el marco de lectura abierto, alta eficiencia de NHEJ a bajo número de clones necesidad de ser caracterizado y fácil proyección preliminar de clones por el capilar automatizado unidad de electroforesis, analizador de fragmento. Estos genoma eficaz edición de métodos para generar modelos de enfermedades humanas basadas en células madre se convertirá pronto en un enfoque estándar y de rutina en cualquier laboratorio de células madre. Finalmente, la edición del genoma exacto hará posible ir más allá de los modelos de enfermedad de célula de vástago y potencialmente podría ayudar a catalizar las terapias basadas en células.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>Sendai viral vectors - CytoTune-iPS 2.0 Kit</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>A16517</td>
			<td>Thaw on ice; S No: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Trypsin EDTA</td>
			<td>Gibco Life Tech</td>
			<td>25300-054</td>
			<td>0.05%, 100 ml; S No: 2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rock inhibitor (Y-27632)</td>
			<td>Milipore</td>
			<td>SCM075</td>
			<td>Use 10 &#956;M; S No: 3</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DMEM/F-12 medium</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>11330-032</td>
			<td>S No: 4</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Serum replacement (KSR)</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>10828028</td>
			<td>S No: 5</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DMEM</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>11960069</td>
			<td>1X; S No: 6</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fetal bovine serum</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>SH30071.03</td>
			<td>Aliquot; S No: 7</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-glutamine (Glutamax, 100X), liquid</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>35050061</td>
			<td>1/100; S No: 8</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Non-Essential Amino Acids</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>11140-050</td>
			<td>1/100; S No: 9</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2-Mercaptoethanol</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>21985023</td>
			<td>55 mM, 1/1,000; S No: 10</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hausser Hemacytometers</td>
			<td>Hausser Scientific</td>
			<td>02-671-54</td>
			<td>S No: 11</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>&#160;0.1% Gelatin Solution</td>
			<td>STEMCELL Technologies</td>
			<td>7903</td>
			<td>Incubate at 37&#186; C for 1 hour; S No: 12</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SSEA-4 antibody</td>
			<td>Santacruz</td>
			<td>sc-21704</td>
			<td>1/100; S No: 13</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TRA-1-81 antibody</td>
			<td>Cell Signaling</td>
			<td>4745S</td>
			<td>1/200; S No: 14</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>&#160;OCT4 antibody</td>
			<td>Santa Cruz</td>
			<td>sc-5279</td>
			<td>1/1,000; S No: 15</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Collagen I, Rat Tail</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>A10483-01</td>
			<td>Keep cold; S No: 16</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alexa Fluor fluorescent 488/ 568 (secondary antibodies)</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>A21202/A10042</td>
			<td>1/2,000; S No: 17</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DPBS</td>
			<td>Hyclone</td>
			<td>SH30028LS</td>
			<td>1X; S No: 18</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>100-mm tissue culture dish</td>
			<td>Falcon</td>
			<td>353003</td>
			<td>S No: 20</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>96-well tissue culture plate</td>
			<td>Falcon</td>
			<td>353078</td>
			<td>S No: 21</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>6-well tissue culture plate</td>
			<td>Falcon</td>
			<td>353046</td>
			<td>S No: 22</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dissecting scope&#160;</td>
			<td>Nikon</td>
			<td>SMZ745</td>
			<td>S No: 23</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Picking hood</td>
			<td>NuAire</td>
			<td>NU-301</td>
			<td>S No: 24</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>15&#160;ml Centrifuge Tube</td>
			<td>Greiner Bio-One</td>
			<td>188271</td>
			<td>S No: 25</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>50&#160;ml Centrifuge Tube</td>
			<td>Greiner Bio-One</td>
			<td>227261</td>
			<td>S No: 26</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium pyruvate</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>11360</td>
			<td>S No: 28</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>&#946;-mercaptoethanol</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>M7522</td>
			<td>S No: 29</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Prigrow III medium</td>
			<td>ABM</td>
			<td>TM003</td>
			<td>S No: 31</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Countess&#8482; Cell Counter</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>C10227</td>
			<td>S No: 32</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Faxitron X-ray system</td>
			<td>Faxitron</td>
			<td>CellRad</td>
			<td>S No: 33</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Accutase</td>
			<td>Innovative cell Technologies</td>
			<td>AT-104</td>
			<td>S No: 34</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Collagenase</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>17104019</td>
			<td>1mg/ml stock; S No: 35</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dispase</td>
			<td>STEMCELL Technologies</td>
			<td>7923</td>
			<td>S No: 36</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>hESC qualified matrigel</td>
			<td>BD Biosciences</td>
			<td>354277</td>
			<td>To dilute, use cold DMEM/F-12; S No: 37</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>bFGF</td>
			<td>R &#38; D</td>
			<td>233-FB</td>
			<td>Stock 10 ug/ml; S No: 38</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Paraformaldehyde</td>
			<td>EMS</td>
			<td>15710</td>
			<td>4% stock in PBS; S No: 39</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TRA-1-60</td>
			<td>Santa Cruz</td>
			<td>sc-21705</td>
			<td>1/100; S No: 40</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NANOG</td>
			<td>ReproCELL</td>
			<td>RCAB0004P-F</td>
			<td>1/100; S No: 41</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tween 20</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>P9416-100ML</td>
			<td>S No: 42</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alkaline Phosphatase kit</td>
			<td>Stemgent</td>
			<td>00-0055</td>
			<td>S No: 43</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cas9 protein</td>
			<td>PNA Bio</td>
			<td>CP01-50</td>
			<td>Thaw and aliquot; S No: 44</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Goat or donkey serum</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>D9663/G9023</td>
			<td>S No: 45</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Triton X-100</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>X100-100ML</td>
			<td>S No: 46</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DAPI</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>D1306</td>
			<td>S No: 47</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tris</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>9285-100ML</td>
			<td>S No: 48</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaCL</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>S7653-250G</td>
			<td>S No: 49</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>EDTA</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>BP2482-500</td>
			<td>S No: 50</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>T4 DNA ligase</td>
			<td>NEB</td>
			<td>M0202T</td>
			<td>S No: 51</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mega Shortscript T7 kit</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>AM1354</td>
			<td>S No: 52</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mega Clear kit</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>AM1908</td>
			<td>S No: 53</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SMC4</td>
			<td>BD Biosciences</td>
			<td>354357</td>
			<td>S No: 54</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fibronectin</td>
			<td>STEMCELL Technologies</td>
			<td>7159</td>
			<td>S No: 55</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CloneJET cloning kit</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>K1232</td>
			<td>S No: 56</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fragment analyzerTM</td>
			<td>Advanced Analytical</td>
			<td></td>
			<td>S No: 57</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>mTeSR1 medium kit</td>
			<td>STEMCELL Technologies</td>
			<td>5850</td>
			<td>Warm to room temperature; S No: 58</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Freezing medium mFreSR&#8482;</td>
			<td>STEMCELL Technologies</td>
			<td>5855</td>
			<td>S No: 59</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Freezing medium CryoStor&#174;</td>
			<td>STEMCELL Technologies</td>
			<td>7930</td>
			<td>S No: 60</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MEFs</td>
			<td>Globalstem</td>
			<td>GSC-6301G</td>
			<td>S No: 61</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-glutamine</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>25030081</td>
			<td>S No: 62</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Human pancreatic cells</td>
			<td>ABM</td>
			<td>T0159</td>
			<td>S No: 63</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>STEMdiff&#8482; Neural Induction Medium</td>
			<td>Stemcell Technologies</td>
			<td>5835</td>
			<td>S No: 64</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>RPMI</td>
			<td>Thermofisher</td>
			<td>11875-093</td>
			<td>S No: 65</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2% B27-insulin</td>
			<td>Thermofisher</td>
			<td>A1895601</td>
			<td>S No: 66</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CHIR99021</td>
			<td>Stemcell Technologies</td>
			<td>72052</td>
			<td>S No: 67</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>IWP4</td>
			<td>Stemcell Technologies</td>
			<td>72552</td>
			<td>S No: 68</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2% B27</td>
			<td>Thermofisher</td>
			<td>17504044</td>
			<td>S No: 69</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MCDB 131</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>10372019</td>
			<td>S No: 70</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium bicarbonate</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>S8761-100ML</td>
			<td>S No: 71</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glucose</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>G8270-100G</td>
			<td>S No: 72</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BSA</td>
			<td>Proliant</td>
			<td>68700</td>
			<td>S No: 73</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>GDF8</td>
			<td>Pepro-Tech</td>
			<td>120-00</td>
			<td>S No: 74</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TUJ1 antibody</td>
			<td>EMD Milipore</td>
			<td>AB9354</td>
			<td>S No: 75</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NKX2-5 antibody</td>
			<td>Santa Cruz</td>
			<td>Sc-14033</td>
			<td>S No: 76</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SOX17 antibody</td>
			<td>R &#38; D systems</td>
			<td>AF1924</td>
			<td>S No: 77</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Propidium iodide</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>P3566</td>
			<td>S No: 78</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Amaxa 4D-nucleofector&#8482;</td>
			<td>Lonza</td>
			<td>AAF-1002</td>
			<td>S No: 79</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FACSAria II (cell sorter)</td>
			<td>BD biosciences</td>
			<td>SORP UV</td>
			<td>S No: 80</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

efficient generation and editing of feeder-free ipscs from human pancreatic cells using the crispr-cas9 system

Células madre pluripotentes embrionarias e inducidas pueden uno mismo-renovar y diferenciarse en múltiples tipos de células del cuerpo. Las células pluripotentes así son codiciadas para la investigación en medicina regenerativa y actualmente en ensayos clínicos para enfermedades oculares, diabetes, enfermedades cardíacas y otros trastornos. El potencial de diferenciarse en tipos celulares especializados juntados con los recientes avances en tecnologías, incluyendo el sistema CRISPR/Cas de edición genómica han proporcionado oportunidades adicionales para adaptar el genoma de iPSC para variadas aplicaciones incluyendo las enfermedades al modelado, terapia génica y sesgar las vías de diferenciación, para nombrar unos pocos. Entre las tecnologías disponibles de la edición, el CRISPR/Cas9 de Streptococcus pyogenes ha surgido como una herramienta de elección para la edición específica del genoma eucariótico. Los CRISPRs son fácilmente accesible, barato y muy eficiente en ediciones específicas de la ingeniería. El sistema requiere una nucleasa Cas9 y una secuencia de guía (20-mer) específica para el objetivo genómico contigua a un 3-nucleotide "NGG" protospacer-adyacente-motivo (PAM) para apuntar Cas9 para el locus genómico deseado, junto con un trazador de enlace Cas9 universal (RNA juntos llamados ARN guía individual o sgRNA). Aquí presentamos un paso a paso el protocolo para la generación eficiente de iPSC alimentador independiente y libre de huella y describir metodologías para la edición del genoma de iPSC usando los complejos de Cas9 ribonucleoproteína (RNP). El genoma edición protocolo es eficaz y puede ser fácilmente multiplexado por sgRNAs pre-secuestrantes para más de un objetivo con la proteína Cas9 y entregar simultáneamente en las células. Por último, se describe un enfoque simplificado para la identificación y caracterización de iPSCs con ediciones deseadas. Tomados en conjunto, las estrategias se deben optimizar la generación y edición de iPSC para múltiples aplicaciones.

En esta publicación, hemos seguido un protocolo simple pero eficiente para la generación de iPSC de células pancreáticas humanas mediante integración o vectores de virus Sendai huella libre. Figura 1A se muestra una representación esquemática de este protocolo de reprogramación. Las células pancreáticas humanas fueron compradas comercialmente, cultivados en medio de Prigrow III y transduced con virus Sendai como se explicó anteriormente. Transduced...

Watch this Scientific Journal Video about Efficient Generation and Editing of Feeder-free IPSCs from Human Pancreatic Cells Using the CRISPR-Cas9 System at JoVE.com

Efficient Generation and Editing of Feeder-free IPSCs from Human Pancreatic Cells Using the CRISPR-Cas9 System

Este protocolo se describe en detalle la generación de células libres de huella pluripotentes inducidas (iPSCs) de las células pancreáticas humanas en condiciones libres de alimentador, seguido de edición utilizando ribonucleoproteínas CRISPR/Cas9 y caracterización de la modificación sola célula clones.

Eficiente generación y edición de IPSCs alimentador-libre de las células pancreáticas humanas utilizando el sistema CRISPR Cas9

Embryonic and induced pluripotent stem cells can self-renew and differentiate into multiple cell types of the body. The pluripotent cells are thus coveted ...

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Therapeutic Gene Delivery and Transfection in Human Pancreatic Cancer Cells using Epidermal Growth Factor Receptor-targeted Gelatin Nanoparticles

Entrega y transfección de genes en células humanas de cáncer de páncreas con factor de crecimiento epidérmico receptor dirigidos a base de gelatina Nanovectors Ingeniería

More than 32,000 patients are diagnosed with pancreatic cancer in the United States per year and the disease is associated with very high mortality 1. ...

Investigación

Bioingeniería

Development, Expansion, and In vivo Monitoring of Human NK Cells from Human Embryonic Stem Cells (hESCs) and Induced Pluripotent Stem Cells (iPSCs)

Development, Expansion, and In vivo Monitoring of Human NK Cells from Human Embryonic Stem Cells hESCs and Induced Pluripotent Stem Cells iPSCs

Desarrollo, la expansión y<em&gt; En vivo</em&gt; Monitoreo de las células NK humanas a partir de células madre embrionarias humanas (hESCs) y y células madre pluripotentes inducidas (iPSCs)

We present a method for deriving natural killer (NK) cells from undifferentiated hESCs and iPSCs using a feeder-free approach. This method gives rise to ...

Generation of ESC-derived Mouse Airway Epithelial Cells Using Decellularized Lung Scaffolds

Generación de células epiteliales de las vías respiratorias del ratón ESC-Obtenido usando Descelularizado pulmón andamios

Lung lineage differentiation requires integration of complex environmental cues that include growth factor signaling, cell-cell interactions and ...

Production of Genetically Engineered Golden Syrian Hamsters by Pronuclear Injection of the CRISPR/Cas9 Complex

Producción de hámsters sirios dorados genéticamente por inyección Pronuclear del complejo CRISPR/Cas9

The pronuclear (PN) injection technique was first established in mice to introduce foreign genetic materials into the pronuclei of one-cell stage embryos. ...

Microinjection of Western Corn Rootworm, Diabrotica virgifera virgifera, Embryos for Germline Transformation, or CRISPR/Cas9 Genome Editing

Microinjection of Western Corn Rootworm, Diabrotica virgifera virgifera, Embryos for Germline Transformation, or CRISPR/Cas9 Genome Editing

Microinyección de Western gusano de raíz del maíz, Diabrotica virgifera virgifera, embriones para transformación de línea germinal, o edición del genoma CRISPR/Cas9

The western corn rootworm (WCR) is an important pest of corn and is well known for its ability to rapidly adapt to pest management strategies. Although ...

Generation of Cationic Nanoliposomes for the Efficient Delivery of In Vitro Transcribed Messenger RNA

Generation of Cationic Nanoliposomes for the Efficient Delivery of In Vitro Transcribed Messenger RNA

Generación de nanoliposomas catiónicos para la entrega eficiente de In Vitro transcribe ARN mensajero

The development of messenger RNA (mRNA)-based therapeutics for the treatment of various diseases becomes more and more important because of the positive ...

Purification and Analytics of a Monoclonal Antibody from Chinese Hamster Ovary Cells Using an Automated Microbioreactor System

Purificación y análisis de un anticuerpo monoclonal de células de ovario de hámster chino utilizando un sistema automatizado de microbiorreactores

Monoclonal antibodies (mAbs) are one of the most popular and well-characterized biological products manufactured today. Most commonly produced using ...

Isolation of Adult Human Dermal Fibroblasts from Abdominal Skin and Generation of Induced Pluripotent Stem Cells Using a Non-Integrating Method

Aislamiento de fibroblastos dérmicos humanos adultos de la piel abdominal y generación de células madre pluripotentes inducidas utilizando un método no integrador

Induced pluripotent stem cells (iPSCs) could be considered, to date, a promising source of pluripotent cells for the management of currently untreatable ...

Scalable Generation of Mature Cerebellar Organoids from Human Pluripotent Stem Cells and Characterization by Immunostaining

Generación escalable de organoides cerebelosos maduros a partir de células madre pluripotentes humanas y caracterización por inmunosuización

The cerebellum plays a critical role in the maintenance of balance and motor coordination, and a functional defect in different cerebellar neurons can ...

Single-Cell Optical Action Potential Measurement in Human Induced Pluripotent Stem Cell-Derived Cardiomyocytes

Medición del potencial de acción óptica unicelular en cardiomiocitos derivados de células madre pluripotentes inducidas por humanos

Conventional intracellular microelectrode techniques to quantify cardiomyocyte electrophysiology are extremely complex, labor intensive, and typically ...