Name: whole-mount clearing and staining of arabidopsis flower organs and siliques
Uploaded: 2018-04-12T13:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Whole-mount Clearing and Staining of Arabidopsis Flower Organs and Siliques at JoVE.com

Dette arbejde blev støttet af universitetet i Zürich, en IEF Marie Curie Grant (give nr. TransEpigen-254797 til A.H.), en avanceret ydelse af det Europæiske Forskningsråd (give nr. Medea-250358 til U.G.), og en forskning og teknologiudvikling projekt (grant MecanX til U.G.) fra SystemsX.ch, den schweiziske initiativ i systembiologi.

1. blomst og Silique fiksation
<ol><li>Høst blomster og siliques fra planter synkroniseret ved åbningen af den første blomst. Bemærk: Under de eksperimentelle betingelser anvendes her, starte planter blomstringen ca 21 dage efter transplantation fra Murashige og Skoog (MS) plader til jord. Frø er stratificeret for 3-4 dage ved 4 ° C og spiret/dyrkes på MS plader på 22 ° C/16 h lys og 18 ° C/8 h mørke for 8-10 dage, før omplantning planter på næringsrig jord i potterne holdes under de samme betingelser ...

Eksistensen af mange blomsterknopper inden for en enkelt blomsterstand af Arabidopsis, der spænder over alle blomst udviklingsstadier, tilbyder en unik mulighed for undersøgelser rettet mod kendetegner en effekt af en behandling eller en udviklingsmæssig funktion samtidigt på tværs af de forskellige stadier af blomst udvikling. En god referencepunkt mellem forskellige individuelle planter er åbningen af den første blomst af den største blomsterstand. Planter er behandlet på en sådan måde, at blomstrin...

Blomster blandt de vigtigste definere organer af dækfrøede planter. Blomsterplanter dukkede op omkring 90-130 millioner år siden1, og diversificeret så hurtigt, at deres hurtige udseende blev beskrevet som en "afskyelige mysterium" af Charles Darwin2. Plante forskere interesser i blomst udvikling er forskellige. Nogle forskning har fokuseret på at forstå den evolutionære oprindelse af blomsten som helhed, eller udviklingen af særlige anatomiske, strukturelle og funktionelle egenskaber af blomster3,4,5,6 . Den høje variation i blomstermotiver form og struktur, samt tilstande af kønnet og ukønnet reproduktion påberåbe dem, gøre blomsten en meget kompleks struktur. Dette har ført til forskellige bestræbelser på at karakterisere de anatomi og strukturelle elementer i blomstermotiver organer, ved hjælp af lys og elektron mikroskopiske teknikker, der kan kombineres med genetiske og molekylære undersøgelser7. Desuden, som kilde af frugter og frø, er blomster af afgørende betydning for menneskers og dyrs ernæring. Derfor, karakterisering af blomst og frugt udvikling har mange konsekvenser for anvendt forskning, herunder fødevaresikkerhed for en voksende befolkning og økologisk bevarelsesstrategier under et skiftende miljø8 , 9 , 10.
Blomst udvikling i Arabidopsis starter med blomst induktion og omdannelsen af den vegetative meristem til en blomsterstand (gruppe af blomster) meristem. Blomst primordia initieres lateralt på flanken af blomsterstand meristem11. Floral orgel primordia danne gradvis i koncentriske hvirvler udefra til midten af blomsten, og i sidste ende udvikle sig til bægerblade, kronblade, støvdragere og frugtblade7. Disse blomsteragtige organer opfylde særskilte nærende, beskyttende og funktionelle (fxbestøver tiltrækning) roller i forskellige plantearter, med kønsorganer fastholde udviklingen af mandlige og kvindelige gametofytter, henholdsvis12 , 13. gametofytter, til gengæld hver skelne et par mand (sæd) og kvindelige kønsceller (æg og central celle), der forener på dobbelt befrugtning danner den næste generation, de befrugtede æg, og den primære frøhvide, en terminal væv støtte den udviklingen af fosteret14,15. Frugt og frø udvikling støtter vækst, modning og opbevaring af embryoner og i sidste ende, dens spredning. Omfattende forskning er blevet udført for at karakterisere blomst og embryo udvikling i forskellige plantearter, især i arternes model Arabidopsis7,16,17.
Tidlig mikroskopiske analyser af blomst udvikling var baseret på tidskrævende prøve behandling og observation teknikker, såsom paraffin eller harpiks indlejring og skæring, kombineret med lys eller Elektron Mikroskopi. Disse traditionelle mikroskopiske teknikker blev ofte brugt i kombination med molekylær genetiske undersøgelser, som mikroskopiske analyser af mutanter, lokalisering af RNA ved i situ hybridisering eller immuno-påvisning af proteiner. De seneste fremskridt i wide-felt og konfokal Fluorescens mikroskopi, state-of-the-art 3-D computer-aided billede analyser og løbende forfinelse af molekylære metoder, der kan bruges på minimalt forarbejdede hele-mount prøver, har ført til et behov for effektiv og minimal prøve databehandling, der er fortrinsvis indstillet til kvantitative analyser. I de seneste år, er der sket betydelige fremskridt i udviklingen af clearing teknikker på hele-mount animalske modellen. De render prøven gennemsigtig enten ved hjælp af vandig urea - eller sukker-baserede reagenser (fxSCALE, SeeDB, CUBIC)18,19,20, eller ved selektivt at fjerne lipider (ved hjælp af vaskemiddel SDS) efter indlejring prøver i stabile hydrogels; fjernelse af lipider kan opnås enten ved passiv diffusion (f.eks.ændret klarhed protokol21, PAGTEN-PARS-fælge22) eller aktivt ved elektroforese (oprindelige klarhed protokol23 og ACT-PRESTO24). Opmuntret af denne hurtige fremskridt, nogle afledte teknikker også vej til brug i planter.
I denne metoder papir fokuseret på model Arabidopsis, beskrive vi proceduren for ordentlig dissektion af blomsterknopper, blomster, og unge siliques og clearing af hele-mount prøver til forskellige farvning og observation procedurer ved hjælp af klassisk eller en nylig SDS-baserede clearing metode. Gives eksempler for stivelse, callose og kromatin farvning. Selvom disse procedurer kan have yderligere forbedringer og tilpasninger når det bruges med andre arter, håber vi, de vil sætte scenen for yderligere forskning på disse simple men kritiske metoder, der er udgangspunktet for mange forskningsprojekter.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>Reagents and Materials</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ethanol</td>
			<td>Scharlau</td>
			<td>ET00102500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Acetic Acid</td>
			<td>Applichem</td>
			<td>A3686,2500</td>
			<td>100% Molecular biology grade</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glacial Acetic Acid</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>320099</td>
			<td>Molecular Biology Grade</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Methanol</td>
			<td>Scharlau</td>
			<td>ME03062500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Formaldehyde Solution</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>F1635</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Propionic acid</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>81910-250 ml</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Chloral hydrate</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>15307</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glycerol</td>
			<td>Roth</td>
			<td>3783.1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gum arabic</td>
			<td>Fluka</td>
			<td>51198</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lactic acid</td>
			<td>Fluka</td>
			<td>69773</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phenol</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>77607-250ML</td>
			<td>We used liquid phenol (use the density to find the required volume for your solution)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Clove oil</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>C8392-100ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Xylene</td>
			<td>Roth</td>
			<td>4436.1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Iodine</td>
			<td>Fluka</td>
			<td>57665</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Potassium iodide</td>
			<td>Merck</td>
			<td>5043</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Malachite Green</td>
			<td>Fluka</td>
			<td>63160</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fuchsin acid</td>
			<td>Fluka</td>
			<td>84600</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Orange G</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>7252</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium Dodecyl Sulfate</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>L3771</td>
			<td>Molecular Biology Grade</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium hydroxide</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>71690</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium di-Hydrogen Phosphate</td>
			<td>Applichem</td>
			<td>A1047,1000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium phosphate dibasic</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>S9763-1KG</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Potassium phosphate</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>04347</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>EDTA</td>
			<td>Applichem</td>
			<td>A2937,1000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Calcofluor</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>F6259</td>
			<td>Fluorescent brightener 28</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Auramine</td>
			<td>Chroma</td>
			<td>10120</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DAPI</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>D9542</td>
			<td>toxic</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Triton-X-100</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>T8787</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Aniline blue</td>
			<td>Merck</td>
			<td>1275</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MS medium</td>
			<td>Carolina</td>
			<td>19-57030</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nutrient-rich substrate</td>
			<td>Einheitserde</td>
			<td>ED73</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Watch maker&#39;s glass</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>No specific brand</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>15 ml falcon centrifuge tubes</td>
			<td>VWR</td>
			<td>62406-200</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dumond Forceps</td>
			<td>Actimed</td>
			<td>0208-5SPSF-PS</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Forceps</td>
			<td>DUMONT BIOLOGY</td>
			<td>0108-5</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe</td>
			<td>BD</td>
			<td>BD Plastipak 300013</td>
			<td>1 ml</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Preparation needle</td>
			<td>BD</td>
			<td>BD Microlance 304000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscope slides</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>10143562CE</td>
			<td>cut edges</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Coverslips</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>DV40008</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Humid box</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>A plastic box with damp paper towel and slide supports inside</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Name</td>
			<td>Company</td>
			<td>Catalog Number</td>
			<td>Comments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Solutions</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fixatives</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Carnoy&#39;s (Farmer&#39;s) fixative</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Absolute ethanol : glacial acetic acid, 3:1 (ml:ml)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Methanol/acetic acid fixative</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>50 % (v/v) methanol, 10 % (v/v) glacial acetic acid in deionized water</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FPA50 fixative</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Formalin, propionic acid, 50% ethanol; 5:5:90 (ml:ml:ml)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Clearing solutions</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Chloral hydrate/glycerol</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Chloral hydrate : glycerol : water, 8:1:2 (g:ml:ml). Can be used for all flower developmental stages and for silique development with DIC microscopy. The best fixative is the formaline based FPA50</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Modified Hoyer</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Gum arabic 7.5 g, chloral hydrate 100 g, glycerol 5 ml , water 30 ml. Can be used for all flower developmental stages and for silique development with DIC microscopy. The best fixative is the formaline based FPA50</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Herr&#39;s 4&#189; clearing fluid</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Lactic acid, chloral hydrate, phenol crystals, clove oil, xylene; 2:2:2:2:1, by weight. Can be used for all flower developmental stages (especially for stamen development) and for silique development with DIC microscopy. The best fixative is the formaline based FPA50</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SDS/NaOH solution</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Mix-dilute the the SDS and the NaOH stock solution to 1% SDS / 0.2 N NaOH (10x dilution). For all stages of flower and silique developmental stages. The best fixative is the methano/acetic acid fixative; the other two fixatives can also be used. Can be combined with calcofluor, auramine, DAPI, and aniline blue staining solution.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SDS stock solution</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>10 % (w/v) sodium dodecyl sulphate. Dissolve 10 g sodium dodecyl sulphate in 80 ml deionized water and make up to 100 ml with deionized water.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaOH stock solution</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>2 N NaOH solution: dissolve 4 g of NaOH in 40 ml of deionized water and make up to 100 ml with deionized water</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Combined clearing and staining solutions</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Herr&#39;s IKI-4&#189;</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>To a standard 4&#189; (9 g in total) add: 100 mg iodine, 500 mg potassium iodide. This clearing solution can be used for all flower developmental stages and for silique development, either for increasing contrast or for characterizing starch dynamics. Use FPA50 for structural analysis and Carnoy&#39;s fixative for quantitative starch analysis.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alexander staining</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Ethanol 95% 10ml, malachite green (1% in 95% EtOH) 1 ml, fuchsin acid (1% in ddH2O) 5ml, orange G (1% in ddH2O) 0.5ml, phenol 5g, chloral hydrate 5g, glacial acetic acid 2ml, glycerol 25ml . This clearing/staining alone or in combination with Herr&#39;s 4&#189; solution can be used to evaluate pollen abortion in flowers with mature and tricellular pollen grains. It&#39;s used on freshly harved non-fixed material.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Staining solutions</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Calcofluor solution</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Calcofluor 0.007% in water (g:ml). Originally used as an optical brightner. Can be used for staining cellulose, carboxylated polysaccharides and callose in cell walls. Frequently used to stain the intine of the pollen grain. All three fixatives can be used with this solution.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Auramine solution</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Auramine 0.01% in water (g:ml). This lipophilic fluorscent dye can be used for staining cuticles, cutin, and exine among others. All three fixatives can be used with this solution</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Calcofluor-Auramine mixture</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Auramine solution : Calcofluor solution, 3:1. Can be used for a combined staining by both solutions. Other proportions can be assayed maintaining a smaller proportion of calcofluor with respect to auramine.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DAPI solution</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>DAPI 0.4 ug/ml, 0.1 M sodium phosphate buffer (pH 7), 0.1% Triton-X-100, 1 mM EDTA. This solution can be used for staining chromosome spreads during male and female meiosis, and cell nuclei of any tissue. Frequently used for studying pollen grain development. Carnoy&#39;s and methanol/ acetic acid are the best fixatives for this solution. Formaldehyde-based fixatives such as FPA50 may interfere with the staining. Excitation in the UV and maximum emission around 461 nm.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium phosphate buffer (0.1 M)</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Proton receptor: 0.2 M Na2HPO4, proton donor: 0.2 M NaH2PO4, ratio proton donor / proton receptor: 1.364 ( for a pH 7)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Aniline blue solution</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>0.1% (w/v) aniline blue, 108 mM K3PO4 (pH 11), 2% glycerol. This solution can be used for staining callose and cellulose of many stages of development (e.g callose deposition in male and female terads, callose plugs in pollen tubes). Excitation in the UV and maximum emission around 455. It can also be excited at 514 nm with emission in the red for cell content staining.</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

whole-mount clearing and staining of arabidopsis flower organs and siliques

På grund af dets formidable værktøjer til molekylær genetiske undersøgelser er Arabidopsis thaliana en af de mest fremtrædende model arter i plantebiologi og navnlig plante reproduktiv biologi. Dog inddrage plante morfologiske, anatomiske og ultrastrukturelle analyser traditionelt tidskrævende indlejring og skæring procedurer til lysfelt, scanning og elektronmikroskopi. De seneste fremskridt i Konfokal Fluorescens mikroskopi, state-of-the-art 3D-computer-aided mikroskopiske analyser og løbende forfinelse af molekylære teknikker skal anvendes på minimalt forarbejdede hele-mount prøver, har ført til øget efterspørgsel efter udvikle effektive og minimal prøve forarbejdningsteknik. I denne protokol, vi beskriver teknikker til korrekt dissekere Arabidopsis blomster og siliques, grundlæggende clearing-teknikker, og nogle farvning procedurer for hele-mount observationer af reproduktive strukturer.

Arabidopsis tilhører familien Brassicacea, forsynet med blomsterstande med biseksuelle blomster arrangeret i en halvskærm (figur 1). Hver blomst har fire bægerblade, fire kronblade, seks støvdragere (fire lange og to korte) og en en frugtstand Støvvejene er bestående af to medfødt sammenvoksede frugtblade (figur 1F-H) arrangeret i fire koncentriske hvirvler25,<su...

Watch this Scientific Journal Video about Whole-mount Clearing and Staining of Arabidopsis Flower Organs and Siliques at JoVE.com

Whole-mount Clearing and Staining of Arabidopsis Flower Organs and Siliques

Hele-mount Clearing og farvning af Arabidopsis blomst organer og Siliques

I denne protokol, vi beskriver teknikker til ordentlig dissektion af Arabidopsis blomster og siliques, nogle grundlæggende clearing teknikker, og valgt Farvning procedurer for hele-mount observationer af reproduktive strukturer.

Due to its formidable tools for molecular genetic studies, Arabidopsis thaliana is one of the most prominent model species in plant biology and, ...

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Whole-mount Clearing and Staining of Arabidopsis Flower Organs and Siliques

Organ Culture and Whole Mount Immunofluorescence Staining of Mouse Wolffian Ducts

Organ Kultur og Whole Mount Immunofluorescens Farvning af Mouse Wolffian Kanaler

Tubal morphogenesis is a fundamental requirement for the development of most mammalian organs, including the male reproductive system. The epididymis, an ...

Live Confocal Imaging of Developing Arabidopsis Flowers

Lev Konfokal Imaging af Udvikling Arabidopsis Blomster

The study of plant growth and development has long relied on experimental techniques using dead, fixed tissues and lacking proper cellular resolution. ...

Protocols for Visualizing Steroidogenic Organs and Their Interactive Organs with Immunostaining in the Fruit Fly Drosophila melanogaster

Protocols for Visualizing Steroidogenic Organs and Their Interactive Organs with Immunostaining in the Fruit Fly Drosophila melanogaster

Protokoller til visualisering steroidogeniske organer og deres interaktive organer med Immunfarvning i bananfluen<em&gt; Drosophila melanogaster</em

In multicellular organisms, a small group of cells is endowed with a specialized function in their biogenic activity, inducing a systemic response ...

Horizontal Whole Mount: A Novel Processing and Imaging Protocol for Thick, Three-dimensional Tissue Cross-sections of Skin

Horisontal Hel Mount: En Novel Processing and Imaging Protocol for Tykke, Tredimensionale Tissue Tværsnit af Skin

Processing a tissue of interest to generate a microscopic image that supports a scientific argument can be challenging. The acquisition of high-quality ...

Visualizing Multiciliated Cells in the Zebrafish Through a Combined Protocol of Whole Mount Fluorescent In Situ Hybridization and Immunofluorescence

Visualizing Multiciliated Cells in the Zebrafish Through a Combined Protocol of Whole Mount Fluorescent In Situ Hybridization and Immunofluorescence

Visualisere Multiciliated celler i zebrafisk gennem en kombineret protokol af hele Mount fluorescerende In Situ hybridisering og immunfluorescens

In recent years, the zebrafish embryo has emerged as a popular model to study developmental biology due to traits such as ex utero embryo development and ...

Quantitative Whole-mount Immunofluorescence Analysis of Cardiac Progenitor Populations in Mouse Embryos

Kvantitative hele-mount immunofluorescens analyse af Cardiac stamfader populationer i mus embryoner

The use of ever-advancing imaging techniques has contributed broadly to our increased understanding of embryonic development. Pre-implantation development ...

Whole-mount Confocal Microscopy for Adult Ear Skin: A Model System to Study Neuro-vascular Branching Morphogenesis and Immune Cell Distribution

Hele-mount Konfokal mikroskopi for voksne øre hud: et modelsystem til at studere Neuro-kar forgrening morfogenese og immun celle Distribution

Here, we present a protocol of a whole-mount adult ear skin imaging technique to study comprehensive three-dimensional neuro-vascular branching ...

Three-dimensional Organotypic Cultures of Vestibular and Auditory Sensory Organs

Tre-dimensionelle Organotypic kulturer af vestibulære og auditive sanseorganer

The sensory organs of the inner ear are challenging to study in mammals due to their inaccessibility to experimental manipulation and optical observation. ...

Whole Mount Immunofluorescence and Follicle Quantification of Cultured Mouse Ovaries

Hele Mount immunofluorescens og follikel kvantificering af kulturperler mus æggestokke

Research in the field of mammalian reproductive biology often involves evaluating the overall health of ovaries and testes. Specifically, in females, ...

Visualizing the Node and Notochordal Plate In Gastrulating Mouse Embryos Using Scanning Electron Microscopy and Whole Mount Immunofluorescence

Visualisere Node og Notochordal plade i Gastrulating mus embryoner ved hjælp af Scanning elektronmikroskopi og hele Mount immunfluorescens

The post-implantation mouse embryo undergoes major shape changes after the initiation of gastrulation and morphogenesis. A hallmark of morphogenesis is ...