Name: engineering 'golden' fluorescence by selective pressure incorporation of non-canonical amino acids and protein analysis by mass spectrometry and fluorescence
Uploaded: 2018-04-27T13:00:00
Duration: 11 min 51 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Engineering 'Golden' Fluorescence by Selective Pressure Incorporation of Non-canonical Amino Acids and Protein Analysis by Mass Spectrometry and Fluorescence

Diese Arbeit wurde unterstützt von der Deutschen Forschungsgemeinschaft (Exzellenzcluster "Unifying Konzepte in Katalyse) T.F und N.B. und durch das Bundesministerium für Bildung und Wissenschaft (BMBF-Programm"HSP 2020", TU-WIMIplus Projekt SynTUBio), F.-j.s.

1. Umwandlung von Trp-auxotrophe E. coli
<ol><li>Chemisch zu verwandeln oder Electrocompetent Zellen (50 µL) eines Trp auxotrophe E. Coli -Stamm, zB. ATTC 49980 (WP2, Mutant, abgeleitet von E. Coli -Stamm B/R22), mit 1 µL einer 1 ng/µL wässrige Lösung von dem pQE - 80 L His6-ECFP Plasmid mit Hitzeschock oder Elektroporation, beziehungsweise. Entnehmen Sie bitte dem Jupiter Science Education Database23,24 für Details. Hinweis: Der Ausdruck Vektor kodiert pQE - 80 L His6-ECFP eine N-Terminal 6 x sein-tagged ECFP21 angetrieben durch eine bakterielle T5-Promoter mit Lac-Operator. Weiter trägt ein Selektionsmarker AmpR und ein colE1 Ursprung der Replikation (die pQE - 80 L-Vektor-Rückgrat-Sequenz finden Sie auf: https://www.qiagen.com/mx/resources/resourcedetail?id=c3b71572-4d82-4671-a79b-96357fe926d1&lang=en & autoSuggest = True). Das theoretische Molekulargewicht des His6-ECFG Wildtyp Proteins (nach Chromophor Reifung25) ist 28303.92 Da. Die übersetzten Zielsequenz Protein ist wie folgt (His-Tag unterstrichen, Vektor-abgeleitete Sequenzen in Fettdruck): MRGSHHHHHHGSMVSKGEELFTGVVPILVELDGDVNGHKFSVSGEGEGDATYGKLTLKFICTTGKLPVPWPTLVTTLTWGVQCFSRYPDHMK QHDFFKSAMPEGYVQERTIFFKDDGNYKTRAEVKFEGDTLVNRIELKGIDFKEDGNILGHKLEYNYISHNVYITADKQKNGIKANFKIRHNIEDGS VQLADHYQQNTPIGDGPVLLPDNHYLSTQSALSKDPNEKRDHMVLLEFVTAAGITLGMDELYK.
</li>
	<li>Platte transformierte Zellen auf LB-Agar-Platten (Tabelle 1) ergänzt mit 10 g/L Glukose, 100 µg/mL Ampicillin und über Nacht die Platten bei 37 ° C inkubieren.</li>
</ol>(2) rekombinante Proteinexpression
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Über Nacht Kultur von E. Coli ATCC 49980 pQE - 80 L His6-ECFP
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<li>Bereiten Sie 5 mL LB-Medium (Tabelle 1; ergänzt mit 10 g/L Glukose, 100 µg/mL Ampicillin) in eine sterile 14 mL Polystyrol Kultur Rohr für aerobe Wachstum und impfen mit einer einzeln Kolonie von einer nährbodenplatte mit einer sterilen Pipette Tipp oder Impfung Schleife. Hinweis: Es wird empfohlen, Kolonien von frisch transformierten Zellen verwenden. Die Platten mit Bakterienkolonien (ab Schritt 1.2.) können für mehrere Tage bei 4 ° C gelagert werden.</li>
		<li>Über Nacht inkubieren Sie die Zellen bei 37 ° C in einem Orbitalschüttler bei 200-250 u/min.</li>
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Ausdruck der Wildtyp ECFP
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<li>10 mL frisches LB-Medium zu impfen (Tabelle 1; ergänzt mit 10 g/L Glukose, 100 µg/mL Ampicillin) mit 100 µL der Übernacht-Kultur in einem 100 mL Erlenmeyerkolben. Inkubieren Sie den Kolben bei 37 ° C in einem Orbitalschüttler bei 200 u/min. Hinweis: Optional, dieser Schritt kann durchgeführt werden in 10 mL NMM19 Medium (Tabelle 1) ergänzt mit 100 µg/L Ampicillin und 0,5 mM L-Tryptophan (Alternativ Indol kann verwendet werden).</li>
		<li>Messung die optische Dichte bei 600 nm (OD600) alle 20 min. bevorzugt Messen Zelle Dichte durch die Bestimmung der Auslöschung bei 600 nm (OD600) in einem Spektralphotometer mit einer Küvette mit einer Weglänge von 1 cm. immer führen Sie eine Referenz Messung mit dem entsprechenden Kulturmedium. Verdünnen Sie die Proben und Mischung der Proben gut um einen Messwert von 0,1-0,8 zu erhalten, dann OD600 mit dem Verdünnungsfaktor zu berechnen. Einzelheiten hierzu finden Sie in vorherigen Veröffentlichung 26.</li>
		<li>Nehmen Sie bei Erreichen einer OD600 Wert von 0,5-0,8 (ca. 2-3 h nach der Inokulation), Probe "vor Induktion" für SDS-PAGE (Sodium Dodecyl Sulfat Polyacrylamid Gelelektrophorese, Schritt 4).</li>
		<li>Induzieren Sie Ziel Proteinexpression durch Anpassen der Flüssigkultur bis 0,5 mM IPTG (Isopropyl β-D-1-Thiogalactopyranoside, von 1 M-Stammlösung) und inkubieren Sie es bei 30 ° C in einem Orbitalschüttler bei 200 u/min für 4-8 h. Hinweis: Cyan fluoreszierende Proteinen sind gemeinhin bei Temperaturen unter 37 ° C27dargestellt.</li>
		<li>Probe für SDS-PAGE (Schritt 4) "nach dem Ausdruck" nehmen.</li>
		<li>Ernte der bakteriellen Zellen durch Zentrifugation für 10 min bei 5.000 x g und 4 ° C.</li>
		<li>Den Überstand durch Dekantieren zu verwerfen und die Zelle Pellets bei-20 ° C oder-80 ° C bis Ziel Proteinreinigung einfrieren.</li>
	</ol>
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SPI für die Herstellung von GdFP
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<li>10 mL des NMM19 Mediums (Tabelle 1) ergänzt mit 100 µg/mL Ampicillin, 15 µM Tryptophan und 10 µL der Nacht Kultur in einem 100 mL Erlenmeyerkolben impfen und die Kultur-Flasche über Nacht bei 30 ° C in einem Orbitalschüttler bei 200 u/min inkubieren. Hinweis: Eine Vielzahl von chemisch definierten Medien für den Anbau von E. Coli und SPI ist verfügbar. Neben NMM hierin verwendeten MOPS mittlere28, Glukose-mineralische Salze mittlere29, Davis minimale mittlere30, M9 minimale mittlere31oder GMML32 eingesetzt werden.</li>
		<li>Messen Sie am nächsten Tag OD600 alle 30 Minuten, bis der Wert nur um weniger als 0,05 über 30 min ändert. Der plateauwert sollte ungefähr 1. Hinweis: Abweichungen von ± 0,3 Einheiten sind zulässig. Je nach Bakterienstamm und Medium verwendet kann die anfängliche Tryptophan-Konzentration (Schritt. 2.3.1) Anpassung erforderlich.</li>
		<li>Nehmen Sie Probe "vor Induktion" für SDS-PAGE (Schritt 4).</li>
		<li>Ernte der bakteriellen Zellen durch Zentrifugation für 10 min bei 5.000 x g und 4 ° C. Den Überstand durch Dekantieren zu verwerfen.</li>
		<li>Die Zellen in NMM19 Medium mit 100 µg/mL Ampicillin 10 mL in einen 100-mL-Erlenmeyerkolben aufschwemmen und eine Endkonzentration von 1 mM mit 50 mM Stammlösung 4-amino-Indol hinzufügen. Die Inkubation für 30 min bei 30 ° C in einem Orbitalschüttler bei 200 u/min weiter. Hinweis: Dieser Schritt ist wegen der geringen chemischen Stabilität von Ampicillin empfohlen und sorgt für die zelluläre Aufnahme von 4-amino-Indol.</li>
		<li>Ziel-Protein-Expression durch Zugabe von IPTG, eine Endkonzentration von 0,5 mM mit 1 M Lager induzieren und die Probe über Nacht bei 30 ° C in einem Orbitalschüttler bei 200 u/min inkubieren. Hinweis: Cyan fluoreszierende Proteinen sind gemeinhin bei Temperaturen unter 37 ° C27dargestellt.</li>
		<li>Messen Sie am nächsten Tag OD600.</li>
		<li>Probe für SDS-PAGE (Schritt 4) "nach dem Ausdruck" nehmen.</li>
		<li>Ernte der bakteriellen Zellen durch Zentrifugation für 10 min bei 5.000 x g und 4 ° C und Überstand durch Dekantieren zu verwerfen.</li>
		<li>Für den Fall, dass ein solches Schiff nicht für Zentrifugation verwendet wurde, übertragen Sie die Zelle Pellet in ein 50 mL konische Polystyrol Röhrchen mit einem Spatel. Frieren Sie die Zelle Pellet bei-20 ° C oder-80 ° C bis Ziel Proteinreinigung.</li>
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</ol>3. Ziel Proteinreinigung über stillgestellte Metallionen Affinitätschromatographie (IMAC)
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Bakterienzelle Lyse
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<li>Die Zelle-Pellet für 10-20 min auf Eis Auftauen.</li>
		<li>Aufschwemmen der Zelle Pellet in einer 50 mL konische Polystyrol Tube mit 5 mL eiskaltes Bindung Puffer (Tabelle 1) auf dem Eis.</li>
		<li>Fügen Sie 20 µL 50 mg/mL Lysozym, 20 µL von 1 mg/mL DNase ich 20 µL von 1 mg/mL RNase A. das Röhrchen verschließen, durch invertieren 5 Mal vorsichtig mischen und halten Sie es für 30 min auf Eis. Hinweis: Teilweise Zellaufschluss tritt wie von Lysozym katalysiert.</li>
		<li>Lyse der Zellen durch Sonifikation mit einem Ultraschall Homogenisator Spitze mit drei Zyklen von 3 min in einem 15 mL Polystyrol Rohr gekühlt durch Matsch Eis mit 2 s von Puls 4 s Pause und 45 % Amplitude. Hinweis: Alternativ Hochdruck Homogenisierung kann verwendet werden, zB., 20 Zyklen bei 14.000 Psi. Bei Bedarf verdünnen Sie mit Bindung Puffer um die Lautstärke minimal Instrument zu erreichen. Darüber hinaus können Protein Extraktion Reagenzien für Zellaufschluss verwendet werden. Siehe Materialtabelle für Beispiele.</li>
		<li>Zentrifuge der Probe für 30 min bei 15.000-18.000 x g, 4 ° C.</li>
		<li>Übertragen Sie den überstand in ein frisches Tubus und notieren Sie sich das Flüssigkeitsvolumen.</li>
		<li>Filtern die Lösung durch einen 0,45 µm-Spritze-Filter mit einer 5 mL Luer Lock kunststoffspritze und ein Polyvinylidenfluorid (PVDF) Spritze Filter.</li>
		<li>Nehmen Sie "lysate" Probe für SDS-PAGE (Schritt 4).</li>
		<li>Aufschwemmen Sie Zelle Rückstand Pellet in DdH2O (gleiches Volumen als ehemalige lysate).</li>
		<li>Nehmen Sie Probe "Pellet" für SDS-PAGE (Schritt 4).</li>
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</li>
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IMAC-Reinigung
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<li>Verwenden Sie eine 1 mL abgepackt oder SB IMAC FPLC (schnelles Protein liquid Chromatography) Spalte gemäß Anweisungen des Herstellers. Verwenden Sie verbindliche Puffer (Tabelle 1) für Spalte Gleichgewichtherstellung ebenso wie bei der Waschschritt die folgt, nachdem die Zelle lysate auf die Spalte angewendet wurde.</li>
		<li>Sammeln Sie und bündeln Sie Eluat Brüche mit GdFP, die durch sichtbare helle goldene Farbe identifiziert werden können. Hinweis: Optional das Zielprotein kann werden eluiert mit einem linearen Imidazol-Farbverlauf (0-250 mM) mit einem automatisierten System FPLC.</li>
		<li>Bestimmen die Konzentration des Proteins mit dem Literaturwert für die vom Aussterben bedroht-Koeffizient bei 466 nm (Mundarten466 nm = 23.700 M-1 cm-1)33 mit Elution Buffer als Referenz. Informationen über die Vorgehensweise finden Sie in vorherigen Veröffentlichung26.</li>
		<li>Beispiel "Eluat" für SDS-PAGE, und 1 – 10 µg Protein pro Bahn bei Coomassie-Färbung. Hinweis: SDS Probe Beträge variieren je nach der Färbung Methode und Farbstoff Empfindlichkeit.</li>
		<li>Ein Aliquot der Eluat Fraktionen gegen Dialyse-Puffer oder MS Puffer mit einer Membran mit einem Molekulargewicht cutoff (MWCO) von 5.000-10.000 Dialyse. Bereiten Sie Dialysemembran gemäß Anweisungen des Herstellers. Dialyse eine 1 mL Probe dreimal gegen 100 mL Puffer für mindestens 2 h. Einzelheiten zu diesem Verfahren finden Sie in vorherigen Veröffentlichung34.</li>
		<li>Frieren Sie für die Lagerung Protein Probe in Dialyse-Puffer bei-80 ° C ein. Hinweis: Aliquote sollte für mindestens 6 Monate stabil sein.</li>
	</ol>
</li>
</ol>(4) SDS-PAGE-Probenvorbereitung von E. Coli ganze Zelle Extrakt
<ol><li>Transfer eine Zellsuspension Äquivalent zu 1 mL OD600 = 1 Aufhängung (zB. 500 µL OD600= 2) zu einem 1,5 mL Microcentrifuge Schlauch.</li>
	<li>Ernte der Zellen durch Zentrifugation für 10 min bei 5000 X g, Raumtemperatur. Den Überstand durch pipettieren zu verwerfen.</li>
	<li>Fügen Sie 80 µL DdH2O und 20 µL 5 X SDS Ladepuffer Farbstoff (Tabelle 1) um die Zelle Pellet und Mischung von pipettieren.</li>
	<li>Denaturieren Sie die Zellen durch Erhitzen auf 95 ° C für 5 min in Wasser Baden oder Hitze-Block. Anschließend kühlen Sie die Proben auf Raumtemperatur.</li>
	<li>Verwenden Sie 10 µL für Coomassie gefärbt SDS-PAGE nach vorherigen Veröffentlichung35. Hinweis: SDS Probe Beträge variieren je nach der Färbung Methode und Farbstoff Empfindlichkeit.</li>
</ol>(5) intakt Masse Proteinanalytik durch Hochleistungs-Flüssigkeitschromatographie (HPLC) gekoppelt, Electrospray Ionisierung Flugzeit-Massenspektrometrie (LC-ESI-TOF-MS)
Hinweis: HPLC Farbverlauf, Einstellungen und Puffer variieren je nach der Trennsäule und Instrument verwendet. Siehe Materialtabelle für beispielhafte Ausstattung.
<ol><li>Bestimmen die Konzentration des Proteins aus einer Stichprobe dialysiert gegen MS Puffer wie beschrieben (Schritt 3.2.3.) mit MS Puffer (siehe Materialtabelle) als Referenz.</li>
	<li>Verdünnen Sie die Protein-Probe zu einem Endvolumen von 80 µL MS Puffer über 0,1 mg/mL, mischen Sie, indem Sie vorsichtig pipettieren, übertragen Sie die Lösung in ein MS Autosampler Fläschchen mit Glaseinsatz und schließen Sie es mit einer Kappe. Streichen das Fläschchen, um Luftblasen zu entfernen.</li>
	<li>Füllen Sie eine zweite Autosampler Fläschchen ohne Glaseinsatz (Puffer leer) mit 1 mL der MS Puffer.</li>
	<li>Lassen Sie das Gerät zum Aufwärmen. Durchführen Sie Kalibrierung. Stellen Sie sicher, dass ausreichende Mengen an Lösungsmitteln flüssige Chromatographie-Klasse verfügbar sind (> 100 mL).</li>
	<li>Programmieren eine linearen 20 min HPLC Steigung von 5 % auf 80 % Puffer eine (0,1 % Ameisensäure in DdH2O), kombiniert mit Puffer B (0,1 % Ameisensäure in Acetonitril).</li>
	<li>Eine Strömung von 0,3 mL/min HPLC ab und warten Sie, bis die Spalte Druck stabil ist.</li>
	<li>Legen Sie eine Autosampler Injektionsvolumen von 5 µL für die LC-ESI-TOF-MS-Methode, erstellen einen Arbeitsvorrat für eine leere laufen von einem Beispiel ausführen gefolgt und Zuweisen des entsprechenden Autosamplers Fläschchen Positionen. Führen Sie den Arbeitsvorrat.</li>
	<li>Öffnen Sie nach Abschluss der Arbeitsvorrat die generierten Beispieldatendatei. Wählen Sie einen Bereich in der gesamten Ion aktuelle (TIC) Plot für Dekonvolution und deconvolute der MS-Spektrum mit der maximalen Entropie Dekonvolution Algorithmus. Hinweis: Abhängig von den experimentellen Bedingungen, können weitere Arten von nicht ausgereiften FP auftreten oder Puffer Ion Addukte.</li>
</ol>(6) Fluoreszenz-Lebensdauer-Messungen und Verfall-assoziierten Spektren (ZVE) von GdFP
Hinweis: Für die Instrumentierung der Zeitaufgelösten Fluoreszenz-Spektroskopie finden Sie Tabelle der Materialien für beispielhafte Ausstattung. Absorption und Fluoreszenzanregung sowie Emissionsspektren von fluoreszierenden Proteinen kann auch mit Labor-Fluoreszenz und UV/Vis-Spektralphotometer aufgezeichnet werden.
<ol><li>
Wellenlänge-resolved Lebensdauer Fluoreszenzmessung von GdFP
	<ol>
<li>Bereiten Sie 2 mL einer 1 µM-Lösung von GdFP durch Verdünnung in PBS-Puffer (Tabelle 1) bei pH 7. Füllen Sie die Lösung in eine 1 cm-Quarz-Küvetten.</li>
		<li>Installieren Sie Ps-gepulste 470 nm Laser Probe Erregung und 488 nm lang-Pass Emission Filter zu, und passen Sie 600 L/mm Gitter von der Zeit und Wellenlänge korreliert Einzelphotonen zählen36 (TWCSPC)-Detektor für den Erwerb des Regimes Wellenlänge 500-700 nm.</li>
		<li>Fluoreszenz-Emission bei einer Pulsrate von etwa 200 x 103 Photonen/s zu erwerben, bis etwa 103 zählt in den Erwerb maximal die Fluoreszenz-Verfall-Kurven mit single Photon counting Software angesammelt sind.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Messung der instrumentalen Antwort Funktion37 (IRF)
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<li>Ersetzen Sie die Probe-Küvette mit einer 1 cm-Quarz-Küvette gefüllt mit 1 g/L kolloidale Kieselsäure (~ 220 m2/g) in PBS-Puffer bei pH 7. Hinweis: Die Kieselsäure-Suspension wird mit 400 g/L wässrige Suspension zubereitet.</li>
		<li>Entfernen Sie 488 nm lang-Pass Emission Filter und Einfügen grau Filter die Zählrate am TWCSPC Detektor auf unter 100 x 103 Grafen/s einstellen.</li>
		<li>Stellen Sie ein Gitter für den Erwerb von 470 nm Photonen im Kanal 8 der 16-Kanal-TWCSPC-Detektor.</li>
		<li>Erwerben Sie die IRF, bis etwa 10 x 103 zählt in der maximalen Emission kumuliert werden.</li>
		<li>Convert Fluoreszenz Verfall Kurven und IRF, ASCII-Dateien mit globalen passend38 Programm.</li>
		<li>Verhalten Global nach einem Modell einer Summe von drei exponentiellen Komponenten mit Lebenszeiten als verknüpfte Parameter passen.</li>
		<li>Grundstück-Zerfall zugeordnet Spektren (ZVE) als Amplitude Verteilungen der einzelnen Verfall Komponenten in Abhängigkeit von der Wellenlänge Datenanalyse-Software.</li>
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</li>
</ol>

Die Autoren erklären, dass sie keine finanziellen Interessenkonflikte.

Um sehr hohe Wirkungsgrade der ncAA-Aufnahme zu erreichen, beruht die auxotrophien-basierte SPI-Methode auf der Verwendung von metabolisch veränderter Wirtszellen, die nicht in der Lage, die entsprechenden natürlichen Vorbild der ncAA zu synthetisieren. Für E. Colisind solche Belastungen verfügbar. Auch die gleichzeitige Einbindung der mehrere NcAAs in das gleiche Protein ist machbar mit multiauxotrophic Stämme. Der Rückstand-Modus der Ersatz und die chemischen Repertoire auf ähnliche chemische Analoga eingeschränkt kann als Nachteile gesehen werden. Dennoch kann eine große Anzahl von Protein-Varianten produziert werden, wie die natürliche bakterielle Übersetzung Apparat zahlreiche Aminosäure-Analoga verträgt. Beispielsweise könnte Proteine mit in-Vitro -Übersetzung, entfallen etwa 73 % aller Codons des genetischen Codes für Geschlechtsangleichende40zur Verfügung stehen mehr als 50 NcAAs integriert werden. Darüber hinaus kann auch SPI ermöglichen effizientes multisite Kennzeichnung des Ziel-Protein-41. Im Prinzip die SPI-Methode beschränkt sich nicht auf E. Coli, aber kann in einem beliebigen anderen Host und für jede der 20 kanonischen Aminosäuren, arbeiten, sofern auxotrophe Stämme und definierten Anbau-Medien zur Verfügung stehen. Zum Beispiel sind zwei Methionin-Analoga, Azidohomoalanine (Aha) und Homopropargylglycine (Hpg), kommerziell zur Verfügung und wird für die Kennzeichnung der Proteine und Proteome in verschiedenen Organismen. Darüber hinaus kann Aha intrazellulär hergestellt und anschließend in Protein42integriert. Diese ncAA eignet sich besonders für Bioorthogonal Konjugationen wie Click-Chemie von Tirrel und Kollegen entwickelt: zum Beispiel in Pflanzen Gewebe von Arabidopsis Thaliana, Bombyx Mori Larven43, Drosophila Zellen44sowie Larven Zebrafisch45 und Säugerzellen einschließlich Neuronen46, können Proteine mit Aha47,48gekennzeichnet werden. In ähnlicher Weise wurden Trp Analoga antimikrobielle Peptide in Trp auxotrophe Lactococcus Lactis Stämme49erfolgreich integriert. SPI ist auch nützlich für den Bereich der Xenobiologie50,51, die Alternativen zu den grundlegenden chemischen Zusammensetzung des Lebens erforscht. Zum Beispiel, basierend auf früheren Arbeiten auf E. Coli52 und B. Subtilis53, eine E. Coli -Stamm vor kurzem eine evolutionäre Strategie unter Selektionsdruck, Thienopyrrole anstatt zu verwenden entwickelte sich durch Indol, wodurch Proteom-weite Substitution von Tryptophan durch Thienopyrrole-Alanin in den genetischen Code54. In der Regel stellt die kanonische Aminosäure Trp, die durch ein einziges Triplett (UGG) kodiert ist, ein viel versprechendes Ziel für Protein-Engineering durch den Facettenreichtum der Indol-Chemie, das zahlreiche chemische Varianten bietet. Vor kurzem, und als Alternative zu SPI-basierten Einbindung, berichtet ein Roman SCS-Plattform fähig, Trp Analoga ortspezifisch in bakteriellen und eukaryotic Wirte zu integrieren wurde55. Dies erweitert weiter die Toolbox in Vivo ncAA-basierte Protein-Engineering, einschließlich der Änderung der spektralen Eigenschaften.
Neben dem Einsatz von auxotrophe Ausdruck Gastgeber erfordert SPI-Protokoll strenge Fermentationsbedingungen, sowohl in Bezug auf Ziel Ausdruck Timing und die Zusammensetzung des Mediums um ncAA Einbindung hocheffizienter und Proteinausbeute Ziel zu erreichen 56. Anbau erfolgt mittels chemisch definierte minimalen Medien, die im wesentlichen neben wichtigen Salze die Quellen für Stickstoff (Ammoniumsalz) und Kohlenstoff (D-Glucose), Vitamine und Spurenelemente enthalten. Obwohl in Ermangelung weiterer Auxotrophies, die übrigen Aminosäuren nicht unbedingt erforderlich (20 -n, wenn n Aminosäuren müssen ersetzt werden) werden häufig hinzugefügt, um das Bakterienwachstum57zu fördern. Während einer anfänglichen Wachstumsphase vor Induktion der Proteinexpression Ziel hinzukommen die n kanonischen Aminosäuren ausgetauscht werden Konzentrationen zu begrenzen. Zellwachstum wird fortgesetzt, bis die gezielte essentiellen Aminosäuren als experimentell gekennzeichnet durch eine stationäre OD600aufgebraucht sind. Anschließend wird das Kulturmedium durch frisches Medium ersetzt, die die erschöpften Aminosäure fehlt und der ncAA in reichlich Konzentrationen enthält. Für die ribosomale Aufnahme von Tryptophan-Analoga wie gezeigt in diesem Protokoll wird ein Indol analog eingespeist, die wird intrazellulär in den entsprechenden Tryptophan-Derivat von Tryptophan Synthase58konvertiert. Als nächstes wird Ziel-Protein-Expression induziert. Zu diesem Zeitpunkt sind die Zellen kurz vor dem Ende des logarithmischen Wachstums, wie eine Balance zwischen total Zellzahl und Fitness. Da das Vorhandensein und die Einbeziehung von den kanonischen Aminosäuren zu Wildtyp Protein-Produktion führen würde, ist es wichtig, sicherzustellen, dass die essentielle Aminosäure vor Induktion vollständig aufgebraucht ist. Ebenso ist es zwingend erforderlich, um die Effizienz der ncAA Einbindung in das Zielprotein, häufig durch Massenspektrometrie untersuchen. Im Falle einer erheblichen Präsenz die kanonische Aminosäure, Anbau Bedingungen müssen angepasst werden, z.B.durch Veränderung der Konzentration der wesentlichen Amino acid(s) für die erste Wachstumsphase oder die Dauer des letzteren. Im Falle einer niedrigen AaRS Aktivität gegenüber der ncAA kann die Überexpression des körpereigenen Enzyms oder Co Ausdruck einer anderen AaRS, das mehr in Richtung der ncAA aktiv ist, durchgeführte59.
Die kanonische Aminosäure Trp mit drei bemerkenswerte Eigenschaften ausgestattet ist: (i) seinen natürlichen Reichtum an Proteinen ist gering; (Ii) die biophysikalischen und chemischen Eigenschaften sind einzigartig (zB., es ist in der Regel die dominierende Herkunft der intrinsische Fluoreszenz von Proteinen und Peptiden), und (Iii) Es trägt zu einer Vielzahl von biochemischen Interaktionen und Funktionen, einschließlich Π-Stapeln, H-Bindung und kation-π-Wechselwirkungen. Alle diese Funktionen sind auf Trp → 4-amino-Trp Substitution im GdFP. Darüber hinaus Zweifel radikal verändert, das Design der Extraklasse "Gold" AvGFPs ist ein bemerkenswertes Beispiel für engineering maßgeschneiderte Autofluorescent Proteine. Mit unterschiedlichen spektralen Eigenschaften kann FPs auf bestimmte spektrale Fenster über Mutagenese und ncAA Aufnahme abgestimmt werden. Im Falle eines GdFP wird dies durch einen einfachen chemischen Austausch H → NH2 im Rahmen der in den ECFP Chromophor Dreiklang enthalten Indol-Ring erreicht. Abbildung 5 zeigt die Auswirkungen der ncAA Gründung innerhalb der Chromophor. Die Einführung der Elektron-Spenden-Gruppe aus 4-amino-Indol (intrazellulär umgerechnet auf 4-amino-Trp) ermöglicht eine Vielzahl von mesomeric Strukturen, die einen stabilisierten angeregten Zustand erklären kann. Diese unterschiedlichen Eigenschaften des ausgedehnten konjugierten Systems spektroskopisch, seine erweiterten Stokes-Shift und Rot-verschoben Fluoreszenzemission zurückzuführen. So berichtete zuvor, verbesserte Intramolekulare Ladungstransfer innerhalb der GdFP-Chromophor ist von Natur aus empfindlich auf pH-Wert (Abbildung 4 b) und begleitet von einer größeren Änderung Dipolmoment zwischen S0 Boden und S1 aufgeregt Zustand im Vergleich zu ECFP33. Als alternative Elektron Spenden Gruppen könnte Tryptophan Analoga ein Indol Lagerring mit Hydroxygruppen ersetzt verwendet werden, wie in einer Vergleichsstudie mit dem Modell Protein Barstar41berichtet.
Die Absorption und Fluoreszenz Spektren der GdFP sind im Vergleich zu ECFP und EGFP erweitert (Abbildung 3 und D). Homogene Verbreiterung der Absorption und Fluoreszenz-Bands ist in der Regel durch Schwingungs-Modi in der Chromophor und darüber hinaus durch Kopplung der Chromophor, weitere Schwingungs Modi vorhanden in der Protein-60verursacht. Die Ankopplung an die lokalen Protein Umwelt stützt sich auf Gebühren, die auf den Chromophor lokalisiert. Da die strukturelle Inhomogenität des Proteins führt zu lokalen Variationen des vibronic Spektrums, solche Kopplung zwischen den vibronic Spektren der Chromophor und dem Rest des Proteins von kostenlos Betriebsverlagerungen und mesomeric Staaten wie im unterstützt werden Abbildung 5. Diese Kopplung unterstützt auch die große Stokes-Verschiebung und unbedingt reduziert die Quantenausbeute der Fluoreszenz. Im Vergleich zu anderen rot-verschoben FPs GdFP sogar verbesserte proteinstabilität und eine geringe Tendenz zur Aggregation33,61,62ausgestellt. Es unterscheidet sich in der Farbe von anderen FP-Varianten nicht nur, sondern stellt auch eine deutlich höhere Thermostabilität und verbesserte kooperative Faltung33. Die Fluoreszenzintensität ist zu mindestens 90 % erhalten beim Erhitzen auf 60 ° C, während ECFP Fluoreszenz auf etwa 30 % reduziert ist. In Proteinen tragen aromatischen Aminosäuren oft zu Netzwerke interagierender Seitenketten, die häufig eine stabilisierende Wirkung auf die Tertiärstruktur des Proteins haben. AvGFP birgt solch eine Seite Chain-Netzwerk, bestehend aus den Chromophor selbst, als auch als Phe-165, His-148 und Tyr-145. Diese Seitenketten sind nicht nur ziemlich starr in die GdFP Struktur33, aber wichtiger ist, sie bilden hydrophobe Kontakte mit den Chromophor. Die prominentesten Novum in GdFP identifiziert ist, dass die aminiertem-Chromophor mehr proximalen Phe-165. Diese Interaktion ist eine Funktion, die nicht in anderen bekannten AvGFPs beobachtet. Da die zwei Rückstände 3.2-4.5 Å voneinander entfernt sind, können amino-aromatischen Wechselwirkungen auch vorhanden sein. Zusammen mit der Aminierung-induzierte Resonanz Stabilisierung des der Chromophor stabilisieren diese am ehesten diese hydrophobe Netzwerk von Aminosäuren in einer kooperativen Weise. Ein effektiver Intramolekulare Ladungstransfer könnte durch diese Interaktionen in den angeregten Zustand im Vergleich zu den Grundzustand der Chromophor unterstützt werden, und es entfallen zumindest teilweise auf die 108 nm Stokes Shift33,62 .
In rationale Gestaltung der Fluorophor Eigenschaften ist eine Zunahme der Größe des delokalisierte π-Systems voraussichtlich in einer rot-verschoben Erregung Wellenlänge zur Folge. Diese Faustregel wird durch eine Reihe von Aminosäuren in Position 66 führt zu neutralen Chromophore befolgt: Phe (λMax. = 355 nm) < seine (λMa X= 386 nm) < Tyr (λMax. = 395 nm) < Trp (λMax. = 436 nm)63. Durch verschiedene Strategien erreicht diese Erweiterung der Chromophor konjugierten Systems von π-Bindungen in der Natur. Für DsRed aus Discosoma Striataverlängert er sich um die Integration von eine weitere Aminosäure, damit Verlagerung der λMax. bis 573 nm64. Der Chromophor des asFP595 (λMax. = 595 nm) von Anemonia Sulcata wurde um eine imino-Gruppe, Erweiterung der π-System-65erweitert. Da das Chromophor von GdFP und anderen AvFPs der gleichen Größe ist, muss ein anderes Prinzip einer Emissionswellenlänge im Bereich der erweiterten DsRed und asFP595 Chromophore nach sich ziehen. Die Tiefe Stokes-Verschiebung von 108 nm ist zurückzuführen auf die klare Struktur des GdFP-Chromophor, das enthüllt ein neues photophysikalischen Prinzip bei der Gestaltung der Autofluorescent Proteine. Vorläufige Berechnungen (wie berichtet in 62) haben gezeigt, dass das Dipolmoment des aufgeregt Zustand Chromophor des GdFP wesentlich größer als im Grundzustand, im Gegensatz zu den jeweiligen Werten des ECFP. Während das Dipolmoment des GdFP von ~ 3 D (Debye) im S0 Zustand auf ~ 15 S1 steigt, die Veränderung für die ECFP-Chromophor war eher moderat (von ~ 4 D bis ~ 6 D). So entsteht die einzigartige goldene Fluoreszenz des GdFP durch erhebliche Intramolekulare Ladungstransfer innerhalb der Chromophor, was die Vielfalt der möglichen mesomeric Strukturen (siehe Abbildung 5) erhöht, die Resonanz Stabilisierung ermöglichen. Dies verringert die Energie aus der Emission erfolgt. Als Folge der tief greifenden Wandel in der Dipolmoment auf Anregung ist die Intramolekulare Ladungstrennung der Hauptgrund für die Änderungen in das elektrostatische Potential der Chromophor Umwelt. Die umliegenden Protein-Matrix passt sich wiederum auf die Veränderungen in der Ladungsverteilung nach Chromophor Anregung. Die anschließende strukturelle Relaxation senkt das Energieniveau des aufgeregt Chromophor, die Verschiebungen der Fluoreszenz-Spektrum auf dem roten wegen seines Transfer kostenlos. Für der gleiche Grund, als Folge der große Stokes-Verschiebung und erhöhte Raten von STRAHLUNGSLOSE Prozesse, die Quantenausbeute der Fluoreszenz des GdFP reduziert im Vergleich zu ECFP33.
Die hohe Quantenausbeute und kleine Stokes-Verschiebung des ECFP und EGFP sind in der Regel eine starre Protein-Umgebung der Chromophor, wodurch die Anzahl der Freiheitsgrade reduziert zugeschrieben und damit interne Konvertierung zugunsten die Strahlungs Lockerung der angeregten Zustand 66. Infolgedessen könnte die molekulare Design mehr starr eingebettete Chromophore mit reduzierten Ankopplung an die verbleibenden Proteinmatrix dienen als Leitfaden weiter rot-verschoben GFP Derivate mit hoher Fluoreszenz Quantenausbeute produzieren. Für weitere technische Ansätze zur Rot-verschoben Autofluorescent Proteine zu produzieren, ist Erweiterung des Systems der π-Elektronen und eine starre Chromophor Struktur mit schwacher Kopplung an die Protein-Umwelt daher höchst wünschenswert. Solche Änderungen könnte auch direkt in der GFP-basierte Chromophore oder durch Platzierung des gewünschten NcAAs in der Nähe der Chromophor eingeführt werden.

Seit der Entdeckung der das grün fluoreszierende Protein in der Qualle Aequorea Victoria (AvGFP) im Jahr 19621 und der erste heterologen Ausdruck in 19942 in anderen eukaryotischen Zellen sind fluoreszierende Proteine der GFP-Familie geworden. sehr wertvolle Werkzeuge und Ziele im Bereich Life Sciences. Umfangreichen genetischen und molekularbiologischen Technik enthalten, die Anpassung der artspezifischen Codon Usage, Beschleunigung der Faltung, verbesserte Reifung, erhöhte Helligkeit, Prävention von Oligomerisierung und Zuschnitt der spektralen und photochemischen Eigenschaften einschließlich der Fähigkeit, reversibel Photoswitch3,4,5,6. GFP verdankt seine Fluoreszenz aus seiner 4-(p- Hydroxybenzylidene) Imidazolidin-5-1 (HBDI) Chromophor. Letzteres ist nach der Ausbildung eine zusätzliche kovalente Bindung innerhalb der Peptidrückgrat unter dem Einfluss von molekularem Sauerstoff7ab aus der sogenannten Chromophor Dreiklang aus Aminosäuren (Ser-65/Tyr-66/Gly-67 in AvGFP) gebildet. Die Resonant stabilisierte konjugierte System interagiert dynamisch mit seiner molekularen Umgebung, so dass für die Absorption im sichtbaren Bereich und charakteristischen grünen Fluoreszenz dieser Proteine.
Innerhalb der Triade Chromophor ist die Anwesenheit von eine aromatische Aminosäure obligatorisch. Das standard Aminosäure-Repertoire umfasst jedoch nur vier aromatischen Rückstände (His, Phe, Trp und Tyr). Dies schränkt konventionelle Mutagenese Ansätze um wesentlich mehr rot-verschoben AvGFP Varianten bezogen auf die rot-verschoben natürliche FPs wie DsRed8 aus Discosoma Striata Coralimorphs oder Mkat/mNeptune9 aus zu erreichen die Seeanemone Entacmaea Quadricolor. Daher, dunkelrote und nahen infraroten Bereich des optischen Spektrums über 600 nm ist spärlich bedeckt von GFP-Varianten. Dies ist natürlich eine schwere Einschränkung für Fluoreszenz mikroskopisch kleine Ansätze, die spektrale Demultiplexen von mehreren Fluorophor Arten zur gleichen Zeit erfordern. Langwellige Marker sind beispielsweise auch notwendig, um des geringen Absorption Regimes von Hautgewebe zwischen 700-1.000 nm in den Einstellungen für Tiefe Gewebe imaging10verwenden.
Fluoreszierende Proteine aus AvGFP gliedern sich in mehrere Klassen anhand der spektroskopischen Eigenschaften und chemische Natur von deren Chromophore11. Mit der Triade Ser-65/Tyr-66/Gly-67, der Wildtyp Chromophor existiert als eine ausgewogenen Mischung zwischen neutralen und phenolische Form (λMax. = 395 nm, ε = 21.000 M-1cm-1) und der anionischen Phenolate Form (λMax. = 475 nm, ε = 7.100 M -1cm-1), und das Emissionsspektrum stellt einen einzigen Blick auf 508 nm. Die Hydroxylgruppe des Ser-65 ist von entscheidender Bedeutung, da es eine H-Bindung, Glu-222 in der Nähe der Chromophor spendet (Entfernung: 3.7 Å), fördert die Ionisation dieser carboxylat. Klasse ich zeichnet sich durch einen anionischen Phenolate Chromophor, wie EGFP (Phe-64-Leu/Ser-65-Thr; λMax. = 488 nm, ε = 35.600 M-1cm-1, λEm = 509 nm). Durch die Ser-65-Thr(Ala,Gly) Substitution der 395 nm Erregung Höhepunkt der neutralen Phenol-Form unterdrückt und der 470-475 nm Höhepunkt der anionischen Phenolate ist fünf bis sechs Mal verbessert und verlagerte sich auf 490 nm. Klasse II umfasst Proteine mit einer neutralen phenolischen Chromophor, wie Saphir-GFP. Hier die Thr-203-Ile Substitution fast vollständig unterdrückt die 475 nm Anregung, so dass nur die Spitze bei 399 nm. Da die anionischen Chromophor SOLVATISIERTE richtig sein kann, wird der neutrale Form begünstigt. Klasse III umfasst die "gelben" fluoreszierenden Varianten (EYFP; Ser-65-Gly/Val-68-Leu/ser-72-Ala/THR-203-Tyr; ΛMax. ε = 514 nm, ε = 84, 600 M-1cm-1, λEm = 527 nm) mit π-Stapeln Zusammenspiel von einem aromatischen Seitenkette und Phenolate, wie durch die Thr-203-His(Trp,Phe,Tyr) Substitutionen herbeigeführt, die führen bis zu 20 nm Rot-verschoben Emission Maxima (Thr-203-Tyr). Weitere Substitution (Gln-69-Lys) führt zu einem anderen 1-2 nm Rotverschiebung 529 nm, die rot-verschoben AvGFP Variante11bekannt. Der Austausch von Phenol für ein Indol (Tyr-66-Trp) schafft Klasse IV, wie in der Cyan-fluoreszierende ECFP (Ser-65-Thr/Tyr-66-Trp; λmax1 = 434 nm, ε = 24.800 M-1cm-1; λmax2 = 452 nm, ε = 23.600 M– 1cm-1 ; Λem1 = 477 nm, λem2 = 504 nm). Die Unterbringung von sperrigen Indol ist wahrscheinlich durch andere, kompensatorischen Mutationen aktiviert. Die ECFP Anregung und Emission Maxima fallen dazwischen diejenigen Proteine mit neutralen oder anionischen Chromophore. Klasse V Proteine beherbergen ein Imidazol anstelle das Phenol (Tyr-66-HSI), zB., blau-fluoreszierende Proteine wie EBFP. Klasse VI entsteht durch ein Phenol-Phenyl-Austausch Begünstigung der neutralen Chromophor Form ausschließlich, führt folglich zu den blau-verschoben Anregung und Emission Peak Positionen (360 nm und 442 nm, beziehungsweise).
Klassische Site-verwiesene Mutagenese eignet sich besonders für die Herstellung von neuartigen AvGFP Chromophor Varianten durch die Permutation der 65-67 Tripeptid und interagierenden Rückstände im Rahmen der 20 kanonischen Aminosäuren. Diese Möglichkeiten können weiter ausgebaut werden, wenn nicht-kanonischen Varianten von aromatischen Aminosäuren während ribosomale Protein Synthese12eingeführt werden. Im Prinzip gibt es zwei Möglichkeiten, dies zu erreichen. Die erste Strategie stützt sich auf die Substrat-Toleranz von Protein Übersetzung Maschinen, insbesondere von Aminoacyl-tRNA-synthetasen (AaRSs) in Richtung Verwandte Aminosäure-Analoga. Um dies zu erreichen, mit hohem Wirkungsgrad, auxotrophe Ausdruck E. Coli -Stämme sind, die nicht in der Lage, die entsprechende natürliche Aminosäure zu synthetisieren sind beschäftigt. Dies ermöglicht den Austausch des letzteren durch Zugabe von geeigneten nicht-kanonischen Aminosäuren (NcAAs) oder Vorstufen davon zu dem Kulturmedium. Diese Strategie, auch bekannt als selektive Druck Aufnahme (SPI)13,14, kann Rückstände-spezifischen Ersatz, die globale Integration der ncAA führen. Die zweite Strategie nutzt Stopcodon Suppressor tRNAs, welche mit der ncAA durch berechnet werden entwickelt AaRS Enzyme. Dies führt zu der überlesen in Frame-Stop-Codons und ortsspezifische ncAA Einbau ermöglicht. Diese Methode der Stopp-Codon Unterdrückung (SCS) führt zur Erweiterung des genetischen Codes15. Über Mutagenese wird ein Stopcodon in das Zielgen an der gewünschten Stelle platziert. Im Prinzip kann SPI auch zur rekombinanten Peptide und Proteine mit einer einzigartigen ncAA-Installation zu erstellen, da die seltenen kanonischen Aminosäuren wie Met oder Trp für Ersatz gewählt werden. Mit Trp, SPI Ansätze haben gezeigt, dass Arbeiten mit einer Vielzahl von analogen einschließlich 4 - F - 5 - F und 6 F Trp, 7-Aza-Trp, 4-OH und 5 OH Trp, sowie 4- und 5-NH2- Trp oder sogar β (Thienopyrrolyl) Alanin Derivate16 ,17,18,19,20. So konnte SPI sehr vorteilhaft für den Austausch von aromatischen Aminosäuren der GFP Chromophore durch nicht-kanonischen Varianten, die Möglichkeit um weitere Spektren und Stokes-Shift von diese FPs anzupassen sein. Wie für alle Protein Sequence Änderungen muss die Kompatibilität mit FP Falt- und Chromophor Reifung experimentell getestet werden.
In dieser Arbeit verwenden wir Klasse IV ECFP21, die anstelle der Wildtyp AvGFP Tyr, Trp Rückstände innerhalb der Triade Chromophor trägt. SPI verwenden, wird diese Trp-66 (und Trp-57, die nur andere Trp Rückstände in ECFP) durch 4-amino-TRP ersetzt Das Vorhandensein von Elektron-Spenden Aminogruppe des 4-amino-Trp innerhalb der Chromophor begünstigt die Resonanz Stabilisierung von einem angeregten Zustand weit rot-verschoben Protonentransfer (ESPT) mit einem 108 nm Stokes-Shift ausgestattet. Dieses "Goldene" fluoreszierende Protein (GdFP) ist die Variante mit der größten Rotverschiebung der maximale Fluoreszenz (574 nm) unter allen AvGFP gewonnenen Proteinen. Wir beschreiben die Methode der GdFP-Protein-Produktion von SPI und bieten die Protokolle für die obligatorische Analyse der daraus resultierenden veränderten Proteine durch Massenspektroskopie. Darüber hinaus zeigen wir, wie GdFP genutzt und Zeitaufgelöste Fluoreszenz-Spektroskopie Ansätze analysiert werden kann.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>Chemicals</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4-aminoindole</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>525022</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>acetonitrile</td>
			<td>VWR</td>
			<td>HiPerSolv CHROMANORM ULTRA for LC-MS, 83642</td>
			<td>LC-MS grade required</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>agar-agar</td>
			<td>Carl Roth</td>
			<td>5210</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ammonium molybdate ((NH4)2MoO4)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>277908</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ammonium sulfate ((NH4)2SO4)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>A4418</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ampicillin sodium salt</td>
			<td>Carl Roth</td>
			<td>K029</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>biotin</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>B4501</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>bromophenol blue</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>B0126</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>calcium chloride (CaCl2)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>C5670</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>colloidal silica</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>Ludox HS-40, 420816</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Coomassie Brillant Blue R 250</td>
			<td>Carl Roth</td>
			<td>3862</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>copper sulfate (CuSO4)</td>
			<td>Carl Roth</td>
			<td>CP86.1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>D-glucose</td>
			<td>Carl Roth</td>
			<td>6780</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>di-sodium hydrogen phosphate (Na2HPO4)</td>
			<td>Carl Roth</td>
			<td>X987</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>di-potassium hydrogen phosphate (K2HPO4)</td>
			<td>Carl Roth</td>
			<td>P749.1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1,4-dithiothreitol (DTT)</td>
			<td>Carl Roth</td>
			<td>6908</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DNase I</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>D5025</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ethanol</td>
			<td>Carl Roth</td>
			<td>9065.1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>formic acid</td>
			<td>VWR</td>
			<td>HiPerSolv CHROMANORM for LC-MS, 84865</td>
			<td>LC-MS grade required</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>glycerol</td>
			<td>Carl Roth</td>
			<td>3783</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>imidazole</td>
			<td>Carl Roth</td>
			<td>X998</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>indole</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>I3408</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>iron(II) chloride (FeCl2)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>380024</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>isopropanol</td>
			<td>Carl Roth</td>
			<td>AE73.1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>isopropyl &#946;-D-1-thiogalactopyranoside (IPTG)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>I6758</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>lysozyme</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>L6876</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>magnesium chloride (MgCl2)</td>
			<td>Carl Roth</td>
			<td>KK36.1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>magnesium sulfate (MgSO4)</td>
			<td>Carl Roth</td>
			<td>8283.2</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>manganese chloride (MnCl2)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>63535</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>&#946;-mercaptoethanol</td>
			<td>Carl Roth</td>
			<td>4227.3</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>potassium chloride (KCl)</td>
			<td>Carl Roth</td>
			<td>6781.3</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>potassium dihydrogen phosphate (KH2PO4)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>P5655</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>RNase A</td>
			<td>Carl Roth</td>
			<td>7156</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>sodium chloride (NaCl)</td>
			<td>Carl Roth</td>
			<td>P029</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>sodium dihydrogen phosphate (NaH2PO4)</td>
			<td>Carl Roth</td>
			<td>T879</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>sodium dodecyl sulphate (NaC12H25SO4)</td>
			<td>Carl Roth</td>
			<td>0183</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>thiamine</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>T4625</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tris(hydroxymethyl)-aminomethane (Tris)</td>
			<td>Carl Roth</td>
			<td>5429</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tris hydrochloride (Tris-HCl)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>857645</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>tryptone</td>
			<td>Carl Roth</td>
			<td>8952</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>yeast extract</td>
			<td>Carl Roth</td>
			<td>2363</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>zinc chloride (ZnCl2)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>229997</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Name</td>
			<td>Company</td>
			<td>Catalog Number</td>
			<td>Comments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>amino acids</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-alanine</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>A7627</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-arginine</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>A5006</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-asparagine</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>A8381</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-aspartic acid</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>A0884</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-cysteine</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>C7352</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-glutamic acid</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>G2128</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-glutamine</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>G3126</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-glycine</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>G7126</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-histidine</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>H8000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-isoleucine</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>I2752</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-leucine</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>L8000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-lysine</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>L5501</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-methionine</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>M9625</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-proline</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>P0380</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-phenylalanine</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>P2126</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-serine</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>S4500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-threonine</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>T8625</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-tryptophan</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>T0254</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-tyrosine</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>T3754</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-valine</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>V0500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Name</td>
			<td>Company</td>
			<td>Catalog Number</td>
			<td>Comments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lab materials</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>0.45 &#181;m syringe filter with PVDF membrane</td>
			<td>Carl Roth</td>
			<td>CCY1.1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1.5 mL microcentrifuge tubes</td>
			<td>Eppendorf</td>
			<td>30120086</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>conical polystyrene (Falcon) tubes, 50 mL</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>14-432-22</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Luer-Lock syringe 5 mL</td>
			<td>Carl Roth</td>
			<td>EP96.1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>dialysis membrane, Molecular Weight Cut-Off (MWCO) 5,000</td>
			<td>Spectrum Medical Industries</td>
			<td>Spectra/Por MWCO 5000 dialysis membrane, 133198</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Immobilized Metal ion Affinity Chromatography (IMAC) column 1 mL, Ni-NTA</td>
			<td>Macherey Nagel</td>
			<td>Protino series, 745410.5</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>petri dishes (polystyrene, sterile)</td>
			<td>Carl Roth</td>
			<td>TA19</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>pQE-80L plasmid vector</td>
			<td>Qiagen</td>
			<td>no longer available</td>
			<td>replaced by N-terminus pQE Vector set Cat No./ID:&#160;32915</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>protein extraction reagent BugBuster</td>
			<td>EMB Millipore</td>
			<td>70921-4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>round-bottom polystyrene tubes, 14 mL</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>Corning Falcon, 14-959-1B</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Trp-auxotrophic E. coli strain</td>
			<td>ATCC</td>
			<td>ATCC 49980</td>
			<td>Bridges BA et al., Chem Biol Interact., 1972, 5(2):77-84; see main text for alternatives</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Name</td>
			<td>Company</td>
			<td>Catalog Number</td>
			<td>Comments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mass Spectrometry equipment</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>mass spectrometer for LC-ESI-TOF-MS</td>
			<td>Agilent</td>
			<td>Agilent 6530 Accurate-Mass QTOF</td>
			<td>coupled with Infinity LC system</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>mass spectrometry data analysis software</td>
			<td>Agilent</td>
			<td>MassHunter Qualitative Analysis software v. B.06.00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>High-Performance Liquid Chromatography (HPLC) column for LC-ESI-TOF-MS</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>Supelco Discovery BIO Wide Pore C5 HPLC column, 3 &#181;m particle size, 10 cm x 2.1 mm</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HPLC autosampler vials 1.5 mL</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>Supelco 854165</td>
			<td>with conical 0.1 mL glass inserts, screw caps and septa</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Name</td>
			<td>Company</td>
			<td>Catalog Number</td>
			<td>Comments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>General equipment</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>benchtop centrifuge for 1.5 mL Eppendorf tubes</td>
			<td>Eppendorf</td>
			<td>5427 R</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>cooling centrifuge for 50 mL Falcon tubes</td>
			<td>Eppendorf</td>
			<td>5810 R</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>high pressure microfluidizer for bacterial cell disruption</td>
			<td>Microfluidics</td>
			<td>LM series with &#8220;Z&#8221; type chamber</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>peristaltic pump for LC</td>
			<td>GE Healthcare</td>
			<td>P-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fast Protein Liquid Chromatography (FPLC) system</td>
			<td>GE Healthcare</td>
			<td>&#196;KTA pure 25 L</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>orbital shaker for bacterial cultivation</td>
			<td>Infors HT</td>
			<td>Minitron</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>UV/Vis spectrophotometer</td>
			<td>Biochrom</td>
			<td>ULTROSPEC 2100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ultrasonic homogenizer for bacterial cell disruption</td>
			<td>Omnilab</td>
			<td>Bandelin SONOPULS HD 3200, 5650182</td>
			<td>with MS72 sonifier tip</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Name</td>
			<td>Company</td>
			<td>Catalog Number</td>
			<td>Comments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fluorescence spectroscopy equipment</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ps-pulsed laser 470 nm</td>
			<td>Picoquant GmbH</td>
			<td>PDL-470</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>time- and wavelength-correlated single photon counting (TWSPC) acquisition software</td>
			<td>Picoquant GmbH</td>
			<td>SymPhoTime 64</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>time- and wavelength-correlated single photon counting (TWSPC) detector</td>
			<td>Picoquant GmbH</td>
			<td>PML-16C</td>
			<td>16 spectral channels, to be selected by grating settings</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>single photon counting software</td>
			<td>Picoquant GmbH</td>
			<td>SPCM 9.75</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>global fitting software</td>
			<td>Picoquant GmbH</td>
			<td>SPC2Glo(R)</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>fluorescence decay data analysis software</td>
			<td>Picoquant GmbH</td>
			<td>FluoFit program</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>data analysis software</td>
			<td>OriginLab Inc.</td>
			<td>Origin 9.2</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>neutral density filter set</td>
			<td>Schott</td>
			<td>NG1 to NG11</td>
			<td>(400 - 650 nm, transmission 50 %, 20%, 10 %, 5 %)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>488 nm long-pass emission filter</td>
			<td>AHF Analysentechnik</td>
			<td>AHF-488</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>quartz cuvette</td>
			<td>Thorlabs GmbH</td>
			<td>CV10Q1400</td>
			<td>1 cm pathlength</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

engineering 'golden' fluorescence by selective pressure incorporation of non-canonical amino acids and protein analysis by mass spectrometry and fluorescence

Fluoreszierende Proteine sind grundlegende Werkzeuge für die Life Sciences, insbesondere für die Fluoreszenzmikroskopie lebender Zellen. Während Wildtyp und technische Varianten das grün fluoreszierende Protein aus Aequorea Victoria (AvGFP) sowie Homologe von anderen Arten bereits große Teile des optischen Spektrums abdecken, bleibt eine spektrale Lücke in der Nah-Infrarot-Region für welche AvGFP-basierte Fluorophore nicht verfügbar sind. Rot-verschoben fluoreszierenden Proteins (FP) Varianten würde erheblich erweitern das Toolkit für spektrale Entmischung von mehreren molekülsorten, aber die natürlich vorkommende rot-verschoben FPs aus Korallen oder Seeanemonen haben niedrigere Quantenausbeute der Fluoreszenz und minderwertige Foto-Stabilität im Vergleich zu den AvGFP Varianten. Weitere Manipulation und mögliche Erweiterung der Chromophor konjugierten System in Richtung der dunkelrote Spektralbereich wird auch durch das Repertoire der 20 kanonischen Aminosäuren vorgeschrieben durch den genetischen Code beschränkt. Um diese Einschränkungen zu überwinden, kann synthetischer Biologie weiter spektralen Rot-Verschiebung über Einfügen von nicht-kanonischen Aminosäuren in den Chromophor Dreiklang erreichen. Wir beschreiben die Anwendung von SPI auf Ingenieur AvGFP Varianten mit neuartigen spektralen Eigenschaften. Protein-Expression erfolgt in eine Tryptophan-auxotrophe E. Coli Belastung und durch die Ergänzung Wachstumsmedien mit geeigneten Indol Vorstufen. Innerhalb der Zellen sind diese Vorstufen in die entsprechenden Tryptophan-Entsprechungen konvertiert und in Proteine durch die ribosomale Maschinen in Reaktion auf UGG Codon aufgenommen. Der Ersatz von Trp-66 in der erweiterten "Cyan" Variante des AvGFP (ECFP) durch ein Elektron-Spenden 4-Aminotryptophan führt zu GdFP mit einer 108 nm Stokes-Verschiebung und eine stark rot-verschoben Emission maximale (574 nm), wobei thermodynamisch stabiler als sein Vorgänger ECFP. Rückstände-spezifische Einbindung der nicht-kanonische Aminosäure wird durch Massenspektrometrie analysiert. Die spektroskopischen Eigenschaften der GdFP zeichnen sich durch Zeitaufgelöste Fluoreszenz-Spektroskopie als eines der wertvollen Anwendungen von genetisch codierten Bildern pro Sekunde in den Life Sciences.

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Engineering 'Golden' Fluorescence by Selective Pressure Incorporation of Non-canonical Amino Acids and Protein Analysis by Mass Spectrometry and Fluorescence

Synthetischer Biologie ermöglicht das Engineering von Proteinen mit noch nie dagewesenen Eigenschaften mit Hilfe der co-translational Einfügen von nicht-kanonischen Aminosäuren. Hier präsentierten wir, wie eine Spektral rot verschoben-Variante des ein GLP-Typ Fluorophor mit neuartigen Fluoreszenz spektroskopischen Eigenschaften, genannt "Gold" fluoreszierende Protein (GdFP), über Selektionsdruck Aufnahme (SPI) in E. Coli hergestellt wird.

Engineering-"Golden" Fluoreszenz durch Selektionsdruck Einbeziehung der nicht-kanonischen Aminosäuren und Protein-Analyse durch Massenspektrometrie und Fluoreszenz

Fluorescent proteins are fundamental tools for the life sciences, in particular for fluorescence microscopy of living cells. While wild-type and ...

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Thermodynamics of Membrane Protein Folding Measured by Fluorescence Spectroscopy

Thermodynamik der Membrane Protein Folding durch Fluoreszenz-Spektroskopie

Membrane protein folding is an emerging topic with both fundamental and health-related significance.  The abundance of membrane proteins in cells ...

Forschung

Biotechnik

Fluorescence detection methods for microfluidic droplet platforms

Fluoreszenz-Nachweisverfahren für Mikrofluidik-Tropfen-Plattformen

The development of microfluidic platforms for performing chemistry and biology has in large part been driven by a range of potential benefits that ...

Imaging of Biological Tissues by Desorption Electrospray Ionization Mass Spectrometry

Imaging von biologischem Gewebe durch Desorption Elektrospray-Ionisation-Massenspektrometrie

Mass spectrometry imaging (MSI) provides untargeted molecular information with the highest specificity and spatial resolution for investigating biological ...

High-resolution Spatiotemporal Analysis of Receptor Dynamics by Single-molecule Fluorescence Microscopy

Hochauflösende Räumlich-zeitliche Analyse der Rezeptordynamik von Einzelmolekül-Fluoreszenzmikroskopie

Single-molecule microscopy is emerging as a powerful approach to analyze the behavior of signaling molecules, in particular concerning those aspect (e.g., ...

3D Orbital Tracking in a Modified Two-photon Microscope: An Application to the Tracking of Intracellular Vesicles

3D-Tracking-Orbital in einer modifizierten Zwei-Photonen-Mikroskop: einen Antrag bei der Verfolgung von intrazellulären Vesikeln

The objective of this video protocol is to discuss how to perform and analyze a three-dimensional fluorescent orbital particle tracking experiment using a ...

From Fast Fluorescence Imaging to Molecular Diffusion Law on Live Cell Membranes in a Commercial Microscope

Von Fast Fluoreszenz-Imaging, um molekulare Diffusion Gesetz über Live Cell Membrane in einem kommerziellen Mikroskop

It has become increasingly evident that the spatial distribution and the motion of membrane components like lipids and proteins are key factors in the ...

Production of Genetically Engineered Golden Syrian Hamsters by Pronuclear Injection of the CRISPR/Cas9 Complex

Produktion von gentechnisch syrischen Goldhamster durch man Injektion des Komplexes CRISPR/Cas9

The pronuclear (PN) injection technique was first established in mice to introduce foreign genetic materials into the pronuclei of one-cell stage embryos. ...

Assessing Collagen and Elastin Pressure-dependent Microarchitectures in Live, Human Resistance Arteries by Label-free Fluorescence Microscopy

Bewertung von Kollagen und Elastin druckabhängige Mikroarchitekturen in Leben, menschlichen Widerstand Arterien durch markierungsfreie Fluoreszenz-Mikroskopie

The pathogenic contribution of resistance artery remodeling is documented in essential hypertension, diabetes and the metabolic syndrome. Investigations ...

Antimicrobial Peptides Produced by Selective Pressure Incorporation of Non-canonical Amino Acids

Antimikrobielle Peptide produziert durch Selektionsdruck Einbeziehung der nicht-kanonischen Aminosäuren

Nature has a variety of possibilities to create new protein functions by modifying the sequence of the individual amino acid building blocks. However, all ...

Detection of Endotoxin in Nano-formulations Using Limulus Amoebocyte Lysate (LAL) Assays

Detection of Endotoxin in Nano-formulations Using Limulus Amoebocyte Lysate LAL Assays

Nachweis von Endotoxin im Nano-Rezepturen mit Limulus Amoebocyte Lysate (LAL) Assays

When present in pharmaceutical products, a Gram-negative bacterial cell wall component endotoxin (often also called lipopolysaccharide) can cause ...