Name: a simple high efficiency protocol for pancreatic islet isolation from mice
Uploaded: 2019-08-30T12:30:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about A Simple High Efficiency Protocol for Pancreatic Islet Isolation from Mice at JoVE.com

Мы чрезвычайно признательны г-же Дженнифер Мунгиа за ее художественную иллюстрацию схематической диаграммы. Мы благодарим г-на Майкла Р. Хонига в Хьюстоне общественной радиостанции KPFT за его редакционную помощь. Это исследование было поддержано Американской диабетической ассоциацией #1-15-BS-177 (YS) и NIH R56DK118334/R01DK18334 (YS). Эта работа была также поддержана Национальным институтом продовольствия и сельского хозяйства Министерства сельского хозяйства США, Hatch проекта 1010840 (YS) и R01 DK095118 (SG).

Все методы, описанные здесь, были одобрены Комитетом по уходу за животными и использованию (ACUC) Техасского университета. Потребность в хирургических инструментах показана на рисунке 1, а схематическая схема процедуры показана на рисунке 2.
...

<ol>
	<li>Carter, J. D., Dula, S. B., Corbin, K. L., Wu, R., Nunemaker, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+practical+guide+to+rodent+islet+isolation+and+assessment.">A practical guide to rodent islet isolation and assessment.</a> Biological Procedures Online. 11, 3-31 (2009).</li><li>Gotoh, M., Maki, T., Kiyoizumi, T., Satomi, S., Monaco, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+improved+method+for+isolation+of+mouse+pancreatic+islets.">An improved method for isolation of mouse pancreatic islets.</a> Transplantation. 40 (4), 437-438 (1985).</li><li>O'Dowd, J. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+isolation+and+purification+of+rodent+pancreatic+islets+of+Langerhans.">The isolation and purification of rodent pancreatic islets of Langerhans.</a> Methods in Molecular Biology. 560, 37-42 (2009).</li><li>Do, O. H., Low, J. T., Thorn, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Lepr(db)+mouse+model+of+type+2+diabetes:+pancreatic+islet+isolation+and+live-cell+2-photon+imaging+of+intact+islets.">Lepr(db) mouse model of type 2 diabetes: pancreatic islet isolation and live-cell 2-photon imaging of intact islets.</a> Journal of Visualized Experiments : JoVE. (99), e52632 (2015).</li><li>Stull, N. D., Breite, A., McCarthy, R., Tersey, S. A., Mirmira, R. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mouse+islet+of+Langerhans+isolation+using+a+combination+of+purified+collagenase+and+neutral+protease.">Mouse islet of Langerhans isolation using a combination of purified collagenase and neutral protease.</a> Journal of Visualized Experiments : JoVE. (67), (2012).</li><li>Wang, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Regional+Differences+in+Islet+Distribution+in+the+Human+Pancreas+-+Preferential+Beta-Cell+Loss+in+the+Head+Region+in+Patients+with+Type+2+Diabetes.">Regional Differences in Islet Distribution in the Human Pancreas - Preferential Beta-Cell Loss in the Head Region in Patients with Type 2 Diabetes.</a> PLOS ONE. 8, (2013).</li><li>Li, D. S., Yuan, Y. H., Tu, H. J., Liang, Q. L., Dai, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+protocol+for+islet+isolation+from+mouse+pancreas.">A protocol for islet isolation from mouse pancreas.</a> Nature Protocols. 4 (11), 1649-1652 (2009).</li><li>Neuman, J. C., Truchan, N. A., Joseph, J. W., Kimple, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+method+for+mouse+pancreatic+islet+isolation+and+intracellular+cAMP+determination.">A method for mouse pancreatic islet isolation and intracellular cAMP determination.</a> Journal of Visualized Experiments : JoVE. (88), e50374 (2014).</li><li>Scharp, D. W., Lacy, P. E., Finke, E., Olack, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Low-temperature+culture+of+human+islets+isolated+by+the+distention+method+and+purified+with+Ficoll+or+Percoll+gradients.">Low-temperature culture of human islets isolated by the distention method and purified with Ficoll or Percoll gradients.</a> Surgery. 107 (5), e50374 (1987).</li><li>Salvalaggio, P. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Islet+filtration:+a+simple+and+rapid+new+purification+procedure+that+avoids+ficoll+and+improves+islet+mass+and+function.">Islet filtration: a simple and rapid new purification procedure that avoids ficoll and improves islet mass and function.</a> Transplantation. 74 (66), 877-879 (2002).</li><li>Saliba, Y., Bakhos, J. J., Itani, T., Fares, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+optimized+protocol+for+purification+of+functional+islets+of+Langerhans.">An optimized protocol for purification of functional islets of Langerhans.</a> Laboratory Investigation. 97 (1), 70-83 (2017).</li><li>Pradhan, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Obestatin+stimulates+glucose-induced+insulin+secretion+through+ghrelin+receptor+GHS-R.">Obestatin stimulates glucose-induced insulin secretion through ghrelin receptor GHS-R.</a> Scientific Reports. 7 (1), 979 (2017).</li><li>Shapiro, A. M. J., Hao, E., Rajotte, R. V., Kneteman, N. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High+yield+of+rodent+islets+with+intraductal+collagenase+and+stationary+digestion--a+comparison+with+standard+technique.">High yield of rodent islets with intraductal collagenase and stationary digestion--a comparison with standard technique.</a> Cell Transplantation. 5 (6), 631-638 (1996).</li></ol>

Этот протокол включает в себя коллагенеза перфузии и пищеварения, а затем очищение островков. Наиболее важными шагами этого протокола являются эффективнаяинъекция и полная перфузия поджелудочной железы 1,4,7. Метод доставки этого прот?...

Есть два распространенных метода в литературе для изоляции поджелудочной железы, атакжем. Один требует иссечения поджелудочной железы и dicinging его на мелкие кусочки с помощью хирургических ножниц, а затем переваривание его в растворколленаза1,2,3. Другой более точный метод заключается в использовании сети протоков, присутствующих в поджелудочной железе, чтобы ввести пищеварительный фермент. Следующие участки были использованы для инъекции пищеварительного фермента: соединение желчного и кистозного протока, желчного пузыря в общий желчный проток, или общий желчный проток сам1,4,5. Известно, что островки не равномерно распределены в поджелудочной железе; селезенки содержит большинство островков6. В то время как второй метод с использованием анатомических путей для доставки пищеварительных ферментов позволяет более полное perfusion поджелудочной железы, в том числе селезенки области, эта процедура часто требует зажима или зашивания ампулы Vater, что технически Сложной. С точки зрения очистки островка, градиенты множественной плотности, а также ситектов и магнитного опрокидки были использованы для очистки островков3,7. Использование этих градиентов может занять много времени, и градиенты Ficollмогут привести к токсическим повреждениям островков 8.
Текущий протокол построен на методе, описанном Li et al.7, с дополнительными изменениями, добавленными на основе опыта себя и других1,4. Наиболее важными шагами нашего протокола являются зажим общего желчного протока вблизи конца печени, инъекционные коллагеназа P через ампулу Ватера, чтобы переварить экзокринную ткань, а затем с помощью трясущейся водяной ванны для ускорения пищеварения механически1, 4,7. Впоследствии, 'STOP' решение применяется для ингибирования дальнейшего пищеварения островков; HBSS используется для смывания оставшегося коллагеназа P и STOP раствора. Когда метод Ficoll был использован для очистки человеческих островков, выход, как сообщается, в два раза островки с большей функциональной способностью (например, секреция инсулина) по сравнению с использованием градиентов Percoll9. Тем не менее, исследования поставили под сомнение использование градиента Ficoll из-за его токсического воздействия на островки1,10. Было сообщено, что градиент Histopaque обеспечивает оптимальную очистку кинетики для изоляции островка мыши, который производит хороший выход высококачественных островков с более простыми шагами и более низкой стоимостью1. В нашем протоколе, Histopaque-1077 используется для очистки островков от других остаточных тканей8,11. Собранные островки могут быть культивированы в полном носителе RPMI-1640 или непосредственно использованы в Квантину РНК/белка.
Наш протокол, использующий комбинацию коллагеназа P пищеварения и один шаг очистки градиента, проще, чем другие опубликованные протоколы. Наш метод не требует сложных хирургических процедур и имеет всего несколько простых шагов. Что еще более важно, этот протокол последовательно производит хороший выход высокого качества функциональных островков (250-350/мышь), как мы сообщали12.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>3 mL syringe</td>
			<td>BD</td>
			<td>309657</td>
			<td>Hoding collagenase P</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Coverglass forceps</td>
			<td>VWR</td>
			<td>82027-396</td>
			<td>Holding skin of mouse to aid incision procedure</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Curved forceps</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>Z168696</td>
			<td>Holding tissues during pancreas removal</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isoflurane</td>
			<td>Piramal</td>
			<td>B13B16A</td>
			<td>To anaesthetize mice prior surgery</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>100 mm petri dishes</td>
			<td>VWR</td>
			<td>30-2041</td>
			<td>Used for islet culture</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>30 G. &#189; inch needle</td>
			<td>BD</td>
			<td>305106</td>
			<td>For penetration of Ampulla of vater to deliver Collagenase P - this guage is used as it fits well in most CBDs</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>50ml tube</td>
			<td>VWR</td>
			<td>89039-658</td>
			<td>Holding digested pancreatic tissue, collagenase P, and purified islets</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Absorbent pads with waterproof moisture barrier</td>
			<td>VWR</td>
			<td>82020-845</td>
			<td>To absorb blood from syurgical procesdudes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Centrifuge 5810R with swing bucket and deceleration capability</td>
			<td>Eppendorf</td>
			<td>5811FJ478114</td>
			<td>Use for pelleting tissues, pellet is formed at bottom of conical tube - swing bucket centrifuge is needed. Also the decelaration feature is important to form the gradient layers.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Collagenase P- 1g</td>
			<td>Roche Diagnostics</td>
			<td>11249002001</td>
			<td>For digestion of exocrine pancreas</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Curved surgical scissors</td>
			<td>Fisher-Scientific</td>
			<td>13-804-21</td>
			<td>For cutting open mouse abdomen</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dissection microscope</td>
			<td>Olympus</td>
			<td>SZX16</td>
			<td>Used for identification of key anatomical structures to accurately deliver collagenase into pancreas</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hank&#39;s Balanced Salt Solution 10x</td>
			<td>Corning</td>
			<td>20-023-CV</td>
			<td>Washing cells</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Histopaque-1077</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>RNBF5100</td>
			<td>For gradient formation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Light source</td>
			<td>Leeds</td>
			<td>LR92240</td>
			<td>Enhancing visibility of microscope</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>RNaseZap</td>
			<td>Fisher-Scientific</td>
			<td>AM9780</td>
			<td>For removing RNase</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>RPMI-1640 Media w/o L-Glutamine</td>
			<td>Corning</td>
			<td>15-040-CV</td>
			<td>Culturing Islets</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Schwartz micro serrefines (Microvascular clamp)</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>18052-01</td>
			<td>Clamping common bile duct and hepatic artery</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Shaking waterbath</td>
			<td>Boekel/Grant</td>
			<td>8R0534008</td>
			<td>Important for mechanical digestion of exocrine tissue</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Small surgical scissors</td>
			<td>VWR</td>
			<td>82027-578</td>
			<td>Cuttitng tissue that atached to pancreas</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a simple high efficiency protocol for pancreatic islet isolation from mice

Островки поджелудочной железы, также называемые островками Лангерганс, представляют собой кластер эндокринных клеток, который производит гормоны для регулирования глюкозы и других важных биологических функций. Островки в основном состоят из пяти типов гормоноскрытяющих клеток: «клетки выделяют глюкагон, клетки выделяют инсулин, клетки выделяют соматостатин, клетки выделяют грелин, а PP-клетки выделяют полипептид поджелудочной железы. Шестьдесят до 80% клеток в островках являются клетками, которые являются наиболее важной популяцией клеток для изучения секреции инсулина. Островки поджелудочной железы являются важнейшей модельной системой для изучения секреции инсулина ex vivo. Приобретение высококачественных островков имеет большое значение для исследования диабета. Большинство процедур изоляции газа требуют технически трудно получить доступ к месту инъекции коллагеназа, суровые и сложные процедуры пищеварения, и несколько шагов градиента плотности. Эта статья имеет простой метод изоляции высокой урожайности мыши с подробным описанием и реалистичными демонстрациями, показывая следующие конкретные шаги: 1) инъекция коллагеназа P на ампуле Vater, небольшой площади присоединения поджелудочной железы и общий желчный проток, 2) ферментативное пищеварение и механическое разделение экзокринной поджелудочной железы, и 3) один шаг очистки градиента. Преимуществами этого метода являются инъекция пищеварительного фермента с использованием более доступной ампулы Vater, более полное пищеварение с использованием сочетания ферментативных и механических подходов, а также более простой шаг очистки градиента. Этот протокол производит примерно 250-350 островков на мышь; и островки подходят для различных исследований ex vivo. Возможными предостережениями этой процедуры являются потенциально поврежденные островки из-за ферментативного пищеварения и/или длительного градиентного инкубации, все из которых можно в значительной степени избежать путем тщательного обоснования инкубационного времени.

Правильное завершение этой процедуры требует некоторого понимания анатомии мыши в брюшной полости. Это позволяет правильно идентифицировать ампулу Ватера и зажим общего желчного протока. Вся процедура обычно занимает 1-2 ч. Более эффективно изолировать островки от 4-6 мышей одновремен?...

Watch this Scientific Journal Video about A Simple High Efficiency Protocol for Pancreatic Islet Isolation from Mice at JoVE.com

A Simple High Efficiency Protocol for Pancreatic Islet Isolation from Mice

Этот протокол изоляции островка описал новый маршрут инъекции коллагеназы для переваривания экзокринной ткани и упрощенную процедуру градиента для очищения островков от мышей. Она включает в себя ферментативное пищеварение, градиент разделения / очистки, и на кашет ручной сбор. Успешная изоляция может дать 250-350 высококачественных и полностью функциональных островков на мышь.

Простой протокол высокой эффективности для изоляции поджелудочной железы от мышей

Pancreatic islets, also called the Islets of Langerhans, are a cluster of endocrine cells which produces hormones for glucose regulation and other ...

Этот протокол требует использования одного градиента плотности, что делает его значительно менее трудоемким и более рентабельным по сравнению с более сложными традиционными методами изоляции островка. Основным преимуществом этого протокола является то, что фермент доставляется непосредственно в поджелудочную железу, что приводит к повышенному пищеварению тканей и повышению урожайности островка. Начните с лентой конечностей мыши в положении на спине и распыления тела с 70% этанола.Используя миппы из стекловолокна и изогнутые хирургические ножницы, сделайте горизонтальный разрез брюшной кожи примерно на три сантиметра и откройте кожу, чтобы разоблачить брюшную стенку. Сделайте три-четыре сантиметра вертикального разреза на брюшной полости, чтобы полностью разоблачить поджелудочной железы и поместить мышь под рассечение микроскопа. Нажмите долей печени выше подвергать желчный проток, который появляется как бледно-розовая трубка и осторожно переместить кишечник из правой поясничной и подвздошной области справа от брюшной полости подвергать желчного протока и печеночной артерии.Используйте микро серрефины Шварца, чтобы тщательно зажать общий желчный проток как можно ближе к печени и определить ампулу Ватер, которая находится на двенадцатиперстной сосой и формируется союзом протока поджелудочной железы и общего желчного протока. Используя микро-типсы Adson, чтобы вытащить общий желчный проток учил, вставьте 30 калибровочных поул-дюймовый иглы прилагается к три миллилитров шприца, содержащего три миллилитров свежеприготовленного раствора коллагеназы P в ампулу Vater толкая иглу в проток параллельно сосуду около четверти длины судна. После того, как игла на месте, стабилизировать иглу с микро Adson типсов и медленно и неуклонно вводить три миллилитров коллагеназы P раствор в проток.Инъекция считается успешной, если головы, шеи, тела и хвоста области поджелудочной железы полностью завышены. Правильный вход в ампулу и канюляцию общего желчного протока имеют решающее значение для успешного сбора пищи. Пирсинг протоковые стенки снижает эффективность изоляции.Используя изогнутые и микро-типсы Adson, тщательно вытяните надутую поджелудочную железу, начиная с селезенки и продолжая к желудку и вдоль двенадцатиперстной степени. Затем поместите поджелудочную железу в 50 миллилитровую трубку пищеварения, содержащую три миллилитров раствора ледяной коллагеназы P. Для сбора островков, сначала используйте тонкие хирургические ножницы, чтобы нарезать поджелудочной железы в течение трех-пяти секунд, прежде чем поместить трубку в 37 градусов по Цельсию водяной бане на 100 до 120 вращений в минуту в течение 12 до 13 минут.В конце инкубации, осторожно встряхните трубку в течение 30 секунд, чтобы нарушить ткани, пока решение является однородным, как это подтверждается тонкой песчано-подобной частицы ткани поджелудочной железы. Как только ткань переваривается, поместите трубку на лед и добавьте 40 миллилитров ледяного стоп-раствора, чтобы прекратить энзиматические реакции. После мягкого нарушения гранулы, спина вниз переваренной ткани в размахивая центрифуги ведро следуют две центрифуги с 20 миллилитров свежего раствора остановки на стирку.После последней стирки, повторно гранулы в 40 миллилитров ледяной HBSS для трех дополнительных моет, resuspending гранулы в пять миллилитров градиентной раствор плотности комнатной температуры после последней стирки. Vortex трубки кратко на низкой скорости, пока решение гомогенизированы, прежде чем добавить еще пять миллилитров градиента плотности комнатной температуры в трубку. Теперь используйте 10 миллилитров пипетки мягко и медленно добавить 10 миллилитров комнатной температуры HBSS в трубку в капле мудрым образом, чтобы образование градиента и использовать размахивая центрифуги ведро, чтобы изолировать популяции клеток по плотности градиента разделения.В конце центрифугации используйте 10-миллилитровую пипету, предварительно влажную с холодным HBSS, чтобы собрать от 5 до 10 миллилитров островка между градиентом плотности и HBSS. Перенесите островки в новую 50-миллилитровую трубку, содержащую 20 миллилитров свежего ледяного HBSS и соберите клетки путем центрифугирования в размахивая центрифуге ведра. Тщательно аспирировать все, кроме последних трех миллилитров супернатанта, не нарушая гранулы и мыть островки по крайней мере еще три раза с 20 миллилитров свежих HBSS за стирку.После последней стирки замените супернатант четырьмя миллилитров 37 градусов по Цельсию RMPI 1640 среднего и аккуратно закружить трубку, чтобы выбить гранулы. Немедленно налейте островки в 100-миллиметровую чашку Петри и вымойте трубку пятью миллилитров свежей RPMI 1640 среды, чтобы собрать оставшиеся островки объединения мыть с другими островками. Затем используйте рассечение микроскопа и 20 микролитр пипетки отзыв, чтобы выбрать здоровые сферические или продолговатые золотисто-коричневые островки с гладкой поверхностью из чашки Петри для передачи в новую чашку Петри, содержащую 10 миллилитров полной RPMI 1640 среды.Когда все островки были собраны, поместите островки в стерильный инкубатор при 37 градусах по Цельсию и 5%углекислого газа во влажном воздухе на ночь. Хорошие здоровые островки, как представляется, имеют гладкую круглую форму в то время как плохие поврежденные островки обладают шероховатости. Непереваренная экзокринная ткань полупрозрачна по внешнему виду и демонстрирует неправильную форму.Правильная каннуляция и распределение фермента коллагеназы P может быть подтверждено инфляцией splenic части поджелудочной железы. Ночная инкубация в низкотекотных средствах массовой информации может премьер островки для глюкозы стимулировали секреции инсулина анализ на следующий день позволяет понять секреции инсулина способность островков.

Research

JoVE Journal

Biology

Murine Pancreatic Islet Isolation

Изоляция мышей Островок поджелудочной железы

Neutrophil Isolation Protocol

Нейтрофилов Изоляция протокола

Neutrophil polymorphonuclear granulocytes (PMN) are the most abundant leukocytes in humans and among the first cells to arrive on the site of inflammatory ...

Human Pancreatic Islet Isolation: Part I: Digestion and Collection of Pancreatic Tissue

Изоляция человека Островок поджелудочной железы: Часть I: Пищеварение и сбор ткани поджелудочной железы

Management of Type 1 diabetes is burdensome, both to the individual and society, costing over 100 billion dollars annually. Despite the widespread use of ...

Human Pancreatic Islet Isolation: Part II: Purification and Culture of Human Islets

Изоляция человека Островок поджелудочной железы: Часть II: Очистка и культуры прав Островки

Isolation of Stem Cells from Human Pancreatic Cancer Xenografts

Выделение стволовых клеток из прав ксенотрансплантаты рака поджелудочной железы

Cancer stem cells (CSCs) have been identified in a growing number of malignancies and are functionally defined by their ability to undergo self-renewal ...

A Simple Protocol for Extracting Hemocytes from Wild Caterpillars

Простой протокол для извлечения Гемоциты от диких гусениц

Insect hemocytes (equivalent to mammalian white blood cells) play an important role in several physiological processes throughout an insect's life cycle ...

A Method for Mouse Pancreatic Islet Isolation and Intracellular cAMP Determination

Метод мышь панкреатических островков изоляции и внутриклеточного цАМФ определения

Uncontrolled glycemia is a hallmark of diabetes mellitus and promotes morbidities like neuropathy, nephropathy, and retinopathy. With the increasing ...

Pancreatic Islet Embedding for Paraffin Sections

Pазрешено внедрение для парафиновых срезах поджелудочной островок

Experiments using isolated pancreatic islets are important for diabetes research, but islets are expensive and of limited abundance. Islets contain a ...

Imaging Calcium Dynamics in Subpopulations of Mouse Pancreatic Islet Cells

Изображение динамики кальция в субпопуляциях мышей поджелудочной железы клеток на икры

Pancreatic islet hormones regulate blood glucose homeostasis. Changes in blood glucose induce oscillations of cytosolic calcium in pancreatic islet cells ...