Name: retrospective microrna sequencing: complementary dna library preparation protocol using formalin-fixed paraffin-embedded rna specimens
Uploaded: 2018-05-05T13:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Retrospective MicroRNA Sequencing: Complementary DNA Library Preparation Protocol Using Formalin-fixed Paraffin-embedded RNA Specimens at JoVE.com

Nous remercions le Dr Thomas Tuschl, chef du laboratoire de biologie moléculaire des ARN, ainsi que des membres de son laboratoire pour leur soutien et pour le partage de la technologie mise au point dans son laboratoire et de la fourniture d’accès à l’oléoduc WashableMarker. Nous remercions également le Dr Markus Hafner partage son protocole et de fournir des descriptions détaillées sur toutes les étapes biochimiques et enzymatiques utilisées dans sa procédure initiale.

1. la préparation de tous les réactifs et les amorces
<ol><li>Commandez toutes les amorces et les adaptateurs tel que décrit à la Figure 1.</li>
	<li>
Préparer le calibrateur cocktail stock, ce qui va être dopé dans chaque ligature individuelle.
	<ol>
<li>Remettre en suspension l’oligonucléotide de transporteur (Figure 1) à 0,5 µM avec de l’eau exempte de RNase. Remettre en suspension les oligonucléotides de calibrateur (<strong...

<ol>
	<li>Peir&#243;-Chova, L., Pe&#241;a-Chilet, M., L&#243;pez-, J. A., Garc&#237;a-Gimenez, J. L., Alonso-Yuste, E., Burgues, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High+stability+of+microRNAs+in+tissue+samples+of+compromised+quality.">High stability of microRNAs in tissue samples of compromised quality.</a> Virchows. Arch. 463, 765-774 (2013).</li><li>Klopfleisch, R., Weiss, A. T., Gruber, A. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Excavation+of+a+buried+treasure--DNA,+mRNA,+miRNA+and+protein+analysis+in+formalin+fixed,+paraffin+embedded+tissues.">Excavation of a buried treasure--DNA, mRNA, miRNA and protein analysis in formalin fixed, paraffin embedded tissues.</a> Histol. Histopathol. 26, 797-810 (2011).</li><li>Kakimoto, Y., Kamiguchi, H., Ochiai, E., Satoh, F., Osawa, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=MicroRNA+Stability+in+Postmortem+FFPE+Tissues:+Quantitative+Analysis+Using+Autoptic+Samples+from+Acute+Myocardial+Infarction+Patients.">MicroRNA Stability in Postmortem FFPE Tissues: Quantitative Analysis Using Autoptic Samples from Acute Myocardial Infarction Patients.</a> PLoS One. 10 (6), e0129338 (2015).</li><li>Giricz, O., Reynolds, P. A., Ramnauth, A., Liu, C., Wang, T., Stead, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hsa-miR-375+is+differentially+expressed+during+breast+lobular+neoplasia+and+promotes+loss+of+mammary+acinar+polarity.">Hsa-miR-375 is differentially expressed during breast lobular neoplasia and promotes loss of mammary acinar polarity.</a> J. Pathol. 226, 108-119 (2012).</li><li>Hui, A. B., Shi, W., Boutros, P. C., Miller, N., Pintilie, M., Fyles, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Robust+global+micro-RNA+profiling+with+formalin-fixed+paraffin-embedded+breast+cancer+tissues.">Robust global micro-RNA profiling with formalin-fixed paraffin-embedded breast cancer tissues.</a> Lab. Invest. 89, 597-606 (2009).</li><li>Zhang, X., Chen, J., Radcliffe, T., Lebrun, D. P., Tron, V. A., Feilotter, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+array-based+analysis+of+microRNA+expression+comparing+matched+frozen+and+formalin-fixed+paraffin-embedded+human+tissue+samples.">An array-based analysis of microRNA expression comparing matched frozen and formalin-fixed paraffin-embedded human tissue samples.</a> J. Mol. Diagn. 10, 513-519 (2008).</li><li>Kolbert, C. P., Feddersen, R. M., Rakhshan, F., Grill, D. E., Simon, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Multi-platform+analysis+of+microRNA+expression+measurements+in+RNA+from+fresh+frozen+and+FFPE+tissues.">Multi-platform analysis of microRNA expression measurements in RNA from fresh frozen and FFPE tissues.</a> PLoS One. 8, e52517 (2013).</li><li>Meng, W., McElroy, J. P., Volinia, S., Palatini, J., Warner, S., Ayers, L. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+microRNA+deep+sequencing+of+matched+formalin-fixed+paraffin-embedded+and+fresh+frozen+cancer+tissues.">Comparison of microRNA deep sequencing of matched formalin-fixed paraffin-embedded and fresh frozen cancer tissues.</a> PLoS One. 8 (5), e64393 (2013).</li><li>Liu, A., Tetzlaff, M. T., Vanbelle, P., Elder, D., Feldman, M., Tobias, J. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=MicroRNA+expression+profiling+outperforms+mRNA+expression+profiling+in+formalin-fixed+paraffin-embedded+tissues.">MicroRNA expression profiling outperforms mRNA expression profiling in formalin-fixed paraffin-embedded tissues.</a> Int. J. Clin. Exp. Pathol. 2, 519-527 (2009).</li><li>Dijkstra, J. R., Mekenkamp, L. J., Teerenstra, S., De Krijger, I., Nagtegaal, I. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=MicroRNA+expression+in+formalin-fixed+paraffin+embedded+tissue+using+real+time+quantitative+PCR:+the+strengths+and+pitfalls.">MicroRNA expression in formalin-fixed paraffin embedded tissue using real time quantitative PCR: the strengths and pitfalls.</a> J Cell Mol Med. 16, 683-690 (2012).</li><li>Siebolts, U., Varnholt, H., Drebber, U., Dienes, H. P., Wickenhauser, C., Odenthal, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tissues+from+routine+pathology+archives+are+suitable+for+microRNA+analyses+by+quantitative+PCR.">Tissues from routine pathology archives are suitable for microRNA analyses by quantitative PCR.</a> J. Clin. Pathol. 62, 84-88 (2009).</li><li>Jang, J. S., Simon, V. A., Feddersen, R. M., Rakhshan, F., Schultz, D. A., Zschunke, M. A., Lingle, W. L., Kolbert, C. P., Jen, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Quantitative+miRNA+expression+analysis+using+fluidigm+microfluidics+dynamic+arrays.">Quantitative miRNA expression analysis using fluidigm microfluidics dynamic arrays.</a> BMC Genomics. 12, 144 (2011).</li><li>Andreasen, D., Fog, J. U., Biggs, W., Salomon, J., Dahslveen, I. K., Baker, A., Mouritzen, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Improved+microRNA+quantification+in+total+RNA+from+clinical+samples.">Improved microRNA quantification in total RNA from clinical samples.</a> Methods. 50 (4), S6-S9 (2010).</li><li>Kelly, A. D., Hill, K. E., Correll, M., Wang, Y. E., Rubio, R., Duan, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Next-generation+sequencing+and+microarray-based+interrogation+of+microRNAs+from+formalin-fixed,+paraffin-embedded+tissue:+preliminary+assessment+of+cross-platform+concordance.">Next-generation sequencing and microarray-based interrogation of microRNAs from formalin-fixed, paraffin-embedded tissue: preliminary assessment of cross-platform concordance.</a> Genomics. 102, 8-14 (2013).</li><li>Visone, R., Croce, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=MiRNAs+and+cancer.">MiRNAs and cancer.</a> Am. J. Pathol. 174, 1131-1138 (2009).</li><li>Lu, J., Getz, G., Miska, E. A., Alvarez-Saavedra, E., Lamb, J., Peck, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=MicroRNA+expression+profiles+classify+human+cancers.">MicroRNA expression profiles classify human cancers.</a> Nature. 435, 834-838 (2005).</li><li>Cho, W. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=MicroRNAs:+potential+biomarkers+for+cancer+diagnosis,+prognosis+and+targets+for+therapy.">MicroRNAs: potential biomarkers for cancer diagnosis, prognosis and targets for therapy.</a> Int. J. Biochem. Cell. Biol. 42, 1273-1281 (2010).</li><li>Hui, A., How, C., Ito, E., Liu, F. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Micro-RNAs+as+diagnostic+or+prognostic+markers+in+human+epithelial+malignancies.">Micro-RNAs as diagnostic or prognostic markers in human epithelial malignancies.</a> BMC Cancer. 11, 500 (2011).</li><li>Tam, S., de Borja, R., Tsao, M. S., McPherson, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Robust+global+microRNA+expression+profiling+using+next-generation+sequencing+technologies.">Robust global microRNA expression profiling using next-generation sequencing technologies.</a> Lab. Invest. 94, 350-358 (2014).</li><li>Loudig, O., Wan, T., Ye, K., Lin, J., Wang, Y., Ramnauth, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evaluation+and+Adaptation+of+a+Laboratory+Based+cDNA+Library+Preparation+Protocol+for+Retrospective+Sequencing+of+Archived+MicroRNAs+from+up+to+35-Year-Old+Clinical+FFPE+Specimens.">Evaluation and Adaptation of a Laboratory Based cDNA Library Preparation Protocol for Retrospective Sequencing of Archived MicroRNAs from up to 35-Year-Old Clinical FFPE Specimens.</a> Int J Mol Sci. 18, e627 (2017).</li><li>Kotorashvili, A., Ramnauth, A., Liu, C., Lin, J., Ye, K., Kim, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effective+DNA/RNA+co-extraction+for+analysis+of+microRNAs,+mRNAs,+and+genomic+DNA+from+formalin-fixed+paraffin-embedded+specimens.">Effective DNA/RNA co-extraction for analysis of microRNAs, mRNAs, and genomic DNA from formalin-fixed paraffin-embedded specimens.</a> PLoS One. 7 (4), e34683 (2012).</li><li>Hafner, M., Renwick, N., Farazi, T. A., Mihailovi&#263;, A., Pena, J. T., Tuschl, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Barcoded+cDNA+library+preparation+for+small+RNA+profiling+by+next-generation+sequencing.">Barcoded cDNA library preparation for small RNA profiling by next-generation sequencing.</a> Methods. 58 (2), 164-170 (2012).</li><li>Loudig, O., Brandwein-Gensler, M., Kim, R. S., Lin, J., Isayeva, T., Liu, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Illumina+whole-genome+complementary+DNA-mediated+annealing,+selection,+extension+and+ligation+platform:+assessing+its+performance+in+formalin-fixed,+paraffin-embedded+samples+and+identifying+invasion+pattern-related+genes+in+oral+squamous+cell+carcinoma.">Illumina whole-genome complementary DNA-mediated annealing, selection, extension and ligation platform: assessing its performance in formalin-fixed, paraffin-embedded samples and identifying invasion pattern-related genes in oral squamous cell carcinoma.</a> Hum. Pathol. 42 (12), 1911-1922 (2011).</li></ol>

Un protocole de préparation de bibliothèque cDNA hautement reproductible et robustes pour NGS de petits ARN archivées dans des échantillons FFPE ARN est présenté dans ce protocole, qui est une version modifiée et optimisée de la procédure décrite par Hafner et al. 22
Toutes les étapes de ce protocole ont été optimisés pour une utilisation avec ancien archivé et compromis l’ARN total extraite des échantillons FFPE. L’étape clé du présent p...

miARN est remarquablement bien conservés dans fixés au formol paraffine (FFIP) échantillons1,2,3. Travaux antérieur ont démontré que l’expression de ces courtes réglementaire non codantes unique échoués des molécules d’ARN peut être évalué avec succès à l’aide de l’ARN total des échantillons FFPE et fournir des données pertinentes d’expression par rapport à l’original frais tissus4,5,6,7,8. Par rapport aux ARN messagers de grande taille, qui se sont révélés d’être gravement affectés par FFIP traitement tissulaire (formaldéhyde, chaleur, dessiccation, etc.), des ribonucléases endogènes et l’âge des spécimens, la petite taille des miARN (~ 18 – 24 nucléotides) s’affiche pour les rendre résistants à la dégradation et résilient pour l’entreposage à long terme, a également démontré par des études d’expression de miRNA qui surpassent les études ADN messagère haut débit dans les spécimens archivés9. les études d’expression de miRNA archivés sur des échantillons cliniques, qui ont principalement été réalisées dans les analyses à petite échelle, ont démontré que seul ou multiplexé des analyses par PCR quantitatives, différents types de microarray technologies et plus récemment NGS peut servir à évaluer l’expression des miARN préservée après l’optimisation de ces dosages10,11,12,13,14.
Étant donné que le dérèglement de miRNA expression a été associé au développement d’une variété de cancers humains et qu’il y a potentiellement une offre énorme de cliniquement annoté spécimens archivés, il est devenu évident que ces petits ARN molécules représentent une source prometteuse de potentiels du cancer biomarqueurs15,16,17,18. L’utilisation d’une technologie d’expression de gène de haut-débit comme NGS a l’avantage de fournir une évaluation globale de toutes les transcriptions de miRNA par rapport aux technologies ciblées comme la PCR et/ou microarrays19. Pour cette raison, un protocole optimisé, abordable et facilement applicable pour la préparation de bibliothèque de cDNA de petits ARN de plus vieux spécimens archivés pour NGS a été optimisé pour permettre des études rétrospectives à grande échelle de20.
Nous avons déjà établi un protocole d’extraction d’ARN/ADN simultané pour restauration séparée de l’ARN et l’ADN de plus vieux spécimens archivés, que nous avons trouvées pour surpasser les kits commerciaux contemporains21. À l’aide de ce protocole d’extraction, d’obtenir l’ARN total de tissus FFPE archivées pendant une période prolongée de temps, nous avons optimisé la préparation de banques d’ADNc pour NGS des miARN préservés dans les échantillons cliniques jusqu'à 35 ans. En outre, dans une étude récemment publiée, où nous avons préparé des banques d’ADNc de cliniquement classés carcinome canalaire in situ des spécimens (CCIS), nous avons identifié des miARN différentiellement exprimés qui ont été validées par PCR quantitative, qui indiquait que modifications de l’expression miRNA spécifiques peuvent être détectables dans les lésions de la CCIS de patients qui développent un cancer du sein par rapport aux lésions de la CCIS de patients qui ne développent pas de cancer du sein.
Si l'on considère le coût des trousses commerciales pour la préparation de petites banques d’ADNc de RNA, le potentiel de leur arrêt, ainsi que l’utilisation de réactifs/brevet protégé qui ne peut pas être optimisée, nous avons décidé d’adapter un publiées antérieurement en laboratoire et sans kit de 3' Protocole bibliothèque préparation d’ADNc avec code à barres pour NGS de petits ARN archivées dans des échantillons FFPE, permettant l’analyse simultanée de 18 échantillons22. Ce protocole prévoit une procédure étape par étape idéale et robuste avec points de contrôle visuel et l’évaluation technique, qui critiquaient pour adaptation aux spécimens d’ARN FFIP, et a un fort potentiel d’application à d’autres sources de compromis ou difficile d’utiliser le matériel de RNA. Applicabilité du protocole original a été améliorée en remplaçant les marqueurs de taille marquée radioactivement avec fluorescentes (p. ex., SYBR Gold) détectables marqueurs de taille de RNA utilisés lors de la sélection des bibliothèques ligaturés sur grands gels de polyacrylamide. Ce protocole optimisé repose sur la ligature de barcoded adaptateurs de 3' à 18 échantillons FFPE RNA individuels, qui sont alors regroupées ensemble pour subir une ligature des adaptateur 5', transcription inverse, ainsi qu’une analyse PCR pilote pour adapté l’amplification de l’ADNc final Bibliothèque avant amplification PCR à grande échelle, purification et NGS sur un séquenceur haut débit.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>1% Triton x-100</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>HFH10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10mM ATP</td>
			<td>Ambion</td>
			<td>AM8110G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10X dNTPs</td>
			<td>Ambion</td>
			<td>AM8110G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10x TBE</td>
			<td>Thermofisher Scientific</td>
			<td>15581044</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>14M Mercaptoethanol</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>O3445I-100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>20 nt ladder</td>
			<td>Jena Bioscience</td>
			<td>M-232S</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>20mg/ml Bovine Serum Albumine</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>B8894-5ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>50X Titanium Taq</td>
			<td>Clontech Laboratories</td>
			<td>639208</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ammonium Persulfate</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>7727-54-0</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BRL Vertical Gel Electrophoresis System with glass plates and combs</td>
			<td>GIBCO</td>
			<td>V16</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dimethyl sulfoxide (DMSO)</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>D9170-5VL</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Eppendorf microcentrifuge 5424R</td>
			<td>USA scientific</td>
			<td>4054-4537Q</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Eppndorf Thermomixer</td>
			<td>USA scientific</td>
			<td>4053-8223Q</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fisherbrand&#8482; Siliconized Low-Retention Microcentrifuge Tubes 1.5ml</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>02-681-320</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gel Breaker Tube 0.5 ml</td>
			<td>IST Engineering Inc,</td>
			<td>3388-100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gel electrophoresis apparatus 7cm x10cm- Mini-sub Cell GT with gel trays and combs</td>
			<td>Biorad</td>
			<td>1704446</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glycoblue</td>
			<td>Ambion</td>
			<td>AM9516</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Jersey-Cote</td>
			<td>LabScientific, Inc</td>
			<td>1188</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>KcL 2M</td>
			<td>Ambion</td>
			<td>AM9640G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MgCl2 1M</td>
			<td>Ambion</td>
			<td>AM9530G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Minifuge dual rotor personal centrifuge</td>
			<td>USA scientific</td>
			<td>2641-0016</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Model V16 polyacrylamide gel electrophoresis apparatus, glasses, combs, and spacers</td>
			<td>Ciore Life Science</td>
			<td>21070010</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Oligonucleotides</td>
			<td>IDT</td>
			<td>Defined during order</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Owl EasyCast B2 mini electrophoresis system- with gel trays and combs</td>
			<td>Thermofisher Scientific</td>
			<td>B2</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Qiaquick Gel Extraction kit</td>
			<td>Qiagen</td>
			<td>28704</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Restriction enzyme PmeI</td>
			<td>NEB</td>
			<td>R0560S</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>RNase-free water</td>
			<td>Ambion</td>
			<td>AM9932</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Safe Imager 2.0</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>G6600</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Safe Imager 2.0 blue light transilluminator</td>
			<td>Thermofisher</td>
			<td>G6600</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SeaKem LE agarose</td>
			<td>Lonza</td>
			<td>50002</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Superscript III reverse transcription kit</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>18080-044</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SybrGold</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>S11494</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>T4 RNA Ligase 1</td>
			<td>NEB</td>
			<td>M0204S</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>T4 RNA Ligase 2 Truncated K227Q</td>
			<td>NEB</td>
			<td>0351L</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TEMED</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>O3446I-100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Themocycler with heated lid</td>
			<td>Applied Biosystem</td>
			<td>4359659</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tris 1M pH 7.5</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>15567027</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tris 1M pH8.0</td>
			<td>Ambion</td>
			<td>AM9855G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>UltraPure Sequagel system concentrate, diluent, and buffer</td>
			<td>National Diagnostics</td>
			<td>EC-833</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

retrospective microrna sequencing: complementary dna library preparation protocol using formalin-fixed paraffin-embedded rna specimens

– Archivés, classés cliniquement fixés au formol paraffine des tissus (FFIP) peuvent fournir des acides nucléiques pour des études rétrospectives et moléculaires du développement du cancer. En utilisant des lésions non invasives ou précancéreuses chez des patients qui développent plus tard une maladie invasive, analyses d’expression génique peuvent aider à identifier des altérations moléculaires précoces qui prédisposent au risque de cancer. Il a été bien décrit qu’acides nucléiques extraits des tissus FFPE ont subi de graves dommages physiques et des modifications chimiques, qui compliquent leur analyse et exige généralement des dosages adaptés. Cependant, microARN (miARN), qui représentent une petite classe de molécules d’ARN s’étendant sur plus de ~ 18 – 24 nucléotides, auraient dû être divulgués à résister au stockage à long terme et ont été analysés avec succès dans des échantillons FFPE. Nous présentons ici un 3' avec code à barres ADN (cDNA) Bibliothèque préparation au protocole complémentaire spécialement optimisé pour l’analyse de petits ARN extraites des tissus archivés, qui a été récemment démontrée pour être robuste et hautement reproductible lors de l’utilisation archivées échantillons cliniques stockées jusqu'à 35 ans. Cette préparation de bibliothèque est bien adaptée à l’analyse multiplex de matériel compromise/dégradé où les échantillons d’ARN (jusqu'à 18) sont ligaturés avec barcoded adaptateurs individuels de 3' et ensuite regroupées ensemble pour les préparations enzymatiques et biochimiques avant l’analyse. Toutes les purifications sont effectuées par sur gel de polyacrylamide (PAGE), qui permet des sélections de taille spécifique et enrichissements de petites espèces d’ARN avec code à barres. Cette préparation de bibliothèques d’ADNc est bien adaptée aux entrées de RNA minutes, comme une réaction en chaîne par polymérase pilote (PCR) permet la détermination d’un cycle d’amplification spécifique produire des quantités optimales de matériel pour l’ordonnancement de prochaine génération (NGS). Cette approche a été optimisée pour l’utilisation des dégradés FFIP ARN des spécimens archivés jusqu'à 35 ans et fournit des données hautement reproductibles de l’end.

Comme décrit dans la méthode ici, un total de 18 échantillons FFPE RNA individuels (100 ng de chacun) sont mis en place dans des tubes distincts pour subir 3' adenylated avec code à barres oligonucléotide T4 ligature du jour au lendemain. Le lendemain, les réactions enzymatiques sont chaleur-désactivée, combinées et précipitées dans un seul tube. Le culot de RNA est remis en suspension et les molécules d’ARN ligaturés sont séparés sur gel de polyacrylamide (PAGE), où les...

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Retrospective MicroRNA Sequencing: Complementary DNA Library Preparation Protocol Using Formalin-fixed Paraffin-embedded RNA Specimens

Fixés au formol des spécimens de paraffine représentent une source précieuse de biomarqueurs moléculaires des maladies humaines. Nous présentons ici un protocole de préparation du bibliothèque de cDNA en laboratoire, initialement conçu avec de l’ARN congelée fraîche et optimisé pour l’analyse des microARN archivés des tissus conservés jusqu'à 35 ans.

MicroARN rétrospective séquençage : L’ADN complémentaire bibliothèque protocole de préparation à l’aide de spécimens d’ARN de paraffine fixés au formol

&#8211;Archived, clinically classified formalin-fixed paraffin-embedded (FFPE) tissues can provide nucleic acids for retrospective molecular studies of ...

Research

JoVE Journal

Genetics

Methyl-binding DNA capture Sequencing for Patient Tissues

Méthyl-liaison par capture d&#39;ADN de séquençage pour les tissus du patient

Methylation is one of the essential epigenetic modifications to the DNA, which is responsible for the precise regulation of genes required for stable ...

Recherche

Génétique

Mapping RNA-RNA Interactions Globally Using Biotinylated Psoralen

Cartographie des interactions ARN-ARN à l&#39;échelle mondiale à l&#39;aide de psoralène biotinylé

Knowing how RNAs interact with themselves and with others is key to understanding RNA based gene regulation in the cell. While examples of RNA-RNA ...

Assessment of DNA Contamination in RNA Samples Based on Ribosomal DNA

Évaluation de la Contamination d’ADN dans les échantillons d’ARN issu de l’ADN ribosomique

One method extensively used for the quantification of gene expression changes and transcript abundances is reverse-transcription quantitative real-time ...

A Universal Protocol for Large-scale gRNA Library Production from any DNA Source

Un protocole universel pour à grande échelle gRNA bibliothèque Production provenant de toute Source d’ADN

The popularity of the CRISPR/Cas9 system for both genome and epigenome engineering stems from its simplicity and adaptability. An effector (the Cas9 ...

Robust DNA Isolation and High-throughput Sequencing Library Construction for Herbarium Specimens

Isolement d’ADN robuste et Construction de bibliothèque de séquençage haut-débit pour les spécimens d’herbier

Herbaria are an invaluable source of plant material that can be used in a variety of biological studies. The use of herbarium specimens is associated with ...

Rare Event Detection Using Error-corrected DNA and RNA Sequencing

Détection des événements rares en utilisant l’erreur corrigée ADN et le séquençage de l’ARN

Conventional next-generation sequencing techniques (NGS) have allowed for immense genomic characterization for over a decade. Specifically, NGS has been ...

Ultralow Input Genome Sequencing Library Preparation from a Single Tardigrade Specimen

Ultra basse génome d’entrée séquençage bibliothèque préparation à partir d’un seul spécimen Tardigrade

Tardigrades are microscopic animals that enter an ametabolic state called anhydrobiosis when facing desiccation and can return to their original state ...

Sequencing of mRNA from Whole Blood using Nanopore Sequencing

Séquençage de l’ARNm de sang total à l’aide du séquençage NANOPORE

Sequencing in remote locations and resource-poor settings presents unique challenges. Nanopore sequencing can be successfully used under such conditions, ...

Single-cell RNA Sequencing and Analysis of Human Pancreatic Islets

Séquençage et analyse de l'ARN unicellulaire des îlots pancréatiques humains

Pancreatic islets comprise of endocrine cells with distinctive hormone expression patterns. The endocrine cells show functional differences in response to ...

Identification of Footprints of RNA:Protein Complexes via RNA Immunoprecipitation in Tandem Followed by Sequencing (RIPiT-Seq)

Identification of Footprints of RNA:Protein Complexes via RNA Immunoprecipitation in Tandem Followed by Sequencing RIPiT-Seq

Identification des empreintes de pas de l'ARN: Complexes protéiques par l'intermédiaire de l'immunoprécipitation d'ARN dans Tandem suivi du séquençage (RIPiT-Seq)

RNA immunoprecipitation in tandem (RIPiT) is a method for enriching RNA footprints of a pair of proteins within an RNA:protein (RNP) complex. RIPiT ...