Name: two-dimensional x-ray angiography to examine fine vascular structure using a silicone rubber injection compound
Uploaded: 2019-01-07T14:00:00
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Ce travail (2017R1A2B1006403) a été soutenu par le programme de chercheur de mi-carrière grâce à une subvention de la Fondation nationale de la recherche financée par le gouvernement coréen (ministère des sciences et TIC).

Toutes les procédures, y compris les sujets animaux, ont été approuvés par l’animalier institutionnel et utilisation comités de Seoul National University Hospital (IACUC no 10-0184). Ce protocole est optimisé pour la recherche sur la vascularisation du lambeau. Cet exemple est basé sur un modèle quatre-territoire rabat dans nos rapports précédents.
1. établir une Condition de Rabat
Remarque : Il est important de générer un changement vasculaire dans un...

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	<li>Taylor, G. I., Minabe, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Angiosomes+of+the+Mammals+and+Other+Vertebrates.">The Angiosomes of the Mammals and Other Vertebrates.</a> Plastic and Reconstructive Surgery. 89 (2), 181-215 (1992).</li><li>Taylor, G. I., Palmer, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+vascular+territories+(angiosomes)+of+the+body:+experimental+study+and+clinical+applications.">The vascular territories (angiosomes) of the body: experimental study and clinical applications.</a> British Journal of Plastic Surgery. 40 (2), 113-141 (1987).</li><li>Geddes, C. R., Morris, S. F., Neligan, P. 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W., Imanishi, N., Minabe, T., Nakajima, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+Venous+Superdrainage+on+a+Four-Territory+Skin+Flap+Survival+in+Rats.">Effect of Venous Superdrainage on a Four-Territory Skin Flap Survival in Rats.</a> Plastic and Reconstructive Surgery. 119 (7), 2046-2051 (2007).</li><li>Rozen, W. M., Stella, D. L., Ashton, M. W., Phillips, T. J., Taylor, G. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Three-dimensional+CT+angiography:+a+new+technique+for+imaging+microvascular+anatomy.">Three-dimensional CT angiography: a new technique for imaging microvascular anatomy.</a> Clinical Anatomy. 20 (8), 1001-1003 (2007).</li><li>Taylor, G. I., Chubb, D. P., Ashton, M. 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O., Cho, J., Imanishi, N., Chang, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+distal+venous+drainage+on+the+survival+of+four-territory+flaps+with+no+pedicle+vein:+Results+from+a+rat+model.">Effect of distal venous drainage on the survival of four-territory flaps with no pedicle vein: Results from a rat model.</a> Journal of Plastic, Reconstructive &amp; Aesthetic Surgery. 71 (3), 410-415 (2018).</li><li>Park, S. O., Chang, H., Imanishi, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+free+serratus+anterior+artery+perforator+flap-A+case+report+and+anatomic+study.">The free serratus anterior artery perforator flap-A case report and anatomic study.</a> Microsurgery. 36 (4), 339-344 (2016).</li><li>Imanishi, N., Nakajima, H., Minabe, T., Chang, H., Aiso, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anatomical+relationship+between+arteries+and+veins+in+the+paraumbilical+region.">Anatomical relationship between arteries and veins in the paraumbilical region.</a> British Journal of Plastic Surgery. 56 (6), 552-556 (2003).</li><li>Schaverien, M., Saint-Cyr, M., Arbique, G., Rohrich, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Three-+and+four-dimensional+arterial+and+venous+anatomies+of+the+thoracodorsal+artery+perforator+flap.">Three- and four-dimensional arterial and venous anatomies of the thoracodorsal artery perforator flap.</a> Plastic and Reconstructive Surgery. 121 (5), 1578-1587 (2008).</li><li>Schaverien, M., Saint-Cyr, M., Arbique, G., Hatef, D., Brown, S. A., Rohrich, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Three-+and+Four-Dimensional+Computed+Tomographic+Angiography+and+Venography+of+the+Anterolateral+Thigh+Perforator+Flap.">Three- and Four-Dimensional Computed Tomographic Angiography and Venography of the Anterolateral Thigh Perforator Flap.</a> Plastic and Reconstructive Surgery. 121 (5), 1685-1696 (2008).</li></ol>

Injection de caoutchouc de silicone angiographie composé peut être effectuée facilement, ne nécessite pas de matériel coûteux et offre de nombreux avantages. Contrairement aux évaluations préopératoires et peropératoires des patients, expériences utilisant des animaux et des cadavres peuvent fournir des détails sur des conditions spécifiques, ce qui permet des études plus diversifiés et approfondies. Le modèle de rabat à l’aide de rats est particulièrement utile aux cliniciens parce que les changement...

Examiner les structures vasculaires telles que les artères et les veines est une importante zone d’intérêt, particulièrement à la chirurgie réparatrice. Dans ce domaine, Rabat chirurgie est largement réalisée. Par conséquent, imagerie angiographique est activement utilisé pour étudier le territoire de Rabat, angiosome et apport vasculaire des tissus frais1. Plus précisément, il y a eu des efforts continus pour observer la vascularisation fine, y compris les vaisseaux fins tels que des veines perforantes (vaisseaux qui sortent d’un vaisseaux profonds pour atteindre la peau) et étouffer les vaisseaux (reliant les navires entre angiosomes adjacentes)2 . Ces deux types de navires sont importants en matière de reconstruction perforator flap et sont l’objet principal de la recherche3,4.
Divers matériaux sont utilisés dans l’angiographie. Tout d’abord, il y a l’encre de Chine, qui est utile à l’observation de l’anatomie générale des vaisseaux sanguins. Toutefois, il est radiotransparente, donc impossible d’obtenir des images angiographiques. Les matériaux radio-opaques plus couramment utilisés sont oxyde de plomb et de baryum. Cependant, la toxicité est un inconvénient essentiel d’oxyde de plomb, et c’est gênant d’utiliser lorsqu’il est mélangé avec de l’eau en raison de sa forme en poudre. Baryum est exempt de toxicité ; Cependant, il n’est pas très faisable, tel qu’il devrait être utilisé après dilution. Deux de ces matériaux radio-opaque ne peuvent pas traverser capillaires ; par conséquent, si une structure vasculaire tout doit être analysée, il est nécessaire d’injecter dans l’artère et la veine séparément5. En outre, les deux matériaux de provoquer des fuites de colorant au cours de la dissection anatomique, donc ils devraient être combinés avec de la gélatine. Des mélanges d’oxyde-gélatine et baryum-gélatine plomb prennent au moins un jour à se solidifier1,6,7.
Angiographie de la tomodensitométrie (TDM) est une autre méthode couramment utilisée et peut aider dans la visualisation des structures tridimensionnelles (3D)8. Cependant, les veines ne peuvent être visualisées efficacement5. Dans cette modalité, visualisation claire de la vascularisation fine tels que veines Starter est difficile, sauf si vous utilisez des équipements spécifiques. Le besoin d’équipements plus coûteux peut être un désavantage, alors angiographie ne peuvent pas être utilisé dans tous les laboratoires. En revanche, le système de radiographie des tissus mous sont relativement bon marché et peuvent opérer plus facilement. Ce système est optimal pour la visualisation des tissus mous et peut fournir des images des tissus mous plus élevée que le système de radiographie simple. Bien que le système de radiographie elle-même des tissus mous ne peut pas afficher des images en 3D, il peut aider à visualiser les structures vasculaires bien plus clairement que l’angiographie. Par conséquent, nous avons utilisé le système de radiographie des tissus mous dans nombreuses expériences, notamment dans les différents modèles de Rabat et anatomie de base2,9.
Enfin, l’utilisation de l’angiographie composé du injection caoutchouc silicone offre de nombreux avantages. Parce que les divers agents de couleur sont préparés, il peut être injecté et afficher les couleurs reconnaissables comme l’encre de Chine. Donc, il est possible d’étudier simultanément l’anatomie générale et l’angiographie. Il peut aussi bien traverser capillaires et permettre les veines à visualiser, permettant les examens des fines structures vasculaires. À la différence du mélange de gélatine, l’injection de caoutchouc de silicone composée se solidifie dans un court laps de temps, environ 15 minutes, sans aucune procédure supplémentaire. L’ensemble du processus est résumé dans l’image schématique à la Figure 1.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:877px;" width="875">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:339px;">MICROFIL Silicone Rubber Injection Compounds</td>
			<td style="width:151px;">Flow Tech Inc.</td>
			<td style="width:115px;">MV-112</td>
			<td style="width:273px;">White color agent</td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:339px;">MICROFIL Silicone Rubber Injection Compounds</td>
			<td style="width:151px;">Flow Tech Inc.</td>
			<td style="width:115px;">MV-117</td>
			<td style="width:273px;">Orange color agent</td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:339px;">MICROFIL Silicone Rubber Injection Compounds</td>
			<td style="width:151px;">Flow Tech Inc.</td>
			<td style="width:115px;">MV-120</td>
			<td style="width:273px;">Blue color agent</td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:339px;">MICROFIL Silicone Rubber Injection Compounds</td>
			<td style="width:151px;">Flow Tech Inc.</td>
			<td style="width:115px;">MV-122</td>
			<td style="width:273px;">Yellow color agent</td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:339px;">MICROFIL Silicone Rubber Injection Compounds</td>
			<td style="width:151px;">Flow Tech Inc.</td>
			<td style="width:115px;">MV-130</td>
			<td style="width:273px;">Red color agent</td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:339px;">MICROFIL Silicone Rubber Injection Compounds</td>
			<td style="width:151px;">Flow Tech Inc.</td>
			<td style="width:115px;">MV-132</td>
			<td style="width:273px;">Clear agent</td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:339px;">MICROFIL Silicone Rubber Injection Compounds</td>
			<td style="width:151px;">Flow Tech Inc.</td>
			<td style="width:115px;">MV-Diluent</td>
			<td style="width:273px;">Diluent</td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:339px;">MICROFIL CP-101 For Cast Corrosion Preparations</td>
			<td style="width:151px;">Flow Tech Inc.</td>
			<td style="width:115px;">CP-101</td>
			<td style="width:273px;">Curing agent</td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:339px;">SOFTEX X-ray film photographing inspection equipment</td>
			<td style="width:151px;">SOFTEX</td>
			<td style="width:115px;">CMB-2</td>
			<td style="width:273px;">Soft tissue x-ray system</td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:339px;">Film&#160;</td>
			<td style="width:151px;">Fujifilm</td>
			<td style="width:115px;">Industrial X-ray Film (FR 12x16.5cm)</td>
			<td style="width:273px;"></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:339px;">Automatic Development Machine</td>
			<td style="width:151px;">Fujifilm</td>
			<td style="width:115px;">FPM 2800</td>
			<td style="width:273px;"></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:339px;">Rat&#160;</td>
			<td style="width:151px;"></td>
			<td style="width:115px;"></td>
			<td style="width:273px;">Sprague-Dawley rat weighing 200-250 g</td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:339px;">Three-way stopcock</td>
			<td style="width:151px;"></td>
			<td style="width:115px;"></td>
			<td style="width:273px;"></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:339px;">24-guage catheter</td>
			<td style="width:151px;"></td>
			<td style="width:115px;"></td>
			<td style="width:273px;"></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:339px;">Image J</td>
			<td style="width:151px;">National Institutes of Health&#160;</td>
			<td style="width:115px;"></td>
			<td style="width:273px;">https://imagej.nih.gov/ij/</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

two-dimensional x-ray angiography to examine fine vascular structure using a silicone rubber injection compound

L’angiographie est un outil essentiel pour l’étude des structures vasculaires dans divers domaines de recherche. Le but de cette étude est de présenter une méthode simple et angiographique pour examiner la structure vasculaire fine de tissu frais, non fixée à l’aide d’un silicone caoutchouc injection composé et des tissus mous système à rayons x. Cette étude se concentre surtout sur les territoires de Rabat utilisées en chirurgie reconstructrice. Cette étude emploie angiographie avec une injection de caoutchouc de silicone composée dans différentes conditions expérimentales utilisant des rats Sprague-Dawley. Tout d’abord, 15 MV composé et 15 mL de diluant est mélangé. Puis, 1,5 mL de la salaison est préparé, et un cathéter de 24G est canulé dans l’artère carotide commune du rat. Un robinet à trois voies est alors connecté à un cathéter et l’agent radio-opaque, après mélange avec l’adjuvant de salaison préparée, est immédiatement injecté sans débordement. Enfin, comme l’agent se solidifie, le spécimen est récolté et une image angiographique est obtenue en utilisant un système à rayons x des tissus mous. Cette méthode indique que qualité angiographie montrant des structures vasculaires fines puisse être facilement et simplement obtenu dans un court laps de temps.

Par suite de ce protocole, la vascularisation de rabat du rat Sprague-Dawley a été examinée. Un lambeau de peau circonférentielle du bas du ventre à l’arrière qui mesurait 4 x 12 cm a été marquer selon nos rapports précédents. Chaque échantillon était dans un état vasculaire différent.
Tous les volets étaient élevées issu de l’artère iliaque circonflexe profond (DCIA) et de la veine et puis suralimenté ave...

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Two-Dimensional X-Ray Angiography to Examine Fine Vascular Structure Using a Silicone Rubber Injection Compound

Cette étude présente une méthode simple d’angiographique bidimensionnelle afin d’examiner les structures vasculaires fines à l’aide d’un silicone caoutchouc injection composé et des tissus mous système à rayons x.

Angiographie deux dimensions aux rayons x pour examiner la Structure vasculaire Fine à l’aide d’un mélange d’Injection de caoutchouc Silicone

Angiography is an essential tool for the study of vascular structures in various research fields. The aim of this study is to introduce a simple ...

Cette méthode peut aider à répondre aux questions clés dans le domaine de la chirurgie reconstructive sur la façon d’effectuer la chirurgie perforative ascenseur. Le principal avantage de cette technique est que la variation des structures vasculaires fines, telles que les vaisseaux d’étranglement, peut être exécutée facilement dans diverses conditions vasculaires d’aileron. Pour établir une condition d’aileron, confirmez le niveau approprié de sédation par un manque de réponse au pincement d’orteil dans un modèle anesthésié de 200 à 250 grammes de 7 semaines mâle de Sprague-Dawley et marquez un modèle circonférentiel de battement de peau de 4 par 12 centimètres de l’abdomen inférieur au dos.Avec le centre du rabat à mi-chemin entre le processus xiphoïde et le pénis. Utilisez une lame chirurgicale pour faire l’incision comme marquée et utilisez des ciseaux pour disséquer le rabat, y compris la peau et panniculus carnosus. Disséquer autour du pédule vasculaire au bas-ventre et utiliser un microscope ou une boucle chirurgicale pour exposer le tissu vasculaire.Ligate les navires et diviser le rabat le long de la ligne médiane dorsale. Le retour du rabat à sa position d’origine et fixer le rabat avec l’agrafeuse de la peau. Il est important de faire des volets qui ont des territoires vasculaires évidents pour permettre aux changements d’être facilement apportés à l’état vasculaire du rabat comme requis pour faire le protocole expérimental.Le jour de la procédure, faire une incision de 2 centimètres de la peau médiane entre les omoplates et utiliser des forceps moustique et des ciseaux contondants pour exposer le complexe de glandes salivaires. Après la dissection longitudinale du muscle omohyoïde, disséquez autour de l’artère carotide commune et utilisez la soie noire pour rétracter les côtés céphaliques et caudals de l’artère. Faire une cravate sur la suture proximale et garder la traction pour maintenir l’engorgement de l’artère et placer lâchement la suture caudale.L’insertion d’un cathéter de calibre 24 dans l’artère préparée et fixer le cathéter avec la suture caudale. Connectez un robinet d’arrêt à trois sens au cathéter et utilisez une seringue vide pour appliquer une pression négative sur le cathéter confirmant un flux de sang dans le cathéter. Ensuite, injectez de 25 à 30 millilitres de composé d’injection de caoutchouc de silicone fraîchement préparé dans le cathéter jusqu’à ce que les couleurs de l’œil et du pied aient changé.Lorsque tout le composé a été injecté, verrouiller le robinet d’arrêt à trois sens et permettre à l’agent de se solidifier pendant environ 15 minutes. Placez ensuite une barrière protectrice autour de la seringue du composé afin de ne pas contaminer l’agent radio opaque. Et retirez la seringue du robinet d’arrêt.Pour récolter l’échantillon, utilisez une lame chirurgicale pour faire une incision dans le panniculus carnosus à un centimètre du rabat pour éviter les dommages aux structures vasculaires à l’intérieur du rabat et disséquer autour du rabat au-dessous du plan panniculus carnosus. Ensuite, utilisez des ciseaux pour récolter le tissu, y compris le rabat et le pedicle vasculaire dans le rabat et utiliser une suture de soie de cinq o pour ligate le pedicle de l’aileron, séparant le rabat du corps. L’angiographie d’injection de caoutchouc de silicone indique clairement les structures vasculaires fines, permettant l’acquisition des images angiographiques de haute qualité des veines dilatées d’étranglement même dans des conditions autrement difficiles d’imagerie.Par exemple, dans cette expérience représentative, on peut observer que tous les volets ont été élevés en fonction de l’artère et de la veine iliaques circonflexes profondes avant d’être surchargés d’artères provenant de divers endroits. Si un volet entier est divisé en quatre zones comme norme, le navire principal chargeant le territoire des volets, l’agent angiographique qui atteint le navire principal charge la zone distale suivante au-delà de l’artère de suralimentation. La veine dilaté d’étranglement peut également être observée, même si elle n’a pas été vue dans l’angiographie normale de peau.Une fois maîtrisée, cette technique peut être complétée en une heure par rat si elle est effectuée correctement. Tout en essayant cette procédure, il est important de se rappeler de ne pas contaminer ou renverser l’agent angiographique pendant l’injection. Après avoir regardé cette vidéo, vous devriez avoir une bonne compréhension de la façon de faire un rabat de condition spécifique et d’effectuer une angiographie.

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