Name: assessment of respiratory function in conscious mice by double-chamber plethysmography
Uploaded: 2018-07-10T13:30:00
Duration: 8 min 58 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Assessment of Respiratory Function in Conscious Mice by Double-chamber Plethysmography at JoVE.com

SMG understøttes af en studentship fra den canadiske institutter for sundhedsforskning, MG er støttet af et legat fra den respiratoriske Health Network af FRQS (Fonds de recherche du Québec – Santé) og YB er en forskning videnskabsmand fra FRQS.
FORFATTERNES BIDRAG Alle forfattere har bidraget til udformningen af håndskriftet og/eller video. SMG og LD indsamlet dataene. SMG, LD, YB, DM, DB og AR bidraget til dataanalyse, generation af tal og manuskriptet skrives. YB, AR, KL og MG var involveret i udarbejdelsen af den video script. Stykket blev udført af YB, KL og MG.

Følgende procedurer blev godkendt af Quebec hjerte og lunge Institute Animal Care Udvalget i overensstemmelse med retningslinjerne i den canadiske Rådet på Animal Care (CCAC).
1. forberedelse
<ol><li>Undersøgelse
	<ol>
<li>(Kritisk) Før du udfører et eksperiment, indhente relevante godkendelser (f.eks. IACUC) og kurser (f.eks. dyr håndtering).</li>
		<li>Gør dig bekendt med udstyret og de driver software. Læs brugermanualer, og hvis det er nødvendigt, oprette en konfigurationsfil til at definere antallet websteder, input signaler, analysatorer og parametre. Bemærk: Sørg for at vælge en høj samplingfrekvens (2 KHz).</li>
		<li>Konfigurere indstillingerne analysatorer for parametrene for interesse.<ol>
<li>Vælg Tuning på værktøjslinjen og derefter analysatorer.</li>
			<li>Justere flow tærsklen til en værdi, der korrekt adskiller åndedræt (mus: 0,5 mL/s) og vælge Ti + Te til at beregne den vejrtrækning.</li>
			<li>Angive en værdi for lufttryk (760 mm Hg) og angive den maksimale afvigelse af inspiratory/ekspiratorisk volumen for en ånde skal betragtes som lovlig (mus: 20%).</li>
			<li>Klik på indstillingen i feltet beregnet parametre til at justere grænserne for accept. Bemærk: Følgende indstillinger blev brugt til de beskrevne mus eksperimenter: Inspiration tid, 50-170 ms; udløbstid, 40 til 180 ms; frekvensen af vejrtrækningen, 30 til 450 bpm; specifikke luftvejs modstand, 0 til 15 cmH2O·s; midexpiratory flow med en præcision af mindst 3 decimaler.</li>
			<li>Når du er færdig, skal du vælge Anvend og luk for at afslutte dialog rude.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Bar-menuen værktøj, gå til Tuning igen og derefter Storage for at indstille en ønskede data opbevaring sats. Klik på Anvend og luk for at forlade vinduet. Bemærk: Et gennemsnit på hver 10 s bruges typisk.</li>
		<li>Oprette en protokol inden for den driver software til at definere en sekvens af kommandoer og den ønskede timing for hver enkelt. Et eksempel er vist i figur 1.</li>
		<li>Hvis forsøget omfatter administration af et stof af aerosol, forberede passende løsninger og fortyndinger efter koncentrationer skal testes.</li>
	</ol></li>
	<li>Dyr
	<ol>
<li>Arbejde i et roligt område langt fra boliger værelse. Tillade, at dyr til at tilpasse sig ændringer i miljøet.</li>
		<li>Vejes dyrene og vælg den passende tilbageholdenhed størrelse.</li>
		<li>(Kritisk) Vænne dyrene til Tilbageholderen og procedurer før starten af forsøget. Afhængigt af det eksperimentelle design, flere acclimation sessioner for at øge varighed (f.eks. 5-30 min) kan være nødvendigt. Bemærk: Dyr, der ikke acclimate bør fjernes fra undersøgelsen.<ol>
<li>Ved hver acclimation session, Indsæt dyr inden for Tilbageholderen, fra den tilbage åbne; holder enheden vertikalt kan være nyttige.</li>
			<li>Når dyret er i position, indsætte tilbage stemplet og forsigtigt låse det på plads uden at anvende en overdreven kraft.</li>
			<li>(Kritisk) Kontroller visuelt at dyret ånder normalt. Hvis det er nødvendigt, justere sin position ved at flytte låsemekanismen. Sørg for, at dyrets nares fremspringende uden for næsen-kegle med sin snude hviler mod de indvendige vægge af Tilbageholderen.</li>
			<li>Frigøre bagpanelet af thorax salen, indsætte Tilbageholderen indeholdende dyr gennem gummi åbning i thorax salen og lukke salen.</li>
			<li>Vedhæfte den hoved kammer og give en bias flow. Bruge en strøm af 0,5 L/min for en mus.</li>
			<li>Tillad dyret til at slappe af i 5 min.</li>
			<li>Når dyret er rolig, starte optagelse af nasal og thorax flow signaler. Kontrol på computerskærmen, at sporene er glat og at de viser en regelmæssig åndedrætsmønster; Se eksemplet i figur 2. Bemærk: Hvis protokollen indebærer aerosol administration af et stof, kan en saltvand udfordring medtages i acclimation procedure.</li>
			<li>I slutningen af hver session, fjerne dyret fra thorax kammeret og Tilbageholderen og returnere det til sin bolig bur og værelse.</li>
		</ol>
</li>
	</ol></li>
	<li>Udstyr
	<ol>
<li>Start en eksperimentel session på dagen af forsøget, og indlæse den passende konfigurationsfil. Bemærk: Kontroller, at det indeholder den ønskede protokol for eksperimentet.</li>
		<li>Gå til Kør i menuen værktøj advokatstanden. Angiv eksperimentet og dyrets oplysninger. Når det er gjort, klik på knappen Run i bunden af vinduet.</li>
		<li>Fortsætte med kalibrering af systemet. Kalibrere hvert websted og input signal separat.<ol>
<li>Tænd bias flow generator, tilsluttes hoved kammeret via et stykke af slangen, og justere flow.</li>
			<li>Lukke den øverste åbning af hoved salen med en fælles landbrugspolitik.</li>
			<li>Frigøre bagpanelet af thorax kammer, sæt fast kalibreringsværktøj inde gummi åbning mellem hovedet og kroppen kammeret til at skabe en hermetiske forsegling. Derefter lukke og re-vedhæfte bagpanelet af thorax salen.</li>
			<li>Kontroller, at havnens side af thorax salen er udjævnet.</li>
			<li>Gå til Tuning og derefter kalibreresoftware værktøj bar menuen.</li>
			<li>Gå til Input 1 (thorax) og vælg Kalibrer til lancering kalibrering dialogboksen for thorax flow signal.</li>
			<li>(Kritisk) Kontroller, at de anførte parametre i calibration dialog rude viser de relevante indstillinger, dvs. fysisk stress anvendes lav værdi: 0; Fysisk stress anvendes høj værdi:-20 mL/s; Prøver: integrere. Når det er gjort, klik på lav i vinduet eksempler .</li>
			<li>Kontroller, at signalet genereret er konstant i hele displayvinduet og derefter klikke på Luk.</li>
			<li>Tilslut et 20 mL-sprøjten gennem havnens side af thorax kammeret ved hjælp af en plastic-stik og et stykke af slangen.</li>
			<li>(Kritisk) Vælg høj i vinduet eksempler og straks injiceres 20 mL luft ind i kammeret over en 2 s periode på en så konstant som muligt strømningshastighed.</li>
			<li>Kontroller, at signalet genereret vises helt inde i displayvinduet. Brug pileikon til at kontrollere, om signalet er centreret og symmetrisk omkring nul linje. Klik derefter på Luk. Fjern eventuelle forskydning fra nul ved at klikke på Fjern AC forskydning i vinduet eksempler Bemærk: Høj værdi kalibrering kan fornyes, hvis det er nødvendigt.</li>
			<li>Kontroller, at den resulterende Skaleret Input interval er inden for det anbefalede interval (mus: ±280 til ±420 mL/s). (Kritisk) Gentag trinene kalibrering, hvis værdierne er uden for det acceptable område.</li>
			<li>Kalibrere den hoved afdeling i en lignende måde som thorax salen (trin 1.3.3.6). Denne gang skal du vælge Input 2 (nasal). Bemærk: (Vigtigt) Værdien for fysisk stress anvendes høj værdi skal indstilles til + 20 mL/s. Dette vil ændre polariteten af flowet i det forreste kammer i forhold til den bageste kammer. Når dyret vejrtrækning, bliver to flow signalerne derfor næsten i fase, bortset fra den forsinkelse, der bruges til at beregne sRaw.</li>
		</ol>
</li>
	</ol></li>
</ol>2. lunge-funktion målinger
<ol><li>Vejes dyrene og Bemærk deres krop vægte.</li>
	<li>Indsæt dyr inden for Tilbageholderen og placere den inde i thorax plethysmograph kammer (trin 1.2.3.1 til 1.2.3.5).</li>
	<li>Tillad dyret til at slappe af i mindst 5 min.</li>
	<li>Starte protokollen af kommandoer ved at vælge det første trin, og klik derefter på Udfør.</li>
	<li>Tjek på computerskærmen at dyrets vejrtrækning signaler er regelmæssig og glat (figur 2). Softwaren viser automatisk de parametre, der er beregnet på grundlag af ånde af ånde. Kontroller, at dyrets parametre er stabil.</li>
	<li>Optage åndedrætsmønster på baseline betingelser for op til 10 minutter.</li>
	<li>For protokoller vedrørende administrationen af et prøvestof af aerosol, gør som følger:<ol>
<li>Justere forstøver på tid og pligt cyklussen, som kræves. Bemærk: I eksemplerne i denne artikel, forstøver blev drevet på en 5% normeret maksimalydelse for 10 s.</li>
		<li>Udføre et køretøj udfordring (f.eks. saltvand) og optage svaret.</li>
		<li>Hvis det er nødvendigt, udsætte dyret til at øge koncentrationen af prøvestof ved at ændre koncentrationen i forstøver i eskalerende trin (f.eks. fordobling koncentrationer). Post svar efter hver administration.</li>
		<li>I slutningen af den eksperimentelle session, hvis det ikke gøres automatisk, stop optagelsen og vende tilbage dyret boliger bur og værelse.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Hvis det er nødvendigt, Vælg Kør fra menuen værktøj advokatstanden hen til opstille en anden eksperimentel session.<ol>
<li>Mellem sessioner, ren plethysmograph kamre og skyl forstøver med vand. Bemærk: Brug af alkohol kan forårsage uoprettelige skader på plethysmograph.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Hvis undersøgelsen involverer gentagne evalueringer over tid, gentage hele måling sekvensen på hver valgte tidspunkt. Bemærk: Det anbefales klogt at supplere studiet med nogle præcise målinger af respiratorisk mekanik og/eller lunge bind1,15.</li>
</ol>3. dataanalyse
Bemærk: Softwaren automatisk gemmer filen eksperimentelle og eksporterer de registrerede parametre, når de eksperimentelle session er blevet lukket.
<ol><li>Beregne en baseline gennemsnit for parametrene for interesse for hvert dyr og eksperimenterende gruppe. Bemærk: tabel 1 opregner en række typiske parametre, kategoriseret baseret på typen oplysninger, de indeholder.</li>
	<li>Når det er relevant, vurdere effekten af stoffets aerosolmaterialer studerede på parametre af interesse for hver koncentration ved hjælp af et bestemt punkt (f.eks. maksimal eller minimal værdi), et gennemsnit, eller fuld tid-kursus; også kan betragtes som en normalisering grundlinjen.</li>
	<li>Rapportere resultaterne ved hjælp af gruppe betyder og fejl i en tabel eller grafisk format. Analysere resultaterne statistisk. Bemærk: I den foreliggende undersøgelse, to-vejs ANOVAs med gentagne foranstaltninger blev brugt til at vurdere virkningen af methacholine, allergen-hus-støv mide (HDM)- og deres interaktion på forskellige DCP udlæsninger (sRaw og EF50) samt på forskellige FOT udlæsninger (RN, G og H), i begge stammer af mus. Sidaks flere sammenligning test blev derefter brugt til at bestemme koncentrationen af methacholine hvor de allergiske mus adskiller sig fra kontrol-musene. De samme test blev anvendt til at vurdere effekten af dage, HDM og deres interaktion ved baseline (dvs.før methacholine) på udlæsninger af luftvejsobstruktion (sRaw og EF50) og ventilation mønster (BF, TV, MV og EIP). Pearsons korrelationer blev brugt til at vurdere sammenhængen mellem sRaw fremstillet med DCP og RN fremstillet med FOT. Alle statistiske analyser og grafer blev udført ved hjælp af alternative standard statistisk software (f.eks.GraphPad prisme). p ≤ 0,05 blev anset for tilstrækkeligt til at afvise nulhypotesen.</li>
</ol>

<ol>
	<li>McGovern, T. K., Robichaud, A., Fereydoonzad, L., Schuessler, T. F., Martin, J. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evaluation+of+respiratory+system+mechanics+in+mice+using+the+forced+oscillation+technique.">Evaluation of respiratory system mechanics in mice using the forced oscillation technique.</a> J Vis Exp. (75), e50172 (2013).</li><li>Bates, J. H. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CORP:+Measurement+of+lung+function+in+small+animals.">CORP: Measurement of lung function in small animals.</a> J Appl Physiol (1985). 123 (5), 1039-1046 (2017).</li><li>Bates, J. H., Irvin, C. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Measuring+lung+function+in+mice:+the+phenotyping+uncertainty+principle.">Measuring lung function in mice: the phenotyping uncertainty principle.</a> J Appl Physiol. 94 (4), 1297-1306 (2003).</li><li>Lim, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Measuring+respiratory+function+in+mice+using+unrestrained+whole-body+plethysmography.">Measuring respiratory function in mice using unrestrained whole-body plethysmography.</a> J Vis Exp. (90), e51755 (2014).</li><li>Enhorning, G., van Schaik, S., Lundgren, C., Vargas, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Whole-body+plethysmography,+does+it+measure+tidal+volume+of+small+animals?.">Whole-body plethysmography, does it measure tidal volume of small animals?.</a> Can J Physiol Pharmacol. 76 (10-11), 945-951 (1998).</li><li>Vijayaraghavan, R., Schaper, M., Thompson, R., Stock, M. F., Alarie, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Characteristic+modifications+of+the+breathing+pattern+of+mice+to+evaluate+the+effects+of+airborne+chemicals+on+the+respiratory+tract.">Characteristic modifications of the breathing pattern of mice to evaluate the effects of airborne chemicals on the respiratory tract.</a> Arch Toxicol. 67 (7), 478-490 (1993).</li><li>Willis, D. N., Liu, B., Ha, M. A., Jordt, S. E., Morris, J. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Menthol+attenuates+respiratory+irritation+responses+to+multiple+cigarette+smoke+irritants.">Menthol attenuates respiratory irritation responses to multiple cigarette smoke irritants.</a> FASEB J. 25 (12), 4434-4444 (2011).</li><li>Neuhaus-Steinmetz, U., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sequential+development+of+airway+hyperresponsiveness+and+acute+airway+obstruction+in+a+mouse+model+of+allergic+inflammation.">Sequential development of airway hyperresponsiveness and acute airway obstruction in a mouse model of allergic inflammation.</a> Int Arch Allergy Immunol. 121 (1), 57-67 (2000).</li><li>Glaab, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tidal+midexpiratory+flow+as+a+measure+of+airway+hyperresponsiveness+in+allergic+mice.">Tidal midexpiratory flow as a measure of airway hyperresponsiveness in allergic mice.</a> Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 280 (3), L565-L573 (2001).</li><li>Glaab, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Noninvasive+measurement+of+midexpiratory+flow+indicates+bronchoconstriction+in+allergic+rats.">Noninvasive measurement of midexpiratory flow indicates bronchoconstriction in allergic rats.</a> J Appl Physiol (1985). 93 (4), 1208-1214 (2002).</li><li>Pennock, B. E., Cox, C. P., Rogers, R. M., Cain, W. A., Wells, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+noninvasive+technique+for+measurement+of+changes+in+specific+airway+resistance.">A noninvasive technique for measurement of changes in specific airway resistance.</a> J Appl Physiol Respir Environ Exerc Physiol. 46 (2), 399-406 (1979).</li><li>DeLorme, M. P., Moss, O. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pulmonary+function+assessment+by+whole-body+plethysmography+in+restrained+versus+unrestrained+mice.">Pulmonary function assessment by whole-body plethysmography in restrained versus unrestrained mice.</a> J Pharmacol Toxicol Methods. 47 (1), 1-10 (2002).</li><li>Flandre, T. D., Leroy, P. L., Desmecht, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+somatic+growth,+strain,+and+sex+on+double-chamber+plethysmographic+respiratory+function+values+in+healthy+mice.">Effect of somatic growth, strain, and sex on double-chamber plethysmographic respiratory function values in healthy mice.</a> J Appl Physiol (1985). 94 (3), 1129-1136 (2003).</li><li>Criee, C. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Body+plethysmography--its+principles+and+clinical+use.">Body plethysmography--its principles and clinical use.</a> Respir Med. 105 (7), 959-971 (2011).</li><li>Robichaud, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Automated+full-range+pressure-volume+curves+in+mice+and+rats.">Automated full-range pressure-volume curves in mice and rats.</a> J Appl Physiol (1985). 123 (4), 746-756 (2017).</li><li>Mizutani, N., Goshima, H., Nabe, T., Yoshino, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Complement+C3a-induced+IL-17+plays+a+critical+role+in+an+IgE-mediated+late-phase+asthmatic+response+and+airway+hyperresponsiveness+via+neutrophilic+inflammation+in+mice.">Complement C3a-induced IL-17 plays a critical role in an IgE-mediated late-phase asthmatic response and airway hyperresponsiveness via neutrophilic inflammation in mice.</a> J Immunol. 188 (11), 5694-5705 (2012).</li><li>Nabe, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Roles+of+basophils+and+mast+cells+infiltrating+the+lung+by+multiple+antigen+challenges+in+asthmatic+responses+of+mice.">Roles of basophils and mast cells infiltrating the lung by multiple antigen challenges in asthmatic responses of mice.</a> Br J Pharmacol. 169 (2), 462-476 (2013).</li><li>Morris, J. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Immediate+sensory+nerve-mediated+respiratory+responses+to+irritants+in+healthy+and+allergic+airway-diseased+mice.">Immediate sensory nerve-mediated respiratory responses to irritants in healthy and allergic airway-diseased mice.</a> J Appl Physiol (1985). 94 (4), 1563-1571 (2003).</li><li>Merazzi, D., Mortola, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+changes+in+ambient+temperature+on+the+Hering-Breuer+reflex+of+the+conscious+newborn+rat.">Effects of changes in ambient temperature on the Hering-Breuer reflex of the conscious newborn rat.</a> Pediatr Res. 45 (3), 370-376 (1999).</li><li>Rao, R., Nagarkatti, P. S., Nagarkatti, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Delta(9)+Tetrahydrocannabinol+attenuates+Staphylococcal+enterotoxin+B-induced+inflammatory+lung+injury+and+prevents+mortality+in+mice+by+modulation+of+miR-17-92+cluster+and+induction+of+T-regulatory+cells.">Delta(9) Tetrahydrocannabinol attenuates Staphylococcal enterotoxin B-induced inflammatory lung injury and prevents mortality in mice by modulation of miR-17-92 cluster and induction of T-regulatory cells.</a> Br J Pharmacol. 172 (7), 1792-1806 (2015).</li><li>Agrawal, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Inhibition+of+mucin+secretion+with+MARCKS-related+peptide+improves+airway+obstruction+in+a+mouse+model+of+asthma.">Inhibition of mucin secretion with MARCKS-related peptide improves airway obstruction in a mouse model of asthma.</a> J Appl Physiol (1985). 102 (1), 399-405 (2007).</li><li>Mabalirajan, U., Aich, J., Agrawal, A., Ghosh, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mepacrine+inhibits+subepithelial+fibrosis+by+reducing+the+expression+of+arginase+and+TGF-beta1+in+an+extended+subacute+mouse+model+of+allergic+asthma.">Mepacrine inhibits subepithelial fibrosis by reducing the expression of arginase and TGF-beta1 in an extended subacute mouse model of allergic asthma.</a> Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 297 (3), L411-L419 (2009).</li><li>Desmet, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Treatment+of+experimental+asthma+by+decoy-mediated+local+inhibition+of+activator+protein-1.">Treatment of experimental asthma by decoy-mediated local inhibition of activator protein-1.</a> Am J Respir Crit Care Med. 172 (6), 671-678 (2005).</li><li>Zang, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pulmonary+C+Fibers+Modulate+MMP-12+Production+via+PAR2+and+Are+Involved+in+the+Long-Term+Airway+Inflammation+and+Airway+Hyperresponsiveness+Induced+by+Respiratory+Syncytial+Virus+Infection.">Pulmonary C Fibers Modulate MMP-12 Production via PAR2 and Are Involved in the Long-Term Airway Inflammation and Airway Hyperresponsiveness Induced by Respiratory Syncytial Virus Infection.</a> J Virol. 90 (5), 2536-2543 (2015).</li><li>Shukla, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Carryover+of+cigarette+smoke+effects+on+hematopoietic+cytokines+to+F1+mouse+litters.">Carryover of cigarette smoke effects on hematopoietic cytokines to F1 mouse litters.</a> Mol Immunol. 48 (15-16), 1809-1817 (2011).</li><li>Murphy, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Respiratory+function+assessment+in+safety+pharmacology.">Respiratory function assessment in safety pharmacology.</a> Curr Protoc Pharmacol. , (2003).</li><li>Lofgren, J. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Restrained+whole+body+plethysmography+for+measure+of+strain-specific+and+allergen-induced+airway+responsiveness+in+conscious+mice.">Restrained whole body plethysmography for measure of strain-specific and allergen-induced airway responsiveness in conscious mice.</a> J Appl Physiol (1985). 101 (5), 1495-1505 (2006).</li><li>DiMaria, G. U., Wang, C. G., Bates, J. H., Guttmann, R., Martin, J. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Partitioning+of+airway+responses+to+inhaled+methacholine+in+the+rat.">Partitioning of airway responses to inhaled methacholine in the rat.</a> J Appl Physiol (1985). 62 (3), 1317-1323 (1987).</li><li>Hoymann, H. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Lung+function+measurements+in+rodents+in+safety+pharmacology+studies.">Lung function measurements in rodents in safety pharmacology studies.</a> Front Pharmacol. 3, 156 (2012).</li><li>Agrawal, A., Singh, S. K., Singh, V. P., Murphy, E., Parikh, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Partitioning+of+nasal+and+pulmonary+resistance+changes+during+noninvasive+plethysmography+in+mice.">Partitioning of nasal and pulmonary resistance changes during noninvasive plethysmography in mice.</a> J Appl Physiol (1985). 105 (6), 1975-1979 (2008).</li><li>McLeod, R. L., Young, S. S., Erickson, C. H., Parra, L. E., Hey, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Characterization+of+nasal+obstruction+in+the+allergic+guinea+pig+using+the+forced+oscillation+method.">Characterization of nasal obstruction in the allergic guinea pig using the forced oscillation method.</a> J Pharmacol Toxicol Methods. 48 (3), 153-159 (2002).</li><li>Miyahara, S., Miyahara, N., Takeda, K., Joetham, A., Gelfand, E. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Physiologic+assessment+of+allergic+rhinitis+in+mice:+role+of+the+high-affinity+IgE+receptor+(FcepsilonRI).">Physiologic assessment of allergic rhinitis in mice: role of the high-affinity IgE receptor (FcepsilonRI).</a> J Allergy Clin Immunol. 116 (5), 1020-1027 (2005).</li></ol>

DB og AR er ansat af SCIREQ videnskabelige respiratorisk udstyr Inc, en kommerciel enhed involveret i emner relateret til indholdet af denne artikel. DB ejer også lager. SCIREQ Inc. er en emka teknologier selskab.

Evnen til at måle lungefunktion i bevidst dyr er klart begrundet i respiratoriske forskning. Generelt, er DCP en interessant tilgang til at vurdere funktionen ventilation af åndedrætsorganerne i bevidste og spontant vejrtrækning dyr26. Mere specifikt rammer DCP eller dens hoved-out variant, ofte den rette balance mellem kvaliteten af oplysningerne og det ønskede niveau af invasiv3 (tabel 2). Teknikken kan tilpasses til forskellige arter (f.eks. mus, rotter, marsvin) eller animalske størrelser og kan bruges i mange forskning applikationer. Det er især nyttigt at vurdere mange dyr på én gang i en parallel undersøgelse design, til at overvåge den respiratoriske funktion i gentagne måde og fange kinetik af en reaktion over tid. Derudover teknikken er enkel og kan læres i et relativt rettidigt. I det foreliggende papir, en protokol beskæftiger DCP målinger i mus blev brugt som et eksempel til at beskrive de praktiske aspekter af dette tilbageholdende plethysmography teknik samt for at diskutere de kritiske trin og relaterede resultater.
Når du arbejder med bevidste dyr, er det vigtigt at kontrollere betingelserne for det omgivende miljø (fx, roligt værelse med et begrænset antal mennesker eller aktivitet) for at generere reproducerbare resultater. Da restrainers kommer i forskellige dimensioner, er det vigtigt at starte med en passende størrelse, så vejrtrækningen bevægelser er uforstyrrede. Det er også nyttigt og ofte nødvendigt at vænne dyrene til eksperimentel opsætning og procedurer, som det er godt etableret i mus at fastholdende påvirker vejrtrækning frekvens12. Afhængigt af de eksperimentelle design eller betingelser, kan flere sessioner af trinvise varigheder være nødvendig. Endelig er giver tid i starten af et eksperiment for at justere værelse ændringer og nødvendige håndtering dyrene en simpel overvejelse, der viste sig at være effektiv til at sikre, at åndedrætsmønster er konsekvent regelmæssig og afslappet på baseline. Arbejde under forhold, hvor dyrene er komfortable, veltilpasset og roligt vil også gavne resultat variation og kvalitet. Det begrænser også nogen stress-induceret frigivelse af katekolamin, som kan øge luftvejene kaliber og dæmpe en inducerede bronchoconstriction.
Det er vigtigt at forstå, at der er behov for at adskille så hermetisk som muligt de nasale og thorax strømme. Afhængigt af systemet eller arter studerede, kan forsegling mekanismen variere i form såvel som i effektivitet. I DCP vi beskrevet heri, oprettes tætningen mellem dyrets snude og fastholdende enheden. Ved vurderingen af den respiratoriske funktion af DCP, er det også vigtigt at give en tilstrækkelig og vedvarende bias flow, da et fald i niveauet af ilt til rådighed til dyret vil resultere i betydelige virkninger. Under hensyntagen til dyret i Tilbageholderen velvære begrænser tilbøjelighed for luft lækager lavet af agitation og maksimerer derved kvaliteten af dataene. Contrastingly, en banebrydende i seglet vil resultere i enten afviste datasæt eller en undervurdering af nogle parametre.
Desuden hvis du vil aktivere separat registrering af nasal flow signal, bruges hoved salen typisk til at udsætte dyret til aerosolmaterialer stoffer. Som illustreret i denne artikel, kan det blive udnyttet til at udføre en bronchoprovocation test for at vise forskellige grader af lydhørhed. I sådanne forsøg, justere rækken testet koncentrationer kan være nødvendigt afhængig af art, stamme eller sex af dyrene studerede. Som tidligere påvist8,9,10,27viser nuværende resultaterne, at de methacholine-inducerede ændringer i sRaw korreleret godt med invasive FOT målinger af luftvejene modstand. Resultaterne viser også, at DCP teknik ikke er så følsomme områder som FOT for sin evne til at opdage respiratorisk dysfunktion og identificere en ændret svar lokaliseret inden for de nedre rum af lunge (lungevæv og/eller små perifere luftveje) . Da dyrets airways er intakt, kan tilstedeværelsen af de øvre luftveje, som tegner sig for den største del af den samlede respiratoriske modstand til luftstrømmen28, påvirke aerosol distribution og deposition desuden til at dæmpe bidrag fra de nedre luftveje for en måling. Tabel 3 opsummerer andre forskelle mellem DCP teknik og FOT. Endelig, selv om det ville være teoretisk muligt at anslå dyrets samlede luftveje modstand (herunder øvre luftveje) fra en måling af sRaw, det er generelt anbefales at supplere DCP evaluering med en invasiv måling teknik som FOT29 at opnå direkte målinger af detaljerede respiratorisk mekanik. Afhængigt af formålet med undersøgelsen, kan målinger af øvre luftveje modstand også betragtes30,31,32.
Konklusion  På grund af dens begrænset grad af invasiv er DCP en teknik, der kan opfylde et stort behov i respiratoriske forskning. Det er købedygtig levere nøjagtig aflæsning af ventilation mønster i bevidst dyr samtidig med nogle ubestridte indekser af airflow obstruktion. De indhentede oplysninger også virkelig supplerer fra mere invasive metoder.

Den stigende brug af små dyr til model menneskelige luftvejssygdomme har opfordret udviklingen af teknikker til at vurdere kvantitativt funktioner i åndedrætsorganerne hos disse dyr. I øjeblikket, er tvungen svingning teknik (FOT) anerkendt som den mest præcise metode til at vurdere respiratorisk mekanik i små dyr1,2. Dog, som anført af fænotyper ubestemthedsprincippet, hvad er fået i målingen præcision med FOT handles ud mod et tab i noninvasiveness3. Faktisk, FOT målinger er erhvervet under stærkt kontrollerede forsøgsbetingelser, der nødvendiggør anæstesi, tracheotomi eller mundtlige intubation samt mekanisk ventilation; et scenario langt fra virkelighedens.
I situationer hvor de eksperimentelle krav forbyde brugen af bedøvelsesmiddel agenter eller ring for lidt eller ingen afvigelse fra dyrets naturlige fysiologiske tilstand, kan dobbelt-kammer plethysmography (DCP) overvejes. Som navnet antyder, består en DCP setup af to forbundne stive chambers byggede for at isolere så hermetisk som muligt dyrets hoved (eller næse), i den forreste kammer, fra sin brystkasse, i den bageste kammer. Inden for opsætning, dyret er bevidst og ånder spontant samtidig med at være tilbageholdende. Fordi væggene i afdelingerne ikke kan udvide eller trække, genererer bevægelse af luft og-ud af dyret en tilsvarende men modsatte bølgeform indeni den bageste kammer, som følge af kompression/dekompression af den omgivende luft. Bølgeform på grund af nasal flow i den forreste kammer, og den vedrører de thorax bevægelse i den bageste kammer kan således adskilt og erobrede samtidig. Afhængigt af opsætningen af DCP design kan disse bølgeformer erhverves ved hjælp af et sæt af enten Tryktransducere eller pneumotachographs henholdsvis registrere ændringerne i kammeret pres eller luftstrømmen og-ud for afdelingerne som funktion af tiden. Den sidstnævnte metode er mere almindelig i dag.
Mens dyrets vejrtrækning frekvens kan bestemmes nøjagtigt ved enhver form for plethysmography teknikker, er situationen ikke det samme for bestemmelse af tidalvolumen og dens relaterede ventilation parametre (fx, minutventilation, ekspiratorisk volumen, osv.). I modsætning til hel-krops plethysmograph (WBP) teknik, hvor anslås dyrets tidalvolumen fra box signal4,5, giver DCP teknik nøjagtige vurderinger af tidalvolumen. Dette er relateret til direkte erhvervelse af dyrets bryst bevægelse i den bageste kammer, som er proportionalt med ændringerne i lunge volumen i løbet af vejrtrækning.
Ud over disse nøjagtige respiratorafhængige parametre (f.eks.tidalvolumen, vejrtrækning frekvens og minutventilation), nogle forstyrrelser i form af respiratorisk cyklus kan også bruges til at undersøge neuronal aspekter, der styrer den respiratorisk drev eller respiratorisk reflekser. Et konkret eksempel på denne anvendelse ville være evaluering af inhalerede stoffer på de øvre luftveje sensoriske neuroner6irritation potentiale. Varigheden af en pause i starten af udløb bestemmes her, ved hjælp af en parameter kaldet ende-inspiratory pause (EIP), også kaldet varighed af bremsekraft6. Forlængelsen af denne pause af et irriterende stof er forbundet med lukningen af dyrets glottis, forårsager en målbar periode af opbremsning i den første del af udløb6,7.
En anden vigtig fordel ved DCP er, at det giver to validerede og ubestridte parametre, der er følsomme over for airflow obstruktion. En kaldes strømmen på midten af tidevands ekspirationsvolumen og er forkortet EF508,9,10. Det er luftgennemstrømning ved midway volumen af hver tidevandsenergi ånde under udånding. EF50 er udvundet fra sporingen af thorax flow og kan således måles uden den forreste kammer (dvs., i en hoved-out konfiguration). Anden, kaldes specifikke luftvejs modstand og er forkortet sRaw11,12,13. Bestemmelse af sRaw kræver den samtidige optagelse af dyrets nasal og thorax strømme, som det er beregnet fra tidsforsinkelse mellem disse separate respiratorisk spor på nul flow i slutningen af inspiration. Den logik, der beskriver grundlaget, som vedrører denne forsinkelse sRaw var expatiated tidligere11. Put blot, foran ændringer i lunge volumen luftbevægelse, da en trykgradient behov for at udvikle for at drive luftstrøm. I et sundt dyr trække vejret roligt, er denne forsinkelse typisk meget små. Dog er den trykgradient, der er nødvendige for at rumme et givet flow (f.eks, en flow tilstrækkeligt til at give tilstrækkelig ventilation) påvirket af graden af luftvejene modstand. Under bronchoconstriction, for eksempel, er gradienten af tryk der er nødvendige til at rumme en given flow større, hvilket indebærer, at dyret har til at arbejde hårdere for vejrtrækning. En større graduering af trykket i dyrets thorax indebærer også, at en større del af strømmen og-ud af den bageste afdeling er dekompression/kompression af luft i brystkassen, som er del af den samlede thorax udvidelse/sammentrækning, der er ude af fase med nasal strømmen. Den øgede modstand på grund af bronchoconstriction vil således øge forsinkelse mellem bageste og forreste afdelingerne og øger dermed sRaw. Gradienten af pres, der driver luftstrømmen og-ud af lungerne er også påvirket af den oprindelige thorax volumen (TGV). På en større TGV for eksempel udvidelse/sammentrækning af thorax nødvendige for at generere en given gradient pres er større (simpelthen fordi volumen forskydning, der er nødvendige for at generere en given gradient pres er større), hvilket også indebærer at den dyret har til at arbejde hårdere for vejrtrækning. Igen, disse ekstra thorax forskydninger er dem, der kræves for at dekomprimere/komprimere luft i brystkassen og er dermed ude af fase med nasal strømmen. Så, en øget TGV vil også øge forsinkelse mellem afdelingerne og øger dermed sRaw. Som det kan ses, resultere både bronchoconstriction og øget TGV i en mere vigtigt forsøg på at trække luft og-ud af lungerne. Dette er i det væsentlige den fysiologiske betydning af sRaw. Det repræsenterer det arbejde, der kræves for vejrtrækning5,14.
Det er således vigtigt at forstå, at to forskellige faktorer påvirker sRaw: luftvejene modstand og TGV. I virkeligheden, kan sRaw udtrykkes som et produkt af luftvejene modstand og TGV11. Bevidst dyr kan ændre deres TGV efter forgodtbefindende, at tilpasse deres ventilation til et givet miljø. Under sådanne forhold, hvor dyrets naturlige fysiologiske tilstand er uændret, er det således umuligt at skelne, om en ændring i sRaw stammer fra en ændring i luftvejene modstand, fra en ændring i TGV, eller fra en blanding af to. Derfor anbefales det at supplere DCP evaluering med mere invasive målinger af respiratorisk mekanik og/eller lunge diskenheder, som de leveres af FOT1,15.
Til dato, har DCP været brugt i forskellige forskning applikationer. Teknikken kan bruges med eller uden hoved salen til kvantitativt og vurdere præcist effekten af forskellige stoffer, såsom apoteksagenter, allergener, lokalirriterende eller andre mæglere på respiratoriske funktion i bevidst små dyr 16,17,18. Den forreste kammer kan også bruges som en udsætter kammer aerosolmaterialer stoffer eller varierende gas koncentrationer (hypoxi, hyperkapni, etc.)19. Bekvemt, det gør det muligt samtidig måle akutte virkninger disse engagementer. Faktisk er en af de almindelige anvendelser af DCP at vurdere graden af lydhørhed over for aerosolmaterialer methacholine i forskellige modeller af luftvejssygdomme20,21,22,23, 24 , 25.
Selv om DCP teknik er tilsyneladende enkle, kunne nogle praktiske udfordringer potentielt afskrække uerfarne brugere eller forringe den præcision og reproducerbarhed af resultaterne. Den nuværende papir giver en detaljeret beskrivelse af de anbefalede procedurer til korrekt optage respiratoriske funktion af DCP i bevidst, tilbageholdende, spontant vejrtrækning mus. Beskrivelsen er specifikke for den angivne udstyr (henvises til Tabel af materialer). Den nytte og værdi af DCP er også påvist i en fælles model for pulmonal allergisk betændelse i to stammer af mus testet ved baseline og svar på aerosolmaterialer methacholine.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="997">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:371px;">Acetyl-&#946;-methylcholine chloride&#160;</td>
			<td style="width:287px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:173px;">A-2251</td>
			<td style="width:167px;">Methacholine</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:371px;">Phosphate buffered saline</td>
			<td style="width:287px;">Multicell</td>
			<td style="width:173px;">311-506-CL</td>
			<td>PBS 10X</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:371px;">House dust mite extract</td>
			<td style="width:287px;">GREER</td>
			<td style="width:173px;">290902</td>
			<td>HDM&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:371px;">DCP complete system</td>
			<td style="width:287px;">&#160;SCIREQ Inc. /emka TECHNOLOGIES</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:371px;">iox software</td>
			<td style="width:287px;">&#160;SCIREQ Inc. /emka TECHNOLOGIES</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:371px;">Aerogen Aeroneb nebulizer</td>
			<td style="width:287px;">&#160;SCIREQ Inc. /emka TECHNOLOGIES</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:371px;">flexiVent FX complete system</td>
			<td style="width:287px;">&#160;SCIREQ Inc. /emka TECHNOLOGIES</td>
			<td style="width:173px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

assessment of respiratory function in conscious mice by double-chamber plethysmography

Air volumen forandringer skabt af en bevidst vejrtrækning spontant inden for en krop boks er på grundlag af plethysmography, en teknik, der anvendes til ikke-invasivt vurdere nogle funktioner af den respiratoriske funktion hos mennesker og forsøgsdyr. Denne artikel fokuserer på anvendelse af dobbelt-kammer plethysmography (DCP) i små dyr. Det indeholder baggrundsoplysninger om metoden samt en detaljeret, trinvis fremgangsmåde med succes vurdere respiratoriske funktion i bevidst, spontant vejrtrækning dyr i en ikke-invasiv måde. DCP kan bruges til at overvåge den respiratoriske funktion af flere dyr i parallel samt identificere forandringer som følge af aerosolmaterialer stoffer over en valgte tidsperiode og gentagne måde. Forsøg på kontrol og allergisk mus anvendes heri til at påvise nytten af teknikken, forklare de tilknyttede resultat parametre, samt for at diskutere de dermed forbundne fordele og mangler. Samlet set giver DCP gyldig og teoretisk set forsvarligt udlæsninger, der kan have tillid til at evaluere den respiratoriske funktion bevidst små dyr både ved baseline og efter udfordringer med aerosolmaterialer stoffer.

Watch this Scientific Journal Video about Assessment of Respiratory Function in Conscious Mice by Double-chamber Plethysmography at JoVE.com 

Assessment of Respiratory Function in Conscious Mice by Double-chamber Plethysmography (Video) | JoVE 

Formålet med denne artikel er at give en detaljeret beskrivelse af de anbefalede procedurer til at evaluere respiratoriske funktion i bevidst mus ved dobbelt-kammer plethysmography.

Vurdering af respiratoriske funktion i bevidst mus af dobbelt-kammer Plethysmography

Air volume changes created by a conscious subject breathing spontaneously within a body box are at the basis of plethysmography, a technique used to ...

Research

JoVE Journal

Medicine

Assessment of Respiratory Function in Conscious Mice by Double-chamber Plethysmography

Hyperinsulinemic-euglycemic Clamps in Conscious, Unrestrained Mice

Hyperinsulinemic-euglycemic Clamps in Conscious, Unrestrained Mice (Video) | JoVE 

Hyperinsulinemic-euglycemic Klemmer i bevidste, uhæmmet Mus

Type 2 diabetes is characterized by a defect in insulin action. The hyperinsulinemic-euglycemic clamp, or insulin clamp, is widely considered the "gold ...

Evaluation of Respiratory Muscle Activation Using Respiratory Motor Control Assessment (RMCA) in Individuals with Chronic Spinal Cord Injury

Evaluation of Respiratory Muscle Activation Using Respiratory Motor Control Assessment (RMCA) in Individuals with Chronic Spinal Cord Injury (Video) | JoVE 

Evaluering af Respiratory Muscle Activation Brug Respiratory Motor Control Assessment (RMCA) hos personer med kronisk Rygmarvsskader

During breathing, activation of respiratory muscles is coordinated by integrated input from the brain, brainstem, and spinal cord. When this coordination ...

Assessment of Right Ventricular Structure and Function in Mouse Model of Pulmonary Artery Constriction by Transthoracic Echocardiography

Assessment of Right Ventricular Structure and Function in Mouse Model of Pulmonary Artery Constriction by Transthoracic Echocardiography (Video) | JoVE 

Vurdering af Højre ventrikels struktur og funktion i musemodel med lungepulsåren Konstriktion af Transtorakal Ekkokardiografi

Emerging clinical data support the notion that RV dysfunction is critical to the pathogenesis of cardiovascular disease and heart failure1-3. Moreover, ...

Diagnostic Ultrasound Imaging of Mouse Diaphragm Function

Diagnostic Ultrasound Imaging of Mouse Diaphragm Function (Video) | JoVE 

Diagnostisk Ultralydbilleddannelse of Mouse Membran Funktion

Function analysis of rodent respiratory skeletal muscles, particularly the diaphragm, is commonly performed by isolating muscle strips using invasive ...

Automated Measurement of Pulmonary Emphysema and Small Airway Remodeling in Cigarette Smoke-exposed Mice

Automated Measurement of Pulmonary Emphysema and Small Airway Remodeling in Cigarette Smoke-exposed Mice (Video) | JoVE 

Automatiseret Måling af lungeemfysem og Small Airway Remodeling i cigaretrøg-eksponerede mus

COPD is projected to be the third most common cause of mortality world-wide by 2020(1).  Animal models of COPD are used to identify molecules that ...

Transcutaneous Assessment of Renal Function in Conscious Rodents

Transcutaneous Assessment of Renal Function in Conscious Rodents (Video) | JoVE 

Transkutan vurdering af nyrefunktionen i bevidste Gnavere

Glomerular filtration rate (GFR) is the gold standard to assess overall kidney function. However, traditional methods to evaluate GFR are cumbersome and ...

Generation of a Chronic Obstructive Pulmonary Disease Model in Mice by Repeated Ozone Exposure

Generation of a Chronic Obstructive Pulmonary Disease Model in Mice by Repeated Ozone Exposure (Video) | JoVE 

Generation af en kronisk obstruktiv lungesygdom Model i mus ved gentagne ozon eksponering

Chronic obstructive pulmonary disease (COPD) is characterized by persistent airflow limitation and lung parenchymal destruction. It has a very high ...

Combining Volumetric Capnography And Barometric Plethysmography To Measure The Lung Structure-function Relationship

Combining Volumetric Capnography And Barometric Plethysmography To Measure The Lung Structure-function Relationship (Video) | JoVE 

Kombinere volumetriske Capnography og barometer Plethysmography for at måle lunge struktur-funktion relationer

Tools to measure lung and airways volume are critical for pulmonary researchers interested in evaluating the impact of disease or novel therapies on the ...

Non-invasive Assessment of Dorsiflexor Muscle Function in Mice

Non-invasive Assessment of Dorsiflexor Muscle Function in Mice (Video) | JoVE 

Non-invasiv vurdering af Dorsiflexor muskelfunktion i mus

Assessment of skeletal muscle contractile function is an important measurement for both clinical and research purposes. Numerous conditions can negatively ...

A Computerized Functional Skills Assessment and Training Program Targeting Technology Based Everyday Functional Skills

A Computerized Functional Skills Assessment and Training Program Targeting Technology Based Everyday Functional Skills (Video) | JoVE 

En edb funktionel skills assessment og uddannelse Program Målretning Teknologi Baseret Everyday funktionelle færdigheder

Today, many functional skills are technology-based, so development of a technology-based training program has broad importance. Here we present a ...