Name: isolation of retinal arterioles for ex vivo cell physiology studies
Uploaded: 2018-07-14T15:00:00
Duration: 12 min 42 s
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Desarrollo de los protocolos descritos en este trabajo fue apoyado por subvenciones de los organismos de financiamientos siguientes: BBSRC (BB/I026359/1), lucha para la vista (1429 y 1822), la Fundación de investigación de Diabetes Juvenil (2-2003-525), Wellcome Trust (074648/Z/04), British Heart Foundation (PG/11/94/29169), HSC R & D División (STL/4748/13) y MRC (MC_PC_15026).

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	<li>Kohner, E. M., Patel, V., Rassam, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Role+of+blood+flow+and+impaired+autoregulation+in+the+pathogenesis+of+diabetic+retinopathy.">Role of blood flow and impaired autoregulation in the pathogenesis of diabetic retinopathy.</a> Diabetes. 44, 603-607 (1995).</li><li>Hafez, A. S., Bizzarro, R. L., Lesk, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evaluation+of+optic+nerve+head+and+peripapillary+retinal+blood+flow+in+glaucoma+patients,+ocular+hypertensives,+and+normal+subjects.">Evaluation of optic nerve head and peripapillary retinal blood flow in glaucoma patients, ocular hypertensives, and normal subjects.</a> American Journal of Ophthalmology. 136, 1022-1031 (2003).</li><li>Curtis, T. M., Gardiner, T. A., Stitt, A. 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H., Stefansson, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Regulation+of+retinal+blood+flow+in+health+and+disease.">Regulation of retinal blood flow in health and disease.</a> Progress in Retinal and Eye Research. 27 (3), 284-330 (2008).</li><li>Hughes, S., Chan-Ling, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Characterization+of+smooth+muscle+cell+and+pericyte+differentiation+in+the+rat+retina+in+vivo.">Characterization of smooth muscle cell and pericyte differentiation in the rat retina in vivo.</a> Investigative Ophthalmology &amp; Visual Science. 45 (8), 2795-2806 (2004).</li><li>Shepro, D., Morel, N. 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K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=TRPV2+Channels+Contribute+to+Stretch-Activated+Cation+Currents+and+Myogenic+Constriction+in+Retinal+Arterioles.">TRPV2 Channels Contribute to Stretch-Activated Cation Currents and Myogenic Constriction in Retinal Arterioles.</a> Investigative Ophthalmology &amp; Visual Science. 57 (13), 5637-5647 (2016).</li><li>Guidoboni, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intraocular+Pressure,+Blood+Pressure,+and+Retinal+Blood+Flow+Autoregulation:+A+Mathematical+Model+to+Clarify+Their+Relationship+and+Clinical+Relevance.">Intraocular Pressure, Blood Pressure, and Retinal Blood Flow Autoregulation: A Mathematical Model to Clarify Their Relationship and Clinical Relevance.</a> Investigative Ophthalmology &amp; Visual Science. 55 (7), 4105-4118 (2014).</li><li>Scholfield, C. 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Dr. Joanna Kur es ahora un empleado de Medtronic (ciudades gemelas, Minnesota, USA), su actual trabajo no entra en conflicto con la presentada aquí.

Los protocolos descritos anteriormente requieren práctica pero deben ser con un mínimo de resolución de problemas. En un día normal obtener arteriolas utilizables de 6-8 desde el aislamiento y lograr experimentos exitosos de 3-4. Si se encuentran problemas, sin embargo, hay algunos pasos que pueden tomarse para ayudar a mejorar las tasas de éxito. En ocasiones hemos encontrado, especialmente en ratas jóvenes (< 8 semanas), que el rendimiento de las arteriolas puede ser bajo. Para evitar este problema, sugerimos que el tejido retiniano (10-30 s a 500 x g) entre cada uno de la trituración de la centrifugación los pasos en pasos 1.12-1.14. Esto a menudo ayuda a mejorar el rendimiento de los barcos pero también aumentará la cantidad de restos de células dentro de la preparación.
Cuando canular vasos estudios miografía de presión es importante comprobar las arteriolas cuidadosamente para cualquier ramas laterales que pueden haber sido troceados cerca del sitio de la bifurcación. Esto representa una causa frecuente de fugas y pérdidas de presión durante la experimentación. El principal problema que puede surgir con los [Ca2 +] protocolos es el nivel de carga de tinte. Carga de tinte pobre conduce a proporciones bajas de señal a ruido, mientras se sobrecarga el resultado en la interrupción de la normal homeostasis de Ca2 + . Para reducir la probabilidad de que cualquiera de estas cuestiones, puede extraerse una pequeña alícuota de homogeneizado de retina y vasos aislados controlar periódicamente durante el protocolo de carga. Cuando la empresa experimentos de patch-clamp, la tasa de éxito de formación gigaseal es bien depende en gran medida de cómo la lámina basal ha sido digerida. Cuando inicialmente prueba este protocolo o utilizando nuevos lotes de enzimas puede ser necesario ajustar la concentración/duración de la digestión de la enzima. Supervisar cuidadosamente la separación de las capas endoteliales y músculo liso garantizará suficiente digestión quitar bastante basal laminal para acceder. También es necesario evitar la digestión excesiva, que puede manifestarse como el buque comienza a constrict monitoreo cuidadoso. Si esto ocurre, las células musculares lisas son a menudo demasiado frágiles para la grabación de patch clamp. Aplicación de enzimas, es importante incluir DNasa I para asegurar el retiro de cadenas de ADN liberados de las células dañadas durante el proceso de aislamiento. Fragmentos de ADN son pegajosos y causar el fórceps para adherirse a la arteriola durante las etapas finales del proceso de limpieza (paso 4.4), a menudo dando por resultado pérdida del buque. Limpieza de los vasos es técnicamente difícil y se realiza mejor a gran aumento (20 X) con movimientos suaves de barrido de pinzas cerradas del diámetro más fino posible punta. Entre barridos, limpie la pinza de rodillo del laboratorio.
Como se destacó antes, una motivación clave en el desarrollo de los protocolos descritos en este manuscrito era entender mejor por qué el flujo sanguíneo se interrumpe durante enfermedades vasculares de la retina. La mayor parte de nuestro trabajo hasta la fecha se ha centrado en la enfermedad de ojo diabética28,33. Las arteriolas pueden ser aisladas de las retinas de modelos experimentales de roedores de la diabetes mediante los métodos descritos en la sección 1. Cuando experimentando en arteriolas retinianas aisladas de animales diabéticos, es importante intentar replicar estrechamente las condiciones hiperglucémicos por barcos en vivo. Por esta razón, normalmente sería elevar los niveles D glucosa en nuestras soluciones experimentales a 25 mM y aislamiento. Engrosamiento de las membranas del sótano vasculares es un fenómeno bien reconocido en los vasos retinianos en diabetes34,35. Tratándose de animales con diabetes prolongada (duración de la enfermedad de > 1 meses), las concentraciones de la enzima mayor o tiempos de digestión a menudo se necesitan para permitir la aplicación de métodos de grabación de patch-clamp.
Una importante limitación del uso de ex vivo aislados arteriolas retinianas a estudiar fisiología vascular retiniana y Fisiopatología es la pérdida de los neuropilos de retina circundante. Aunque la eliminación de las células neuronales y gliales retinianas permite fácil acceso a las células del músculo liso vascular retiniano para estudios de fisiología celular, la respuesta de los vasos a mediadores vasoactivos puede cambiar dramáticamente en la ausencia y presencia de retina tejido. Las acciones de la adenosina tri-fosfato (ATP), por ejemplo, proporcionan una buena ilustración de este punto. En aislados arteriolas retinianas, además de ATP los disparadores de la rata una robusta constricción de los vasos36, mientras que en la presencia de un neuropilos intacto, los vasos se dilatan37. Por lo tanto, siempre que sea posible, generalmente tratamos de validar los resultados claves de los preparativos de la arteriola aislados utilizando ex vivo retinal todo-montajes y mediciones en vivo de vaso diámetro y sangre flujo16,37 . De la nota, nuevos métodos han surgido recientemente para el estudio de las pequeñas arteriolas y capilares en toda perfundidos porcina retinas ex vivo38,39. Estas preparaciones suelen mejorar grandemente nuestra comprensión de cómo los neuropilos retina regula tono arteriolar y capilar retiniano y cómo cambios en la hemodinámica retiniana modulan la actividad neuronal en la retina.
Aunque los procedimientos descritos en este documento se centran en el uso de arteriolas retinianas aislado de rata para fisiología comprensión de la célula del músculo liso arteriolar, actualmente estamos desarrollando protocolos para permitir también el estudio de la función endotelial de la célula en estos vasos. En trabajos previos, hemos tenido éxito en la modificación de la digestión enzimática de segmentos arteriolares retinianos para producir tubos de células endoteliales viables que son susceptibles de Ca2 + imagen y patchclamp estudios de grabación. Canulación de las arteriolas aisladas en ambos extremos, permitiendo intramural entrega de drogas, en el futuro podría también activar dependiente del endotelio respuestas vasodilatadoras investigarse en estos vasos.

Entender cómo se controla el flujo sanguíneo en la retina es un objetivo importante, ya que el flujo de sangre anormal se ha implicado en la patogenia de una gran variedad de avistar-que amenaza enfermedades de la retina1,2,3, 4. La circulación retiniana, que provee las células gliales y neuronas retinianas internas, tiene un arreglo de la arteria extremo, con toda la sangre de las arterias retinianas y arteriolas pasando por los capilares a las vénulas retinianas y finalmente las venas5. Flujo sanguíneo en la retina está regulado por el tono de las arterias retinianas y arteriolas así como la actividad contráctil del pericitos situado en las paredes de los capilares de la retina y vénulas post capilares6,7, 8. el control del tono vascular retiniano es complejo y es modulado por una variedad de entradas desde el sistema circulatorio y el tejido retiniano circundante, incluyendo gasometría arterial, circulación de moléculas y hormonas, y sustancias vasoactivas liberados de la retina vascular endotelio y macroglía9,10,11. Las arteriolas retinianas son las pequeñas ramas arteriales de la retina y se componen de una sola capa de células musculares lisas vasculares y un revestimiento interior de longitudinalmente dispuestas las células endoteliales12,13, 14. estos vasos forman el sitio web principal de la resistencia vascular en la circulación retiniana y por lo tanto juegan un papel importante en el control local del flujo sanguíneo retiniano. Arteriolas retinianas regulan el flujo sanguíneo capilar en la retina por dilatación o constricción su diámetro luminal, mediada por cambios en la contractilidad del músculo liso vascular10,15,16. Comprensión de los mecanismos moleculares a través de que retina las arteriolas regulan la perfusión retiniana por lo tanto requiere preparaciones donde las células del músculo liso arteriolar pueden acceder y estudiadas en condiciones como a fisiológico como sea posible.
Ex vivo preparaciones de vasos sanguíneos retinianos aislados proporcionan acceso a las células de músculo liso vascular, mientras que sigue manteniendo su funcionalidad y su interconexión con el endotelio subyacente. Mayoría de los estudios hasta la fecha usando los recipientes aislados se ha centrado en bovinos o porcinos arteriales vasos (60-150 μm). Estas pueden montarse en alambre comercialmente disponible o sistemas de presión de la laringe para permitir interrogatorios farmacológica del músculo liso vascular células mecanismos contráctiles17,18. Estas preparaciones han contribuido enormemente a nuestro conocimiento de la fisiología vascular retiniana en condiciones normales. Pocos estudios han utilizado arteriolas retinianas aisladas de animales de laboratorio pequeños como su diámetro más pequeño (~ 8-45 μm) impide su uso en sistemas convencionales de miografía19,20,21,22. Una ventaja importante, sin embargo, utilizando embarcaciones de animales de laboratorio pequeños es la amplia disponibilidad de modelos de enfermedad retiniana, transgénicos y genéticamente modificados. Animales de laboratorio pequeños también son más susceptibles para estudios de intervención en vivo .
Aquí describimos protocolos sencillos para aislar y canular arteriolas retinianas de ratas para los experimentos miografía de presión. CA2 + proyección de imagen y electrofisiología protocolos utilizando estas embarcaciones también se detallan. Estos pueden proporcionar otras penetraciones en la regulación de la contractilidad del músculo liso vascular y flujo sanguíneo en la retina.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Beakers</td>
			<td>Fisherbrand</td>
			<td>15409083</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Curved Scissors</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>50-109-3542</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Disposable plastic pipette/ transfer</td>
			<td>Sarstedt</td>
			<td>86.1174</td>
			<td>6mL is best but other sizes are acceptable; remove tip to widen aperture</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dissecting microscope</td>
			<td>Brunel Microscopes LTD</td>
			<td></td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Forceps</td>
			<td>World Precision Instruments</td>
			<td>Dumont #5 14095</td>
			<td>Any equivalent fine forceps</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pasteur pipette</td>
			<td>Fisherbrand</td>
			<td>11546963</td>
			<td>Fire polished to reduce friction but not enough to narrow the tip</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Petri dish</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>P7741</td>
			<td>Or any equilavent 10cm product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pipette teat</td>
			<td>Fisherbrand</td>
			<td>12426180</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Purified water supply</td>
			<td>Merek</td>
			<td>Milli-Q Integral Water Purification System</td>
			<td>Or any equilavent system</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Round bottomed test tube</td>
			<td>Fisherbrand</td>
			<td>14-958-10 B</td>
			<td>5 mL; any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Seratted forceps</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>17-467-230</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Single edge blades</td>
			<td>Agar Scientific</td>
			<td>T585</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sylgard</td>
			<td>Dow Corning</td>
			<td>184</td>
			<td>Or any pliable surface&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Testtube rack</td>
			<td>Fisherbrand Derlin</td>
			<td>10257963</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pressure myography</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3-axis mechanical manipulator</td>
			<td>Scientifica</td>
			<td>LBM-7&#160;</td>
			<td>x2 (or any equilavent product)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3-way taps</td>
			<td>Cole-Parmer</td>
			<td>UY-30600-02</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Air table</td>
			<td>Technical Manufacturing Corporation&#160;</td>
			<td>Clean Bench</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Analysis software&#160;</td>
			<td>Image J</td>
			<td>https://downloads.imagej.net/fiji/</td>
			<td>Free imaging software</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Analysis plugin</td>
			<td>Myotraker&#160;</td>
			<td>https://doi.org/10.1371/journal.pone.0091791.s002</td>
			<td>Custom plugin for imageJ Freely available for download</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cannulation pipette glass</td>
			<td>World Percision instruments</td>
			<td>TW150F-4</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Computer</td>
			<td>Dell</td>
			<td>Optiplex 7010</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Digital Thermometer</td>
			<td>RS</td>
			<td>206-3722</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fluo-4-AM</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>F14201</td>
			<td>Make 1 mM stock in DMSO</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Forceps</td>
			<td>World Precision Instruments</td>
			<td>Dumont #7 14097</td>
			<td>Any equivalent fine forceps</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fura-2-AM</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>F1221</td>
			<td>Make 1 mM stock in DMSO</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glass bottomed recording chamber</td>
			<td>Warner Instruments</td>
			<td>64-0759</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Helper pipette glass</td>
			<td>World Percision instruments</td>
			<td>IB150F-3</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>In-line heater</td>
			<td>Custom made</td>
			<td></td>
			<td>Commerical equilavent SH-27B Solution In-Line Heater from Harvard Apparatus</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Inverted microscope</td>
			<td>Nikon</td>
			<td>Eclypse TE 300</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Manometer</td>
			<td>Riester</td>
			<td>LF1459</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microelectrode puller</td>
			<td>Sutter instruments</td>
			<td>P97</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microforge +&#160; Olympus CX 31 microscope</td>
			<td>Glassworks</td>
			<td>Fine Point F-550</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micromanipulator</td>
			<td>Sutter instruments</td>
			<td>MP-285</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Multi-channel delivery manifold&#160;</td>
			<td>Automate Scientific</td>
			<td>Perfusion Pencil</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pipette filler&#160;</td>
			<td>BD Plastipak</td>
			<td>1mL</td>
			<td>Syringe heated and pulled to internal diameter of pipette</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pipette holder</td>
			<td>Molecular Devices</td>
			<td>1-HL-U</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Suction pump</td>
			<td>Interpet</td>
			<td>AP1</td>
			<td>Converted aeration pump by reversing bellows</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe</td>
			<td>BD Plastipak</td>
			<td>20mL Luer-lok</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tungsten wire</td>
			<td>Advent</td>
			<td>W558818</td>
			<td>75&#956;m diameter</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tygon Tubing</td>
			<td>VWR</td>
			<td>miscellaneous sizes</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>USB camera</td>
			<td>&#160;Logitech&#160;</td>
			<td>HD Pro Webcam C920</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Video capture software</td>
			<td>Hypercam</td>
			<td>version 2.28.01</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Water bath</td>
			<td>Grant</td>
			<td>Sub Aqua 12 Plus</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>x20 lens</td>
			<td>Nikon</td>
			<td>20x/0.40 WD 3.8, &#8734;/0.17</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>x4 lens</td>
			<td>Nikon</td>
			<td>4x/0.10, WD 30, &#8734;/-</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Y-connectors</td>
			<td>World Percision Instruments</td>
			<td>14012</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Patch clamping</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3-way taps</td>
			<td>Cole-Parmer</td>
			<td>UY-30600-02</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3-axis mechanical manipulator</td>
			<td>Scientifica</td>
			<td>LBM-7&#160;</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Air table</td>
			<td>Technical Manufacturing Corporation&#160;</td>
			<td>Clean Bench</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Amphotericin B</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>A2411</td>
			<td>3 mg disolved daily in 50 &#956;L of DMSO (sonicate to dissolve)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Amplifier</td>
			<td>Molecular Devices</td>
			<td>Axopatch 200a</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Analogue digital converter</td>
			<td>Axon</td>
			<td>Digidata 1440A</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Collagenase Type 1A</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>C9891&#160;</td>
			<td>0.1mg/mL in LCH</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Computer</td>
			<td>Dell</td>
			<td>Optiplex 7010</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Digital Thermometer</td>
			<td>RS</td>
			<td>206-3722</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DNAse I</td>
			<td>Millipore</td>
			<td>260913</td>
			<td>Working stock 1 MU mL-1 (10 MU diluted in 10 mL LCH)&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Faraday cage</td>
			<td>Custom made</td>
			<td></td>
			<td>Any equilavent commerical product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fine forceps</td>
			<td>Dumont</td>
			<td>No. 7</td>
			<td>Any superfine forcep</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glass bottomed recording chamber</td>
			<td>Warner Instruments</td>
			<td>64-0759</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Headstage</td>
			<td>Molecular Devices</td>
			<td>CV203BU</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>In-line heater</td>
			<td>Custom made</td>
			<td></td>
			<td>Commerical equilavent SH-27B Solution In-Line Heater from Harvard Apparatus</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Inverted microscope</td>
			<td>Nikon</td>
			<td>Eclypse TE 300</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microelectrode puller</td>
			<td>Sutter instruments</td>
			<td>P97</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microforge +&#160; Olympus CX 31 microscope</td>
			<td>Glassworks</td>
			<td>Fine Point F-550</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micromanipulator</td>
			<td>Sutter instruments</td>
			<td>MP-285</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Multi-channel delivery manifold&#160;</td>
			<td>Automate Scientific</td>
			<td>Perfusion Pencil</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Patching software</td>
			<td>Molecular Devices</td>
			<td>Pclamp v10.2</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pipette filler&#160;</td>
			<td>BD Plastipak</td>
			<td>1mL</td>
			<td>Syringe heated and pulled to internal diameter of pipette</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pipette holder</td>
			<td>Molecular Devices</td>
			<td>1-HL-U</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Protease Type XIV</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>P5147&#160;</td>
			<td>0.01mg/mL in LCH</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Single channel pipette glass</td>
			<td>World Percision instruments</td>
			<td>IB150F-3</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Suction pump</td>
			<td>Interpet</td>
			<td>AP1</td>
			<td>Converted aeration pump by reversing bellows</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe</td>
			<td>BD Plastipak</td>
			<td>20mL Luer-lok</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tungsten wire</td>
			<td>Advent</td>
			<td>W557418</td>
			<td>50&#956;m diameter</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tygon Tubing</td>
			<td>VWR</td>
			<td>miscellaneous sizes</td>
			<td>Any equilavent product to fit</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>USB camera</td>
			<td>&#160;Logitech&#160;</td>
			<td>HD Pro Webcam C920</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Water bath</td>
			<td>Grant</td>
			<td>Sub Aqua 12 Plus</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Whole cell pipette glass</td>
			<td>Warner Instruments</td>
			<td>GC150TF-7.5</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>x20 lens</td>
			<td>Nikon</td>
			<td>20x/0.40 WD 3.8, &#8734;/0.17</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>x4 lens</td>
			<td>Nikon</td>
			<td>4x/0.10, WD 30, &#8734;/-</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>x40 lens</td>
			<td>Nikon</td>
			<td>40x/0.55, WD 2.1, &#8734;/1.2</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Y-connectors</td>
			<td>World Percision Instruments</td>
			<td>14012</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ca2+ imaging</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3-way taps</td>
			<td>Cole-Parmer</td>
			<td>UY-30600-02</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3-axis mechanical manipulator</td>
			<td>Scientifica</td>
			<td>LBM-7&#160;</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Acquisition software&#160;</td>
			<td>Cairn Research Ltd.</td>
			<td>Acquisition Engine V1.1.5</td>
			<td>Or any equilavent product; microfluorimetry</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Air table</td>
			<td>Technical Manufacturing Corporation&#160;</td>
			<td>Clean Bench</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Analysis software for confocal imaging</td>
			<td>Image J</td>
			<td>https://downloads.imagej.net/fiji/</td>
			<td>Free imaging software</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Computer</td>
			<td>Dell</td>
			<td>Optiplex 7010</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Confocal microscope</td>
			<td>Leica Geosystems</td>
			<td>SP5&#160;</td>
			<td>Or any equilavent product; confocal</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Digital Thermometer</td>
			<td>RS</td>
			<td>206-3722</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fine forceps</td>
			<td>Dumont</td>
			<td>No. 7</td>
			<td>Any superfine forcep</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glass bottomed recording chamber</td>
			<td>Warner Instruments</td>
			<td>64-0759</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>In-line heater</td>
			<td>Custom made</td>
			<td></td>
			<td>Commerical equilavent SH-27B Solution In-Line Heater from Harvard Apparatus</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Inverted microscope</td>
			<td>Nikon</td>
			<td>Eclipse TE2000</td>
			<td>Or any equilavent product; microfluorimetry</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Monochromator&#160;</td>
			<td>Cairn Research Ltd.</td>
			<td>Optoscan</td>
			<td>Or any equilavent product; microfluorimetry</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Multi-channel delivery manifold&#160;</td>
			<td>Automate Scientific</td>
			<td>Perfusion Pencil</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pipette filler&#160;</td>
			<td>BD Plastipak</td>
			<td>1mL</td>
			<td>Syringe heated and pulled to internal diameter of pipette</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Software for confocal microscope</td>
			<td>Leica Geosystems</td>
			<td>LAS-AF version 3.3.</td>
			<td>Or any equilavent product; confocal</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Suction pump</td>
			<td>Interpet</td>
			<td>AP1</td>
			<td>Converted aeration pump by reversing bellows</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe</td>
			<td>BD Plastipak</td>
			<td>20mL Luer-lok</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tungsten wire</td>
			<td>Advent</td>
			<td>W557418</td>
			<td>50&#956;m diameter</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tygon Tubing</td>
			<td>VWR</td>
			<td>miscellaneous sizes</td>
			<td>Any equilavent product to fit</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Water bath</td>
			<td>Grant</td>
			<td>Sub Aqua 12 Plus</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>x100 lens</td>
			<td>Nikon</td>
			<td>x100 N.A. 1.3 oil</td>
			<td>Or any equilavent product; microfluorimetry</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>x20 lens</td>
			<td>Nikon</td>
			<td>20x/0.40 WD 3.8, &#8734;/0.17</td>
			<td>Or any equilavent product; microfluorimetry</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>x20 lens</td>
			<td>Leica Geosystems</td>
			<td>HCX PL FLUOTAR, 20x/0.50, &#8734;/0.17/D</td>
			<td>Or any equilavent product; confocal</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>x4 lens</td>
			<td>Nikon</td>
			<td>4x/0.10, WD 30, &#8734;/-</td>
			<td>Or any equilavent product; microfluorimetry</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>x4 lens</td>
			<td>Leica Geosystems</td>
			<td>C PLAN, 4x/0.10, &#8734;/-/&#10013;</td>
			<td>Or any equilavent product; confocal</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>x63 lens</td>
			<td>Leica Geosystems</td>
			<td>HCX PL APO, 63x/1.40 - 0.60 OIL CS &#8734;/0.17/E</td>
			<td>Or any equilavent product; confocal</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Y-connectors</td>
			<td>World Percision Instruments</td>
			<td>14012</td>
			<td>Or any equilavent product</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pipettes</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Specifications and settings for fabrication of pipettes for experimentation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Helper pipette</td>
			<td>World Percision instruments</td>
			<td>IB150F-3</td>
			<td>Inner diameter: 0.86 mm 
			Ramp: 261 
			Pressure: 300 
			Heat: 280 
			Pull : 0 
			Velocity: 56 
			Time: 250 
			No of cycles: 4 
			Tip diameter: 0.5-2 &#956;m 
			Polishing: yes 
			Final Resistance: &#62;10 M&#937;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cannulation pipette</td>
			<td>World Percision instruments</td>
			<td>TW150F-4</td>
			<td>Inner diameter: 1.17 mm 
			Ramp: 290 
			Pressure: 300 
			Heat: 280 
			Pull : 0 
			Velocity: 58 
			Time: 150 
			No of cycles: 4 
			Tip diameter: 3-10 &#956;m 
			Polishing: no 
			Final Resistance: &#60;1 M&#937;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>On-cell patching</td>
			<td>World Percision instruments</td>
			<td>IB150F-3</td>
			<td>Inner diameter: 0.86 mm 
			Ramp: 261 
			Pressure: 300 
			Heat: 280 
			Pull : 0 
			Velocity: 56 
			Time: 250 
			No of cycles: 4 
			Tip diameter: 0.5-2 &#956;m 
			Polishing: yes 
			Final Resistance: &#62;5 M&#937;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Whole-cell patching</td>
			<td>Warner Instruments</td>
			<td>GC150TF-7.5</td>
			<td>Inner diameter: 1.17 mm 
			Ramp: 296 
			Pressure: 200 
			Heat: 287 
			Pull : 0 
			Velocity: 50 
			Time: 250 
			No of cycles: 4 
			Tip diameter: 2-3 &#956;m 
			Polishing: helpful but not necessary 
			Final Resistance: 1-2 M&#937;</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

isolation of retinal arterioles for ex vivo cell physiology studies

La retina es un tejido metabólicamente muy activo que requiere una fuente substancial de la sangre. La circulación retiniana compatible con la retina interna, mientras que los vasos coroides fuente de los fotorreceptores. Alteraciones en la perfusión retiniana contribuyan a numerosas enfermedades avistar-que amenaza, incluyendo retinopatía diabética, glaucoma y retina rama oclusiones de la vena. Comprender los mecanismos moleculares implicados en el control del flujo de sangre a través de la retina y cómo estos se alteran en la enfermedad ocular podría conducir a la identificación de nuevas dianas para el tratamiento de estas condiciones. Arteriolas retinianas son los vasos de resistencia principal de la retina y por lo tanto, juegan un papel clave en la regulación hemodinámica retiniana a través de cambios en el diámetro luminal. En los últimos años, hemos desarrollado métodos para aislar las arteriolas de la retina de rata que son convenientes para una amplia gama de aplicaciones, incluyendo estudios de fisiología celular. Esta preparación ha comenzado ya a producir nuevos conocimientos sobre cómo el flujo de sangre es controlado en la retina y nos ha permitido identificar algunos de los cambios claves que ocurren durante la enfermedad ocular. En este artículo, describir los métodos para el aislamiento de arteriolas de retina de rata e incluir protocolos para su uso en estudios miografía presión, proyección de imagen de calcio y electrofisiología patch-clamp. Estos buques también son susceptibles para su uso en PCR, western blot y immunohistochemistry basado en los estudios.

Watch this Scientific Journal Video about Isolation of Retinal Arterioles for Ex Vivo Cell Physiology Studies at JoVE.com

Isolation of Retinal Arterioles for Ex Vivo Cell Physiology Studies

Este manuscrito describe un protocolo simple para el aislamiento de las arteriolas de la retina de rata que puede utilizarse en, calcio presión y proyección de imagen de miografía estudios electrofisiológicos.

Aislamiento de arteriolas retinianas por estudios de fisiología celular Ex Vivo

The retina is a highly metabolically active tissue that requires a substantial blood supply. The retinal circulation supports the inner retina, while the ...

Research

JoVE Journal

Biology

Isolation of Retinal Arterioles for Ex Vivo Cell Physiology Studies

Mouse Adrenal Chromaffin Cell Isolation

Ratón cromafín aislamiento de células

Adrenal medullary chromaffin cell culture systems are extremely useful for the study of excitation-secretion coupling in an in vitro setting.  This ...

Investigación

Biología

In utero and ex vivo Electroporation for Gene Expression in Mouse Retinal Ganglion Cells

In utero and ex vivo Electroporation for Gene Expression in Mouse Retinal Ganglion Cells

La electroporación in vivo en el útero y el ex de la expresión génica en células de ratón ganglionares retinianas

The retina and its sole output neuron, the retinal ganglion cell (RGC), comprise an excellent model in which to examine biological questions such as cell ...

In vivo-like Organotypic Murine Retinal Wholemount Culture

In vivo-like Organotypic Murine Retinal Wholemount Culture

En vivo-como organotípicos Cultura murino wholemount retina

Targeted ablations of genes and analysis of animal models is the classical strategy for enrolling specific retinal gene function. However, transgenic, ...

Lentiviral-mediated Knockdown During Ex Vivo Erythropoiesis of Human Hematopoietic Stem Cells

Lentiviral-mediated Knockdown During Ex Vivo Erythropoiesis of Human Hematopoietic Stem Cells

Lentiviral mediada por derribo Durante Ex Vivo Eritropoyesis de las células estaminales hematopoyéticas

Erythropoiesis is a commonly used model system to study cell differentiation. During erythropoiesis, pluripotent adult human hematopoietic stem cells ...

The ex vivo Isolated Skeletal Microvessel Preparation for Investigation of Vascular Reactivity

The ex vivo Isolated Skeletal Microvessel Preparation for Investigation of Vascular Reactivity

La Ex vivo Preparación aislada Microvessel esquelético para la Investigación de la reactividad vascular

The isolated  microvessel preparation is an ex vivo preparation that allows for examination of the different contributions of  factors that control vessel ...

An Ex vivo Culture System to Study Thyroid Development

An Ex vivo Culture System to Study Thyroid Development

Un<em&gt; Ex vivo</em&gt; Sistema de Cultura para estudiar el desarrollo de la tiroides

The thyroid is a bilobated endocrine gland localized at the base of the neck, producing the thyroid hormones T3, T4, and calcitonin. T3 and T4 are ...

Spatiotemporal Mapping of Motility in Ex Vivo Preparations of the Intestines

Spatiotemporal Mapping of Motility in Ex Vivo Preparations of the Intestines

Mapeo espacio-temporal de la motilidad en<em&gt; Ex Vivo</em&gt; Preparaciones de los intestinos

Multiple approaches have been used to record and evaluate gastrointestinal motility including: recording changes in muscle tension, intraluminal pressure, ...

Visualization and Quantification of the Cell-free Layer in Arterioles of the Rat Cremaster Muscle

La visualización y cuantificación de la Capa libre de células en las arteriolas del músculo cremáster Rata

The cell-free layer is defined as the parietal plasma layer in the microvessel flow, which is devoid of red blood cells. The measurement of the in vivo ...

Ex Vivo Method for Assessing the Mouse Reproductive Tract Spontaneous Motility and a MATLAB-based Uterus Motion Tracking Algorithm for Data Analysis

Método Ex Vivo para evaluar la motilidad espontánea del tracto reproductivo de ratón y un algoritmo de seguimiento de movimiento del útero basado en MATLAB para el análisis de datos

Dysmenorrhea, or painful cramping, is the most common symptom associated with menses in females and its severity can hinder women&#39;s everyday lives. ...

Glomerular Outgrowth as an Ex Vivo Assay to Analyze Pathways Involved in Parietal Epithelial Cell Activation

Crecimiento glomerular como ensayo ex vivo para analizar las rutas involucradas en la activación de células epiteliales parietales

Parietal epithelial cell (PEC) activation is one of the key factors involved in the development and progression of glomerulosclerosis. Inhibition of ...