Name: forced salivation as a method to analyze vector competence of mosquitoes
Uploaded: 2018-08-07T13:00:00
Duration: 5 min 3 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Forced Salivation As a Method to Analyze Vector Competence of Mosquitoes at JoVE.com

Мы благодарим Weinert Элла, Мишель Хелмса и Марлис Badusche за отличную техническую помощь, Джессика Börstler для анализа Culex комаров, Норберт Беккер и Бьорн Плускота для предоставления Aedes albopictus яйца и Олли Vapalahti для обеспечение запасов вируса. МЛ было поддержано Лейбница; Предоставьте номер пила-2014-SGN-3.

1. подготовить женщин комаров
<ol><li>Соберите большой клетке комаров с помощью аспиратор (примерно 400 комаров в большой клетке).</li>
	<li>Анестезировать комаров с углекислым газом (CO2), 7 s.</li>
	<li>Сортировать 20 женщины на пластиковом флаконе (Ø 50 мм × 100 мм). Примечание: Если комаров звонок, используйте другой 3 s CO2.
</li>
	<li>Голодать комаров на ночь.</li>
</ol>2. искусственной крови еды
Примечание: Все шаги выполняются в условиях BSL-3.
<ol><li>
Готовить инфекционных крови.
	<ol>
<li>Разбавить запасов вируса с концентрацией 1 x 10-8 металлической пластинкы формируя единиц (ОРП) / мл. Примечание: Запасов концентрация определяется путем выполнения культуры ткани инфекции доза 50 метод (TCID50) и рассчитывается по10,11алгоритм Спирмена и Kärber.</li>
		<li>Mix человеческая кровь (консервация крови) от банка крови истек (не подходит для человека больше, но полезно для комаров) с фруктозой (8% раствор), отфильтровывать технического индикатора бычьим сывороточным (ФБС) и рабочий раствор запасов вируса (истек человеческой крови: фруктоза: ФБС: Рабочий раствор = 5:3:1:1). Примечание: Мы выбрали человеческой крови, потому что это известные природные млекопитающих принимающей ZIKV.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Заморозить 140 мкл крови еды смеси для дальнейшего анализа через TCID50.</li>
	<li>
Выполните искусственного кормления с использованием различных методов кормления, в зависимости от вида:
	<ol>
<li>
Aedes aegypti: используйте мембраны, системы кормления для 30 мин (1 мл на фидер).</li>
		<li>
Culex spp.: обеспечивают инфекционных кровь через палку хлопка на ночь и не согреться крови (300 мкл на флакон).</li>
		<li>
Aedes albopictus: положить две капельки (по 50 мкл) в крови еды смесь в пластиковую пробирку и пусть комаров кормить 2 h. Не согреться крови. Примечание: Комаров будет кормить в первые 15 мин. Время длительного инкубации необходимо из соображений безопасности. Каплями крови дренируются после 2 h, таким образом уменьшается риск заражения во время сортировки кормить комаров.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Анестезировать комаров с CO2 7 s. Примечание: Если комаров звонок, используйте другой 3 s CO2.</li>
	<li>Сортировка и количество полностью наполненный комаров в новый флакон.</li>
	<li>Добавление ватным тампоном, насыщенных с фруктозой (8% раствор) между флакона и вилкой.</li>
	<li>Держите москитов на назначенный температура 18 ° C или 27 ° C, влажность 80% на 14 или 21 дней.</li>
	<li>Кормить комаров с фруктоза насыщенный ватный тампон. Пополнять каждые 72 ч с 1,5 мл фруктозы (8% раствор) на флакон (до 20 комаров, в зависимости от кормления оценить, шаг 2.5).</li>
</ol>3. принудительное слюноотделение Assay на 14 или 21 день
Примечание: Все шаги выполняются в условиях BSL-3.
<ol><li>Семя клеток Vero4 2 x 10 / за хорошо в 96 также пластины с 200 мкл среднего роста (Dulbecco´s изменение орел среднего (DMEM) дополнены с 3% FBS, 100 ед/мл пенициллин, стрептомицин 100 мг/мл, 5 мкг/мл амфотерицин B, 2 мм L-глютамина 1% несущественные аминокислот (NEAA), пируват натрия 1%).</li>
	<li>
Подготовьте устройство слюноотделение:
	<ol>
<li>Место прямоугольной стеклянной пластины (20 × 20 см) на скамейке в угол 30°. Примечание: Это необходимо за счет разрежения в лаборатории безопасности. Если пластина является горизонтальной или вертикальной, будет утечка жидкости.</li>
		<li>Место двухсторонней клейкой лентой на вершине стеклянной пластиной.</li>
		<li>Роль моделирования глины пока он достигает диаметром 0,5 см и приложите его горизонтально 1 см от двухсторонняя клейкая лента.</li>
		<li>Отрежьте первые 0,3 см наконечник наконечник фильтра 10 мкл. Примечание: Рекомендуется подготовить это перед началом эксперимента вне лаборатории биобезопасности.</li>
		<li>Наполните фильтр советы 10 мкл-фосфатный буфер (PBS, рН 7,4).</li>
		<li>Поместите фильтр советы на глина моделирования с кончика к липкой лентой.</li>
		<li>Безопасный советы фильтр с нежным давлением.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Подготовьте комаров:
	<ol>
<li>Анестезировать комаров с CO2.</li>
		<li>Удалите ножки и крылья для иммобилизации комаров.</li>
		<li>Исправьте органов живых комаров на липкой ленте выше кончика фильтра.</li>
		<li>Осторожно поместите Хоботок в кончик фильтра.</li>
		<li>Запустите слюноотделение assay для 30 мин.</li>
		<li>Удалите фильтр советы и утилизируйте глины и ленты.</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. обработка слюны
Примечание: Шаги 4.1 – 4.6.2 выполняются в условиях BSL-3.
<ol><li>Высылать содержимое в реакции пробирки, содержащие 10 мкл PBS.</li>
	<li>Осторожно перемешать и передачи содержимого в скважины подготовленный 96 хорошо пластину, используя один колодец на сэмпл.</li>
	<li>Инкубируйте пластину для 7 дней при 37 ° C с 5% CO2.</li>
	<li>Для проверки ячейки на наличие цитопатического эффекта (CPE) используйте бинокль.</li>
	<li>Если колодец является положительным для CPE, урожай супернатанта, дозирования 140 мкл в реакции трубку для извлечение RNA.</li>
	<li>
Очищайте РНК с помощью РНК добыча комплект.
	<ol>
<li>Mix 140 мкл супернатант с 560 мкл AVL буфера (вирусный литического буфера) и проинкубируйте втечение 10 мин при комнатной температуре.</li>
		<li>560 мкл этанола (96%) и вихревой образца. Примечание: Образцы инактивируются после этого шага и может быть освобожден из лаборатории BSL-3.</li>
		<li>Накапайте 630 мкл образца на столбец и центрифуги с 6000 x g за 1 мин.</li>
		<li>Фильтрат, накапайте оставшиеся 630 мкл на столбце отменить и повторить центрифугирования.</li>
		<li>Вымойте РНК, обязан мембраны колонны, добавив 500 мкл отмывающего буфера 1 колонка и центрифуги на 6000 x g за 1 мин.</li>
		<li>Отменить коллекции трубки и поместить столбец в новой коллекции трубки. Добавьте 500 мкл Отмывающий буфер 2 и центрифуги на 12 500 x g на 3 мин.</li>
		<li>Отказаться от сбора трубки и столбце в 1,5 мл реакции.</li>
		<li>Добавьте 50 мкл буфера и инкубировать в течение 1 мин при комнатной температуре.</li>
		<li>Центрифуга на 6000 x g за 1 мин и затем удалить столбец.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Анализировать образцы для ZIKV РНК через RT-ПЦР.</li>
</ol>5. обработка органов комаров
Примечание: Шаги 5.1 – 5.5 выполняются в условиях BSL-3.
<ol><li>Удаление тела комара и место каждого органа в реакции трубку. Примечание: Это возможно на данный момент паузы эксперимент и хранить образцы-80 ° c.</li>
	<li>Добавьте 500 мкл гомогенизации СМИ (DMEM без каких-либо дополнениями) в реакции трубку.</li>
	<li>Однородный тела с помощью мотора миксер и использовать новый пестик для каждого образца.</li>
	<li>Добавьте 200 мкл огневки в 96-хорошо пластина для очистки. Примечание: Это возможно на данный момент паузы эксперимент и хранить образцы-80 ° c.</li>
	<li>Инактивирует пластину по инкубации 60 мин при 60 ° C.</li>
	<li>Очищайте РНК путем очистки автоматизированных нуклеиновых кислот. Примечание: Это возможно на данный момент паузы эксперимент и хранить образцы-80 ° c.</li>
</ol>6. анализ
<ol><li>Количественного определения вирусных копий РНК с помощью RT-ПЦР. Примечание: Копий РНК были среднем над всеми органами ZIKV-инфицированных комаров и без включения ZIKV-отрицательных комаров.</li>
	<li>Вычислите ИК, определяется как количество ZIKV-инфицированных комаров органов за количество кормить самок.</li>
	<li>Вычислите TR, определяется как количество комаров с ZIKV-позитивных слюны на количество органов ZIKV-инфицированных комаров. Скорость передачи не может быть рассчитан для комбинаций видов температуры с не ZIKV-положительных органами.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Musso, D., Gubler, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Zika+Virus.">Zika Virus.</a> Clinical Microbiology Reviews. (3), 487-524 (2016).</li><li>Epelboin, Y., Talaga, S., Epelboin, L., Dusfour, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Zika+virus:+An+updated+review+of+competent+or+naturally+infected+mosquitoes.">Zika virus: An updated review of competent or naturally infected mosquitoes.</a> PLOS Neglected Tropical Diseases. 11 (11), e0005933 (2017).</li><li>Aliota, M. T., Peinado, S. A., Osorio, J. E., Bartholomay, L. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Culex+pipiens+and+Aedes+triseriatus+Mosquito+Susceptibility+to+Zika+Virus.">Culex pipiens and Aedes triseriatus Mosquito Susceptibility to Zika Virus.</a> Emerging Infectious Diseases. (10), 1857-1859 (2016).</li><li>Turell, M. J., Linthicum, K. J., Patrican, L. A., Davies, F. G., Kairo, A., Bailey, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vector+competence+of+selected+African+mosquito+(Diptera:+Culicidae)+species+for+Rift+Valley+fever+virus.">Vector competence of selected African mosquito (Diptera: Culicidae) species for Rift Valley fever virus.</a> Journal of Medical Entomology. 45 (1), 102-108 (2008).</li><li>Cornel, A. J., Jupp, P. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+three+methods+for+determining+transmission+rates+in+vector+competence+studies+with+Culex+univittatus+and+West+Nile+and+Sindbis+viruses.">Comparison of three methods for determining transmission rates in vector competence studies with Culex univittatus and West Nile and Sindbis viruses.</a> Journal of the American Mosquito Control Association. 5 (1), 70-72 (1989).</li><li>Hurlbut, H. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mosquito+salivation+and+virus+transmission.">Mosquito salivation and virus transmission.</a> The American Journal of Tropical Medicine and Hygiene. 15 (6), 989-993 (1966).</li><li>Anderson, S. L., Richards, S. L., Smartt, C. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+simple+method+for+determining+arbovirus+transmission+in+mosquitoes.">A simple method for determining arbovirus transmission in mosquitoes.</a> Journal of the American Mosquito Control Association. 26 (1), 108-111 (2010).</li><li>Heitmann, A., Jansen, S., L&#252;hken, R., Leggewie, M., Badusche, M., Pluskota, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Experimental+transmission+of+Zika+virus+by+mosquitoes+from+central+Europe.">Experimental transmission of Zika virus by mosquitoes from central Europe.</a> Eurovsurveillance. 22 (2), (2017).</li><li>Hierholzer, J. C., Killington, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Virus Isolation and Quantitation - Virology methods manual. , (1996).</li><li>Horzinek, R. W., Marian, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Kompendium+der+allgemeinen+Virologie.">Kompendium der allgemeinen Virologie.</a> Zentralblatt f&#252;r Veterin&#228;rmedizin R A. 32 (1-10), 480 (2010).</li><li>Richard, V., Paoaafaite, T., Cao-Lormeau, V. -. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vector+Competence+of+French+Polynesian+Aedes+aegypti+and+Aedes+polynesiensis+for+Zika+Virus.">Vector Competence of French Polynesian Aedes aegypti and Aedes polynesiensis for Zika Virus.</a> PLOS Neglected Tropical Diseases. 10 (9), (2016).</li><li>Fortuna, C., Remoli, M. E., Di Luca, M., Severini, F., Toma, L., Benedetti, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Experimental+studies+on+comparison+of+the+vector+competence+of+four+Italian+Culex+pipiens+populations+for+West+Nile+virus.">Experimental studies on comparison of the vector competence of four Italian Culex pipiens populations for West Nile virus.</a> Parasites &amp; Vectors. 8, 463 (2015).</li><li>Weger-Lucarelli, J., R&#252;ckert, C., Chotiwan, N., Nguyen, C., Garcia Luna, S. M., Turell, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vector+Competence+of+American+Mosquitoes+for+Three+Strains+of+Zika+Virus.">Vector Competence of American Mosquitoes for Three Strains of Zika Virus.</a> PLOS Neglected Tropical Diseases. 10 (10), (2016).</li><li>Dubrulle, M., Mousson, L., Moutailler, S., Vazeille, M., Failloux, A. -. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chikungunya+virus+and+Aedes+mosquitoes:+saliva+is+infectious+as+soon+as+two+days+after+oral+infection.">Chikungunya virus and Aedes mosquitoes: saliva is infectious as soon as two days after oral infection.</a> PLOS ONE. 4 (6), e5895 (2009).</li></ol>

Авторы не имеют ничего сообщать.

Ранее было показано, что результаты, полученные с принудительным слюноотделение соответствуют классической повторно подавая эксперименты6. Однако, повторного кормления экспериментов и в наших представленных метода принудительного слюноотделение, невозможно напрямую доказательство слюноотделение активности или контролировать выпуск слюны. Чтобы доказать деятельность слюноотделение, образцы могут быть опробованы для других компонентов, присутствующих в слюне (например., белки, углеводы, и т.д.). Кроме того дополнительные ценообразующие позволит обнаружения вирусных копий РНК. Это, однако, требует расщепления образцов слюны для различных анализов, которые могут ограничить чувствительность в assay клетки культуры в случае очень низкой частиц чисел. В свою очередь это может привести к недооценке скорости определяется передачи.
Для воспроизводимых результатов необходимо обеспечить, чтобы все комары остаться в живых до конца эксперимента. Это контролируется визуально мониторинга активности движения тела комаров. Кроме того принцип использования слюноотделение assay для данного комаров видов испытание должно проводиться путем кормления управления вирусов, которые известны препроводит этот конкретный комаров видов. Наоборот каждый вирус, включены в эксперимент должен испытываться в восприимчивых комаров.
Принудительного слюноотделение анализов имеют много преимуществ. Большое количество комаров может испытываться одновременно на единичная база контролируемых стандартных условиях без конфликта с животными правила9.
Этот метод используется в нескольких лабораториях. Однако точной настройки могут различаться, что может привести к различия в результатах между лабораториями. Одним из важнейших компонентов является капилляр для сбора слюны, которые могут быть сделаны из стекла14 или пластиковые15. В соответствии с положениями высокая безопасность insectary третьего уровня биобезопасности, мы использовали пластиковый фильтр советы вместо стекла капилляров, тем самым уменьшая риск возникновения травм. Кроме того фильтр советы имеют то преимущество, что собранные жидкость легко могут быть переведены с помощью пипетки.
Настройка пробирного принудительного слюноотделение, представленные здесь основан на двух следователей, совместной работы и распределения обязанностей. Демобилизации комаров выполняется одним человеком, в то время как другие одновременно готовит установки принудительного слюноотделение. Это значительно сокращает время обработки и минимизирует риск образца переключение как меняется между демобилизации-на рабочем месте и слюноотделение плита не является необходимым. Кроме того она позволяет размещать комаров на устройстве принудительного слюноотделение сразу же после демобилизации. Это довольно короткий комаров, время обработки имеет важное значение для успешной принудительной слюноотделение. И наконец комаров может контролироваться непосредственно для подвижности на протяжении всего эксперимента.
Assay слюноотделение, представленные здесь используется для получения проницательности в Векторный потенциал видов комаров. Однако чтобы ответить на некоторые конкретные вопросы (например., количество укусов комаров, которые необходимы для заразить позвоночных), животных эксперименты по-прежнему может потребоваться.

В 2015 году, Зика вирус (ZIKV), связанный комарами вирус (mobovirus) семейства Flaviviridae, появились в Колумбии и Бразилии и быстро распространилась по всей Северной и Южной Америки и Карибского бассейна, вызывая эпидемии с заметным количеством Клинические случаи микроцефалия и синдром Гийена-Барре1. Комаров рода Aedes aegypti и Aedes albopictus считаются первичных и вторичных векторов ZIKV2, но также другие виды рода Aedes оказались иметь экспериментальный вектор компетентности3 . В отличие от вида Aedes большинство видов Culex тестирование пока не способны передавать вирус4. Просто неоднозначные результаты3представлены данные для Culex quinquefasciatus . В настоящее время отсутствует информация на комаров вектор компетенции для ZIKV в условиях умеренной температуре (< 20 ° C). Однако эта информация является существенной для оценки риска возможных распространяется на регионы с умеренным климатом, таких как Центральной Европы.
Компетентные вектор для ZIKV имеет возможность приобретать, сохранять, усиливают и наконец передачи вируса. Таким образом тестирование Москито тела или части тела, включая ноги, средняя, руководитель или слюнных желез, для ZIKV не достаточно, чтобы определить вектор компетенции. Он является обязательным для проверки инфекционных вирусных частиц в пределах выпустила слюны. Чтобы оценить компетентность вектор, инфекции (IR, количество ZIKV-инфицированных комаров органов за количество комаров наполненный) и скорость передачи данных (TR, количество комаров с ZIKV-позитивных слюны на количество ZIKV-инфицированных комаров органов), должны быть определены. IRs комаров могут легко анализироваться просто гомогенизации комары, следуют обратной транскриптазы в реальном времени полимеразной цепной реакции (RT-ПЦР) ориентации ZIKV. Кроме того инфекция может быть также характеризуется определения вирусной копии номера за комаров. Напротив анализ скорости передачи зависит от выявления жизнеспособных вирусных частиц в слюне отдельных комаров. Это может достигаться путем кормления инфицированных комаров на восприимчивых принимающей животных, затем анализ виремии в хост-5. Однако этот метод опирается на подходящую модель организмов и является дорогостоящим и ограничен правилами защиты животных. Чтобы избежать использования лабораторных животных для анализа скорости передачи данных и снизить затраты, искусственное повторно систем с использованием крови капли были описаны6. Однако тестирование отдельных масштабе в сочетании с большим числом лиц является сложным и трудоемким. Первое описание пробирного слюноотделение индивидуальных масштабах был опубликован в 1966 году7 и в последние годы, принудительного слюноотделение экспериментов стал методом выбора для оценки компетенции вектор комаров3,8 .
Основываясь на изучение компетентности наших вектор Центральной Европы комары Опубликовано недавно9, мы описываем принудительного слюноотделение, как сообщает Андерсон и др. 8 с некоторыми изменениями. Этот метод позволяет высокую пропускную способность стандартизированных эксперименты в условиях высокой биобезопасности уровня (BSL-3) и включает в себя выявление активных вируса клетки культуры на основе анализов. Эксперименты, описанные здесь включают 856 комаров. Они были заражены искусственной крови еды с ZIKV и впоследствии анализируется на наличие инфекционных вирусных частиц в слюне. Комаров, введены в эксперименты входят две популяции давно лаборатории А.е. aegypti и Culex pipiens pipiens биотипа molestus (Cx. p. molestus), а также поле поймали Culex pipiens pipiens биотипа pipiens (Cx. p. pipiens), Culex torrentium (Cx. torrentium) и два А.е. albopictus населения. За исключением одной из двух групп населения А.е. albopictus , которые собирались в Италии, все комары были собраны в Германии.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>Inject+matic Sleeper</td>
			<td>Inject+matic</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bugdorm-1 Insect Rearing Cage</td>
			<td>BugDorm Store</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Drosophila cultivation tubes</td>
			<td>carl roth</td>
			<td>PK11.2</td>
			<td>plastic vial for mosquitoes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Plug for drosophila cultivation tubes</td>
			<td>carl roth</td>
			<td>PK15.1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Constant climate chamber</td>
			<td>Binder</td>
			<td>KBF-240</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Blood</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>banked human blood, expired, not usable for medical application</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dumont-Pincette Electronic SS</td>
			<td>Dumont</td>
			<td>B40c</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vero cells</td>
			<td>BNITM</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Flash light aspirator</td>
			<td>Bioquip</td>
			<td>2809</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>double-sided adhesive tape</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>no specific provider</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gammex Powder-free gloves with AMT</td>
			<td>Ansell</td>
			<td></td>
			<td>for safety reasons necessary during work with pricks in the BSL3 laboratory</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>RealStar Zika Virus RT-PCR-Kit</td>
			<td>altona diagnostics</td>
			<td>591013</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MagMax Pathogen RNA/DNA Kit</td>
			<td>Thermo fisher scientific</td>
			<td>4462359</td>
			<td>RNA isolation of mosquito bodies</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Qiamp viral RNA Mini Kit</td>
			<td>Qiagen</td>
			<td>52906</td>
			<td>RNA-Isolation of supernatant</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>filter tips (20 &#181;L)</td>
			<td>Sarstedt</td>
			<td>701,116,210</td>
			<td>Cut the first 3 mm of the tip</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>hand motor mixer</td>
			<td>carl roth</td>
			<td>sold out</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>micro pestles for hand motor mixer</td>
			<td>carl roth</td>
			<td>CXH8.1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DMEM</td>
			<td></td>
			<td>P0403550</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L Glutamine Penicilin/Streptomycin</td>
			<td>PAN</td>
			<td>P0819100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Amphotericin B</td>
			<td>PAN</td>
			<td>P06-0110</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fructose</td>
			<td>carl roth</td>
			<td>4981.5</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphate buffered saline</td>
			<td>PAN</td>
			<td>P04-36500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FBS</td>
			<td>PAN</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium Pyruvat</td>
			<td>PAN</td>
			<td>P0443100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MEM NAA</td>
			<td>PAN</td>
			<td>P0832100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hemotek Feeder</td>
			<td>Hemotek</td>
			<td>PS6</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Light Cycler</td>
			<td>Roche</td>
			<td>480 II</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Light Cycler Software</td>
			<td>Roche</td>
			<td>480 SW 1.5.1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Modeling clay</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>no specific provider</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>King Fisher Flex Purification System</td>
			<td>ThermoFisher scientific</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Aedes albopictus</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>eggs were collected in Freiburg, Germany</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Binocular</td>
			<td>MOTIC</td>
			<td>SMZ-168</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Binocular light</td>
			<td>MOTIC</td>
			<td>MLC-150C</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CO2-Incubator</td>
			<td>Thermo scientific</td>
			<td>MIDI 40</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

forced salivation as a method to analyze vector competence of mosquitoes

Вектор компетенция определяется как потенциал видов комаров для передачи комарами вирус (mobovirus) к узлу позвоночных. Жизнеспособные вирусные частицы передаются во время еды крови через слюну инфицированных комаров. Принудительного слюноотделение анализы позволяют определять потенциал вектора на основе единого комаров, избегая использования экспериментов на животных. Этот метод подходит для анализа большое количество комаров в одном эксперименте в течение короткого периода времени. Принудительного слюноотделение анализов были использованы для анализа 856 индивидуальных комары захваченных в Германии, в том числе два различных биотипов Culex pipiens pipiens , Culex torrentium , а также Aedes albopictus, которые были экспериментально зараженных с вирусом Зика (ZIKV) и инкубируют при 18 ° C или 27 ° C для двух и трех недель. Результаты показали отсутствие векторных компетенции различных таксонов Culex для ZIKV. В противоположность этому Aedes albopictus был восприимчивы к ZIKV, но только в 27 ° C, при скорости передачи данных похож на Aedes aegypti лабораторные колонии испытания параллельно.

Aedes aegypti известен как компетентным вектор для ZIKV по крайней мере под12тропических климатических условиях. Таким образом мы использовали А.е. aegypti как позитивный элемент управления установить пробирного и анализировать IRs, а также технических регламентов на инкубация температура 27 ° c и влажности 80%. IR и TR были определены, как описано ранее, Фортуна и др. 13. оспаривается А.е. aegypti показал IR 50% и 72% и TR 42% и 31% в 14 и 21 дней после инфекции (dpi), соответственно (рис. 1A и 1B). Впоследствии Европейский комаров были протестированы для ZIKV инфекции и передачи с использованием тропических, а также умеренных климатических условий.
При 27 ° C температуре инкубации всех видов комаров показал ZIKV инфекции на 14 ДОИ, а также 21 dpi, за исключением Cx. p. pipiens и Cx. torrentium лиц, которые были позитивными в 14 ДОИ только. Всех видов Aedes показали выше IRs (между 50% и 72%), а также высокую концентрацию вирусной РНК (106 до 10 образцы копий/комаров9 РНК) по сравнению с различных таксонов Culex , выявившей IRs, колеблется от 0 % и 32% и вирусной нагрузки 103 до 10 особей4 РНК копий/комаров. Все виды Aedes отображается ZIKV-положительных слюны (TR 13 – 42%), тогда как ни один из образцов слюны из таксонов Culex ZIKV (Рисунок 1A и 1B). Интересно, что скорость передачи на 21 ДОИ были схожими в А.е. aegypti и А.е. albopictus из Германии (30%), но были значительно ниже в А.е. albopictus из Италии (13%).
Инкубации из оспаривается комаров на вмеру температуре от 18 ° C в целом показало, что нижняя вирус загружает видами Aedes (104– 106 РНК копий/комаров), а также в различных таксонов Culex (102-104 Копий РНК/комаров). Однако при 18 ° C температуре инкубации, передача ZIKV не наблюдалось для любых видов комаров, расследование.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57980/57980fig1.jpg"> Рисунок 1: скорость передачи комаров, экспериментально зараженных ZIKV. Результаты исследований компетенции вектор с ZIKV видами различных комаров. Шесть различных комаров таксонов были заражены ZIKV и инкубировали при 27 ° C или 18 ° C в течение 14 (A) или (B) 21 дней. TR определяется как количество комаров с ZIKV-позитивных слюны на количество органов ZIKV-инфицированных комаров. Общее количество комаров расследование было 856, с минимум 30 лиц для каждого времени точки/температуры/комаров таксонов. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/57980/57980fig1large.jpg" target="_blank">Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.</a>

Watch this Scientific Journal Video about Forced Salivation As a Method to Analyze Vector Competence of Mosquitoes at JoVE.com

Forced Salivation As a Method to Analyze Vector Competence of Mosquitoes

Вынуждены слюноотделение как метод для анализа вектора компетенции комаров

Для эффективного контроля комаров несут передачи вируса знание Векторный потенциал соответствующих комаров представляет особый интерес. Мы описываем принудительного слюноотделение как метод для анализа вектора компетенции Aedes albopictus и три различных таксонов Culex для передачи вируса Зика.

Vector competence is defined as the potential of a mosquito species to transmit a mosquito-borne virus (mobovirus) to a vertebrate host. Viable virus ...

Research

JoVE Journal

Biology

Injection of An. stephensi Embryos to Generate Malaria-resistant Mosquitoes

Введение. stephensi Эмбрионы для генерации устойчивых к малярии комаров

The introduction of exogenous genes into the genomes of mosquitoes requires microinjection techniques tailored to the specific species of interest. This ...

Microinjection of A. aegypti Embryos to Obtain Transgenic Mosquitoes

Микроинъекция А. Эмбрионы aegypti получить Трансгенные комары

In this video, Nijole Jasinskiene demonstrates the methodology employed to generate transgenic Aedes aegypti mosquitoes, which are vectors for dengue ...

Preventing the Spread of Malaria and Dengue Fever Using Genetically Modified Mosquitoes

Предотвращение распространения малярии и лихорадки денге с использованием генетически модифицированных комаров

In this candid interview, Anthony A. James explains how mosquito genetics can be exploited to control malaria and dengue transmission.   Population ...

Use of Rotorod as a Method for the Qualitative Analysis of Walking in Rat

Использование Rotorod как метод Качественный анализ Прогулка по Крыса

High speed videoanalysis of the details of movement can provide a source of information about qualitative aspects of walking movements. When walking on a ...

Microinjection of Zebrafish Embryos to Analyze Gene Function

Микроинъекции данио рерио Эмбрионы для анализа функции гена

One of the advantages of studying zebrafish is the ease and speed of manipulating protein levels in the embryo.  Morpholinos, which are synthetic ...

Lipid Vesicle-mediated Affinity Chromatography using Magnetic Activated Cell Sorting (LIMACS): a Novel Method to Analyze Protein-lipid Interaction

Lipid Vesicle-mediated Affinity Chromatography using Magnetic Activated Cell Sorting LIMACS: a Novel Method to Analyze Protein-lipid Interaction

Липидов везикул-опосредованной аффинной хроматографии с использованием магнитных Активированный сортировки клеток (LIMACS): новый метод для анализа Белково-липидные взаимодействия

The analysis of lipid protein interaction is difficult because lipids are embedded in cell membranes and therefore, inaccessible to most purification ...

A Multi-detection Assay for Malaria Transmitting Mosquitoes

Анализ Multi-обнаружения малярии комарами

The Anopheles gambiae species complex includes the major malaria transmitting mosquitoes in Africa. Because these species are of such medical importance, ...

DiI Perfusion as a Method for Vascular Visualization in Ambystoma mexicanum

DiI Perfusion as a Method for Vascular Visualization in Ambystoma mexicanum

Перфузия DiI как метод сосудистой визуализации в<em&gt; Разное</em

Perfusion techniques have been used for centuries to visualize the circulation of tissues. Axolotl (Ambystoma mexicanum) is a species of salamander that ...

Maintaining Aedes aegypti Mosquitoes Infected with Wolbachia

Maintaining Aedes aegypti Mosquitoes Infected with Wolbachia

Поддержание инфицированных комаров Aedes aegypti с Wolbachia

Aedes aegypti mosquitoes experimentally infected with Wolbachia are being utilized in programs to control the spread of arboviruses such as dengue, ...

Protocols for Testing the Toxicity of Novel Insecticidal Chemistries to Mosquitoes

Протоколы для испытания на токсичность новых инсектицидных химия комаров

New classes of insecticides with novel modes of action are needed to control insecticide resistant populations of mosquitoes that transmit diseases such ...