Name: a versatile model of hard tick infestation on laboratory rabbits
Uploaded: 2018-10-06T15:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about A Versatile Model of Hard Tick Infestation on Laboratory Rabbits at JoVE.com

Riconosciamo l'assistenza tecnica di Evelyne Le Naour, Istituto nazionale francese di ricerca agronomica (INRA), Alain Bernier (INRA) e Océane Le Bidel (ANSES). Consuelo Almazán è stato sostenuto da una borsa di studio dal laboratorio di eccellenza, integrativa biologia of Emerging Infectious Diseases (LabEx IBEID), Istituto Pasteur. I conigli e le pecore sono state acquistate dall'ANSES. Parte di questo lavoro è stato finanziato dagli istituti nazionali di sovvenzione di salute RO1AI090062 a Y. Park. Dr. Jeffrey L. Blair è riconosciuto per la revisione del manoscritto.

Nota: In questo studio, i conigli sono stati mantenuti in gabbie standard con cibo e acqua offerti ad libitum presso l'Agenzia francese per il cibo, Environmental and Occupational Health & sicurezza (ANSES) accreditati strutture per animali a Maisons-Alfort, France. Gli animali sono stati controllati due volte al giorno da due tecnici esperti per eventuali reazioni anomale della pelle, problemi di salute o complicazioni. La camera sperimentale era garantita da inquadrare all'interno della porta con nastro biades...

<ol>
	<li>Sonenshine, D. E., Roe, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ticks,+People+and+Animals.">Ticks, People and Animals.</a> Biology of Ticks, Vol I. , (2014).</li><li>Kr&#246;ber, T., Guerin, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+vitro+feeding+assays+for+hard+ticks.">In vitro feeding assays for hard ticks.</a> Trends in Parasitology. 23 (9), 445-449 (2007).</li><li>Bonnet, S., Jouglin, M., Malandrin, L., Becker, C., Agoulon, A., L'hostis, M., Chauvin, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transstadial+and+transovarial+persistence+of+Babesia+divergens+DNA+in+Ixodes+ricinus.ticks+fed+on+infected+blood+in+a+new+skin-feeding+technique.">Transstadial and transovarial persistence of Babesia divergens DNA in Ixodes ricinus.ticks fed on infected blood in a new skin-feeding technique.</a> Parasitology. 134 (2), 197-207 (2007).</li><li>Bonnet, S., Liu, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Laboratory+artificial+infection+of+hard+ticks:+A+tool+for+the+analysis+of+tick-borne+pathogen+transmission.">Laboratory artificial infection of hard ticks: A tool for the analysis of tick-borne pathogen transmission.</a> Acarologia. 52 (4), 453-464 (2012).</li><li>Khols, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tick+rearing+methods+with+special+reference+to+the+Rocky+Mountain+Wood+Tick,+Dermacentor+andersoni+Stiles.">Tick rearing methods with special reference to the Rocky Mountain Wood Tick, Dermacentor andersoni Stiles.</a> Culture methods for invertebrate animals. , (1937).</li><li>Faccini, J. L. H., Chacon, S. C., Labruna, M. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rabbits+(Oryctolagus+cuniculus)+as+experimental+hosts+for+Amblyomma+dubitatum+Neumann+(Acari:+Ixodidae)+[Coelhos+(Oryctolagus+cuniculus)+como+hospedeiros+experimentais+de+Amblyomma+dubitatum+Neumann+(Acari:+Ixodidae).">Rabbits (Oryctolagus cuniculus) as experimental hosts for Amblyomma dubitatum Neumann (Acari: Ixodidae) [Coelhos (Oryctolagus cuniculus) como hospedeiros experimentais de Amblyomma dubitatum Neumann (Acari: Ixodidae).</a> Arquivo Brasileiro de Medicina Veterin&#225;ria e Zootecnia. 58 (6), 1236-1239 (2006).</li><li>Chacon, S. C., Freitas, L. H. T., Barbieri, F. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Relationship+between+weight+and+number+of+engorged+Amblyomma+cooperi.+Nuttal+(sic)+and+Warburton,+1908+(Acari:+Ixodidae)+larvae+and+nymphs+and+eggs+from+experimental+infestations+on+domestic+rabbits.">Relationship between weight and number of engorged Amblyomma cooperi. Nuttal (sic) and Warburton, 1908 (Acari: Ixodidae) larvae and nymphs and eggs from experimental infestations on domestic rabbits.</a> Brazilian Journal of Veterinary Parasitology. 13, 6-12 (2004).</li><li>Sonenshine, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Maintenance+of+ticks+in+the+laboratory.">Maintenance of ticks in the laboratory.</a> Maintenance of Human, Animal, and Plant Pathogen Vectors. , (1999).</li><li>Levin, M. L., Schumacher, L. B. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Manual+for+maintenance+of+multi-host+ixodid+ticks+in+the+laboratory.">Manual for maintenance of multi-host ixodid ticks in the laboratory.</a> Experimental and Applied Acarology. 70 (3), 343-367 (2016).</li><li>Bouchard, K. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Maintenance+and+experimental+infestation+of+ticks+in+the+laboratory+setting.">Maintenance and experimental infestation of ticks in the laboratory setting.</a> Biology of Disease Vectors. , (2005).</li><li>Jones, L. D., Davies, C. R., Steele, G. M., Nutall, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+rearing+and+maintenance+of+ixodid+and+argasid+ticks+in+the+laboratory.">The rearing and maintenance of ixodid and argasid ticks in the laboratory.</a> Animal Technology. 39, 99-106 (1988).</li><li>Slov&#225;k, M., Labuda, M., Marley, S. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mass+laboratory+rearing+of+Dermacentor+reticulatus+ticks+(Acarina,+Ixodidae).">Mass laboratory rearing of Dermacentor reticulatus ticks (Acarina, Ixodidae).</a> Biologia, Bratislava. 57 (2), 261-266 (2002).</li><li>Rechav, Y., Dauth, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+resistance+in+rabbits+to+immature+stages+of+the+Ixodid+tick+Rhipicephalus+appendiculatus.">Development of resistance in rabbits to immature stages of the Ixodid tick Rhipicephalus appendiculatus.</a> Medical and Veterinary Entomology. 1, 177-183 (1987).</li><li>Zacarias do Amaral, M. A., Azevedo Prata, M. C., Daemon, E., Furlong, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Biological+parameters+of+cattle+ticks+fed+on+rabbits.">Biological parameters of cattle ticks fed on rabbits.</a> Brazilian Journal of Veterinary Parasitology. 21 (1), 22-27 (2012).</li></ol>

Il passo più importante in questo intero protocollo è quello di incollare la capsula con fermezza alla pelle rasata. Per questo motivo, una pressione costante per almeno 3 minuti è critica, specialmente agli angoli. Quando inoculare le zecche nella capsula, è importante applicare loro in profondità l'angolo opposto da quello aperto per evitare la fuga di graduazione durante la sigillatura. Quando si pianificano gli esperimenti, assicurarsi che tutte le capsule sono coperto dalla giacca per evitare danni da masticare...

Le zecche dure (Ixodidae) sono ben note come artropodi alimentazione lente e possono essere fissate su un host per diversi giorni, o settimane, a seconda della specie e dello sviluppo della fase1. Questi artropodi ematofagi obbligatoria sono vettori di un'ampia varietà di agenti infettivi, quali batteri, protozoi e virus e quindi presentano un rischio significativo per gli esseri umani e di salute degli animali1. Quando studiando biologia tick o valutare nuovi metodi di controllo, l'istituzione di una zecca efficace sistema di alimentazione è fondamentale per progettare esperimenti efficacemente e di realizzare l'obiettivo dello studio. Recentemente, diversi sistemi di alimentazione artificiale tick (evitando l'uso di animali vivi) sono stati sviluppati2,3,4 e devono essere utilizzate quando possibile. Tuttavia, questi sistemi non sono in grado di sostituire completamente la zecca nutrendosi di animali vivi, e non sono sostituti adatti per molte condizioni fisiologiche necessarie per gli studi scientifici. Pertanto, in alcuni casi, l'uso degli eserciti animale sperimentale è fondamentale per garantire la pertinenza dei risultati sperimentali.
Conigli di laboratorio della Nuova Zelanda hanno dimostrato di essere i padroni di casa più adatte e accessibile per diversi Ixodidae zecche specie5,6,7,8,9. Due strategie comuni di zecca nutrendosi di conigli sono state usate frequentemente: a) che si alimenta sul coniglio orecchie coperte con cotone panno o calzini6,7e b) di alimentazione in neoprene, nylon bottiglie10 o cotone sacchetti9 camere11 incollato alla parte posteriore del coniglio. L'alimentazione sulle orecchie di coniglio non è un sistema elegante, perché le zecche (soprattutto nelle prime fasi, larve o ninfe) possono strisciare e allegare profondo nel condotto uditivo, che è a disagio per l'animale e rende il monitoraggio del battito di alimentazione e/o il recupero di engorged zecche sono difficili. Questo sistema è anche limitato a solo due gruppi di segni di graduazione su orecchie completamente coperte da calze protetti da collari elisabettiani, che rappresenta un notevole disagio per l'animale. Altri sistemi9,10,11 sono decisamente più avanzato e ben si adatta per la manutenzione di Colonia di zecca Dura. Tuttavia, sono limitati nel numero di gruppi sperimentali collocato sul coniglio, così come nelle dimensioni/forme modificabili delle sezioni d'alimentazione. Inoltre, questi protocolli richiedono spesso zoppicando le gambe posteriori coniglio per evitare graffi e l'uso di collari elisabettiani per impedire di governare.
Qui proponiamo un metodo semplice, non faticoso e molto efficace per nutrire più gruppi di zecche dure in camere chiuse incollate al coniglio torna coperto da una giacca, eliminando la necessità di collari elisabettiani o zoppicando durante l'esperimento. In particolare, il nostro sistema utilizza capsule elastiche fatto da un foglio di schiuma di etilene vinil acetato (EVA) protette con rete di zanzara e incollato al coniglio rasato indietro con rapida solidificazione (3 min) colla di lattice non irritante. Questa tecnica permette il collegamento di più capsule di forma e dimensione desiderata, e poche settimane dopo l'esperimento i conigli sono completamente recuperati. Il sistema è adatto soprattutto per le fasi di zecca Dura Ninfale e adulto, ma con una piccola modifica può essere utilizzato per le larve di alimentazione pure. I metodi di base di schiuma di EVA per battito duro d'alimentazione possono essere adattati ad altri tipi di vertebrati host, ad esempio le pecore (che sono indicate come una delle alternative in questa carta).

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:1157px;" width="1158">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:295px;">New Zealand Rabbits (2.5-3.5 kg)</td>
			<td style="width:197px;">Charles River&#160;</td>
			<td style="width:399px;">Strain Code 571</td>
			<td style="width:267px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:295px;">Rambouillet sheep</td>
			<td style="width:197px;">Local provider-tick free farm</td>
			<td>Female 6 months old</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:295px;">EVA foam 5 mm thick&#160;</td>
			<td style="width:197px;">Cosplay Shop</td>
			<td style="width:399px;">EVA-PE451kg (950mm x 450mm)</td>
			<td>10 mm PE45kg foam from the Cosplay Shop may be used for the large adult tick species</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:295px;">Foam Sheet 9&#34; X 12&#34; 6 mm-White</td>
			<td style="width:197px;">Amazon</td>
			<td style="width:399px;">FOAMSHT6-20</td>
			<td>6 mm-EVA foam ca be ordered via Amazon as an alternative to the foam from Cosplay Shop</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:295px;">Full length rabbit jackets&#160;</td>
			<td style="width:197px;">Harvard Apparatus, Inc.&#160;</td>
			<td style="width:399px;">620077- medium, 6270078 - large&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:295px;">Non-toxic latex glue&#160;</td>
			<td style="width:197px;">Tear mender&#160;</td>
			<td style="width:399px;">Fabric &#38; Leather Adhesive</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:295px;">Tubular cotton orthopedic stockinette</td>
			<td style="width:197px;">BSN Medical</td>
			<td style="width:399px;">9076 (12-15 cm wide)</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:295px;">Mosquito mesh&#160;</td>
			<td style="width:197px;">Loisirs Creatifs</td>
			<td style="width:399px;">Very fine filter nylon mesh fabric</td>
			<td>Any mosquito mesh, or curtain material with the mesh size less than 50 microns is suitable.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:295px;">Leukoplast&#160;</td>
			<td style="width:197px;">BSN medical S.A.S</td>
			<td style="width:399px;">LF 72361-02</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:295px;">Adhesive hook-and-loop tape</td>
			<td style="width:197px;">AIEX store</td>
			<td style="width:399px;">AIEX 39.37 Feet/12m Hook and Loop Self Adhesive Tape Roll, 20 mm width, white colour</td>
			<td>Fullfiled by Amazon</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Fast drying glue &#160;</td>
			<td>Fixtout&#160;</td>
			<td>Superglue</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a versatile model of hard tick infestation on laboratory rabbits

L'uso di animali vivi nella ricerca di segni di graduazione è cruciale per una varietà di scopi sperimentali, compreso il mantenimento di colonie di zecca Dura in laboratorio. In segni di graduazione, tutti gli stadi di sviluppo (ad eccezione di uovo) sono ematofagi e acquisire un pasto di sangue quando collegato ai loro ospiti vertebrati è essenziale per il completamento del loro ciclo di vita. Qui dimostriamo un metodo semplice che utilizza capsule facilmente apribile per l'alimentazione delle zecche dure sui conigli. I vantaggi del metodo proposto sono la sua semplicità, la breve durata e la regolazione soprattutto versatile per le esigenze delle specifiche esigenze sperimentali. Il metodo rende possibile l'uso di camere multiple (di varie dimensioni) sull'animale stesso, che consente l'alimentazione di più fasi o differenti gruppi sperimentali riducendo il requisito generale degli animali. I materiali non-irritante e facilmente accessibili utilizzati riduce al minimo disagio agli animali, che può essere facilmente recuperato da un esperimento e offerto per adozione o riutilizzati se il protocollo etico lo consente.

Qui vi proponiamo per la prima volta un metodo dettagliate passo a passo di zecca Dura alimentazione in schiuma EVA capsule applicati alla parte posteriore di un coniglio rasato, coperto da una giacca (Figura 1 e Figura 2). Questo protocollo è adatto per vari tipi di esperimenti, quando gruppi di zecche diverse sullo stesso host sono necessari e possono essere utilizzati anche per l'allevamento di massa di zecc...

Watch this Scientific Journal Video about A Versatile Model of Hard Tick Infestation on Laboratory Rabbits at JoVE.com

A Versatile Model of Hard Tick Infestation on Laboratory Rabbits

Abbiamo sviluppato un sistema semplice e versatile per zecche dure si nutrono di conigli di laboratorio. Il nostro protocollo non laborioso utilizza materiali facilmente accessibile e può essere regolata a seconda delle esigenze delle varie impostazioni sperimentali. Il metodo consente monitoraggio confortevole e/o campionamento di zecche durante l'intero periodo d'alimentazione.

Un modello Versatile di infestazione del battito duro sui conigli di laboratorio

The use of live animals in tick research is crucial for a variety of experimental purposes including the maintenance of hard tick colonies in the ...

Questo metodo è adatto per mantenere colonie dure, studiare la biologia delle zecche o le interazioni patogene ospite-vettore o valutare diverse misure di controllo di questi attributi importanti dal punto di vista medico. I principali vantaggi di queste tecniche sono la sua semplicità e breve durata. e soprattutto capacità di essere modificati, in base alle esigenze sperimentali dello studio.Sebbene questo metodo possa essere utilizzato per nutrire le diverse fasi della vita delle zecche dure sui conigli di laboratorio. Può anche essere adattato ad altri sistemi ospiti come gli ovini. Inizia tagliando un telaio capsula di dimensioni appropriato da un foglio di schiuma EVA che arrotonda gli angoli esterni per ridurre al minimo il distacco accidentale durante l'incollaggio.Tagliare quattro strisce larghe otto millimetri di nastro adesivo autoadesivo e attaccare le strisce ai lati del telaio. Tagliare le strisce delle stesse dimensioni dal nastro ad anello autoadesivo e legarle al nastro adesivo sul telaio. Successivamente, tagliare un pezzo di rete di zanzara di pino abbastanza grande da coprire il telaio e attaccare la rete alle strisce ad anello autoadesive, tagliando qualsiasi materiale strapiombante se necessario.Quando la capsula è pronta, trattenere manualmente il coniglio e radere le regioni sperimentali sul retro e sui lati dell'animale. Applicare la colla in lattice non irritante ad asciugatura rapida su tutta la superficie della capsula preparata e dopo un minuto, premere delicatamente la capsula sulla pelle. La fase più critica del protocollo è l'attacco sul campo della capsula alla pelle.Pertanto, è necessaria una pressione costante della capsula sulla pelle del coniglio soprattutto agli angoli per almeno tre minuti. Dopo tre minuti, sollevare leggermente la capsula per confermare visivamente il suo fissaggio utilizzando una spatola per applicare la colla su qualsiasi parte non attaccata. Quando la capsula è fissata, applicare il nastro protettivo sulle zampe posteriori per evitare danni alla giacca e posizionare le zampe anteriori attraverso le aperture della giacca anteriore stringendo il collo della giacca a una larghezza delle dita tra l'animale e la giacca.Per iniziare l'infestazione da zecche, aggiungi prima le zecche nell'estremità dello stantuffo di un tappo di cotone di plastica alla siringa con una punta tagliata. Quindi, sollevare la rete da un angolo della capsula e posizionare la siringa in profondità nella capsula attraverso l'apertura. Inserire lo stantuffo fino alla siringa per infestare l'animale con le zecche.Quindi ruota lentamente lo stantuffo verso la pelle per rimuovere eventuali zecche rimanenti mentre allo stesso tempo estrae lo stantuffo dalla capsula. Una volta che tutte le zecche sono state consegnate, rifucciare il gancio e il nastro ad anello. Chiudere la giacca sfrecciando sul retro e inserire le zampe posteriori del coniglio nelle custodie elastiche posteriori.Quindi riportare il coniglio nella sua gabbia. Nel momento sperimentale appropriato, trasferire il coniglio in panchina e decomprimere la giacca. Trattenere delicatamente il coniglio, aprire la capsula e utilizzare le flessione per raccogliere gli adulti completamente ingoiati e un twister di zecca per raccogliere gli adulti parzialmente nutriti.Larve e ninfe ingozzate possono essere raccolte spazzolandole nel piatto. Quindi ri-chiudere la capsula se sperimentalmente appropriato. Alla fine dell'esperimento, rimuovere completamente la zanzariera dalla capsula senza rimuovere la giacca.Da tre a quattro settimane dopo, tagliare delicatamente uno degli angoli per provare a rimuovere la capsula. Una volta rimossa la capsula, rimuovere la giacca e consentire al coniglio di riprendersi nella sua gabbia. Se il protocollo e gli esperimenti lo consentono, il coniglio recuperato può essere riutilizzato o offerto per l'adozione.Questo protocollo è adatto per vari tipi di esperimenti tra cui l'allevamento di massa di più gruppi di zecche sullo stesso host. Il sistema di capsule EVA Foam ha dimostrato di avere molto successo quando si alimentano diverse fasi di sviluppo di varie specie di zecche dure. Può anche essere adattato per altri tipi di ospiti di laboratorio come gli ovini.Inoltre, questo metodo versatile facilita la creazione di una varietà di diverse impostazioni sperimentali in base al numero modificabile, alla forma e alla composizione delle capsule sull'ospite. La procedura consente anche un recupero completo degli ospiti del coniglio dopo gli esperimenti. Questo protocollo non è laborioso e non è necessaria alcuna formazione intensiva per familiarizzare con la tecnica.Inoltre, è necessaria una quantità minima di materiali, passaggi e stress per gli animali da esperimento.

Research

JoVE Journal

Biology

Laser-Induced Chronic Ocular Hypertension Model on SD Rats

Laser-Induced cronica ipertensione oculare su Ratti modello SD

Glaucoma is one of the major causes of blindness in the world. Elevated intraocular pressure is a major risk factor. Laser photocoagulation induced ocular ...

Ricerca

Biologia

Intranuclear Microinjection of DNA into Dissociated Adult Mammalian Neurons

Microiniezione intranucleari di DNA in dissociato neuroni dei mammiferi adulti

Primary neuronal cell cultures are valuable tools to study protein function since they represent a more biologically relevant system compared to ...

Genetic Studies of Human DNA Repair Proteins Using Yeast as a Model System 

Studi genetici di proteine ​​umane di riparazione del DNA Utilizzando lievito come sistema modello

Understanding the roles of human DNA repair proteins in genetic pathways is a formidable challenge to many researchers.  Genetic studies in mammalian ...

Measurement and Analysis of Extracellular Acid Production to Determine Glycolytic Rate

Misura e Analisi di extracellulare Acido prodotte per determinare glicolitica Tasso

Extracellular measurement of oxygen consumption and acid production is a simple and powerful way to monitor rates of respiration and glycolysis1. Both ...

Techniques to Induce and Quantify Cellular Senescence

Le tecniche per indurre e Quantificare cellulare senescenza

In response to cellular stress or damage, proliferating cells can induce a specific program that initiates a state of long-term cell-cycle arrest, termed ...

Endotracheal Intubation of Rabbits Using a Polypropylene Guide Catheter

Intubazione endotracheale di conigli utilizzando un catetere guida in polipropilene

Endotracheal intubation in rabbits can be challenging due to their unusual anatomy. Achieving a patent airway during anesthesia is critical for the ...

A Versatile Method for Mounting Arabidopsis Leaves for Intravital Time-lapse Imaging

A Versatile Method for Mounting Arabidopsis Leaves for Intravital Time-lapse Imaging

Un metodo Versatile per il montaggio di Arabidopsis lascia per l'Imaging di time-lapse videomicroscopia

The plant immune response associated with a genome-wide transcriptional reprogramming is initiated at the site of infection. Thus, the immune response is ...

Mass Spectrometry Analysis to Identify Ubiquitylation of EYFP-tagged CENP-A (EYFP-CENP-A)

Mass Spectrometry Analysis to Identify Ubiquitylation of EYFP-tagged CENP-A EYFP-CENP-A

Analisi della spettrometria di massa per identificare l'ubiquilazione del CENP-A con tag EYFP (EYFP-CENP-A)

Studying the structure and the dynamics of kinetochores and centromeres is important in understanding chromosomal instability (CIN) and cancer ...

A Capsule-Based Model for Immature Hard Tick Stages Infestation on Laboratory Mice

Un modello basato su capsule per l'infestazione di fasi di zecche dure immature su topi di laboratorio

Ticks are obligatory blood feeding parasites at all stages of development (except eggs) and are recognized as vectors of various pathogens. The use of ...

Maintaining Laboratory Cultures of Gryllus bimaculatus, a Versatile Orthopteran Model for Insect Agriculture and Invertebrate Physiology

Maintaining Laboratory Cultures of Gryllus bimaculatus, a Versatile Orthopteran Model for Insect Agriculture and Invertebrate Physiology

Mantenimento di colture di laboratorio di Gryllus bimaculatus, un modello ortottero versatile per l'agricoltura degli insetti e la fisiologia degli invertebrati

Gryllus bimaculatus (De Geer)&#160;is a large-bodied cricket distributed throughout Africa and Southern Eurasia where it is often wild-harvested as human ...