Name: a versatile model of hard tick infestation on laboratory rabbits
Uploaded: 2018-10-06T15:00:00
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Reconocemos la asistencia técnica de Evelyne Le Naour, Instituto Nacional de investigaciones agrícolas (INIA), Alain Bernier (INRA) y Océane Le Bidel (ANSES). consuelo Almazán fue apoyado por una beca del laboratorio de excelencia, integradora biología de las enfermedades infecciosas emergentes (LabEx IBEID), Instituto Pasteur. Los conejos y las ovejas fueron compradas por ANSES. Parte de este trabajo fue financiado por los institutos nacionales de la subvención de salud RO1AI090062 y parque. El Dr. Jeffrey L. Blair es reconocido por revisar el manuscrito.

Nota: En este estudio, los conejos se mantuvieron en jaulas estándar con alimentos y agua ofreció ad libitum en la agencia francesa para la alimentación, medio ambiente y salud ocupacional y seguridad (ANSES) acreditados instalaciones en Maisons-Alfort, Francia. Animales fueron monitoreados dos veces al día por dos técnicos experimentados por reacciones anormales de la piel, problemas de salud o las complicaciones. La sala experimental fue asegurada por la estructura del interior de la puerta con cinta de d...

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	<li>Sonenshine, D. E., Roe, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ticks,+People+and+Animals.">Ticks, People and Animals.</a> Biology of Ticks, Vol I. , (2014).</li><li>Kr&#246;ber, T., Guerin, P. 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El paso más importante en este conjunto del protocolo es pegar la cápsula firmemente a la piel afeitada. Por esta razón, una presión constante durante al menos 3 minutos es fundamental, especialmente en las esquinas. Al inocular las garrapatas en la cápsula, es importante aplicar profundamente en la esquina opuesta a la abierta para evitar escape de garrapatas durante el sellado. Al planificar los experimentos, asegúrese de que todas las cápsulas están cubiertas por la chaqueta para evitar daño por masticación ...

Las garrapatas duras (Ixodidae) son conocidas como artrópodos alimentación lento y pueden ser atadas en un host durante varios días, o semanas, dependiendo de la especie y del desarrollo de la etapa1. Estos artrópodos hematófagos obligatorios son vectores de una gran variedad de agentes infecciosos, como bacterias, protozoos y virus y así presentan un riesgo significativo para los seres humanos y de salud animal1. Cuando estudiar biología de la garrapata o evaluación de nuevos métodos de control, el establecimiento de una marca eficaz sistema de alimentación es crucial para los experimentos de diseño efectivamente y lograr los propósitos del estudio. Recientemente, varios sistemas de alimentación artificial de la garrapata (evitando el uso de animales vivos) han desarrollado2,3,4 y deben usarse siempre que sea posible. Sin embargo, estos sistemas no han sido capaces de sustituir completamente la garrapata alimentándose de animales vivos, y no son sustitutos adecuados para muchas condiciones fisiológicas necesarias para estudios científicos. Por lo tanto, en algunos casos, el uso de los ejércitos de animales experimentales es fundamental para garantizar la pertinencia de los resultados experimentales.
Conejos Nueva Zelanda de laboratorio han demostrado ser la sede más conveniente y accesible para varios ixodid garrapatas especies5,6,7,8,9. Dos estrategias comunes de garrapatas que se alimentan de conejos se han utilizado con frecuencia: a) alimentación en orejas de conejo cubiertos con algodón paño o calcetines6,7y b) de alimentación en algodón bolsas9, nylon botellas10 o neopreno cámaras11 pegado a la parte posterior del conejo. La alimentación en las orejas del conejo no es un sistema elegante, porque las garrapatas (especialmente primeras etapas, las larvas o ninfas) pueden arrastrarse y coloque en el canal auditivo, que es incómodo para el animal y hace el seguimiento de la señal de alimentación o la recuperación de engorged garrapatas difícil. Este sistema también está limitado a sólo dos grupos de garrapata en oídos completamente cubiertos por calcetines protegidos por collares Elizabethan, que representa un malestar significativo para el animal. Otros sistemas9,10,11 son definitivamente más avanzado y muy adecuado para el mantenimiento de la colonia de garrapatas duras. Sin embargo, están limitados en el número de grupos experimentales al conejo, así como en las tamaños/formas modificables de las cámaras de alimentación. Además, estos protocolos requieren a menudo cojeando de las patas de conejo posterior para evitar el rascado y el uso de collares isabelinos para prevenir el grooming.
Aquí proponemos un método simple, no laborioso y muy eficaz para alimentar a varios grupos de garrapatas duras en cámaras cerradas pegados al conejo nuevamente cubierto por una chaqueta, eliminando la necesidad de collares isabelinos o cojeando durante el experimento. Específicamente, nuestro sistema utiliza cápsulas elásticas de una hoja de espuma Etileno vinilo acetato (EVA) cubierto por malla de mosquito y pegado al conejo depilado con pegamento látex no irritante solidificación rápida (3 minutos). Esta técnica permite múltiples cápsulas del tamaño deseado o el forma y pocas semanas después el experimento de los conejos se recuperan completamente. El sistema es adecuado principalmente para las etapas nymphal y adulto marca duro, pero con una pequeña modificación puede ser utilizado para las larvas que se alimenta tan bien. Los métodos basados en espuma de EVA para señal dura la alimentación pueden adaptarse a otros tipos de huéspedes vertebrados, por ejemplo ovejas (que se muestran como una de las alternativas en este papel).

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:1157px;" width="1158">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:295px;">New Zealand Rabbits (2.5-3.5 kg)</td>
			<td style="width:197px;">Charles River&#160;</td>
			<td style="width:399px;">Strain Code 571</td>
			<td style="width:267px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:295px;">Rambouillet sheep</td>
			<td style="width:197px;">Local provider-tick free farm</td>
			<td>Female 6 months old</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:295px;">EVA foam 5 mm thick&#160;</td>
			<td style="width:197px;">Cosplay Shop</td>
			<td style="width:399px;">EVA-PE451kg (950mm x 450mm)</td>
			<td>10 mm PE45kg foam from the Cosplay Shop may be used for the large adult tick species</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:295px;">Foam Sheet 9&#34; X 12&#34; 6 mm-White</td>
			<td style="width:197px;">Amazon</td>
			<td style="width:399px;">FOAMSHT6-20</td>
			<td>6 mm-EVA foam ca be ordered via Amazon as an alternative to the foam from Cosplay Shop</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:295px;">Full length rabbit jackets&#160;</td>
			<td style="width:197px;">Harvard Apparatus, Inc.&#160;</td>
			<td style="width:399px;">620077- medium, 6270078 - large&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:295px;">Non-toxic latex glue&#160;</td>
			<td style="width:197px;">Tear mender&#160;</td>
			<td style="width:399px;">Fabric &#38; Leather Adhesive</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:295px;">Tubular cotton orthopedic stockinette</td>
			<td style="width:197px;">BSN Medical</td>
			<td style="width:399px;">9076 (12-15 cm wide)</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:295px;">Mosquito mesh&#160;</td>
			<td style="width:197px;">Loisirs Creatifs</td>
			<td style="width:399px;">Very fine filter nylon mesh fabric</td>
			<td>Any mosquito mesh, or curtain material with the mesh size less than 50 microns is suitable.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:295px;">Leukoplast&#160;</td>
			<td style="width:197px;">BSN medical S.A.S</td>
			<td style="width:399px;">LF 72361-02</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:295px;">Adhesive hook-and-loop tape</td>
			<td style="width:197px;">AIEX store</td>
			<td style="width:399px;">AIEX 39.37 Feet/12m Hook and Loop Self Adhesive Tape Roll, 20 mm width, white colour</td>
			<td>Fullfiled by Amazon</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Fast drying glue &#160;</td>
			<td>Fixtout&#160;</td>
			<td>Superglue</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a versatile model of hard tick infestation on laboratory rabbits

El uso de animales vivos en la investigación de la garrapata es crucial para una variedad de propósitos experimentales incluyendo el mantenimiento de colonias de señal dura en el laboratorio. En garrapatas, todas las etapas del desarrollo (excepto el huevo) son hematófagos, y adquirir una comida de sangre cuando sus hospederos vertebrados es esencial para la realización de su ciclo de vida. Aquí se demuestra un método simple que utiliza cápsulas de fácilmente se puede abrir para la alimentación de garrapatas duras en conejos. Las ventajas del método propuesto incluyen su simplicidad, corta duración y lo más importante es versátil ajuste a las necesidades de los requisitos específicos de experimentales. El método hace posible el uso de múltiples cámaras (varios tamaños) en el mismo animal, que permite la alimentación de múltiples etapas o diferentes grupos experimentales reduciendo el requisito general de animales. Los materiales no-irritante y de fácil acceso minimiza las molestias a los animales, que pueden ser fácilmente recuperados de un experimento y ofrecidos para adopción o reutilizarse si lo permite el protocolo ético.

Aquí proponemos por primera vez un método detallado paso a paso de la señal dura alimentación en espuma EVA cápsulas aplicados a la parte trasera de un conejo depilado, cubierto por una chaqueta (figura 1 y figura 2). Este protocolo es adecuado para varios tipos de experimentos cuando grupos diferentes de garrapatas en el mismo host son necesarios y también pueden utilizarse para la cría masiva de garrapa...

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A Versatile Model of Hard Tick Infestation on Laboratory Rabbits

Hemos desarrollado un sistema sencillo y versátil para las garrapatas duras se alimentan de conejos de laboratorio. Nuestro protocolo no laborioso utiliza materiales fácilmente accesibles y se puede ajustar según los requerimientos de las diferentes configuraciones experimentales. El método permite cómodo monitoreo o muestreo de garrapatas durante todo el período de alimentación.

Un modelo versátil de la infestación de la señal dura en conejos de laboratorio

The use of live animals in tick research is crucial for a variety of experimental purposes including the maintenance of hard tick colonies in the ...

Este método es adecuado para mantener colonias duras, estudiar la biología de las garrapatas o las interacciones patógenos huésped-vector o evaluar diferentes medidas de control de estos atributos médicamente importantes. Las principales ventajas de estas técnicas son su simplicidad y corta duración. y lo más importante para ser modificado, de acuerdo con las necesidades experimentales del estudio.Aunque este método se puede utilizar para alimentar las diferentes etapas de vida de las garrapatas duras en conejos de laboratorio. También se puede adaptar a otros sistemas de acogida como ovejas. Comience cortando un marco de cápsula de tamaño adecuado de una hoja de espuma de EVA redondeando las esquinas exteriores para minimizar el desprendimiento accidental durante el encolado.Corte cuatro tiras de ocho milímetros de ancho de cinta adhesiva y conecte las tiras a los lados del marco. Corte las mismas tiras de tamaño de la cinta de bucle autoadhesiva y afírelas a la cinta de gancho en el marco. A continuación, cortar un pedazo de malla de mosquito de pino lo suficientemente grande como para cubrir el marco y pegar la malla a las tiras de bucle autoadhesivo, recortando cualquier material colgante según sea necesario.Cuando la cápsula esté lista, sujeta manualmente el conejo y afeita las regiones experimentales en la parte posterior y los lados del animal. Aplicar pegamento de látex no irritante de secado rápido en toda la superficie de la cápsula preparada y después de un minuto, prensada suavemente la cápsula sobre la piel. El paso más crítico del protocolo es la fijación de campo de la cápsula a la piel.Por lo tanto, se requiere una presión constante de la cápsula sobre la piel del conejo, especialmente en las esquinas durante al menos tres minutos. Después de tres minutos, levante ligeramente la cápsula para confirmar visualmente su accesorio utilizando una espátula para aplicar pegamento a cualquier parte no adherida. Cuando la cápsula esté asegurada, aplique cinta protectora a las patas traseras para evitar daños en la chaqueta y coloque las patas delanteras a través de las aberturas de la chaqueta delantera apretando el cuello de la chaqueta a un dedo entre el animal y la chaqueta.Para iniciar la infestación por garrapatas, primero agregue las garrapatas en el extremo del émbolo de un tapón de algodón de plástico a la jeringa con una punta de corte. A continuación, levante la malla de una esquina de la cápsula y coloque la jeringa profundamente en la cápsula a través de la abertura. Inserte el émbolo hasta el final en la jeringa para infestar al animal con las garrapatas.A continuación, gire lentamente el émbolo hacia la piel para eliminar las garrapatas restantes mientras tira simultáneamente del émbolo fuera de la cápsula. Cuando se hayan entregado todas las garrapatas, vuelva a fijar la cinta de gancho y bucle. Cierra la chaqueta cerrando la parte posterior de la misma e inserta las patas traseras del conejo en los gabinetes elásticos traseros.Entonces devuelve al conejo a su jaula. En el punto de tiempo experimental apropiado, transfiera el conejo al banco y descomprima la chaqueta. Restringir suavemente el conejo, abrir la cápsula y utilizar fórceps para recoger a los adultos completamente engordados y un retorcido de garrapatas para recoger a los adultos parcialmente alimentados.Las larvas y ninfas engordadas se pueden recoger cepillando en el plato. A continuación, vuelva a cerrar la cápsula si es experimentalmente apropiado. Al final del experimento, retire la malla del mosquito completamente de la cápsula sin quitar la chaqueta.Tres a cuatro semanas más tarde, recorte suavemente una de las esquinas para tratar de retirar la cápsula. Una vez que la cápsula ha sido removida, retire la chaqueta y permita que el conejo se recupere en su jaula. Si el protocolo y los experimentos lo permiten, el conejo recuperado puede ser reutilizado u ofrecido para su adopción.Este protocolo es adecuado para varios tipos de experimentos, incluida la cría masiva de varios grupos de ticks en el mismo host. El sistema de cápsulas EVA Foam ha demostrado ser altamente exitoso cuando se alimentan diferentes etapas de desarrollo de varias especies de garrapatas duras. También puede adaptarse para otro tipo de huéspedes de laboratorio como ovejas.Además, este método versátil facilita la creación de una variedad de diferentes entornos experimentales basados en el número modificable, la forma y la composición de las cápsulas en el huésped. El procedimiento también permite una recuperación completa de los huéspedes del conejo después de los experimentos. Este protocolo no es laborioso y no se requiere un entrenamiento intensivo para familiarizarse con la técnica.Además, se requiere una cantidad mínima de materiales, pasos y estrés a los animales experimentales.

Research

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