Name: cochlear implant surgery and electrically-evoked auditory brainstem response recordings in c57bl/6 mice
Uploaded: 2019-01-09T13:00:00
Duration: 9 min 6 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Cochlear Implant Surgery and Electrically-evoked Auditory Brainstem Response Recordings in C57BL/6 Mice at JoVE.com

Авторы хотели бы поблагодарить Пьер Stahl, дополнительных медицинских, Ницца, Франция, за обеспечение животных стимуляции платформы и советы по стимуляции парадигмы и Джеймс б. Фэллон и Эндрю K. Wise Бионика института, Мельбурн, Австралия, хирургические советы . Эта работа была поддержана грант от Швейцарский Национальный научный фонд (передачи грантов ЕИС до T.R.B.).

<ol>
	<li>The-Ear-Foundation. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Cochlear Implants Update. , (2018).</li><li>Fallon, J. B., Irvine, D. R. F., Shepherd, R. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cochlear+Implants+and+Brain+Plasticity.">Cochlear Implants and Brain Plasticity.</a> Hearing Research. 238 (1-2), 110-111 (2008).</li><li>Pfingst, B. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neurotrophin+Gene+Therapy+in+Deafened+Ears+with+Cochlear+Implants:+Long-term+Effects+on+Nerve+Survival+and+Functional+Measures.">Neurotrophin Gene Therapy in Deafened Ears with Cochlear Implants: Long-term Effects on Nerve Survival and Functional Measures.</a> Journal of the Association for Research in Otolaryngology. 18 (6), 731-750 (2017).</li><li>Miller, C. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Electrical+excitation+of+the+acoustically+sensitive+auditory+nerve:+single-fiber+responses+to+electric+pulse+trains.">Electrical excitation of the acoustically sensitive auditory nerve: single-fiber responses to electric pulse trains.</a> Journal of the Association for Research in Otolaryngology. 7 (3), 195-210 (2006).</li><li>Irving, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cochlear+implantation+for+chronic+electrical+stimulation+in+the+mouse.">Cochlear implantation for chronic electrical stimulation in the mouse.</a> Hearing Research. 306, 37-45 (2013).</li><li>Soken, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mouse+cochleostomy:+a+minimally+invasive+dorsal+approach+for+modeling+cochlear+implantation.">Mouse cochleostomy: a minimally invasive dorsal approach for modeling cochlear implantation.</a> Laryngoscope. 123 (12), E109-E115 (2013).</li><li>Mistry, N., Nolan, L. S., Saeed, S. R., Forge, A., Taylor, R. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cochlear+implantation+in+the+mouse+via+the+round+window:+effects+of+array+insertion.">Cochlear implantation in the mouse via the round window: effects of array insertion.</a> Hearing Research. 312, 81-90 (2014).</li><li>Hartmann, R., Topp, G., Klinke, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Discharge+patterns+of+cat+primary+auditory+fibers+with+electrical+stimulation+of+the+cochlea.">Discharge patterns of cat primary auditory fibers with electrical stimulation of the cochlea.</a> Hearing Research. 13 (1), 47-62 (1984).</li><li>Sato, M., Baumhoff, P., Kral, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cochlear+Implant+Stimulation+of+a+Hearing+Ear+Generates+Separate+Electrophonic+and+Electroneural+Responses.">Cochlear Implant Stimulation of a Hearing Ear Generates Separate Electrophonic and Electroneural Responses.</a> The Journal of Neuroscience. 36 (1), 54-64 (2016).</li><li>Pfingst, B. E., Spelman, F. A., Sutton, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Operating+ranges+for+cochlear+implants.">Operating ranges for cochlear implants.</a> Annals of Otology, Rhinology &amp; Laryngology. 89 (2), (1980).</li><li>Miller, C. A., Hu, N., Zhang, F., Robinson, B. K., Abbas, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Changes+across+time+in+the+temporal+responses+of+auditory+nerve+fibers+stimulated+by+electric+pulse+trains.">Changes across time in the temporal responses of auditory nerve fibers stimulated by electric pulse trains.</a> Journal of the Association for Research in Otolaryngology. 9 (1), 122-137 (2008).</li><li>Shepherd, R. K., Javel, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Electrical+stimulation+of+the+auditory+nerve.+I.+Correlation+of+physiological+responses+with+cochlear+status.">Electrical stimulation of the auditory nerve. I. Correlation of physiological responses with cochlear status.</a> Hearing Research. 108 (1-2), 112-144 (1997).</li><li>Akil, O., Oursler, A. E., Fan, K., Lustig, L. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mouse+Auditory+Brainstem+Response+Testing.">Mouse Auditory Brainstem Response Testing.</a> Bio Protocol. 6 (6), (2016).</li><li>Willott, J. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Measurement+of+the+auditory+brainstem+response+(ABR)+to+study+auditory+sensitivity+in+mice.">Measurement of the auditory brainstem response (ABR) to study auditory sensitivity in mice.</a> Current Protocols in Neuroscience. Chapter 8 (Unit 8.21B. , (2006).</li><li>TDT. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> ABR User Guide: A Guide to ABR Testing with the System 3 RZ6. , (2017).</li><li>Muller, M., von Hunerbein, K., Hoidis, S., Smolders, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+physiological+place-frequency+map+of+the+cochlea+in+the+CBA/J+mouse.">A physiological place-frequency map of the cochlea in the CBA/J mouse.</a> Hearing Research. 202 (1-2), 63-73 (2005).</li><li>Cushing, S. L., Papsin, B. C., Gordon, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Incidence+and+characteristics+of+facial+nerve+stimulation+in+children+with+cochlear+implants.">Incidence and characteristics of facial nerve stimulation in children with cochlear implants.</a> Laryngoscope. 116 (10), 1787-1791 (2006).</li><li>Berrettini, S., Vito, D. A., Bruschini, L., Passetti, S., Forli, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Facial+nerve+stimulation+after+cochlear+implantation:+our+experience.">Facial nerve stimulation after cochlear implantation: our experience.</a> Acta Otorhinolaryngologica Italica. 31 (1), 11-16 (2011).</li><li>Hu, H., Kollmeier, B., Dietz, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reduction+of+stimulation+coherent+artifacts+in+electrically+evoked+auditory+brainstem+responses.">Reduction of stimulation coherent artifacts in electrically evoked auditory brainstem responses.</a> Biomedical Signal Processing and Control. 21, 74-81 (2015).</li><li>Wiegner, A., Wright, C. G., Vollmer, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Multichannel+cochlear+implant+for+selective+neuronal+activation+and+chronic+use+in+the+free-moving+Mongolian+gerbil.">Multichannel cochlear implant for selective neuronal activation and chronic use in the free-moving Mongolian gerbil.</a> Journal of Neuroscience Methods. 273, 40-54 (2016).</li><li>Hessel, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Meriones+unguiculatus+(Gerbil)+as+an+animal+model+for+the+ontogenetic+cochlear+implant+research.">Meriones unguiculatus (Gerbil) as an animal model for the ontogenetic cochlear implant research.</a> American Journal of Otolaryngology. 18 (S21), (1997).</li><li>Pinilla, M., Ramirez-Camacho, R., Jorge, E., Trinidad, A., Vergara, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ventral+approach+to+the+rat+middle+ear+for+otologic+research.">Ventral approach to the rat middle ear for otologic research.</a> Otolaryngology Head Neck Surgery. 124 (5), 515-517 (2001).</li><li>King, J., Shehu, I., Roland, J. T., Svirsky, M. A., Froemke, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+physiological+and+behavioral+system+for+hearing+restoration+with+cochlear+implants.">A physiological and behavioral system for hearing restoration with cochlear implants.</a> Journal of Neurophysiology. 116 (2), 844-858 (2016).</li><li>Lu, W., Xu, J., Shepherd, R. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cochlear+implantation+in+rats:+a+new+surgical+approach.">Cochlear implantation in rats: a new surgical approach.</a> Hearing Research. 205 (1-2), 115-122 (2005).</li><li>Poirrier, A. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ototoxic+drugs:+difference+in+sensitivity+between+mice+and+guinea+pigs.">Ototoxic drugs: difference in sensitivity between mice and guinea pigs.</a> Toxicology Letters. 193 (1), 41-49 (2010).</li><li>Wu, W. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Aminoglycoside+ototoxicity+in+adult+CBA,+C57BL+and+BALB+mice+and+the+Sprague-Dawley+rat.">Aminoglycoside ototoxicity in adult CBA, C57BL and BALB mice and the Sprague-Dawley rat.</a> Hearing Research. 158 (1-2), 165-178 (2001).</li><li>Taylor, R. R., Nevill, G., Forge, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rapid+hair+cell+loss:+a+mouse+model+for+cochlear+lesions.">Rapid hair cell loss: a mouse model for cochlear lesions.</a> Journal of the Association for Research in Otolaryngology. 9 (1), 44-64 (2008).</li></ol>

Без финансовых интересов. Авторы не имеют ничего сообщать.

Эта рукопись описывает хирургический подход для острой оглушительный и кохлеарной имплантации в мыши, а также функциональной оценки CI стимуляции с ответом слуховой ствола мозга. Хотя мыши улитки является небольшим и сложной операции, модель мыши CI осуществимым и служит ценным инструментом в слуховой области исследований.
Stapedial артерии присутствует в среднем ухе мыши. Артерии входит буллы кзади медиально и проходит книзу в круглое окно нишу и затем главно овальное окно нишу. В процессе первоначальной разработки модели мыши мы испытали роковой интраоперационная кровотечения следующие травмы stapedial артерии, главным образом при доступе к буллы. Как следствие мы адаптированы более ограниченный подход и доступ буллы в небольших, изысканный рассечение шаги. Без дальнейших осложнений из-за кровотечения после этого наблюдались. Несмотря на тот факт, что stapedial артерии прижигания имеет статистически значимого влияния на Порог слышимости или количество нейронов ганглия спираль в мышей5, на наш взгляд это ненужным, до тех пор, пока большой заботы и внимания принимаются во время операции. Мы рекомендуем принимать необходимое время для тонкой психомоторных навыков и достичь технические знания. Среднее время от первоначального разреза к закрытию вокруг массива имплантированных электродов обычно составляет 1 – 1,5 ч.
Описанные острой CI хирургии в мышах похож на «вентральной» процедуры и круглое окно вставки, используемые в других грызунов, в том числе крыс и песчанок20,21,22. Другие грызунов исследования использовали «спинной подход» с базальной поворот cochleostomy вместо круглое окно вставки, избегая SA полностью и вставка массив более глубоко6,23,24. Имплантация хронической стимуляции Ассамблеи в мышах следует те же шаги, как описано в этом протоколе с добавлением Dacron сетки, чтобы исправить имплантата и послеоперационный уход5.
Основные технические проблемы при выполнении операции CI в мышей являются небольшой размер улитки, по сравнению с улитки крыс и песчанки и наличие большой SA. SA присутствует также в крыс, но не в песчанок. Кроме того поскольку мышей, меньше, чем крысы и песчанки, они более уязвимы для хирургических процедур.
Чтобы устранить electrophonic ответы в eABR записи и имитировать волосы ячейка потерь найден в большинство пользователей CI, мы оглушен животных перед вставкой CI. Мышей трудно Заглушающая ototoxically в естественных условиях25 , потому что системные концентрации аминогликозидов, требуется вызвать ототоксичность имеет узкий дозы окно: снижение дозы отданы несколько дней приводит к потери волос клеток, тогда как одной инъекции более высокие дозы могут быть смертельной26. Кроме того подверженность аминогликозидов является штамм зависимых26. Однако было показано, что разовая доза аминогликозидов в сочетании с мочегонным цикла может производить чрезмерного внешнего клетки волос потери в АЗВ/АКЮ мышей без фатальных последствий27. Смерть задержки внутренний клетки волос было сообщено в половине из всех cochleae рассмотрел27.
В этой рукописи мы использовали местное применение аминогликозидов неомицин Вдохновленный недавно создана для мышей C57BL/65протокола. Острый применение неомицина значительно увеличить порог слышимости вызывали нажмите на 46 дБ ± 6,1. Хотя это увеличение больше чем 35 дБ увеличение сообщили, Ирвинг и др. (предварительно против послеоперационный: 41.6 дБ ± 3.3 против 76,6 дБ ± 4,4, p = 0,02, n = 3) 5, мы достигли же пост оглушительный порог (75,7 dB 3.7 против 76,6 дБ ± 4,4). считается, что неомицин 0,05% к частичной потере слуха, главным образом, смерти быстрое внешние клетки волос, как внутренние клетки волос потери занимает больше времени, чтобы произойти27. Поэтому вполне возможно что electrophonic ответа, который создается как внутренняя и внешняя клетки волос4,8,9,10,11,12, только частично устранены в оглушен животных с остаточного слуха. Даже несмотря на то, что неомицин 0,05% (вес/объем) не уменьшается количество нейронов ганглия спираль 4 недели после оглушительный5, это еще неизвестно, если неомицин в нашей острой установки влияет волокон слухового нерва или способствует synaptopathy (потеря синапсов между внутренней клетки волос и типа я слухового нерва волокон). Еще один фактор неопределенности является, что актуальные неомицин лечение не может произвести равномерное распределение волос ячейка потерь по длине улитки. Будущие исследования должны ответить на эти вопросы.
В резюме растущее количество генетических моделей для человеческого слуха и биохимические имеющиеся инструменты сделать мыши модель привлекательной животных для слухового исследований, в том числе области СНГ.

Кохлеарных имплантатов (СНГ) являются электронными устройствами, которые могут обеспечить чувство слуха для людей с тяжелой и глубокой потерей слуха. Он использует электроды, хирургически имплантированных в улитки внутреннего уха прямо стимулирует слуховой нерв. На сегодняшний день, CI является наиболее успешных сенсорные протеза и помогла более чем 600 000 человек во всем мире1. Однако устройство имеет недостатки. Во-первых льготы, предоставляемые устройства различаются среди получателей. Во-вторых речи в шумных условиях и музыки до сих пор плохо воспринимаются большинством пользователей CI.
На протяжении многих лет были использованы Животные модели лучше понять эти вопросы в CI исследований и постоянно улучшать безопасность и эффективность устройств. Модели дали ценную информацию о нескольких явлений, таких как пластиковые изменения в мозге происходят после имплантации CI2, эффект применения генной терапии для сохранения остаточного слуха3и биофизические свойства электрически стимулирует слуховой нерв4, среди многих других примеров.
Мышей являются мощной модели организма из-за большого доступность генетических моделей глухоты. Другие преимущества включают возможность манипулировать геном мыши (например, через систему ТРИФОСФАТЫ-Cas), возможность использовать передовые методы для изучения механизмов, особенно в мозг, уровень высоких репродукций, быстрое развитие визуализации и легко, разведение и обработки. Основные технические проблемы в выполнении операций CI в мышей являются небольшой размер улитки и наличие большой stapedial артерии (SA). SA обычно исчезает во время эмбрионального развития человека, но сохраняется на протяжении всей жизни в ряде грызунов, в том числе мышей, крыс и песчанок. SA работает ниже круглое окно нишу, которая затрудняет доступ к улитки и увеличивает риск хирургического.
Предыдущие исследования показали возможность имплантации CI в мышей5,6,7. Ирвинг et al. продемонстрировали, что хронический intracochlear электрической стимуляции может быть достигнуто на срок до одного месяца. Острый стимуляции также была исполнена, но записи не были представлены. Они показали, что прижигание stapedial артерии не оказало существенного влияния на Порог слышимости или количество нейронов ганглия спираль и актуальным применение аминогликозидов неомицин, ототоксических наркотиков, был оглушительным эффективной процедуры в 5мышей. СОКЕН et al. описано изменение спинной подход к мыши улитки через круглое окно лучше сохранить слух статус6. После вставки провода платины иридий значительного остаточного слуха наблюдалось увеличение аудитории мозга ответ порог (ABR) 28 дБ. Otoacoustic выбросы (ОАЭ) были потеряны в животных с большими ABR порог смены6. Мистри et al. тестирование функциональные и гистопатологические эффекты имплантация при отсутствии электрической стимуляции7. Даже несмотря на то, что слух был сохранен в 3 и 6 месяцев old имплантированных мышей на низких частотах, имплантации привело фиброз как ткани вокруг имплантата и osteoneogenesis вокруг bullostomy7.
Короче говоря из трех исследований по СНГ в мышей, только один демонстрирует функциональные запись CI стимуляции. Ирвинг и коллеги выполнены оба острых и хронических eABR записей, но только показали данные от хронической стимуляции CI5. Однако хронический модель с полностью Имплантируемые устройства разработаны, Ирвинг et al. является технически сложным. Это еще не известно, если острый CI стимуляции, менее сложной и быстрее, можно достичь аналогичных результатов.
Люди с тяжелой и глубокой потерей слуха, которые больше не выгоду от слуховых аппаратов используются СНГ. Животные модели для CI пользователей должен поэтому включать оглушительный процедура обычно услышав что животные используются. Еще одна причина, чтобы оглушить животных слуха является электрическая стимуляция глухих и слуха улитки производит различные нейронных ответов4,8,9,10,11, 12. Электрическая стимуляция глухих улитки непосредственно активирует волокон слухового нерва и создает electroneural ответ (α). Он характеризуется короткой задержки и небольшой динамический диапазон в периферии8,10. С другой стороны электрической стимуляции слушания улитки также возбуждает клетки волос в ответ electrophonic (β), которая характеризуется больше задержки и больше динамический диапазон4,11. Ответ electrophonic приписывается нормальной возбуждения в нервных волокон, внутренние клетки волос, электрически индуцированных сокращение внешних волосковых клеток и поколения путешествия волны4. Electroneural и electrophonic ответы также привести два деятельности различных структур в центральной нервной системы9. Сато et al. записал нейронов мозга CI имплантированных морской свинки, до и после оглушительный с неомицин, который устраняет electrophonic вклад. Они показали, что наклон-уровня функции был круче и стрельбы ставки в состояние оглушен выше по сравнению с слушания условие9. Таким образом в зависимости от исследования вопрос заявил, важно рассмотреть вопрос о включении оглушительный отдельных electrophonic и electroneural ответы на электрическая стимуляция слухового нерва.
Здесь мы описываем процедуры для острой оглушительный и кохлеарной имплантации массива электродов в мыши, а также функциональная запись intracochlear электростимуляция с электрически вызывали слуховой мозга ответ (eABR).

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>Hardware</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sound-proof booth</td>
			<td>IAC Acoustics, Winchester, UK</td>
			<td>Mac-2 Enclosure RF Shielded Box 2A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MF1 Speaker</td>
			<td>Tucker Davis Technologies (TDT), FL, USA</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PCB microphone</td>
			<td>PCB Piezotronics, Inc, NY, USA</td>
			<td>Model 378C01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Low impedance headstage</td>
			<td>TDT, FL, USA</td>
			<td>RA4LI</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Medusa pre-amplifier</td>
			<td>TDT, FL, USA</td>
			<td>RA4PA</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>RZ6 auditory processor</td>
			<td>TDT, FL, USA</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Animal Stimulator Platform</td>
			<td>ASP, Oticon Medical, Nice, France</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Multimeter</td>
			<td>Fluks</td>
			<td>#115</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical equipment</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Closed-loop heating pad</td>
			<td>FHC, Inc. ME, USA</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Eye ointment</td>
			<td>Alcon, CH</td>
			<td>Lacrinorm Augengel</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Acoustic foam</td>
			<td>Otoform Ak, Dreve Otoplastik GmbH</td>
			<td>#464</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td rowspan="2">Disposable subdermal needle electrodes</td>
			<td rowspan="2">Horizon, Rochester Electro-Medical Inc.</td>
			<td rowspan="2">S83018-R9, 27G</td>
			<td rowspan="2"></td>
		</tr>
		<tr>
		</tr>
		<tr>
			<td>Self-retaining retractor tool (Mini Collibri Retractor)</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>#17000-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Suction wedges</td>
			<td>Agnthos, SE</td>
			<td>#42-886-460</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Absorbable paper point (Medium)</td>
			<td>WPI, FL, USA</td>
			<td>#504182</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Intracochlear electrode array</td>
			<td>Bionics Institute, Melbourne, Australia</td>
			<td>4 channel</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Spongostan Standard</td>
			<td>Ferrosan Medical Devices</td>
			<td>#MS0002</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tissue glue. Loctite 4161 Superbond</td>
			<td>Henkel</td>
			<td>Part No 19743</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Animal Stimulator Platform (ASP)</td>
			<td>Oticon Medical, Nice, France</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Drugs/chemicals</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ketamine (Narketan)</td>
			<td>Provet AG, CH</td>
			<td>100mg/mL, #VQ_320265</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Xylazine (Rompun)</td>
			<td>Provet AG, CH</td>
			<td>Inj Diss 2%, # 1315</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bupivacaine</td>
			<td>Compendium, CH</td>
			<td>Bupivacain Sintetica inj Diss 0.5%</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Atropine (Atropinesulfat Amino)</td>
			<td>Amino AG, CH</td>
			<td>1 mg/ml</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Betadine (Povidone/iodine)</td>
			<td>Provedic, CH</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Neomycin (Neomycin trisulfate salt)</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>N1876-25G, Lot#WXBB7516V</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Software</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BioSigRZ</td>
			<td>TDT, FL, USA</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Matlab</td>
			<td>MathWorks, MA, USA</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ASP software</td>
			<td>Oticon Medical, Nice, France</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

cochlear implant surgery and electrically-evoked auditory brainstem response recordings in c57bl/6 mice

Кохлеарных имплантатов (СНГ) являются neuroprosthetic устройств, которые могут обеспечить чувство слуха для глухих людей. Однако CI не может восстановить все аспекты слуха. Совершенствование технологии имплантатов необходима если CI пользователи воспринимать музыку и выполнить в более естественных средах, таких как слуха, голоса с конкурирующими говоруны, размышления и другие звуки. Такое улучшение требует экспериментальных животных, чтобы лучше понять механизмы электрической стимуляции в улитки и его ответы в целом слуховой системы. Мышь является более привлекательной модели из-за многих генетических модели доступны. Однако ограниченное использование этого вида как модель CI — главным образом из-за сложности имплантации массивы небольшие электродный. Подробнее о хирургической процедуры, поэтому представляет большой интерес для расширения использования мыши в исследованиях CI.
В настоящем докладе мы подробно описать протокол для острой оглушительный и кохлеарной имплантации массива электродов в штамм мыши C57BL/6. Мы продемонстрировать функциональную эффективность этой процедуры с электрически вызывали слуховой мозга ответ (eABR) и примеры лицевого нерва стимуляции. Наконец, мы также обсудить важность включения оглушительный процедуры при использовании обычно слушание животных. Эта модель мыши предоставляет мощные возможности для изучения генетических и нейробиологических механизмов, которые будут иметь значение для пользователей CI.

Целью данного исследования было описать надежная модель для острой CI стимуляции в оглушен мыши. Пред- и послеоперационные слуха порогов служил функциональной индикация оглушительный процедуры. Актуальным применение 0,05% неомицина в окне овальной и круглой значительно увеличились 46 дБ ± 6 порогов нажмите вызывали слуха (предварительно против пост неомицин: 30,0 дБ ± 3,8 против 75,7 дБ ± 3.7, p = 0.0003, паре t теста, n = 7) (рис. 3). Массив размера мыши электрода далее был вставлен в круглое окно (Рисунок 4, рис. 5). Электрические моделирование intracochlear электрода может надежно вырабатывают eABR активность. (Рис. 7). В некоторых случаях, CI стимуляции активируется лицевого нерва и производства высокой амплитуде волны с короткие или длинные задержки (рис. 8A и Рисунок 8B, соответственно). Короткие задержки отклика было характерно быстрое усиление волны IV около 3 МС и может быть прямым ответом лицевого нерва. Длинные задержки отклика появилась около 5-6 мс и скорее всего не слуховой мышц (миогенных) ответ косвенно вызванные лицевого нерва. Лицевого нерва ответы редко сообщается в исследованиях на животных в литературе, но хорошо известных осложнений в человека CI пользователей17,18,19. В Рисунок 8, лицевого нерва стимуляции появилась на относительно средних текущих уровнях (150 – 200 МКА) и в двух различных животных. В других случаях обе реакции может появиться в то же самое животное на очень высокие уровни (не показан). Рекомендуется ограничить текущего уровня до уровня ниже вид лицевого нерва стимуляции.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58073/58073fig1.jpg"> Рисунок 1: Настройка слухового ответа мозга (ABR). Подкожных электроды расположены на вершины (активный/канал 1 [каналы 1]), за ухом ипсилатеральной (ссылка [Ref]) и задняя нога (Земля [Gnd]) наркотизированных мыши. Электрод сигналы усиливаются и затем Записанная системой TDT. Акустическая и электрическая стимуляция представлены через микрофон и животных стимулятор платформы, соответственно. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58073/58073fig1large.jpg" target="_blank">Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58073/58073fig2.jpg"> Рисунок 2: представитель слуховой волны нажмите стимуляции от дикого типа мыши до и после оглушительный с 0,05% неомицина. (A) нормальный слух слуховой шаблон характеризуется волны, помечены-V и порог низкий слуха, здесь 30 дБ SPL (стрелка). (B) оглушен слуховой шаблон показывает увеличение слуха порог, здесь 70 дБ SPL (стрелка). Волны имеют больше времени задержки и более временного джиттера. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58073/58073fig2large.jpg" target="_blank">Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58073/58073fig3.jpg"> Рисунок 3: слуховой порог до и после оглушительным. Применение неомицин значительно увеличился 46 дБ ± 6 слуховой порогов. После предварительной против неомицин: 30,0 дБ ± 3,8 против 75,7 дБ ± 3.7, p = 0.0003, паре t теста, n = 7. Ошибки — стандартная ошибка средств. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58073/58073fig3large.jpg" target="_blank">Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58073/58073fig4.jpg"> Рисунок 4: хирургия. (A) воздействия на аудиторию буллы. Bullostomy это выполняется (белый пунктирной окружности) вдоль хребта на барабанные буллы (черная пунктирная линия). (B) bullostomy позволяет визуализировать круглые окна, stapedial артерии и овальное окно. Неомицин-нежно промыта первой овальное окно, а затем круглое окно. Массив (C) электрод вставляется до тех пор, пока 4й электрод расположен только внутри ниши круглое окно. Сварочная проволока свернувшись внутри буллы сохранить массива на месте, прежде чем разрез закрыт. CN VII = черепного нерва VII (лицевого нерва), вл = овальное окно, RW = раунд окна, SA = stapedial артерии, SCM = ключично мышц, ТБ = барабанные буллы. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58073/58073fig4large.jpg" target="_blank">Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58073/58073fig5.jpg"> Рисунок 5: мыши кохлеарного импланта. (A) intracochlear электрод массив состоит из четырех платины полос, расположенных в интервале 0,4 мм с диаметром d: 0 [отзыв] (d = 0,21), 1 (d = 0,23), 2 (d = 0,25), 3 (d = 0,27). Ширина каждого электрода-0,2 мм. Четыре провода платины/Иридиум (90/10) парилена изоляцией защищены в силиконовой трубки. (Б) увеличение массива электрода (красная пунктирная площадь). Массив электрода и Платиновый ведения мяча подключены к печати Совета. Шкалы бар = 1 мм. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58073/58073fig5large.jpg" target="_blank">пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.</a>
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58073/58073fig6.jpg"> Рисунок 6: установки электрически вызывали ABR (eABR). CI Платиновый земли мяч (Gnd, красный) помещается в кармане подкожно в шею мыши. Линии между активной (Ch1(+) на вершины) и ссылка (Ref (-) на ипсилатеральной уха) ABR электроды перпендикулярно линии между электродом массив и землю для того, чтобы получить лучший ответ eABR. Электрод eABR Земля (Gnd, черный) помещается в заднюю ногу. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58073/58073fig6large.jpg" target="_blank">Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.</a>
<img alt="Figure 7" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58073/58073fig7.jpg"> Рисунок 7: представитель eABR волн для стимуляции CI в оглушен мыши. Двухфазный импульсов представлен электрода #1 в монополярной конфигурации на 23,3 импульсов в секунду (pps) с 400 повторений. Раздражители уровень 0-175 μA показан 25 μA шаги (см. детали стимуляции в шаг 7.2). Римские цифры обозначают eABR волновых чисел. Амплитуды волны и латентность увеличения и уменьшения, соответственно, с увеличением текущего уровня. В этом примере, волна II появились около 1 мс, волна III около 2 мс, волны IV около 3 МС, волна V около 4 мс. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58073/58073fig7large.jpg" target="_blank">Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.</a>
<img alt="Figure 8" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58073/58073fig8.jpg"> Рисунок 8: пример лицевого нерва стимуляции. В некоторых случаях CI стимуляции может активировать лицевого нерва и вызывают прямой ответ с короткой задержкой (A) (стрелка) или косвенный ответ с дольше задержка (B) (стрелка). Приведенные примеры являются из двух животных, CI-имплантированные стимулируется с двухфазными импульсов с помощью 0-300 μA 50 μA шагов (см. детали стимуляции в шаг 7.2). Римские цифры обозначают eABR волны чисел. * обозначает отсечения eABR волны благодаря насыщению усилителя. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58073/58073fig8large.jpg" target="_blank">Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.</a>

Watch this Scientific Journal Video about Cochlear Implant Surgery and Electrically-evoked Auditory Brainstem Response Recordings in C57BL/6 Mice at JoVE.com

Cochlear Implant Surgery and Electrically-evoked Auditory Brainstem Response Recordings in C57BL/6 Mice

Животные модели кохлеарных имплантатов можно заранее знания технологических основ лечения постоянным нейросенсорной тугоухости с электрической стимуляции. Это исследование представляет хирургический протокол для острой оглушительный и кохлеарной имплантации массива электродов в мышей, а также функциональной оценки с ответом слуховой ствола мозга.

Улитковый имплантат хирургии и записи ответ электрически вызывали слуховой мозга мышей C57BL/6

Cochlear implants (CIs) are neuroprosthetic devices that can provide a sense of hearing to deaf people. However, a CI cannot restore all aspects of ...

Модели кохлеарных имплантов могут продвинуть наши знания о технологической основе лечения постоянной сенсорной нервной потери слуха с помощью электрической стимуляции. Этот протокол демонстрирует острую оглушительную и кохлеарную имплантацию в мышь. И функциональная оценка стимуляции кохлеарных имплантов с слуховой реакцией ствола мозга.Некоторые основные проблемы выполнения кохлеарных имплантов хирургии у мышей являются небольшой размер улитки и наличие большой стапедиальной артерии вблизи круглого окна нишу. Для измерения нормального состояния слуха, загрузить акустическую пену в один миллилитр шприц и ввести от 100 до 200 микролитров пены в контралатеральный ушной канал анестезированной восемь-двенадцать недель C57 черный 6 мыши, чтобы изолировать слуховой мозг стволовых ответ от ипсилатерального уха, заботясь о том, чтобы шприц уплотнения близко к уху для доставки пены всю дорогу в ушной канал. Затем поместите динамик в 10 сантиметров от ипсилатерального уха и очистите электроды aVR 70%этанолом.Поместите эталонный электрод под кожу ниже пинна ипсилатерального уха и активный электрод под кожей вершины. Положите наземный электрод под кожу задней ноги. Подключите головной сцену и предустановку к слуховому процессору через порт оптического волокна.И проверьте неуступляемость активных и эталонных электродов. Когда электроды отображают тот же импульс, закройте звуконепроницаемый стенд и представить кнопку стимуляции. Запись AVR в свободном состоянии поля с соответствующим сложным слуховым процессором и программным обеспечением.Стандартизация нажмите стимул 0,1 миллисекунды одного канала монофазных кликов, представленных на 21 герц с уменьшением уровня кликов от 90 децибел уровня звукового давления до 10 децибел уровня звукового давления в 10 децибел шаги в 10 миллисекундного окна записи. Затем определите порог aVR как самый низкий уровень децибел с узнаваемой волновой реакцией aVR. Чтобы вызвать оглушительный, поместите мышь на правой стороне заботясь, чтобы держать тело прямо так дыхательные пути остаются открытыми.Удалите мех за ипсилатеральным ухом и дезинфицировать обезвреженное кожу последовательным раствором этанола 70%и скрабами Povidone-Iodine Solution Scrubs. Перемести животное под рассекающий микроскоп и используйте 16-ти раз объектив и скальпель, чтобы сделать один-полтора сантиметра постаурного разреза. Под 25 до 40x увеличение, использовать миппы, чтобы тупой вскрыть через открытый подкожный слой жира и втягивать стерноклидомастоидной мышцы, чтобы выявить тимпанический булла periosteum.Лицевой нерв обертывания вокруг задней спинной край грудиклеидомастоидной мышцы и работает rostrally вдоль ушного канала к пинне. Использование лицевого нерва в качестве ориентира для идентификации слуховой буллы аккуратно поместите самоутвергающий инструмент ретрактора в разрез для доступа к булле. Удалите ткань, перевесив медиодорную область буллы, чтобы дать можно было четко визуализировать хребет между буллой и мастоидным процессом и нежно повернуть 30 гуаговую иглу в буллу, чтобы создать отверстие на задней верхней стороне хребта.Pinch мелкие кусочки кости с тонкой наконечником щипцы, чтобы расширить булластомию до тех пор, пока полость среднего уха подвергается. И продлить отверстие dorsally к мастоидного процесса до тех пор, пока круглая ниша окна очищается от чрезмерной кости. Наиболее важным шагом является подготовка оконной ниши.Не забудьте взять свое время, чтобы не повредить стапедиальной артерии. Заботьтесь о том, чтобы не повредить стапедиальную артерию, расширьте булластомию в передней верхней стороне, чтобы визуализировать стапы, кость среднего уха, соединенную с овальным окном. Затем удалите стапы, чтобы разоблачить овальное окно.Чтобы применить ототоксический агент, используйте притупленный 30 guage иглы мягко перфорировать круглые и овальные мембраны окна, подтверждая, что перилимф иссякнут. И использовать один миллилитр шприц оснащен 30 калибровочных иглы медленно perfuse 0,2 миллилитров 5%weight по объему неомицин растворяется в PBS через овальное окно. Когда весь объем агента был доставлен обильное решение в круглое окно, заботясь, чтобы не повредить структуры оконной кости.И поместите один квадратный миллиметр кусочки губчатого пропитанной неомицина в круглое окно и овальное окно нишу. Затем снимите втягивающий и закройте разрез, записав пост-оглушительный акустический AVR, как это было продемонстрировано через 30 минут. Чтобы вставить электродный массив кохлеарного импланта, поместите инструмент ретрактора обратно в разрез, чтобы повторно получить доступ к булле и вставить электродный массив в scala tympani на глубине, так что четвертое платиновое кольцо массива находится прямо внутри круглого окна.Вставка электродного массива также может быть сложной задачей. Так что не то время, чтобы найти хороший угол вставки с помощью одного инструмента forcep вести провода, а другой вставить массив. Катушка свинцовой проволоки внутри буллы и клей проволоки к ткани над булла.После тщательного удаления втягивания и закрытия вставки с помощью тканевого клея, используйте scalepel, чтобы сделать 0,5 миллиметра разрез в шее, перпендикулярно линии между тем, где активные и эталонные электроды AVR будет. Поместите молотый шар в вставку и соедините доску электродного массива с платформой стимулятора животных. Для выполнения и электрического AVR, поместите электроды, как ранее продемонстрировано, и откройте программное обеспечение платформы стимулятора животных.Затем определите парадигму стимуляции электрического импульса и представляем электропозиции, записывающие вызванные электрические реакции aVR непрерывно через headstage TBT, преамплификатор и слуховой процессор. Пред- и послеоперационные пороги слуха служат функциональным считыванием оглушительной процедуры. Актуальное применение 5%neomycin к овальным и круглым окнам значительно увеличивает нажатые вызванные пороги слуха.Электрическая стимуляция интракохлеарный электрод пост оглушительный может надежно генерировать электрическую активность AVR. В некоторых случаях стимуляция кохлеарных имплантов активирует лицевой нерв и производит высокую амплитудную волну с короткой задержкой, характеризующейся быстрым усилением Волны III около трех миллисекунд и, вероятно, прямой реакцией лицевого нерва, или длительной задержкой, которая появляется около пяти-шести миллисекунд и, вероятно, будет не слуховой миогенной реакцией , ссылается косвенно лицевого нерва. В этом исследовании мы показали, что модель кохлеарного импланта мыши осуществима и кохлеарный имплант мал и операция: сложно.При попытке этой процедуры, важно рассмотреть оглушительный протокол для устранения любых электрофонических ответов в записи AVR и имитировать потерю волос клеток найти в большинстве пользователей C.I.. Таким образом, растущее число генетических моделей глухоты человека и биомедицинских инструментов, доступных у мышей, делает нас привлекательной моделью животных для исследования инструментов, в том числе для кохлеарных имплантов.

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Postsynaptic Recordings at Afferent Dendrites Contacting Cochlear Inner Hair Cells: Monitoring Multivesicular Release at a Ribbon Synapse

Постсинаптических Записи в Афферентные Дендриты Обращение Кохлеарные внутренние волосковые клетки: Мониторинг мультивезикулярные релиз на ленте Synapse

The afferent synapse between the inner hair cell (IHC) and the auditory nerve fiber provides an electrophysiologically accessible site for recording the ...

Preparation and Culture of Chicken Auditory Brainstem Slices

Подготовка и культуры Куриные ломтики Слуховые мозга

The chicken auditory brainstem is a well-established model system that has been widely used to study the anatomy and physiology of auditory processing at ...

Experimental Methods for Testing the Effects of Neurotrophic Peptide, ADNF-9, Against Alcohol-induced Apoptosis during Pregnancy in C57BL/6 Mice

Экспериментальные методы изучения влияния Нейротрофических пептида ADNF-9, против пьянства-индуцированного апоптоза в период беременности у мышей C57BL / 6

Experimental designs for investigating the effects of prenatal alcohol exposure during early embryonic stages in fetal brain growth are challenging. This ...

Long-term Time Lapse Imaging of Mouse Cochlear Explants

Долгосрочный длительной Визуализация мыши Cochlear эксплантов

Here we present a method for long-term time-lapse imaging of live embryonic mouse cochlear explants. The developmental program responsible for building ...

Direct Visualization of the Murine Dorsal Cochlear Nucleus for Optogenetic Stimulation of the Auditory Pathway

Прямая визуализация мышиный Спинной Cochlear Nucleus для Optogenetic стимуляции слухового пути

Investigation into the use of virus-mediated gene transfer to arrest or reverse hearing loss has largely been relegated to the peripheral auditory system. ...

Cortex-, Hippocampus-, Thalamus-, Hypothalamus-, Lateral Septal Nucleus- and Striatum-specific In Utero Electroporation in the C57BL/6 Mouse

Cortex-, Hippocampus-, Thalamus-, Hypothalamus-, Lateral Septal Nucleus- and Striatum-specific In Utero Electroporation in the C57BL/6 Mouse

Cortex-, Hippocampus-, Thalamus-, Hypothalamus-, Боковые перегородки ядерно и Стриатум конкретных<em&gt; В утробе матери</em&gt; Электропорация в C57BL / 6 мыши

In utero electroporation is a widely used technique for fast and efficient spatiotemporal manipulation of various genes in the rodent central nervous ...

Sagittal Plane Kinematic Gait Analysis in C57BL/6 Mice Subjected to MOG35-55 Induced Experimental Autoimmune Encephalomyelitis

Сагиттальная плоскость кинематической походка анализа мышей C57BL/6, подвергается MOG35-55 индуцированной Экспериментальный аутоиммунный энцефаломиелит

Kinematic gait analysis in the sagittal plane has frequently been used to characterize motor deficits in multiple sclerosis (MS). We describe the ...

A Simple Approach to Induce Experimental Autoimmune Neuritis in C57BL/6 Mice for Functional and Neuropathological Assessments

Простой подход к побудить Экспериментальный аутоиммунный неврит мышей C57BL/6 для оценки функциональных и патологического

Experimental autoimmune neuritis (EAN) is a well-appreciated experimental model of autoimmune peripheral demyelinating diseases. EAN disease is induced by ...

Auditory Brainstem Response and Outer Hair Cell Whole-cell Patch Clamp Recording in Postnatal Rats

Ответ слуховой ствола мозга и внешние клетки волос поклеточного патч зажим запись в послеродовой крыс

The outer hair cell is one of the two types of sensory hair cells in the mammalian cochlea. They alter their cell length with the receptor potential to ...

Data Acquisition and Analysis In Brainstem Evoked Response Audiometry In Mice

Приобретение данных и анализ в Brainstem вызвал ответ аудиометрии у мышей

Brainstem evoked response audiometry (BERA) is of central relevance in the clinical neurophysiology. As other evoked potential (EP) techniques, such as ...