Name: porcine as a training module for head and neck microvascular reconstruction
Uploaded: 2018-09-29T13:00:00
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Questo lavoro è stato finanziato e sostenuto dal programma di ricerca di scienza base attraverso la National Research Foundation di Corea (NRF) finanziato dal Ministero della scienza, ICT e futuro pianificazione (2015R1C1A1A01051907). Questo lavoro è stato supportato anche dal programma di ricerca di scienza base attraverso la nazionale Ricerca Fondazione della Corea (NRF) finanziato dal Ministero della scienza, ICT & futuro pianificazione (NRF-2016M3A9E9941746).

Questo studio è stato guidato e approvato dal dipartimento di laboratorio animale risorse, Yonsei Biomedical Research Institute, Yonsei University College of Medicine, accreditato dall'associazione per la valutazione e l'accreditamento di laboratorio Animal Care Internazionale. Questo studio ha seguito le linee guida per la cura e l'uso di animali da laboratorio dell'Istituto di laboratorio animale risorse Commissione il Consiglio nazionale delle ricerche Scienze della vita. Tutti i suini sono stati acclimatati per una ...

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	<li>Chen, C. L., Zenga, J., Roland, L. T., Pipkorn, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Complications+of+double+free+flap+and+free+flap+combined+with+locoregional+flap+in+head+and+neck+reconstruction:+A+systematic+review.">Complications of double free flap and free flap combined with locoregional flap in head and neck reconstruction: A systematic review.</a> Head &amp; Neck journal of the Science and Specialties of the Head and Neck. 40 (3), 632-646 (2018).</li><li>Smith, R. K., Wykes, J., Martin, D. T., Niles, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Perforator+variability+in+the+anterolateral+thigh+free+flap:+a+systematic+review.">Perforator variability in the anterolateral thigh free flap: a systematic review.</a> Surgical and Radiologic Anatomy. 39 (7), 779-789 (2017).</li><li>Bauer, F., Koerdt, S., H&#246;lzle, F., Mitchell, D. A., Wolff, K. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Eight+free+flaps+in+24+hours:+a+training+concept+for+postgraduate+teaching+of+how+to+raise+microvascular+free+flaps.">Eight free flaps in 24 hours: a training concept for postgraduate teaching of how to raise microvascular free flaps.</a> British Journal of Oral and Maxillofacial. 54 (1), 35-39 (2016).</li><li>Schoeff, S., Hernandez, B., Robinson, D. J., Jameson, M. J., Shonka, D. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Microvascular+Anastomosis+Simulation+Using+a+Chicken+Thigh+Model:+Interval+Versus+Massed+Training.">Microvascular Anastomosis Simulation Using a Chicken Thigh Model: Interval Versus Massed Training.</a> The Laryngoscope. 127 (11), 2490-2494 (2017).</li><li>Bodin, F., Diana, M., Koutsomanis, A., Robert, E., Marescaux, J., Bruant-Rodier, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Porcine+model+for+free-flap+breast+reconstruction+training.">Porcine model for free-flap breast reconstruction training.</a> Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 68 (10), 1402-1409 (2015).</li><li>Rodriguez, J. R., Ya&#241;ez, R., Cifuentes, I., Varas, J., Dagnino, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Microsurgery+Workout:+A+Novel+Simulation+Training+Curriculum+Based+on+Nonliving+Models.">Microsurgery Workout: A Novel Simulation Training Curriculum Based on Nonliving Models.</a> Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 138 (4), 739e-747e (2016).</li><li>Carey, J. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Simulation+of+plastic+surgery+and+microvascular+procedures+using+perfused+fresh+human+cadavers.">Simulation of plastic surgery and microvascular procedures using perfused fresh human cadavers.</a> Plastic and Reconstructive Surgery journal. 67 (2), e42-e48 (2014).</li><li>Chan, W., Niranjan, N., Ramakrishnan, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Structured+assessment+of+microsurgery+skills+in+the+clinical+setting.">Structured assessment of microsurgery skills in the clinical setting.</a> Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 63 (8), 1329-1334 (2010).</li><li>Matsumura, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+newly+designed+training+tool+for+microvascular+anastomosis+techniques:+Microvascular+Practice+Card.">A newly designed training tool for microvascular anastomosis techniques: Microvascular Practice Card.</a> Surgical Neurology Journal. 71 (5), 616-620 (2010).</li><li>Kim, W. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tracheal+reconstruction+with+a+free+vascularized+myofascial+flap:+preclinical+investigation+in+a+porcine+model+to+human+clinical+application.">Tracheal reconstruction with a free vascularized myofascial flap: preclinical investigation in a porcine model to human clinical application.</a> Scientific Reports. 7 (1), 10022 (2017).</li></ol>

Difetti e morbosità significativa possono verificarsi nella testa e del collo pazienti malignità durante l'amministrazione chirurgica. Trasferimento libero microvascolare del tessuto è diventato essenziale per la ricostruzione nella maggior parte dei casi. La vitalità della falda è un problema critico, che richiede fermezza, precisa movimentazione del pedicle, sensazione tattile, abilità visuospatial e flow operativo eccellente dal chirurgo8. Per sviluppare queste competenze, uno ha bisogno ...

Ricostruzione dopo la chirurgia per le malattie maligne testa e del collo è una procedura difficile associata con la morbosità significativa. Ricostruzione microvascolare libero-falda è stato ben stabilito come l'approccio standard alla ricostruzione per oltre 20 anni1,2,3. Trasferimento libero-falda svolge un ruolo significativo nel migliorare la gestione del collo e della testa in malati di cancro e in lesioni post-traumatiche quindi spingendo i confini dell'asportazione chirurgica della malattia di là di tecniche precedenti, con conseguente maggiore paziente qualità della vita e la sopravvivenza più lunga tariffe1,2,3. I vari lembi per la ricostruzione sono rotazionali, innesto e gratuito lembi.
Ha ampliato il ruolo delle falde libere nella ricostruzione del collo e della testa. È il lembo più difficile da lavorare, che richiedono un trattamento specializzato e delicato. Fallimento di falda è un evento catastrofico, con morbosità significativa4,5. Così, tempo di allenamento considerevole è necessaria per sviluppare la precisione necessaria per il successo risultati chirurgici3,4,5,6,7,8, 9. La ripida curva di apprendimento connessa con tale una chirurgia può influenzare l'esito per i pazienti e interessano trattamento gestione3,4,5,6,7, 8,9. Per ridurre il tempo di allenamento e curva di apprendimento per nuovi chirurghi, un modello di formazione è necessario che imita la biologia umana e fornisce condizioni campo chirurgico simile8.
L'obiettivo di questo studio è quello di mostrare la visibilità di porcino come un modulo di formazione buona per la testa ed il collo ricostruzione microvascolare che assomiglia il caso umano con miglioramento delle competenze in modo attivo.
Questo studio ha studiato l'uso di un modello porcino per nuovi colleghi di formazione nella ricostruzione microvascolare testa e del collo per trasferimento libero-falda a fornire un conveniente e meno stressante supplemento in modo affidabile per l'addestramento di campo clinico con simili caratteristiche per le procedure di libero-falda. Suini sono stati utilizzati per molti studi e come insegnamento modelli per varie ricostruzioni chirurgiche, ad esempio, la ricostruzione del seno; 5 tuttavia, maiali non sono mai stati utilizzati per la ricostruzione del collo e della testa tranne nel nostro studio per ricostruzione tracheale a causa di stenosi tracheale10.
L'idea è stata iniziata dopo Frederic Bodin7, che descrivono la falda simile per ricostruzione del seno. Il vantaggio principale per lo studio sull'altro modulo di formazione microvascolare è il modulo attivo vivacizzare con un risultato reale immediato della procedura.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>Pigs XP Bio, Seoul, South Korea</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Hair Removal shaver</td>
			<td>3M</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>22 gage catheter</td>
			<td>B.BRAUN</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>syring with needle size 18</td>
			<td>Jung Rim Medical</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Intramuscular alfaxan</td>
			<td>Careside</td>
			<td></td>
			<td>10ml/VAL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Intramuscularxylazine</td>
			<td>Bayer</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Intramuscular azaperone</td>
			<td>Sigma-aldrich</td>
			<td></td>
			<td>34223</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Intramuscular atropine</td>
			<td>Daewon</td>
			<td></td>
			<td>0.5mg/A</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Intramuscular cefazolin</td>
			<td>Yuhan</td>
			<td></td>
			<td>1g</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>intravenous Ketorolac</td>
			<td>Hana Pharm</td>
			<td></td>
			<td>30mg</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Swine ansthesia mask</td>
			<td>DRE</td>
			<td></td>
			<td>1392</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>endotracheal cuff tube 6.5 mm</td>
			<td>SMITH medical</td>
			<td></td>
			<td>100/150/065</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ansthesia Machine</td>
			<td>Dr&#228;ger</td>
			<td></td>
			<td>PRIMUS IE</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2% lidocaine topical solution</td>
			<td>Taejoon</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>vet ointment</td>
			<td>Pfizer</td>
			<td></td>
			<td>terramycin<img alt="Misc" src="/files/ftp_upload/58104/58104misc1.jpg" /></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>eye cover patch</td>
			<td>Innomed</td>
			<td></td>
			<td>S-universal010S</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>betadine solution 1%.</td>
			<td>Korea Pharma</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>gauze 4*4</td>
			<td>First Medical</td>
			<td></td>
			<td>22*30CM 320S</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>blade No. 23</td>
			<td>Paragon</td>
			<td></td>
			<td>23</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>lahey retractor</td>
			<td>V.Mueller</td>
			<td></td>
			<td>SU3960</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>kelly tissue scissors</td>
			<td>SOLCO</td>
			<td></td>
			<td>05-1990</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>blade No. 11</td>
			<td>Paragon</td>
			<td></td>
			<td>11</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>surgical marking pen</td>
			<td>Aspen Surgical</td>
			<td></td>
			<td>Regular #2750</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>allis</td>
			<td>V.Mueller</td>
			<td></td>
			<td>SU4055</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>tie suture</td>
			<td>Covidein</td>
			<td></td>
			<td>non-needle</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3.5&#215; surgical loupe</td>
			<td>zeiss</td>
			<td></td>
			<td>eyemag smart</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>double clamp without frame</td>
			<td>V.Mueller</td>
			<td></td>
			<td>CH7155</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>microscissors</td>
			<td>AESCULAP</td>
			<td></td>
			<td>FD038R</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ringer&#39;s lactate</td>
			<td>Daehan</td>
			<td></td>
			<td>500ml/1bag</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>amoxicillin&#8211;clavulanate</td>
			<td>Ilsung</td>
			<td></td>
			<td>0.6g/V</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Meloxicam</td>
			<td>Samil</td>
			<td></td>
			<td>7.5mg</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>propofol</td>
			<td>Dong Kook</td>
			<td></td>
			<td>120mg/V</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>intravenous KCl solution</td>
			<td>Daehan</td>
			<td></td>
			<td>20ml/50P</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>mosquito curved</td>
			<td>SOLCO</td>
			<td></td>
			<td>013-0111</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>mosquito straight</td>
			<td>SOLCO</td>
			<td></td>
			<td>05-1050</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ethilone 10-0 suture</td>
			<td>ethicone</td>
			<td></td>
			<td>10/0W1756</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vicryl 3-0.</td>
			<td>ethicone</td>
			<td></td>
			<td>3/0W9890</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>buprenorphine</td>
			<td>Hanlim</td>
			<td></td>
			<td>0.3mg</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

porcine as a training module for head and neck microvascular reconstruction

Modelli dal vivo che assomigliano a condizioni chirurgiche degli esseri umani sono necessari per la formazione libero-falda raccolta e anastomosi. Modelli animali per gli scopi di addestramento sono stati disponibili per anni in molti campi della chirurgia. Abbiamo usato la femmina (perché sono facili da gestire per la procedura) Yorkshire maiali per la ricostruzione del collo e della testa raccogliendo il perforatore dell'arteria epigastrica inferiore profonda o la falda del perforatore dell'arteria epigastrica superiore. Il sito di anastomosi (difetto di pelle del collo o della trachea) è stato preparato tramite la dissezione dell'arteria carotica comune e la vena giugulare interna, in cui 3,5 × ingrandimento lente di ingrandimento è stato usato per anastomosi come si usa sui casi umani nella vita reale. Questa procedura viene illustrato un nuovo metodo di allenamento utilizzando un modello di apprendimento affidabile e fornisce un'anatomia dettagliata in uno scenario dal vivo. Ci siamo concentrati sul tempo di ischemia, raccolta, anastomosi di nave e progettare la falda per adattarsi sito del difetto. Questo modello migliora la gestione del tessuto e con l'uso di strumenti idonei può essere ripetuto molte volte, così che il chirurgo è pienamente fiducioso prima di iniziare l'intervento sugli esseri umani.

Abbiamo effettuato la procedura su sei suini: ricostruzione di difetto della pelle cervicale su due maiali, ricostruzione tracheale su due maiali e libero della falda per verificare l'anastomosi vascolare periferica in due maiali. I maiali sono stati monitorati per 3 mesi e non c'era alcun segno clinico di deficit neurologico.
Il tempo medio per ischemia era 50 min (range, min 35-80); il tempo è diminuito come la procedura è s...

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Porcine As a Training Module for Head and Neck Microvascular Reconstruction

Porcino come un modulo di formazione per ricostruzione microvascolare del collo e testa

Qui presentiamo un protocollo per l'uso del maiale superiore dell'arteria epigastric perforator flap come un modulo di apprendimento per testa e collo ricostruzione microvascolare.

Live models that resemble surgical conditions of humans are needed for training free-flap harvesting and anastomosis. Animal models for training purposes ...

Questo metodo può aiutare a rispondere a domande chiave su come impostare un modulo di allenamento della vita per la ricostruzione microvascolare della testa e del collo. Il vantaggio principale di questa tecnica è che facilita un de froment di abilità di chirurgia ricostruttiva microvascolare per chirurghi principianti. Inizia usando un laringoscopio per esporre le corde vocali attraverso la bocca di un maiale yorkshire femmina da 25 a 30 grammi e spruzzando le corde con due sbuffi di soluzione topica al lidocaina al 2% per prevenire il laringospasmo indotto dall'intubazione.Intubato con un tubo da 6,5 millimetri. E usa una siringa per gonfiare il polsino del tubo con da tre a cinque millilitri d'aria. Dopo aver fatto in modo che il tubo tracheale sia nella posizione corretta, applicare un unguento agli occhi dell'animale.E proteggere gli occhi con un cerotto di copertura. Successivamente, utilizzare una soluzione di scrub a base di iodio all'1% per disinfettare il collo e la parete addominale. E usa una lama numero 23 per fare un'incisione verticale del collo anteriore della linea mediana allo sterno.Sezionare i muscoli del cinturino. E usa le forbici tissutali Kelly e un riavvolgitore Lahey per tirare indietro i muscoli lateralmente per esporre la trachea dal primo anello all'ingresso toracico. Esporre l'arteria carotide comune nella vena giugulare interna per l'anastomosi e utilizzare una lama numero 11 per creare una finestra di un centimetro nella seconda o terza cartilagine.Quindi cercare il tubo endotracheale attraverso il difetto tracheale e confermare la presenza di aerazione continua attraverso il tubo. Per eseguire una raccolta superiore del lembo del perforatore dell'arteria epigastrica, utilizzare una penna di marcatura chirurgica per progettare un lembo sull'addome superiore e utilizzare un bisturi numero 23 per creare un'incisione ellittica della pelle di quattro per tre centimetri attraverso la tonalità anteriore della parete addominale sul lato mediale del lembo. Tenendo la fascia vicino all'Allis, elevare il lembo dalla focaia muscolare del retto abdominis per localizzare i perforatori che vanno al lembo della pelle.Sezionare contundente il tessuto muscolare esposto. E seguire i perforatori verso i vasi epigastrici superiori. Utilizzare un bisturi numero 23 per fare un'incisione laterale della pelle nel lembo.E blocca in modo superiore i vasi epigastrici superiori e le venae comitantes con un emostato. Quindi utilizzare le forbici del tessuto Kelly per tagliare sopra l'emostato e ligarare il vaso sotto l'emostato con una sutura a tre ore per consentire la rimozione dell'emostato. Per l'anastomosi del vaso utilizzare un loupe chirurgico per bloccare l'arteria carotide con due emostati distanti da uno a due centimetri.Utilizzare microscissori per tagliare tra gli emostati. E legare la parte superiore della nave con una doppia sutura per evitare perdite. Utilizzando il doppio morsetto senza il telaio tra le arterie carotide e flap, utilizzare una sutura interpretata a pieno spessore semplice da 10 oh per posizionare le prime due suture di permanenza a circa 120 gradi di distanza intorno alla circonferenza del vaso e due o tre punti tra le suture di permanenza.Rilasciare il morsetto e verificare la presenza di perdite. Se non c'è un riflusso dalla venae comitantes, creare un'altra anastomosi per la vena giugulare interna e la venae comitantes come appena dimostrato. Utilizzando una siringa dotata di un ago calibro 18, pungere la pelle per confermare la vitalità del lembo.Se appare una goccia di sangue, utilizzare una sutura a tre ore per chiudere la finestra tracheale con la fascia muscolare del flap del perforatore dell'arteria epigastrica superiore. Quindi esternalizzare e suturare un pannello cutaneo del lembo all'incisione della pelle della linea mediana cervicale e chiudere l'incisione cutanea addominale. Alla fine della procedura, riportare il maiale nella posizione soggetta e consentire all'animale di riprendersi senza altri animali.Consegnare il lattato di Ringer a una velocità di 150 millilitri all'ora fino a quando l'animale non si è completamente ripreso e somministrare buprenorfina da 0,3 milligrammi per l'analgesia. Quando l'animale viene reclinato inizia l'amoxicillina intramuscolare clavulanato e meloxicam per una settimana, controllando quotidianamente il sito del donatore e il lembo nel sito di ricostruzione per la progressione della guarigione. In questi studi rappresentativi il tempo medio di ischemia è stato di 50 minuti con il tempo di procedura che diminuisce man mano che il modello viene ripetuto.Il tempo medio di raccolta dei sei suini è stato di 55 minuti e non è stata osservata morbilità nel sito del donatore in questo modulo. La dimensione media del pedicolo dei lembi era di 10 centimetri, simile a quella osservata nella testa e nel collo umani. Il diametro medio dell'arteria era di 4,4 millimetri e il diametro medio vano era di 5,75 millimetri, entrambi più grandi della media umana di due millimetri per entrambi i vasi pur essendo in grado di simulare l'anatomia umana.La dimensione della pagaia della pelle variava da 25 a 40 centimetri quadrati senza un effetto significativo sul fallimento del lembo. Durante il tentativo di questa procedura è importante ricordare di avvicinarsi attentamente ai perforatori e di garantire un buon riflusso venoso. Dopo il suo sviluppo questa tecnica ha spianato la strada ai ricercatori nel campo della ricostruzione di Trachea per esplorare l'uso della fascia per difetti di trachea e per determinare un'adeguata dimensione sicura del lembo senza crollare le vie aeree.Non dimenticare che eseguire una ricostruzione trachea può essere estremamente pericoloso e che precauzioni come assicurarsi che le vie aeree siano brevettate e intatte dovrebbero sempre essere prese durante l'esecuzione di questa procedura.

Research

JoVE Journal

Medicine

RNAscope for In situ Detection of Transcriptionally Active Human Papillomavirus in Head and Neck Squamous Cell Carcinoma

RNAscope for In situ Detection of Transcriptionally Active Human Papillomavirus in Head and Neck Squamous Cell Carcinoma

RNAscope per<em&gt; In situ</em&gt; Rilevamento di trascrizionale attivo Papillomavirus Umano in Cervico Carcinoma a cellule squamose

The &#39;gold standard&#39; for oncogenic HPV detection is the demonstration of transcriptionally active high-risk HPV in tumor tissue. However, detection ...

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