Name: veno-venous extracorporeal membrane oxygenation in a mouse
Uploaded: 2018-10-24T13:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Veno-Venous Extracorporeal Membrane Oxygenation in a Mouse at JoVE.com

Dieses Projekt wurde durch KFO 311 Stipendium der Deutschen Forschungsgemeinschaft unterstützt.

Experimente wurden an männlichen C57BL/6 Mäusen, im Alter von 12 Wochen durchgeführt. Diese Studie wurde in Übereinstimmung mit den Richtlinien des deutschen Tier Gesetzes unter Protokoll TSA 16/2250.
1. Vorbereitung
Hinweis: Alle Schritte sind sauber, unsterilen Bedingungen durchgeführt. Sterile Bedingungen wäre erforderlich, wenn Tier postoperativ überlebten.
<ol><li>Führen Sie 3 Fenestrationen in einem 2-Fr Polyurethan-Schlauch mit einer chirurgischen ...

<ol>
	<li>Hill, J. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Prolonged+Extracorporeal+Oxygenation+for+Acute+Post-Traumatic+Respiratory+Failure+(Shock-Lung+Syndrome).">Prolonged Extracorporeal Oxygenation for Acute Post-Traumatic Respiratory Failure (Shock-Lung Syndrome).</a> New England Journal of Medicine. 286 (12), 629-634 (1972).</li><li>Noah, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Referral+to+an+Extracorporeal+Membrane+Oxygenation+Center+and+Mortality+Among+Patients+With+Severe+2009+Influenza+A(H1N1).">Referral to an Extracorporeal Membrane Oxygenation Center and Mortality Among Patients With Severe 2009 Influenza A(H1N1).</a> Journal of the American Medical Association. 306 (15), 1659 (2011).</li><li>Maslach-Hubbard, A., Bratton, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Extracorporeal+membrane+oxygenation+for+pediatric+respiratory+failure:+History,+development+and+current+status.">Extracorporeal membrane oxygenation for pediatric respiratory failure: History, development and current status.</a> World Journal of Critical. Care Medicine. 2 (4), 29-39 (2013).</li><li>Langer, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term="Awake"+extracorporeal+membrane+oxygenation+(ECMO):+pathophysiology,+technical+considerations,+and+clinical+pioneering.">"Awake" extracorporeal membrane oxygenation (ECMO): pathophysiology, technical considerations, and clinical pioneering.</a> Critical Care. 20 (1), 150 (2016).</li><li>Esper, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Extracorporeal+Membrane+Oxygenation.">Extracorporeal Membrane Oxygenation.</a> Advances in Anesthesia. 35 (1), 119-143 (2017).</li><li>Millar, J. E., Fanning, J. P., McDonald, C. I., McAuley, D. F., Fraser, J. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+inflammatory+response+to+extracorporeal+membrane+oxygenation+(ECMO):+a+review+of+the+pathophysiology.">The inflammatory response to extracorporeal membrane oxygenation (ECMO): a review of the pathophysiology.</a> Critical Care. 20 (1), 387 (2016).</li><li>Lubnow, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Technical+complications+during+veno-venous+extracorporeal+membrane+oxygenation+and+their+relevance+predicting+a+system-exchange--retrospective+analysis+of+265+cases.">Technical complications during veno-venous extracorporeal membrane oxygenation and their relevance predicting a system-exchange--retrospective analysis of 265 cases.</a> Public Library of Science One. 9 (12), e112316 (2014).</li><li>Passmore, M. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Inflammation+and+lung+injury+in+an+ovine+model+of+extracorporeal+membrane+oxygenation+support.">Inflammation and lung injury in an ovine model of extracorporeal membrane oxygenation support.</a> American Journal of Physiology - Lung Cellular and Molecular Physiology. 311 (6), L1202-L1212 (2016).</li><li>Vaquer, S., de Haro, C., Peruga, P., Oliva, J. C., Artigas, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Systematic+review+and+meta-analysis+of+complications+and+mortality+of+veno-venous+extracorporeal+membrane+oxygenation+for+refractory+acute+respiratory+distress+syndrome.">Systematic review and meta-analysis of complications and mortality of veno-venous extracorporeal membrane oxygenation for refractory acute respiratory distress syndrome.</a> Annals of Intensive Care. 7 (1), 51 (2017).</li><li>Houser, S. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+Models+of+Heart+Failure+A+Scientific+Statement+From+the+American+Heart+Association.">Animal Models of Heart Failure A Scientific Statement From the American Heart Association.</a> Circulation Research. 111 (1), 131-150 (2012).</li><li>Russell, J. C., Proctor, S. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Small+animal+models+of+cardiovascular+disease:+tools+for+the+study+of+the+roles+of+metabolic+syndrome,+dyslipidemia,+and+atherosclerosis.">Small animal models of cardiovascular disease: tools for the study of the roles of metabolic syndrome, dyslipidemia, and atherosclerosis.</a> Cardiovascular Pathology. 15 (6), 318-330 (2006).</li><li>Madrahimov, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Novel+mouse+model+of+cardiopulmonary+bypass.">Novel mouse model of cardiopulmonary bypass.</a> European Journal of Cardio-thoracic Surgery. 53 (1), 186-193 (2017).</li><li>Madrahimov, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cardiopulmonary+Bypass+in+a+Mouse+Model:+A+Novel+Approach.">Cardiopulmonary Bypass in a Mouse Model: A Novel Approach.</a> J. Journal of Visualized Experiments. (127), (2017).</li></ol>

Zuvor beschrieben wir ein erfolgreiches Modell der CPB in Maus12,13. Ein solches Modell für implementieren akute oder terminaler Lungenerkrankungen wir eine einfach zu bedienende Veno-venöse ECMO Schaltung für Mäuse entwickelt. Anders als das CPB-Modell, Veno-venöse ECMO komplizierte chirurgische Eingriffe wie Sternotomie und Klemmen der Aorta, erfordert keine wodurch das Risiko einer Wunde Blutung in ein vollständig heparinisierten Tier. Zur Vermeidung von...

Extrakorporalen Membran Sauerstoffversorgung (ECMO) ist eine temporäre Lebenserhaltungssystem, die Funktionen von Lunge und Herz übernimmt, um ausreichenden Gasaustausch und Perfusion zu ermöglichen. Hill Et al.1 beschrieben die erste Anwendung von ECMO bei Patienten im Jahr 1972; jedoch wurde es nur nach seiner erfolgreichen Anwendung während der H1N1-Influenza-Pandemie 20092genutzt. ECMO wird heute routinemäßig als lebensrettende Verfahren im Endstadium Herz und Lunge Erkrankungen3eingesetzt. VENO-venöse ECMO wird zunehmend als Alternative zur invasiven Beatmung in eingesetzt spontan atmende Patienten mit refraktärer respiratorische Insuffizienz4wach, nicht intubiert.
Trotz der weit verbreiteten Annahme wurden diverse Komplikationen für ECMO5,6,7beschrieben. Komplikationen, die bei Patienten auf ECMO werden können gehören Blutungen, Thrombose, Sepsis, Thrombozytopenie, gerätebezogene Störungen und Luftembolien. Darüber hinaus ist eine systemische entzündliche Reaktion-Syndrom (SIRS) zu Multi-Organ-Schäden gut beschrieben, sowohl klinisch als auch in experimentellen Studien8,9. Neurologische Komplikationen wie Hirninfarkt sind auch häufig bei Patienten mit ECMO-Langzeit-Therapie berichtet. Um Angelegenheiten zu verwirren, ist es oft schwierig zu unterscheiden, ob Komplikationen durch ECMO selbst entstehen oder ergeben sich aus der zugrunde liegenden Erkrankungen begleitend akute und terminalen Krankheiten.
Um speziell die Auswirkungen der ECMO auf einem gesunden Organismus untersuchen, muss eine zuverlässige experimentellen Tiermodell hergestellt werden. Auf die Leistung der ECMO auf Kleintiere und sind alle begrenzten Ratten gibt es sehr wenige Berichte. Bislang wurde keine Maus-Modell der ECMO in der Literatur beschrieben. Aufgrund der Verfügbarkeit einer großen Anzahl von genetisch veränderte Mausstämme würde Einrichtung ein Mausmodell ECMO weitere Untersuchung der molekularen Mechanismen beteiligt ECMO-Komplikationen10,11ermöglichen.
Basierend auf unserer oben beschriebenen Mausmodell der kardiopulmonalen Bypass (CPB)12, haben wir eine stabile Methode der Veno-venöse ECMO in nicht intubiert, spontan atmen Mäuse. Die ECMO-Schaltung (Abbildung 1), mit Abfluss und Zufluss Kanülen, einer peristaltischen Pumpe Oxygenator und Air-Trapping Reservoir ist ähnlich wie unser zuvor beschriebene Modell der murinen CPB12 mit Ausnahme haben eine kleinere Grundierung Volumen (0,5 mL). Dieses Protokoll zeigt die detaillierte Techniken, physiologisches monitoring und Blut-Gas-Analyse in einem erfolgreichen ECMO-Verfahren.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>Sterofundin</td>
			<td>B.Braun Petzold GmbH</td>
			<td>PZN:8609189</td>
			<td>in 1:1 with Tetraspan</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tetraspan 6% Solution</td>
			<td>B. Braun Melsungen AG</td>
			<td>PZN: 05565416</td>
			<td>in 1:1 with Sterofundin</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heparin Natrium 25.000</td>
			<td>Ratiopharm GmbH</td>
			<td>PZN: 3029843</td>
			<td>2,5 IU per ml of priming</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaHCO3 8,4% Solution</td>
			<td>B. Braun Melsungen AG</td>
			<td>PZN: 1579775</td>
			<td>3% in priming solution</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Carprofen</td>
			<td>Zoetis Inc., USA</td>
			<td>PZN:00289615</td>
			<td>5mg/kg/BW</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1 Fr PU Catheter</td>
			<td>Instechlabs INC., USA</td>
			<td>C10PU-MCA1301</td>
			<td>carotide artery</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2 Fr PU Catheter</td>
			<td>Instechlabs INC., USA</td>
			<td>C20PU-MJV1302</td>
			<td>jugular vein</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>8-0 Silk suture braided</td>
			<td>Ashaway Line &#38; Twine Co., USA</td>
			<td>75290</td>
			<td>ligature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isoflurane</td>
			<td>Piramal Critical Care GmbH</td>
			<td>PZN:9714675</td>
			<td>narcosis</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Spring Scissors - 6mm Blades</td>
			<td>Fine Science Tools GmbH</td>
			<td>15020-15</td>
			<td>instruments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Spring Scissors - 2mm Blades</td>
			<td>Fine Science Tools GmbH</td>
			<td>15000-03</td>
			<td>instruments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Halsted-Mosquito Hemostat</td>
			<td>Fine Science Tools GmbH</td>
			<td>13009-12</td>
			<td>instruments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dumont #55 Forceps</td>
			<td>Fine Science Tools GmbH</td>
			<td>11295-51</td>
			<td>instruments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Castroviejo Micro Needle Holder - 9cm</td>
			<td>Fine Science Tools GmbH</td>
			<td>12060-02</td>
			<td>instruments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micro Serrefines</td>
			<td>Fine Science Tools GmbH</td>
			<td>18555-01</td>
			<td>instruments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bulldog Serrefine</td>
			<td>Fine Science Tools GmbH</td>
			<td>18050-28</td>
			<td>instruments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isoflurane Vaporizer Drager 19.1</td>
			<td>Dr&#228;gerwerk AG &#38; Co. KGaA</td>
			<td></td>
			<td>anesthesia 1,3 -2,5%</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Multichannel Data Aquisition Device with ISOHEART Software</td>
			<td>Hugo Sachs Elektronik GmbH, Germany</td>
			<td></td>
			<td>invasive pressure, ECG, t &#176;C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>i-STAT portable device</td>
			<td>Abbott Laboratories, Lake Bluff, Illinois, USA</td>
			<td></td>
			<td>blood gas analysis</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>i-STAT CG4+ and CG8+ cartridges</td>
			<td>Abbott Laboratories, Lake Bluff, Illinois, USA</td>
			<td></td>
			<td>blood gas analysis</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>C57Bl/6 mice, male, 30 g, 14 weeks old</td>
			<td>Charles River Laboratories</td>
			<td></td>
			<td>housed 1 week before</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

veno-venous extracorporeal membrane oxygenation in a mouse

Der Einsatz der extrakorporalen Membran Sauerstoffanreicherung (ECMO) hat in den letzten Jahren deutlich erhöht. ECMO geworden ist eine zuverlässige und effektive Therapie für akute sowie terminaler Lungenerkrankungen. Mit der Zunahme der klinischen Bedarf und längerem Gebrauch ECMO sind verfahrenstechnische Optimierung und Vermeidung von Multi-Organ-Schäden von entscheidender Bedeutung. Das Ziel dieses Protokolls ist eine detaillierte Technik des Veno-venöse ECMO präsentieren in einer nicht intubiert, spontan atmen Maus. Dieses Protokoll zeigt die technische Auslegung der ECMO und OP-Schritte. Diese Mausmodell ECMO erleichtert das Studium der Pathophysiologie, die im Zusammenhang mit ECMO (z. B. Entzündungen, Blutungen und thromboembolische Ereignisse). Wegen der Fülle an genetisch veränderten Mäusen können die molekularen Mechanismen in ECMO-Komplikationen auch seziert.

Dieses Protokoll beschreibt die Methode der Veno-venöse ECMO in eine Maus. Dieses Modell zuverlässig und reproduzierbar und im Vergleich zu unserer oben beschriebenen Modell der CPB mit Atem-und Herz-Kreislauf-12,-13ist, ist es technisch weniger anspruchsvoll, zu etablieren.
ECMO fließen in das venöse System wurde zwischen 1,5 und 5 mL/min beibehalten. Der mittlere a...

Watch this Scientific Journal Video about Veno-Venous Extracorporeal Membrane Oxygenation in a Mouse at JoVE.com

Veno-Venous Extracorporeal Membrane Oxygenation in a Mouse

Hier präsentieren wir ein Protokoll beschreibt die Technik der Veno-venöse extrakorporalen Membran Sauerstoffanreicherung (ECMO) in einem nicht intubiert, spontan atmen Maus. Diese Mausmodell der ECMO kann effektiv in experimentellen Studien von akuten und terminaler Lungenerkrankungen implementiert werden.

VENO-venöse extrakorporalen Membran Sauerstoffversorgung in eine Maus

The use of extracorporeal membrane oxygenation (ECMO) has increased substantially in recent years. ECMO has become a reliable and effective therapy for ...

Diese Methode kann helfen, schlüsselhafte Fragen auf dem Gebiet der Lungenforschung zu beantworten, wie z. B. im Zusammenhang mit der Therapie von akuten und chronischen Lungenerkrankungen im Endstadium. Der Hauptvorteil dieser Technik ist, dass sie den Beginn molekularer und pathologischer Mechanismen von Multiorganschäden bei längerer extrakorporaler Membransauerstoffversorgung als lebensrettendes Verfahren erleichtert. Verwenden Sie unter sauberen, nicht-sterilen Bedingungen eine chirurgische Klinge und ein Sezierendes Mikroskop, um drei Fenestrationen in das distale Drittel eines zwei französischen Polyurethankatheters unter 16-facher Vergrößerung einzuführen.Als nächstes legen Sie die Abflusskanüle in die Grundierungslösung, schalten Sie die peristaltische Pumpe ein, um die extrakorporale Membransauerstoffversorgung oder ECMO-Maschine zu füllen, um den Stromkreis mit einem Durchfluss von einem Millimeter pro Minute zu grundieren. Nach 30 Minuten 0,5 Liter pro Minute 100% Sauerstoff in den Sauerstoffator geben und das Fehlen einer Reaktion auf Zehenkneifen in einer anästhesierten erwachsenen Maus bestätigen. Nach dem Auftragen der Salbe auf die Augen des Tieres, machen Sie einen vier Millimeter seitlichen Hautschnitt auf der linken Seite des Halses, um die Jugularvene zu visualisieren, und verwenden Sie Mikrozangen und Wattestäbchen, um das Gefäß weiter zu belichten.Verwenden Sie eine 8-0 Seidennaht, um das distale Ende der exponierten Vene zu ligieren, und legen Sie einen Schlupfknoten am proximalen Ende. Incise die vordere Wand der Vene mit Mikroschere, und injizieren 2,5 internationale Einheiten pro Gramm Heparin in die juguläre Vene über eine 26-Spur-Branula, erhöhung der Kopfende des chirurgischen Pad um 30 Grad, um übermäßigen Blutverlust während der Einfügung zu vermeiden. Legen Sie die fenestrated zwei französischen Polyurethan-Kanüle vorsichtig in das proximale Ende der jugularen Vene, drehen Sie die Kanüle leicht, während die Kanüle auf eine Vier-Zentimeter-Tiefe zu drücken, um die illiac Bifurkation der minderwertigen Vena cava zu erreichen.Es ist wichtig, die Kanüle sehr sanft zu schieben, aber kontinuierlich ohne den Einsatz von zusätzlicher Kraft. Wenn Widerstand auftritt, ziehen Sie die Kanüle zurück und legen Sie sie erneut ein. Sichern Sie die Kanüle mit 8-0 Seidenknoten, und setzen Sie die rechte Jugular Vene, wie gerade gezeigt.Die rechte Jugularvene mit einer französischen Polyurethankanüle anheben, die Kanüle sanft fünf Millimeter in Richtung des rechten Vorhofs bewegen und die Kanüle mit 8-0 sichern Seidenknoten. Katheterisieren Sie die linke Femoralarterie mit einer weiteren französischen Polyurethankanüle für die invasive Drucküberwachung und Blutgasanalyse, und setzen Sie Elektrokardiogrammnadeln, die mit einem Datenerfassungsgerät verbunden sind, subkutan in beide Vorderbeine und in die linke Brustwand ein. Legen Sie dann ein rektales Thermometer ein, das an ein Datenerfassungsgerät angeschlossen ist.Um die blutvenöse extrakorporale Sauerstoffversorgung der Membran zu initiieren, schalten Sie die Pumpe auf einen anfänglichen Durchfluss von 0,1 Milliliter pro Minute ein. Stellen Sie nach zwei Minuten den Durchfluss auf drei bis fünf Milliliter pro Minute ein. Überwachen Sie bei stabilem Durchfluss die Vitalparameter über das Datenerfassungsgerät im Echtzeitmodus, überprüfen Sie kontinuierlich den Rückfluss aus der Venenentwässerung und überwachen Sie den Blutspiegel im Luftbehälterreservoir.Verwenden Sie eine Ein-Milliliter-Spritze mit einer 24-Spur-Branula, um Blutlecks zu sammeln, und geben Sie das Blut über das Luftfangreservoir an den ECMO-Kreislauf zurück. Für die Blutgasanalyse, 10 Minuten nach ECMO-Initiierung, verwenden Sie eine Blutentnahmepatrone, um etwa 75 Mikroliter arterielles Blut aus der unteren Vena cava vor dem Sauerstoffator, direkt nach dem Sauerstoffator und aus der Femoralarterie zu sammeln. 30 und 60 Minuten nach ECMO-Einweihung, sammeln Sie nur Blut aus der Femoralarterie.45 und 90 Minuten nach der Einleitung 0,1 Milliliter Grundierlösung verabreichen, um den intravasalen Flüssigkeitsverlust über den Lufttrapper auszugleichen. Zwei Stunden nach der Einweihung, sammeln Sie Blut aus dem Sauerstoffator, minderwertige Vena cava, und Femoralarterie. Reduzieren Sie nach der letzten Blutentnahme den Durchfluss auf der Pumpe im Laufe von fünf Minuten, wodurch die ECMO gestoppt wird, während Sie die vitalen Parameter für weitere 10 Minuten aufzeichnen.In einem typischen Experiment werden die physiologischen Parameter des Tieres alle 10 Minuten aufgezeichnet. In diesem repräsentativen Experiment zeigten die hämatologischen Parameter eine relevante Hämodilution während der ECMO, obwohl keine Bluttransfusion erforderlich war, um eine moderate Anämie auszugleichen. Die Sauerstoffparameter zeigten eine korrekte Sauerstoffleistung bei einem Sauerstoffluftgemisch bei einem Bruchteil des inspirierten Sauerstoffs von 1,0 an.Darüber hinaus beinhalteten die metabolischen Veränderungen während der ECMO Atemalkalose zu Beginn und am Ende des Experiments. Es wurde keine zusätzliche Blutpufferung durchgeführt. Es ist wichtig, die richtige Konserventechnik zu verwenden, um Blutflüsse durch den ECMO-Kreislauf zu absorbieren, die Sauerstoffparameter mittels Blutgasanalyse zu überwachen und jeglichen Blutverlust durch Blutentnahme durch eine zusätzliche Grundierlösung zu ersetzen.Diese Technik ebnet Forschern auf dem Gebiet der Lungenerkrankung den Weg, die Protokolle für lebensrettende Behandlungen durch den Einsatz von über 80 verfügbaren Knock-in-Knock-out-Mausmodellen deutlich zu verbessern.

Research

JoVE Journal

Medicine

Dual-mode Imaging of Cutaneous Tissue Oxygenation and Vascular Function

Dual-Mode-Imaging von Hautgewebe Oxygenation und Gefäßfunktion

Accurate assessment of cutaneous tissue oxygenation and vascular function is important for appropriate detection, staging, and treatment of many health ...

Forschung

Medizin

A Mouse Model of in Utero Transplantation

A Mouse Model of in Utero Transplantation

Einem Mausmodell der In Utero Transplantation

The transplantation of stem cells and viruses in utero has tremendous potential for treating congenital disorders in the human fetus.  For example, in ...

Multi-photon Imaging of Tumor Cell Invasion in an Orthotopic Mouse Model of Oral Squamous Cell Carcinoma

Multi-Photonen-Imaging der Tumorzellinvasion in einem orthotopen Mausmodell des oralen Plattenepithelkarzinoms

Loco-regional invasion of head and neck cancer is linked to metastatic risk and presents a difficult challenge in designing and implementing patient ...

Hyperinsulinemic-euglycemic Clamps in Conscious, Unrestrained Mice

Hyperinsulinämische-euglykämische Schellen in dem Bewusstsein, Unrestrained Mäuse

Type 2 diabetes is characterized by a defect in insulin action. The hyperinsulinemic-euglycemic clamp, or insulin clamp, is widely considered the "gold ...

A Simple Method of Mouse Lung Intubation

Eine einfache Methode der Maus Lung Intubation

A  simple procedure to intubate mice for pulmonary function measurements would  have several advantages in longitudinal studies with limited numbers or  ...

Carotid Artery Infusions for Pharmacokinetic and Pharmacodynamic Analysis of Taxanes in Mice

Halsschlagader Infusionen für pharmakokinetischen und pharmakodynamischen Analyse von Taxanen in Mäusen

When proposing the use of a drug, drug combination, or drug delivery into a novel system, one must assess the pharmacokinetics of the drug in the study ...

Corneal Donor Tissue Preparation for Descemet's Membrane Endothelial Keratoplasty

Hornhautspendergewebe Vorbereitung für Descemetschen Membrane Endothelial Keratoplastik

Descemet&#8217;s Membrane Endothelial Keratoplasty (DMEK) is a form of corneal transplantation in which only a single cell layer, the corneal endothelium, ...

Intrauterine Telemetry to Measure Mouse Contractile Pressure In Vivo

Intrauterine Telemetry to Measure Mouse Contractile Pressure In Vivo

Intrauterine Telemetrie zur Maus Kontraktionsdruck messen<em&gt; In-vivo-</em

A complex integration of molecular and electrical signals is needed to transform a quiescent uterus into a contractile organ at the end of pregnancy. ...

Cardiopulmonary Bypass in a Mouse Model: A Novel Approach

Kardiopulmonalen Bypass in einem Mausmodell: ein neuer Ansatz

As prolonged cardiopulmonary bypass becomes more essential during cardiac interventions, an increasing clinical demand arises for procedure optimization ...

Measurement of Tissue Oxygenation Using Near-Infrared Spectroscopy in Patients Undergoing Hemodialysis

Messung der Gewebeoxygenierung mittels Nahinfrarotspektroskopie bei Patienten, die sich einer Hämodialyse unterziehen

Near-infrared spectroscopy (NIRS) has recently been applied as a tool to measure regional oxygen saturation (rSO2), a marker of tissue oxygenation, in ...