Name: lung fixation under constant pressure for evaluation of emphysema in mice
Uploaded: 2019-09-26T12:30:00
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이 작품은 JSPS KAKENHI 교부금 번호 26461199 (T. 사토)와 환경 및 성별 특정 의학 연구소, 준텐도 대학 의학 대학원, 그랜트 번호 E2920 (T. 사토)에 의해 부분적으로 지원되었습니다. 이 파동은 현재의 방법의 설계와 원고 작성에 아무런 역할이 없었다.

다음 방법은 준텐도 대학 의과 대학의 동물 관리 및 사용위원회에 의해 승인되었습니다. 2006년 6월 1일, 일본 과학위원회의 동물 실험의 적절한 수행에 대한 지침이 준수되었습니다. 이 방법에는 1) 마우스 해부, 2) 폐 퇴출 및 3) 특수 장비에 의한 폐 조직의 고정의 세 가지 주요 단계가 있습니다. 전형적으로, 폐 시편은 고정12,15,16,</s...

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	<li>Vogelmeier, C. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Global+strategy+for+the+diagnosis,+management,+and+prevention+of+chronic+obstructive+lung+disease+2017+report.+GOLD+Executive+Summary.">Global strategy for the diagnosis, management, and prevention of chronic obstructive lung disease 2017 report. GOLD Executive Summary.</a> American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 195 (5), 557-582 (2017).</li><li>Pauwels, R. A., Rabe, K. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Burden+and+clinical+features+of+chronic+obstructive+pulmonary+disease+(COPD).">Burden and clinical features of chronic obstructive pulmonary disease (COPD).</a> Lancet. 364 (9434), 613-620 (2004).</li><li>Spurzem, J. R., Rennard, S. 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D., Folkerts, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+comparison+of+fixation+methods+on+lung+morphology+in+a+murine+model+of+emphysema.">A comparison of fixation methods on lung morphology in a murine model of emphysema.</a> American Journal of Physiology Lung Cellular and Molecular Physiology. 299 (6), L843-L851 (2010).</li><li>Hsia, C. 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L., Churg, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cigarette+smoke+causes+physiologic+and+morphologic+changes+of+emphysema+in+the+guinea+pig.">Cigarette smoke causes physiologic and morphologic changes of emphysema in the guinea pig.</a> The American Review of Respiratory Disease. 142 (6 Pt 1), 1422-1428 (1990).</li><li>Thurlbeck, W. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Internal+surface+area+and+other+measurements+in+emphysema.">Internal surface area and other measurements in emphysema.</a> Thorax. 22 (6), 483-496 (1967).</li><li>Wright, J. 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M., Grunewald, J., Nord, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+method+for+generating+pulmonary+neutrophilia+using+aerosolized+lipopolysaccharide.">A method for generating pulmonary neutrophilia using aerosolized lipopolysaccharide.</a> Journal of Visualized Experiments. (94), (2014).</li><li>Laucho-Contreras, M. E., Taylor, K. L., Mahadeva, R., Boukedes, S. S., Owen, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Automated+measurement+of+pulmonary+emphysema+and+small+airway+remodeling+in+cigarette+smoke-exposed+mice.">Automated measurement of pulmonary emphysema and small airway remodeling in cigarette smoke-exposed mice.</a> Journal of Visualized Experiments. (95), 52236 (2015).</li><li>Nakanishi, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Clarithromycin+prevents+smoke-induced+emphysema+in+mice.">Clarithromycin prevents smoke-induced emphysema in mice.</a> American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 179 (4), 271-278 (2009).</li><li>Maeno, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CD8++T+Cells+are+required+for+inflammation+and+destruction+in+cigarette+smoke-induced+emphysema+in+mice.">CD8+ T Cells are required for inflammation and destruction in cigarette smoke-induced emphysema in mice.</a> Journal of Immunology. 178 (12), 8090-8096 (2007).</li><li>Sato, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Optimal+fixation+for+total+preanalytic+phase+evaluation+in+pathology+laboratories:+a+comprehensive+study+including+immunohistochemistry,+DNA,+and+mRNA+assays.">Optimal fixation for total preanalytic phase evaluation in pathology laboratories: a comprehensive study including immunohistochemistry, DNA, and mRNA assays.</a> Pathology International. 64 (5), 209-216 (2014).</li></ol>

여기에 제시 된 설치류 폐에 대한 고정 절차는 소설이 아닙니다. 그러나 이 시스템에는 몇 가지 장점이 있습니다. 첫째, 한 번에 동일한 조건으로 많은 폐 (최대 20)를 해결할 수 있습니다. 독성 병리학 의 사회는 중력 주입을 위한 압력이 22-25 cmH2O22에서변화한다는 것을 말합니다. 특히, 여러 연구는 25 cmH2O13, 19,<sup class="x...

COPD는 사망의 주요 한 세계적인 원인 중 하나입니다1. 담배 연기는 COPD의 가장 중요한 원인이지만 병인의 메커니즘은 불완전하게 정의되어 있습니다. COPD는 공기 흐름의 점진적 제한 및 폐의 비정상적인 염증 반응을 포함하여 두 가지 주요 특성을 보여줍니다. 폐기장애는 COPD 환자의 폐에서 빈번하게 발생한다2. 폐기종의 병리학적 발견은 폐포 벽 파괴3을특징으로한다. 여러 동물 종은 생체 내에서 COPD 모델(즉, 개, 기니피그, 원숭이 및 설치류)을 생성하는데 사용되어 왔다.4. 그러나, 마우스는 COPD 모델의 구성에 가장 일반적으로 사용되고 있다. 이는 저렴한 비용, 유전자 변형 능력, 광범위한 게놈 정보 가용성, 항체의 가용성 및 다양한 마우스 균주를 사용하는 능력을 포함하여 많은 장점을 갖는다5. 현재, 인간 COPD의 전체 기능을 모방할 수 있는 마우스 모델은 없다; 따라서, 개별 연구원은 특정 COPD 연구에 가장 적합한 모델을 선택해야합니다6. 폐기종 마우스 모델은 현재 이용 가능한 많은 COPD 마우스 모델 중 하나입니다. 추가 모델은 악화 마우스 모델, 전신 동이환 모델 및 COPD 감수성 모델7을포함한다.
폐기종 마우스 모델은 화학약제 및 담배 연기 노출을 포함하는 여러 종류의 외인성 제제에 의해 생성될 수있다 4. 화학적 노출(예를 들어, 엘라스타제)은 심각한 유형의 기종을 생성하는 반면, 담배 연기는 경증 기종8,9를초래한다. 담배 연기는 COPD의 병인에 대한 주요 원인으로 여겨진다; 따라서, COPD 마우스 모델을 만드는 수단으로 담배 연기의 선택은 합리적인10이다. 많은 연구는 마우스에 기종을 만들기 위해 담배 연기를 사용했습니다. 예를 들어, Nikula 등은 B6C3F1 암컷 마우스로부터 7개월 또는 13개월 동안 담배 연기에 노출시킴으로써 기종 마우스 모델을 성공적으로생성하였다. 우리는 또한 노화 마커 단백질/SMP-30 KO 마우스12를통해 기종 마우스 모델을 확립했습니다. 담배 연기 노출에 의해 이 온화한 기종 모형을 제대로 구상할 수 있는 폐 고정 방법을 능력을 발휘하는 것이 중요합니다.
폐 고정을위한 다양한 방법이13설립되었습니다. 그러나, 폐기종14를평가하기 위한 폐 조직 고정의 금 표준 방법은 없다. 이 실험실에서 여러 연구는 여기에 제시 된 고정 시스템이 기종12,15, 16,17,18을평가하기위한 안정적인 조건을 생성하여 유용하다는 것을 보여 주었다. 현재 시스템의 주요 장점은 폐 붕괴 또는 디플레이션없이 한 번에 동일한 조건으로 많은 폐를 해결할 수 있다는 것입니다. 현재 폐 고정 시스템은 주어진 기간 동안 적절한 일정한 압력으로 폐 표본을 팽창 할 수있는 몇 가지 특수 장비를 사용합니다. 이 특수 장비는 하부 컨테이너, 상부 컨테이너 및 펌프를 포함한 세 부분으로 구성됩니다. 폐 시편은 가압 고정제에 연결되는 하부 용기에 배치되어 상부 및 하부용기(19)사이의 제제 수준에서 25cmH2O 압력 차이를 초래한다.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>10% formalin (formalin neutral buffer solution)</td>
			<td>Wako</td>
			<td>060-01667</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bent forceps</td>
			<td>Hammacher</td>
			<td>HSC187-11</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cannula, size 20G</td>
			<td>Terumo</td>
			<td>SR-FS2032</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cannula, size 22G</td>
			<td>Terumo</td>
			<td>SR-OT2225C</td>
			<td>Cannula to exsanguinate lung</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Forceps</td>
			<td>Hammacher</td>
			<td>HSC184-10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Kimtowel</td>
			<td>Nippon Paper Crecia (Kimberly Clark)</td>
			<td>61000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Kimwipe</td>
			<td>Nippon Paper Crecia (Kimberly Clark)</td>
			<td>62011</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lower container (acrylic glass material)</td>
			<td>Tokyo Science</td>
			<td>Custom-made</td>
			<td>Pressure equipment component</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Roller pump</td>
			<td>Nissin Scientific Corp</td>
			<td>NRP-75</td>
			<td>Pump machine to exsanguinate lung</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Roller pump RP-2000</td>
			<td>Eyela (Tokyo Rikakikai Co. Ltd)</td>
			<td>160200</td>
			<td>Pressure equipment pump</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Silicone tube &#216; 9 mm</td>
			<td>Sansyo</td>
			<td>94-0479</td>
			<td>Pressure equipment component</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Somnopentyl (64.8 mg/mL)</td>
			<td>Kyoritsu Seiyaku</td>
			<td>SOM02-YA1312</td>
			<td>Pentobarbital Sodium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical scissor</td>
			<td>Hammacher</td>
			<td>HSB014-11</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Suture thread, size 0</td>
			<td>Nescosuture</td>
			<td>GA01SW</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe, 1 mL</td>
			<td>Terumo</td>
			<td>SS-01T</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe, 1 ml with needle</td>
			<td>Terumo</td>
			<td>SS-01T2613S</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe, 10 mL</td>
			<td>Terumo</td>
			<td>SS-10ESZ</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Three-way stopcock</td>
			<td>Terumo</td>
			<td>TS-TR1K01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Upper container (acrylic glass material)</td>
			<td>Tokyo Science</td>
			<td>Custom-made</td>
			<td>Pressure equipment component</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

lung fixation under constant pressure for evaluation of emphysema in mice

폐기종은 만성 폐쇄성 폐 질환 (COPD)의 중요한 특징입니다. 기종 마우스 모형을 관련시키는 연구 결과는 폐의 믿을 수 있는 조직학 견본을 생성하기 위하여 최적 폐 고정을 요구합니다. 주로 공기와 조직으로 구성된 폐의 구조 구성의 특성으로 인해 고정 과정에서 붕괴또는 수축 될 위험이 있습니다. 다양한 폐 고정 방법이 존재하며, 각각은 자신의 장점과 단점을 가지고 있습니다. 여기에 제시된 폐 고정 방법은 기종 마우스 폐 모델을 사용하여 연구를 위한 최적 조직 평가를 가능하게 하기 위하여 일정한 압력을 이용합니다. 주요 장점은 한 번에 동일한 조건으로 많은 폐를 고칠 수 있다는 것입니다. 폐 표본은 만성 담배 연기 노출 마우스로부터 수득된다. 폐 고정은 일정한 압력의 생산을 가능하게 하는 특수 장비를 사용하여 수행됩니다. 이 일정한 압력은 합리적으로 팽창 된 상태에서 폐를 유지합니다. 따라서, 이 방법은 담배 연기 유발 경증 기종을 평가하기에 적합한 폐의 조직학적 표본을 생성한다.

앞서 설명한 바와 같이, 확장된 일정한 압력을 생성하는 특수 장비는 세 부분으로 나눌 수있다(도 3A). 하부는 폐 샘플을 삽입하는 지점입니다(도4A). 폐는 캐뉼라(20 G)를 통해 3방향 스톱 콕을 이용하여 포르말린 흐름의 끝까지 연결된다(도4B). 압력은 하부 용기와 상부 용기 사이의 고정제의 상...

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Lung Fixation under Constant Pressure for Evaluation of Emphysema in Mice Video (Video) | JoVE

여기에 제시된 폐 고정을 위한 유용한 프로토콜은 기종의 마우스 모델에서 폐 견본의 조직학적 평가를 위한 안정한 조건을 만드는. 이 모델의 주요 장점은 폐 붕괴 또는 디플레이션없이 동일한 일정한 압력으로 많은 폐를 고정 할 수 있다는 것입니다.

마우스에 있는 기종의 평가를 위한 일정한 압력의 밑에 폐 고정

Emphysema is a significant feature of chronic obstructive pulmonary disease (COPD). Studies involving an emphysematous mouse model require optimal lung ...

고정 장치 내의 일정한 압력은 경증 담배 연기 유도 기종을 평가하기에 적합한 조직론적 폐 표본을 생성하는 합리적으로 팽창된 상태에서 폐를 유지합니다. 이 모델의 주요 장점은 폐 붕괴 또는 디플레이션없이 동일한 일정한 압력을 사용하여 동시에 많은 폐를 고칠 수 있다는 것입니다. 절차를 시연하는 것은 내 실험실에서 대학원생 인 나오코 아라노가 될 것입니다.반사 운동에 대한 반응의 부족을 확인 한 후 마우스의 내측 라인을 따라 피부와 근육 조직에 절개를하고, 세프랄 영역을 목표로하고, 더 넓은 작업 공간을 만들기 위해 측면으로 잘라. 다이어프램 층을 노출 한 후 집게로 조직을 뚫고 흉부 공간을 엽니다. 폐와 심장이 시각화될 수 있도록 흉골 부위를 잘라냅니다.그리고 왼쪽 심실과 오른쪽 심실을 잘라. 관류 펌프에 연결된 24 게이지 캐뉼라를 오른쪽 심실 부위에 삽입하고 폐 동맥에 도달 할 때까지 캐뉼러를 세팔 영역으로 안내하십시오. 그런 다음, 펌프를 켜고 모든 폐 조직이 백색으로 변경될 때까지 PBS의 약 200 밀리리터로 조직을 1시간 동안 인퓨즈합니다.관류의 끝에서 기관, 폐 및 심장을 둘러싼 결합 조직을 잘라 내고 봉합사를 사용하여 올바른 주요 기관지를 묶습니다. 다음으로, 오른쪽 폐의 모든 개별 엽을 수확하고 왼쪽 폐의 심장과 엽을 적절한 고정제를 포함하는 개별 10 밀리리터 주사기에 넣습니다. 플런저를 철회하여 주사기에 진공을 만들어 폐를 팽창시키고 주사기에서 폐를 제거합니다.기관지에 20 게이지 캐뉼라를 삽입하고 봉합사를 사용하여 캐뉼라를 제자리에 고정시하십시오. 캐뉼라에 고정으로 채워진 1 밀리리터 주사기를 연결하고 폐를 추가 고정 장치로 채우면 누출을 확인하십시오. 고정 시 폐 시편이 폐판에서 분리되는 것을 방지하기 위해 삽입 부위를 고정해야 합니다.그런 다음 조직을 폐 고정 압력 장비로 옮기고 샘플을 제거하고 고정 기간이 끝날 때 매듭으로 기관체를 묶는다. 폐 시료가 삽입되는 폐 고정 압력 장비의 하부 성분은 20 게이지 캐뉼라를 통해 3방향 스톱콕을 사용하여 포르말린 흐름의 끝에 연결된다. 압력은 하부 구획과 상부 구획 사이의 고정의 다른 표면 수준에서 생성됩니다.압력 차이는 25센티미터의 물이지만 높이 조절 노브를 사용하여 압력을 25~30cm 의 수로 조정할 수 있습니다. 펌프는 하부 및 상부 컨테이너를 연결하여 고정 표면 높이에서 25cm 차이를 유지하며 에이전트의 흐름을 지시합니다. 48시간 고정 후 주변 공기에 노출된 SMP30 녹아웃 마우스의 폐는 표시된 영공 확대를 나타내지 않는다.그러나, 만성 담배 연기에 노출된 SMP30 녹아웃 마우스에서 상당한 영공 확대 및 폐포 벽 파괴가 관찰된다. 또한, 폐 시편의 평균 선형 요격 및 파괴 지수는 공기 노출 동물보다 SMP30 녹아웃 마우스가 노출된 연기에서 현저히 크다. 우리의 실험실은 10%의 포르말린을 사용하지만 연구원은 실험적인 필요에 따라 다른 고정 에이전트를 사용할 수 있습니다.입증된 고정 시스템을 사용하여 보고된 바와 같이 폐 시료는 형태성 평가를 위해 다양한 마우스 폐기종 모델으로부터 수확될 수 있다. 고정 요원은 항상 적절한 인력 보호 장비를 착용하고 통풍이 잘되는 방에서 작동위험 할 수 있습니다.

Research

JoVE Journal

Medicine

Lung Fixation under Constant Pressure for Evaluation of Emphysema in Mice

Pressure Controlled Ventilation to Induce Acute Lung Injury in Mice

Pressure Controlled Ventilation to Induce Acute Lung Injury in Mice Video (Video) | JoVE

마우스의 급성 폐 상해를 유발하는 압력 제어 환기

Murine models are extensively used to investigate acute injuries of different organs systems (1-34). Acute lung injury (ALI), which occurs with prolonged ...

연구

의학

Improved Visualization of Lung Metastases at Single Cell Resolution in Mice by Combined In-situ Perfusion of Lung Tissue and X-Gal Staining of lacZ-Tagged Tumor Cells

Improved Visualization of Lung Metastases at Single Cell Resolution in Mice by Combined In-situ Perfusion of Lung Tissue and X-Gal Staining of lacZ-Tagged Tumor Cells Video (Video) | JoVE

복합에 의한 마우스의 싱글 셀 해상도에서 폐 Metastases의 향상된 시각화<em&gt;에서 시츄</em폐 조직 및 X-걸의 착색의&gt; 재관류<em&gt; lacZ</em&gt; 태그 종양 세포

Metastasis is the main cause of death in the majority of cancer types and consequently a main focus in cancer research. However, the detection of ...

Automated Measurement of Pulmonary Emphysema and Small Airway Remodeling in Cigarette Smoke-exposed Mice

Automated Measurement of Pulmonary Emphysema and Small Airway Remodeling in Cigarette Smoke-exposed Mice Video (Video) | JoVE

담배 연기에 노출 된 마우스의 폐 폐기종 및 작은기도 리모델링 자동 측정

COPD is projected to be the third most common cause of mortality world-wide by 2020(1).  Animal models of COPD are used to identify molecules that ...

Cardiac Catheterization in Mice to Measure the Pressure Volume Relationship: Investigating the Bowditch Effect

Cardiac Catheterization in Mice to Measure the Pressure Volume Relationship: Investigating the Bowditch Effect Video (Video) | JoVE

Bowditch 효과 조사 : 압력 볼륨 관계를 측정하기 위해 마우스의 심장 도관

Animal models that mimic human cardiac disorders have been created to test potential therapeutic strategies. A key component to evaluating these ...

Instillation and Fixation Methods Useful in Mouse Lung Cancer Research

Instillation and Fixation Methods Useful in Mouse Lung Cancer Research Video (Video) | JoVE

마우스 폐 암 연구에 유용한 점안 및 고정 방법

The ability to instill live agents, cells, or chemicals directly into the lung without injuring or killing the mice is an important tool in lung cancer ...

Evaluation of Lung Metastasis in Mouse Mammary Tumor Models by Quantitative Real-time PCR

Evaluation of Lung Metastasis in Mouse Mammary Tumor Models by Quantitative Real-time PCR Video (Video) | JoVE

정량 실시간 PCR에 의해 마우스 유방 종양 모델에서 폐 전이의 평가

Metastatic disease is the spread of malignant tumor cells from the primary cancer site to a distant organ and is the primary cause of cancer associated ...

Ultrasound-based Pulse Wave Velocity Evaluation in Mice

Ultrasound-based Pulse Wave Velocity Evaluation in Mice Video (Video) | JoVE

마우스에 맥파 속도 평가 초음파 기반

Arterial stiffness can be evaluated by calculating pulse wave velocity (PWV), i.e., the speed with which the pulse wave travels in a conduit vessel. This ...

An Intramedullary Locking Nail for Standardized Fixation of Femur Osteotomies to Analyze Normal and Defective Bone Healing in Mice

An Intramedullary Locking Nail for Standardized Fixation of Femur Osteotomies to Analyze Normal and Defective Bone Healing in Mice Video (Video) | JoVE

대퇴골 절골술의 표준화 된 고정을위한 골수 내 잠금 네일은 마우스에 정상 및 결함 뼈 치유를 분석하기

Bone healing models are essential to the development of new therapeutic strategies for clinical fracture treatment. Furthermore, mouse models are becoming ...

A Minimally Invasive Model to Analyze Endochondral Fracture Healing in Mice Under Standardized Biomechanical Conditions

A Minimally Invasive Model to Analyze Endochondral Fracture Healing in Mice Under Standardized Biomechanical Conditions Video (Video) | JoVE

Endochondral 골절 표준화 된 Biomechanical 조건 하에서 쥐에서 치유를 분석 하는 최소 침 습 모델

Bone healing models are necessary to analyze the complex mechanisms of fracture healing to improve clinical fracture treatment. During the last decade, an ...

Adeno-Associated Virus-Mediated Delivery of CRISPR for Cardiac Gene Editing in Mice

Adeno-Associated Virus-Mediated Delivery of CRISPR for Cardiac Gene Editing in Mice Video (Video) | JoVE

Adeno 관련 바이러스 중재 배달 심장 유전자 쥐에서 편집에 대 한 CRISPR의

The clustered, regularly interspaced, short, palindromic repeat (CRISPR) system has greatly facilitated genome engineering in both cultured cells and ...