Name: neurogenesis using p19 embryonal carcinoma cells
Uploaded: 2019-04-27T13:00:00
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L'étude a été soutenue financièrement par le Centre national des sciences, Pologne (accord no. UMO-2017/25/N/NZ3/01886) et KNOW (Leading National Research Centre) Consortium scientifique "Healthy Animal - Safe Food", décision du ministère des Sciences et de l'Enseignement supérieur No 05-1/KNOW2/2015

1. Entretien de la culture
<ol><li>Culture de la lignée cellulaire P19 dans le milieu d'entretien (le milieu modifié d'aigle de Dulbecco avec 4 500 mg/L de glucose complété par 10 % de FBS, 100 unités/mL de pénicilline et 100 unités/mL de streptomycine). Incuber à 37 oCet 5 % de CO 2.</li>
</ol>2. Cellules de sous-culture
<ol><li>Lorsque les cellules atteignent environ 80 % de confluence, retirez le milieu usé des flacons de culture cellulaire (surface de 25 cm2)...

<ol>
	<li>Ramkumar, N., Anderson, K. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=SnapShot:+mouse+primitive+streak.">SnapShot: mouse primitive streak.</a> Cell. 146 (3), 488 (2011).</li><li>Solnica-Krezel, L., Sepich, D. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Gastrulation:+making+and+shaping+germ+layers.">Gastrulation: making and shaping germ layers.</a> Annual Review of Cell and Developmental Biology. 28, 687-717 (2012).</li><li>Tam, P. P. L., Gad, J. M., Stern, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chapter+16:+Gastrulation+in+the+Mouse+Embryo.">Chapter 16: Gastrulation in the Mouse Embryo.</a> Gastrulation: From Cells to Embryo. , 233-262 (2004).</li><li>Sajini, A. A., Greder, L. V., Dutton, J. R., Slack, J. M. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Loss+of+Oct4+expression+during+the+development+of+murine+embryoid+bodies.">Loss of Oct4 expression during the development of murine embryoid bodies.</a> Developmental Biology. 371 (2), 170-179 (2012).</li><li>ten Berge, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Wnt+Signaling+Mediates+Self-Organization+and+Axis+Formation+in+Embryoid+Bodies.">Wnt Signaling Mediates Self-Organization and Axis Formation in Embryoid Bodies.</a> Cell Stem Cell. 3 (5), 508-518 (2008).</li><li>Bain, G., Ray, W. J., Yao, M., Gottlieb, D. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=From+embryonal+carcinoma+cells+to+neurons:+the+P19+pathway.">From embryonal carcinoma cells to neurons: the P19 pathway.</a> Bioessays. 16 (5), 343-348 (1994).</li><li>Lin, Y. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=YAP+regulates+neuronal+differentiation+through+Sonic+hedgehog+signaling+pathway.">YAP regulates neuronal differentiation through Sonic hedgehog signaling pathway.</a> Experimental Cell Research. 318 (15), 1877-1888 (2012).</li><li>Neo, W. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=MicroRNA+miR-124+controls+the+choice+between+neuronal+and+astrocyte+differentiation+by+fine-tuning+Ezh2+expression.">MicroRNA miR-124 controls the choice between neuronal and astrocyte differentiation by fine-tuning Ezh2 expression.</a> Journal of Biological Chemistry. 289 (30), 20788-20801 (2014).</li><li>Jones-Villeneuve, E., McBurney, M. W., Rogers, K. A., Kalnins, V. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Retinoic+acid+induces+embryonal+carcinoma+cells+to+differentiate+into+neurons+and+glial+cells.">Retinoic acid induces embryonal carcinoma cells to differentiate into neurons and glial cells.</a> The Journal of Cell Biology. 94 (2), 253-262 (1982).</li><li>McBurney, M. W., Rogers, B. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolation+of+male+embryonal+carcinoma+cells+and+their+chromosome+replication+patterns.">Isolation of male embryonal carcinoma cells and their chromosome replication patterns.</a> Developmental Biology. 89 (2), 503-508 (1982).</li><li>Jones-Villeneuve, E., Rudnicki, M. A., Harris, J. F., McBurney, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Retinoic+acid-induced+neural+differentiation+of+embryonal+carcinoma+cells.">Retinoic acid-induced neural differentiation of embryonal carcinoma cells.</a> Molecular and Cellular Biology. 3 (12), 2271-2279 (1983).</li><li>Jasmin, D. C., Spray, A. C., Campos de Carvalho, R., Mendez-Otero, <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chemical+induction+of+cardiac+differentiation+in+P19+embryonal+carcinoma+stem+cells.">Chemical induction of cardiac differentiation in P19 embryonal carcinoma stem cells.</a> Stem Cells and Development. 19 (3), 403-412 (2010).</li><li>Solari, M., Paquin, J., Ducharme, P., Boily, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=P19+neuronal+differentiation+and+retinoic+acid+metabolism+as+criteria+to+investigate+atrazine,+nitrite,+and+nitrate+developmental+toxicity.">P19 neuronal differentiation and retinoic acid metabolism as criteria to investigate atrazine, nitrite, and nitrate developmental toxicity.</a> Toxicological Sciences. 113 (1), 116-126 (2010).</li><li>Babuska, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Characterization+of+P19+cells+during+retinoic+acid+induced+differentiation.">Characterization of P19 cells during retinoic acid induced differentiation.</a> Prague Medical Report. 111 (4), 289-299 (2010).</li><li>Monzo, H. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+method+for+generating+high-yield+enriched+neuronal+cultures+from+P19+embryonal+carcinoma+cells.">A method for generating high-yield enriched neuronal cultures from P19 embryonal carcinoma cells.</a> Journal of Neuroscience Methods. 204 (1), 87-103 (2012).</li><li>Popova, D., Karlsson, J., Jacobsson, S. O. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+neurons+derived+from+mouse+P19,+rat+PC12+and+human+SH-SY5Y+cells+in+the+assessment+of+chemical-+and+toxin-induced+neurotoxicity.">Comparison of neurons derived from mouse P19, rat PC12 and human SH-SY5Y cells in the assessment of chemical- and toxin-induced neurotoxicity.</a> BMC Pharmacology and Toxicology. 18 (1), 42 (2017).</li><li>Woodgate, A., MacGibbon, G., Walton, M., Dragunow, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+toxicity+of+6-hydroxydopamine+on+PC12+and+P19+cells.">The toxicity of 6-hydroxydopamine on PC12 and P19 cells.</a> Molecular Brain Research. 69 (1), 84-92 (1999).</li><li>Tsukane, M., Yamauchi, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ca2+/calmodulin-dependent+protein+kinase+II+mediates+apoptosis+of+P19+cells+expressing+human+tau+during+neural+differentiation+with+retinoic+acid+treatment.">Ca2+/calmodulin-dependent protein kinase II mediates apoptosis of P19 cells expressing human tau during neural differentiation with retinoic acid treatment.</a> Journal of Enzyme Inhibition and Medicinal Chemistry. 24 (2), 365-371 (2009).</li><li>Adler, S., Pellizzer, C., Paparella, M., Hartung, T., Bremer, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effects+of+solvents+on+embryonic+stem+cell+differentiation.">The effects of solvents on embryonic stem cell differentiation.</a> Toxicology in Vitro. 20 (3), 265-271 (2006).</li><li>Jones-Villeneuve, E. M., McBurney, M. W., Rogers, K. A., Kalnins, V. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Retinoic+acid+induces+embryonal+carcinoma+cells+to+differentiate+into+neurons+and+glial+cells.">Retinoic acid induces embryonal carcinoma cells to differentiate into neurons and glial cells.</a> The Journal of Cell Biology. 94 (2), 253-262 (1982).</li><li>Roy, B., Taneja, R., Chambon, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Synergistic+activation+of+retinoic+acid+(RA)-responsive+genes+and+induction+of+embryonal+carcinoma+cell+differentiation+by+an+RA+receptor+alpha+(RAR+alpha)-,+RAR+beta-,+or+RAR+gamma-selective+ligand+in+combination+with+a+retinoid+X+receptor-specific+ligand.">Synergistic activation of retinoic acid (RA)-responsive genes and induction of embryonal carcinoma cell differentiation by an RA receptor alpha (RAR alpha)-, RAR beta-, or RAR gamma-selective ligand in combination with a retinoid X receptor-specific ligand.</a> Molecular and Cellular Biology. 15 (12), 6481-6487 (1995).</li><li>Hamada-Kanazawa, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sox6+overexpression+causes+cellular+aggregation+and+the+neuronal+differentiation+of+P19+embryonic+carcinoma+cells+in+the+absence+of+retinoic+acid.">Sox6 overexpression causes cellular aggregation and the neuronal differentiation of P19 embryonic carcinoma cells in the absence of retinoic acid.</a> FEBS Letters. 560 (1-3), 192-198 (2004).</li><li>Tangsaengvit, N., Kitphati, W., Tadtong, S., Bunyapraphatsara, N., Nukoolkarn, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neurite+Outgrowth+and+Neuroprotective+Effects+of+Quercetin+from+Caesalpinia+mimosoides+Lamk+on+Cultured+P19-Derived+Neurons.">Neurite Outgrowth and Neuroprotective Effects of Quercetin from Caesalpinia mimosoides Lamk on Cultured P19-Derived Neurons.</a> Evidence-Based Complementary and Alternative. , 838051 (2013).</li><li>Magnuson, D. S., Morassutti, D. J., McBurney, M. W., Marshall, K. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neurons+derived+from+P19+embryonal+carcinoma+cells+develop+responses+to+excitatory+and+inhibitory+neurotransmitters.">Neurons derived from P19 embryonal carcinoma cells develop responses to excitatory and inhibitory neurotransmitters.</a> Developmental Brain Research. 90 (1-2), 141-150 (1995).</li><li>MacPherson, P., Jones, S., Pawson, P., Marshall, K., McBurney, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=P19+cells+differentiate+into+glutamatergic+and+glutamate-responsive+neurons+in+vitro.">P19 cells differentiate into glutamatergic and glutamate-responsive neurons in vitro.</a> Neuroscience. 80 (2), 487-499 (1997).</li><li>Hong, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Methyltransferase-inhibition+interferes+with+neuronal+differentiation+of+P19+embryonal+carcinoma+cells.">Methyltransferase-inhibition interferes with neuronal differentiation of P19 embryonal carcinoma cells.</a> Biochemical and Biophysical Research Communications. 377 (3), 935-940 (2008).</li><li>Wenzel, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+of+a+classic+nuclear+localization+signal+at+the+N+terminus+that+regulates+the+subcellular+localization+of+Rbfox2+isoforms+during+differentiation+of+NMuMG+and+P19+cells.">Identification of a classic nuclear localization signal at the N terminus that regulates the subcellular localization of Rbfox2 isoforms during differentiation of NMuMG and P19 cells.</a> FEBS Letters. 590 (24), 4453-4460 (2016).</li><li>Harada, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Overexpression+of+Cathepsin+E+Interferes+with+Neuronal+Differentiation+of+P19+Embryonal+Teratocarcinoma+Cells+by+Degradation+of+N-cadherin.">Overexpression of Cathepsin E Interferes with Neuronal Differentiation of P19 Embryonal Teratocarcinoma Cells by Degradation of N-cadherin.</a> Cellular and Molecular Neurobiology. 37 (3), 437-443 (2017).</li><li>Morassutti, D. J., Staines, W. A., Magnuson, D. S., Marshall, K. C., McBurney, M. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Murine+embryonal+carcinoma-derived+neurons+survive+and+mature+following+transplantation+into+adult+rat+striatum.">Murine embryonal carcinoma-derived neurons survive and mature following transplantation into adult rat striatum.</a> Neuroscience. 58 (4), 753-763 (1994).</li><li>Magnuson, D. S., Morassutti, D. J., Staines, W. A., McBurney, M. W., Marshall, K. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+vivo+electrophysiological+maturation+of+neurons+derived+from+a+multipotent+precursor+(embryonal+carcinoma)+cell+line.">In vivo electrophysiological maturation of neurons derived from a multipotent precursor (embryonal carcinoma) cell line.</a> Developmental Brain Research. 84 (1), 130-141 (1995).</li></ol>

Ici, nous décrivons un protocole simple pour la neurogenèse utilisant la ligne cellulaire de P19. Bien que de nombreux rapports aient été publiés à cet égard, une méthodologie détaillée pour l'induction de neurogenèse utilisant la lignée cellulaire De P19 demeure peu claire. En outre, nous avons utilisé un simple high glucose (4,500 mg/L) milieu DMEM avec 10% FBS pour l'ensemble de l'expérience. Cela nous a permis d'effectuer l'expérience neurogène d'une manière conviviale et d'élargir l'utilisation de ...

Pendant le développement embryonnaire, une seule couche cellulaire est transformée en trois couches germinales distinctes1,2,3. Pour augmenter les possibilités de recherche des phénomènes se produisant in vivo, la génération d'agrégats tridimensionnels (corps embryonnaires) a été développée comme modèle pratique. Les agrégats cellulaires formés de cette façon peuvent être exposés à diverses conditions causant la différenciation cellulaire, qui reflètent le développement de l'embryon4,5. La lignée cellulaire embryonnaire de carcinome murine P19 (lignée cellulaire P19) est couramment utilisée comme modèle cellulaire pour les études de neurogenèse in vitro6,7,8. La lignée cellulaire P19 présente des caractéristiques typiques des cellules souches pluripotentes et peut se différencier en neurones en présence d'acide rétinoïque (RA) lors de l'agrégation cellulaire suivie d'une excroissance neurite dans des conditions adhérentes. En outre, la lignée cellulaire Indifférenciée P19 est également capable de former des cellules musculaires et cardiomyocytes sous l'influence du sulfoxyde de diméthyle (DMSO)9,10,11,12.
Beaucoup de méthodes13,14,15,16 ont été signalées pour la différenciation neuronale, mais la méthodologie est parfois compliquée et pas facile à saisir en lisant seulement les descriptions. Par exemple, les protocoles exigent parfois une combinaison du milieu moyen d'aigle modifié (DMEM) de Dulbecco complété par un mélange de sérum de veau (CS) et de sérum bovin foetal (FBS)13. En outre, les médias utilisés pour le développement neuronal sont souvent composés de neurobasal et B27 suppléments13,14,15,16. En tant que tel, les méthodes existantes contiennent de la complexité dans leur préparation et notre objectif ici est de simplifier les protocoles. Dans cette étude, nous avons démontré que dMEM avec FBS peut être utilisé pour maintenir la lignée cellulaire P19 (DMEM - 10% FBS) ainsi que pour le développement neuronal (DMEM - 5% FBS - RA). Cette méthode simplifiée pour la neurogenèse utilisant la lignée cellulaire P19 nous permet d'étudier le mécanisme moléculaire de la façon dont les neurones sont développés. En outre, la recherche sur les maladies neurodégénératives telles que la maladie d'Alzheimer est également menée en utilisant la lignée cellulaire P1917,18, et nous croyons que la méthode développée dans cette étude jouera un rôle dans l'élucidation de la mécanismes moléculaires dans les anomalies neurodéveloppementales et les maladies neurodégénératives.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:819px;" width="818">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:347px;">6x DNA Loading Dye</td>
			<td style="width:103px;">EURx</td>
			<td style="width:155px;">E0260-01</td>
			<td style="width:215px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:347px;">Agarose</td>
			<td style="width:103px;">Sigma- Aldrich</td>
			<td style="width:155px;">A9539</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:347px;">cDNA synthesis kit</td>
			<td style="width:103px;">EURx</td>
			<td style="width:155px;">E0801-02</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:347px;">DAPI (4&#8242;,6-Diamidine-2&#8242;-phenylindole dihydrochloride)</td>
			<td style="width:103px;">Sigma- Aldrich</td>
			<td style="width:155px;">10236276001</td>
			<td style="width:215px;">Working concentration: 1 &#956;g/mL</td>
		</tr>
		<tr height="138">
			<td height="138" style="height:138px;width:347px;">DMEM high glucose (4.5 g/L) with L-glutamine</td>
			<td style="width:103px;">Lonza</td>
			<td style="width:155px;">BE12-604Q</td>
			<td style="width:215px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:347px;">Ethanol 99.8%</td>
			<td style="width:103px;">Chempur</td>
			<td style="width:155px;">CHEM*613964202</td>
			<td style="width:215px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:347px;">Fetal Bovine Serum (FBS)</td>
			<td style="width:103px;">EURx</td>
			<td style="width:155px;">E5050-03</td>
			<td style="width:215px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:347px;">MAP2 antibody</td>
			<td style="width:103px;">Thermo Fisher Scientific</td>
			<td style="width:155px;">PA517646</td>
			<td style="width:215px;">Dilution 1:100</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:347px;">PCR reaction kit</td>
			<td style="width:103px;">EURx</td>
			<td style="width:155px;">E0411-03</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:347px;">Penicillin/Streptomycin 10K/10K</td>
			<td style="width:103px;">Lonza</td>
			<td style="width:155px;">DE17-602E</td>
			<td style="width:215px;"></td>
		</tr>
		<tr height="45">
			<td height="45" style="height:45px;width:347px;">Phosphate Buffered Saline (PBS), 1x concentrated without Ca2+, Mg2+</td>
			<td style="width:103px;">Lonza</td>
			<td style="width:155px;">BE17- 517Q</td>
			<td style="width:215px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:347px;">Retinoic acid</td>
			<td style="width:103px;">Sigma- Aldrich</td>
			<td style="width:155px;">R2625-50MG</td>
			<td style="width:215px;">&#160;dissolved in 99.8% ethanol; store in -20 &#176;C up to 6 months</td>
		</tr>
		<tr height="64">
			<td height="64" style="height:64px;width:347px;">Secondary Antibody (Alexa Fluor 488)</td>
			<td style="width:103px;">Thermo Fisher Scientific</td>
			<td style="width:155px;">A11034</td>
			<td style="width:215px;">Dilution 1:500</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:347px;">Skim milk</td>
			<td style="width:103px;">Sigma- Aldrich</td>
			<td style="width:155px;">1153630500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:347px;">TBE Buffer</td>
			<td style="width:103px;">Thermo Fisher Scientific</td>
			<td style="width:155px;">B52</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:347px;">Triton-X 100</td>
			<td style="width:103px;">Sigma- Aldrich</td>
			<td style="width:155px;">T8787-100ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="49">
			<td height="49" style="height:49px;width:347px;">Trypsin 0.25% - EDTA in HBSS, without&#160; Ca2+, Mg2+,with Phenol Red</td>
			<td style="width:103px;">biosera</td>
			<td style="width:155px;">LM-T1720/500</td>
			<td style="width:215px;"></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:347px;">Cell Culture Plastics</td>
			<td style="width:103px;"></td>
			<td style="width:155px;"></td>
			<td style="width:215px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:347px;">1 mL Serological Pipettes</td>
			<td style="width:103px;">Profilab</td>
			<td style="width:155px;">515.01</td>
			<td style="width:215px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:347px;">10 mL Serological Pipettes</td>
			<td style="width:103px;">Profilab</td>
			<td style="width:155px;">515.10</td>
			<td style="width:215px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:347px;">100 mm dish dedicated for suspension culture</td>
			<td style="width:103px;">Corning</td>
			<td style="width:155px;">C351029</td>
			<td style="width:215px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:347px;">15 mL centrifuge tubes</td>
			<td style="width:103px;">Sigma- Aldrich</td>
			<td style="width:155px;">CLS430791-500EA</td>
			<td style="width:215px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:347px;">5 mL Serological Pipettes</td>
			<td style="width:103px;">Profilab</td>
			<td style="width:155px;">515.05</td>
			<td style="width:215px;"></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:347px;">6-well plate</td>
			<td style="width:103px;">Corning</td>
			<td style="width:155px;">CLS3516</td>
			<td style="width:215px;"></td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:347px;">Cell culture flasks, surface area 25 cm2</td>
			<td style="width:103px;">Sigma- Aldrich</td>
			<td style="width:155px;">CLS430639-200EA</td>
			<td style="width:215px;"></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

neurogenesis using p19 embryonal carcinoma cells

La lignée cellulaire P19 dérivée d'un tératocarcinome dérivé de l'embryon de souris a la capacité de se différencier en trois couches germinales. En présence d'acide rétinoïque (RA), la lignée cellulaire P19 cultivée en suspension est induite pour se différencier en neurones. Ce phénomène est largement étudié comme un modèle de neurogenèse in vitro. Par conséquent, la lignée cellulaire P19 est très utile pour les études moléculaires et cellulaires associées à la neurogenèse. Cependant, les protocoles pour la différenciation neuronale de la lignée cellulaire P19 décrite dans la littérature sont très complexes. La méthode développée dans cette étude est simple et jouera un rôle dans l'élucidation des mécanismes moléculaires dans les anomalies neurodéveloppementales et les maladies neurodégénératives.

Le schéma simplifié de protocole pour l'induction de neurogenèse dans la lignée cellulaire P19 est présenté dans la figure 1. Afin de définir le caractère de la lignée cellulaire P19 dans un état indifférencié et pendant la neurogenèse, la méthode RT-PCR (réaction en chaîne de transcription-polymériase inversée) a été utilisée. La lignée cellulaire Indifférenciée P19 exprimait les gènes de la pluripotence tels que le transporteur de c...

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Neurogenesis Using P19 Embryonal Carcinoma Cells

La lignée cellulaire embryonnaire de carcinome de souris P19 (ligne cellulaire P19) est largement utilisée pour étudier le mécanisme moléculaire de la neurogenèse avec une grande simplification par rapport à l'analyse in vivo. Ici, nous présentons un protocole pour la neurogenèse acide-induite rétinoïque dans la ligne de cellules de P19.

Neurogenèse à l'aide de cellules de carcinome embryonnaire P19

The P19 cell line derived from a mouse embryo-derived teratocarcinoma has the ability to differentiate into the three germ layers. In the presence of ...

La lignée cellulaire P19 est connue pour se différencier en neurones. Cependant, le protocole pour la différenciation neuronale de la lignée cellulaire P19 est parfois compliqué. Cette méthode nous permet d’effectuer l’expérience névrogène d’une manière conviviale et d’élargir la possibilité de l’utilisation de la lignée cellulaire P19 pour l’avenir.Pour commencer, maintenir les cellules P19 dans le milieu d’entretien, composé de DMEM, avec 4,5 grammes par litre de glucose, complétée par 10% sérum bovin fœtal, 100 unités par pénicilline millilitre, et 100 unités par streptomiycine millilitre. Incuber la culture cellulaire dans un environnement de 37 degrés Celsius et 5% de dioxyde de carbone jusqu’à ce que les cellules soient environ 80% confluent. Retirez le milieu usé du flacon de culture cellulaire et lavez les cellules avec deux millilitres de calcium et de PBS sans magnésium.Ajouter un millilitre de 0,25% trypsine-EDTA pour couvrir complètement la monomeuse des cellules et incuber à 37 degrés Celsius et 5% de dioxyde de carbone pendant deux à trois minutes. Au microscope, vérifiez si toutes les cellules sont détachées. Resuspendez les cellules en neuf millilitres de support d’entretien afin de neutraliser la trypsine.Transférer les cellules dans un tube de 15 millilitres et une centrifugeuse à 200 fois G et à température ambiante pendant cinq minutes pour pelleter les cellules. Ensuite, aspirez le surnatant sans déranger la pastille. Resuspendez la pastille en 10 millilitres de milieu d’entretien frais et utilisez un compteur cellulaire pour déterminer le numéro de cellule selon les instructions du fabricant.Grainez 20 000 cellules par centimètre carré dans un nouveau flacon T-25 et ajoutez jusqu’à 10 millilitres de milieu d’entretien. Incuber à 37 degrés Celsius et 5% de dioxyde de carbone pendant deux à trois jours. Pour commencer la digestion de la trypsine, aspirez d’abord lentement le supernatant et lavez les cellules avec deux millilitres de calcium et de PBS sans magnésium.Ensuite, ajoutez un millilitre de 0,25% trypsine EDTA aux cellules et incubez-les à 37 degrés Celsius et 5% de dioxyde de carbone pendant deux à trois minutes. Après l’incubation, pour neutraliser la trypsine, resuspendre les cellules en neuf millilitres de milieu de différenciation, composé de DMEM avec un taux élevé de glucose et complété par 5% sérum bovin fœtal, 100 unités par pénicilline millilitre, et 100 unités par streptomie millilitre. Transférer les cellules dans un tube de 15 millilitres et une centrifugeuse à 200 fois G et à température ambiante pendant cinq minutes pour pelleter les cellules.Ensuite, aspirez lentement le supernatant et réutilisez la pastille en un millilitre de milieu de différenciation frais sans RA. Utilisez un compteur cellulaire pour déterminer le numéro de cellule selon les instructions du fabricant. Pour la génération globale, commencez par ajouter 10 millilitres de milieu de différenciation, complétés par cinq microlitres de PR à un plat de culture non traité de 100 millilitres. Ensemencer un million de cellules dans le plat de culture et incuber à 37 degrés Celsius et 5% de dioxyde de carbone pendant deux jours afin de favoriser la formation d’agrégats.Après l’incubation, avec une pipette de 10 millilitres, aspirez le milieu contenant les agrégats et transférez-le dans un tube de 15 millilitres à température ambiante. Attendez 1,5 minute que les agrégats s’installent au fond, puis jetez le surnatant. Ajouter 10 millilitres de milieu de différenciation fraîche complété par 0,5 micromolaire RA. Ensemencer délicatement les agrégats dans un nouveau plat de culture non traité de 100 millimètres et incuber à 37 degrés Celsius et 5 % de dioxyde de carbone pendant deux jours.Pour commencer, utilisez une pipette de 10 millilitres pour transférer les agrégats cellulaires dans un tube de 15 millilitres. Attendez 1,5 minute à température ambiante pour que les agrégats se déposent au fond, puis jetez le surnatant. Laver les agrégats avec du sérum et du DMEM sans antibiotiques.Attendez que les agrégats cellulaires s’installent au fond, jetez le supernatant et ajoutez deux millilitres de 0,25% trypsine EDTA. Incuber le tube dans un bain d’eau à 37 degrés Celsius pendant 10 minutes, en tapant toutes les deux minutes pour garder les cellules en suspension. Ensuite, ajoutez quatre millilitres de milieu d’entretien afin d’arrêter l’activité de la trypsine et pipette de haut en bas 20 fois à l’aide d’une pipette d’un millilitre.Enfin, centrifuger les cellules à 200 fois G et température ambiante pendant cinq minutes. Retirez le supernatant et resuspendez la pastille cellulaire en cinq millilitres de milieu d’entretien. Utilisez un compteur cellulaire pour déterminer le numéro de cellule et procéder au placage des cellules.Pour plaquer les cellules, ajoutez d’abord trois millilitres par puits de milieu d’entretien à une plaque de culture de six puits. Ensuite, ensemencer les cellules à une densité de 500 000 par puits. Incuber la plaque à 37 degrés Celsius et 5% de dioxyde de carbone.Ensemencer les cellules sur des verres de couverture dans une plaque de culture de six puits. Quand ils atteignent 20% de confluence, procéder à l’immunostaining avec anticorps Anti-MAP2. Puis, isoler l’ARN, et effectuer la transcription inverse PCR pour MAP2, NueN, OCT4, NANOG, et un GAPDH.Dans cette étude, une méthode simplifiée de différenciation neuronale est introduite. La lignée cellulaire P19 est cultivé dans un plat de culture non traité avec 5%FBS et 0,5 micromolar RA. Après quatre jours, les agrégats cellulaires sont dissociés avec de la trypsine et ensemencés sur une plaque de culture cellulaire adhérente pendant les quatre prochains jours. L’efficacité de cette méthode est évaluée par la comparaison entre l’analyse rtpcr de la lignée cellulaire P19 dans un état indifférencié et pendant la neurogenèse.Les résultats montrent une diminution rapide de l’expression des gènes de pluripotence, tels que Oct4 et NANOG, et une augmentation de la réglementation des gènes marqueurs neurnomaux, tels que MAP2 et NeuN. Nous croyons que la méthode développée dans cette étude est simple et jouera un rôle dans l’élucidation des mécanismes moléculaires de la neurogenèse, ainsi que la maladie neurodégénérative.

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Organotypic Slice Cultures for Studies of Postnatal Neurogenesis

Trancher les cultures organotypiques d&#39;études de neurogenèse postnatale

Here we describe a technique for studying hippocampal postnatal neurogenesis in the rodent brain using the organotypic slice culture technique. This ...

Recherche

Biologie du développement

Tracking Cells in GFP-transgenic Zebrafish Using the Photoconvertible PSmOrange System

Suivi des cellules dans le poisson zèbre transgénique de la GFP-Utilisation du système photoconvertible PSmOrange

The rapid development of transparent zebrafish embryos (Danio rerio) in combination with fluorescent labelings of cells and tissues allows visualizing ...

The Production of Pluripotent Stem Cells from Mouse Amniotic Fluid Cells Using a Transposon System

La production de cellules souches pluripotentes de souris amniotique Cellules Fluid Utilisation d&#39;un système de transposon

Induced pluripotent stem (iPS) cells are generated from mouse and human somatic cells by forced expression of defined transcription factors using ...

Acute and Chronic Models of Hyperglycemia in Zebrafish: A Method to Assess the Impact of Hyperglycemia on Neurogenesis and the Biodistribution of Radiolabeled Molecules

Les modèles aigus et chroniques de l&#39;hyperglycémie dans le poisson-zèbre: une méthode pour évaluer l&#39;impact de l&#39;hyperglycémie sur la neurogénèse et la biodisposition des molécules radiomarquées

Hyperglycemia is a major health issue that leads to cardiovascular and cerebral dysfunction. For instance, it is associated with increased neurological ...

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Assessment of Oxidative Damage in the Primary Mouse Ocular Surface Cells/Stem Cells in Response to Ultraviolet-C (UV-C) Damage

Assessment of Oxidative Damage in the Primary Mouse Ocular Surface Cells/Stem Cells in Response to Ultraviolet-C UV-C Damage

Évaluation des dommages oxydatifs dans les cellules de surface oculaires de la souris primaire/cellules souches en réponse aux dommages causés par les ultraviolets-C (UV-C)

The ocular surface is subjected to regular wear and tear due to various environmental factors. Exposure to UV-C radiation constitutes an occupational ...