Name: isolation of primary mouse hepatocytes for nascent protein synthesis analysis by non-radioactive l-azidohomoalanine labeling method
Uploaded: 2018-10-23T13:30:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Isolation of Primary Mouse Hepatocytes for Nascent Protein Synthesis Analysis by Non-radioactive L-azidohomoalanine Labeling Method at JoVE.com

Мы благодарим Drs. Joonbae Seo и Вивиан Hwa за их научного вклада и обсуждения. Эта работа была поддержана Национальным институтом здравоохранения (НИЗ) (R01DK107530). Т.н. была поддержана ПРЕСТО из Японии науки и техники Агентство. В рамках этого исследования была поддержана гранта NIH (P30DK078392) для пищеварительной заболеваний исследовательский центр Core в Цинциннати.

Этот протокол содержит использования лабораторных мышей. Уход за животными и экспериментальной процедуры выполнялись в соответствии с процедурами, утвержденными животных ухода комитетов Цинциннати детей больница медицинского центра.
1. изоляция первичного мыши гепато?...

Хотя несколько увековечен печеночных клеток линии были предложены и использованы для изучения функции печени49,50,51,52, эти клетки, как правило, недостает важных и основополагающих функции нормальной гепатоцитов, таки?...

Белок является важным элементом питания и примерно 50% от сухого веса тела человека состоит из белков, которые имеют несколько биологических черт и функции1. Следовательно синтез белка является одним из наиболее энергии много событий и изменения в метаболизме белков высоко связан с развитием заболеваний, включая болезни обмена веществ2,3,4. В печени биосинтез белка приходится приблизительно 20 – 30% от общей энергии потребления5,6. Кроме того, функция белки не только пассивно или строительные блоки печени, но также активное посредничество сигнал факторы внутриклеточно или внеклеточно регулировать системного метаболизма7. Например, снижение уровня сывороточного альбумина, который синтезируется и выделяется печени и наиболее распространенных белка в плазме8, увеличивает риск типа 2 диабет развития9,10, 11, тогда как более высокой концентрации сывороточного альбумина защитные против развивающихся метаболический синдром12. Кроме того нарушается или нарушение секреторной или мембраны граница печени белков, которые модулируют гомеостаза холестерин, липопротеиды, LDLR и LRP1, может привести к развитию сопротивление инсулина, гиперлипидемия, или атеросклероза 13. Таким образом, Идентификация молекулярных патофизиологических механизмов, которые участвуют в нарушение метаболизма белка в печени и ее связанные метаболических осложнений может быть полезным для обнаружения Роман фармакологической подходы к задержать наступление или лечения метаболических заболеваний, таких как сопротивление инсулина, диабет и безалкогольные жирная печень.
Синтез белка тесно связан с состоянием клеточной энергии (например, формирование одной облигации пептид во время удлинения шага синтеза белка требует 4 Фосфодиэфирная облигации14) и регулируется молекулярные пути, которые чувствуют и внутри cellular наличия питательных веществ15,16. Активирована AMP протеин киназы (AMPK) — один из датчиков внутриклеточных энергии, которые поддерживают энергетического гомеостаза17. AMPK активируется при клеточном уровнях энергии снижаются, AMPK и его целевых субстратов функция стимулирования катаболические пути и подавляют анаболических процессов, включая синтез белков18,19. Регуляции синтеза белка при посредничестве фосфорилирование несколько факторов перевод и рибосомных белки20. Следует отметить млекопитающих цель rapamycin комплекс 1 (mTORC1), основной движущей силой синтеза белка, является одной из основных целей AMPK21. Активации пути mTORC1 повышает клеточный рост и распространение путем стимулирования белка перевод и autophagy20,21. Таким образом вполне логично, что активация AMPK может ингибировать синтез белка mTORC1-опосредованной22. Действительно активация AMPK противодействует и непосредственно фосфорилирует mTORC1 на треонин остатков 2446 (2446чет) приводит к инактивации23 и подавление биосинтеза белка24. Кроме того AMPK косвенно может ингибировать mTORC1 функции фосфорилирования и активации клубневые склероз комплекс 2 (TSC2)25 -вверх регулятор mTORC1 сигнальный Каскад. Короче говоря, регуляции этих путей в печени часто связан с развитием метаболических заболеваний и поэтому крайне необходимо создать эффективные инструменты экспериментально расследовать роль этих путей регулирования энергии и метаболизм белков в гепатоцитах.
Есть сильнее сходство между функциональными свойствами изолированных гепатоцитов первичной и гепатоцитов в естественных условиях чем с в vitro печени производные клеток линии26,27,28. Было доказано, что первичного человека гепатоцитов разделяют 77% сходства с этим биопсии печени, тогда как HepG2 клеток, которые являются высокодифференцированных раковых клеток печени и широко используется для изучения функции печени, отображения менее 48% в контексте Экспрессия генов профилей29. Таким образом использование первичных гепатоцитов, а не увековечен культуры клеток, имеет жизненно важное значение в расследовании функции печени и физиологии, и доступны несколько протоколы изоляции и культуры первичной гепатоцитов особенно от крыс30,31. Хотя гепатоцитов крыс полезны с относительно более высокой доходности клеток, мыши гепатоциты имеют больший потенциал во многих научных аспектах благодаря широкой доступности генетически модулированного мышей. Однако, есть несколько технических проблем в изоляции здоровым и обильные первичной гепатоцитов от мышей для сотовых и молекулярно-на основе оценок: во-первых, очень трудно справиться канюля вставки к perfuse печени с буфера реагентов из-за малого и тонкий мыши воротной вены или нижней полой вены; Во-вторых более длительное время манипуляции клеток во время изоляции может вызвать сокращение клеток и их качество; в-третьих, неферментативного Механическое разделение методы могут привести к серьезному повреждению и производить низкая доходность жизнеспособных изолированных гепатоцитов первичной32,33. В 1980-х коллагеназа перфузии техника была введена для изоляции гепатоцитов из печень животных34. Этот метод основан на коллагеназы перфузии печени35,,3637, настой печени с кальция хелатором решения38,39, ферментативного пищеварения и механический диссоциации печеночной паренхимы35. На первом шаге мыши печени является увлажненную с кальция [Ca2 +] Бесплатная буфер, содержащий [Ca2 +] хелатором (Этилендиамин tetraacetic кислота, ЭДТА). На втором шаге мыши печени является увлажненную с буфером коллагеназы содержащих для гидролизуют сотовых внеклеточная матрица взаимодействия. В отличие от буфер, используемый на шаге 1, требуется наличие ионов [Ca2 +] в буфере второй шаг для деятельности эффективной коллагеназы, после чего усваивается печень должна быть далее осторожно и механически разделяются с помощью щипцов между печеночная капсулу и паренхиматозных тканях. Наконец соединительной ткани удаляется путем фильтрации, и последующим центрифугированием отделяет жизнеспособных гепатоцитов из не Паренхиматозный клеток, так и неживых гепатоцитов с использованием плотности градиента буфера40,41 ,42. В настоящем исследовании мы покажем перфузии коллагеназы модифицированных двухэтапный способ изолировать первичной гепатоцитов из печени мыши для анализа синтеза белка.
Radiolabeling белков широко используется для количественной оценки уровни выражения, текучесть кадров и определить биологические распределение43 белков из-за высокой чувствительность обнаружения радиоактивности44. Однако использование радиоактивных изотопов требует высоко контролируемых исследований обстоятельств и процедур,45. Альтернативные Нерадиоактивные методы были разработаны и получили все большую популярность. Реакции перешнуровки химио селективный с методом обнаружения белка тетраметилродамина (ТАМРА) является одним из них и основывается на химио селективные реакции между азид и алкины группы46, который может быть использован для анализа сотовой событий, таких как Обнаружение зарождающейся белкового синтеза и подклассы гликопротеинов, изменение с азидом группой. Для зарождающейся белкового синтеза L-Azidohomoalanine (L-AHA, аминокислота азид модифицированные) можно метаболически включены в белки и обнаружить с помощью метода обнаружения ТАМРА белка47. Используя этот assay мыши гепатоцитов, мы показываем, что тариф синтеза зарождающейся белок тесно связана с наличия СПС от митохондриальных и AMPK активации (рис. 1).
В целом, использование первичных мыши гепатоцитов имеет решающее значение для изучения метаболизма белка и энергии и количественной синтез новых белков является ценным для получения понимание Физиологическая роль путей, относящихся к развитию и лечение заболеваний, связанных с гепатоцитов.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>HEPES buffer</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>BP310-500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>D-glucose</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>D16-500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ethylene glycol-bis(&#946;-aminoethyl ether)-tetraacetic acid</td>
			<td>AmericanBio</td>
			<td>AB00505-00025</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Antibiotic-Antimycotic (100X)</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>15240-062</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HBSS (10X) no calcium, magnesium, phenol red</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>14185-052</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Calcium Chloride Dihydrate (CaCl2.2H2O)</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>C79-500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Density gradient buffer</td>
			<td>GE Healthcare</td>
			<td>17-0891-02</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DMEM (Dulbecco&#39;s Modified Eagle Medium) low glucose, pyruvate</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>11885-084</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fetal Bovine Serum</td>
			<td>Hyclone</td>
			<td>SH30910.03</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphate Buffered Saline (PBS) (1X)</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>1897141</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Williams medium E, no glutamine</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>12551-032</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-alanyl-L-glutamine dipeptide supplement</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>35050-061</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Collagenase Type X</td>
			<td>Wako Pure Chemical Industries</td>
			<td>039-17864</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Perfusion pump</td>
			<td>Cole-Parmer</td>
			<td>Masterflex L/S</td>
			<td>Equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>IV administration set</td>
			<td>EXELINT</td>
			<td>29081</td>
			<td>Equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>A water bath</td>
			<td>REVSCI</td>
			<td>RS-PB-200</td>
			<td>Equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tube heater</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>Isotemp</td>
			<td>Equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ethanol</td>
			<td>Decon Lab, Inc</td>
			<td>0-39613</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isoflurane</td>
			<td>PHOENIX</td>
			<td>10250</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Autoclaved Cotton Tips</td>
			<td>Fisherbrand</td>
			<td>23-400-124</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>100 mm Petri Dish</td>
			<td>TPP</td>
			<td>93100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Connector (Male Luer Lock Ring)</td>
			<td>Cole-Parmer instrument</td>
			<td>EW-4551807</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>24G catheters</td>
			<td>TERUMO</td>
			<td>Surflo 24Gx3/4&#39;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>100 &#956;m Filter (CELL STRAINERS)</td>
			<td>VWR</td>
			<td>10199-658</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>15 ml conical-bottom centrifuge tubes</td>
			<td>VWR</td>
			<td>89039-666</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>50 ml conical-bottom centrifuge tubes</td>
			<td>VWR</td>
			<td>89039-658</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Chemoselective ligation reaction PROTEIN ANALYSIS DETECTION KIT, TAMRA ALKYNE</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>C33370</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>AHA (L-azidohomoalanine)</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>C10102</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DMEM (methionine free)</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>21013024</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-Cystine Dihydrochloride</td>
			<td>SIGMA</td>
			<td>C2526</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Laemmli sample buffer</td>
			<td>BioRad</td>
			<td>161-0737</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Protease Inhibitor Cocktail</td>
			<td>SIGMA</td>
			<td>P9599</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SDS solution (20%)</td>
			<td>BioRad</td>
			<td>161-0418</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tris-HCL (1M)</td>
			<td>American Bioanalytical</td>
			<td>AB14044-01000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphatase Inhibitor Cocktail</td>
			<td>SIGMA</td>
			<td>P5726</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Protein concentration measuring Kit (Bovin Serum Albumin-BSA)</td>
			<td>BioRad</td>
			<td>500-0207</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>6-well tissue culture plate</td>
			<td>TPP</td>
			<td>92006</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Digital Heatblock</td>
			<td>VWR</td>
			<td>12621-092</td>
			<td>Equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Multi-Rotator</td>
			<td>Grant-bio</td>
			<td>PTR-60</td>
			<td>Equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ultrasonic Sonicator</td>
			<td>Cole-Parmer</td>
			<td>GE130PB</td>
			<td>Equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Standard Heavy-Duty Vortex Mixer</td>
			<td>VWR</td>
			<td>97043-566</td>
			<td>Equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>A variable mode laser scanner</td>
			<td>GE Healthcare Life Science</td>
			<td>FLA 9500</td>
			<td>Equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Coomassie-dye reagent</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>24594</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Inverted microscope</td>
			<td>Olympus</td>
			<td>CKX53</td>
			<td>Equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Western Blotting apparatus</td>
			<td>BioRad</td>
			<td>1658004</td>
			<td>Equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Centrifuge</td>
			<td>Eppendorf</td>
			<td>5424R</td>
			<td>Equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Automated cell counter</td>
			<td>BioRad</td>
			<td>TC20</td>
			<td>Equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FluorChem R system</td>
			<td>proteinsimple</td>
			<td>-</td>
			<td>Equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>p-Ampka (T172) antibody</td>
			<td>Cell signaling</td>
			<td>2535</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Total-AMPK antibody</td>
			<td>Cell signaling</td>
			<td>5832</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Albumin antibody</td>
			<td>Cell signaling</td>
			<td>4929</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>beta actin antibody</td>
			<td>Santa Cruz</td>
			<td>sc-130656</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fine scissors and forceps</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

isolation of primary mouse hepatocytes for nascent protein synthesis analysis by non-radioactive l-azidohomoalanine labeling method

Гепатоциты Паренхиматозный клетки печени и заниматься несколько метаболические функции, в том числе синтез и секрецию белков, необходимых для системного энергетического гомеостаза. Основная гепатоцитов, изолированных из мышиных печени являются ценные биологические инструментом для понимания функциональных свойств или изменений, происходящих в печени. Здесь мы описывают метод для изоляции и культуры мыши гепатоцитов, выполняя двухэтапный метод коллагеназы перфузии и обсудить их использования для изучения метаболизма белков. Печень взрослой мыши последовательно увлажненную с этиленгликоль бис tetraacetic кислоты (EGTA) и коллагеназы, следуют изоляции гепатоцитов с буфером градиента плотности. Эти изолированных гепатоцитов жизнеспособной на культуре тарелки и сохранить большинство обеспеченных характеристики гепатоцитов. Эти гепатоцитов могут использоваться для оценки белкового обмена, включая синтез зарождающейся белка с нерадиоактивных реагентов. Мы покажем, что изолированных гепатоцитов легко контролируются и включать более высокие качество и объем стабильности синтеза белка, связаны с энергии метаболизма, используя реакции перешнуровки химио селективный с протеином тетраметилродамина (ТАМРА) метод обнаружения и западных blotting анализы. Таким образом этот метод является ценным для расследования синтеза гепатопротеинов зарождающейся, связаны с энергетического гомеостаза. Следующий протокол изложены материалы и методы для изоляции высокого качества первичных мыши гепатоцитов и выявление зарождающихся белкового синтеза.

Основная мышь гепатоцитов изоляции приводит к урожайности приблизительно 20 х 106 всего клетки мыши. Гистологически живой и придает первичной гепатоцитов появляются полигональные или типичные гексагональной формы с четко изложены мембранное границы после 24 ч ин...

Watch this Scientific Journal Video about Isolation of Primary Mouse Hepatocytes for Nascent Protein Synthesis Analysis by Non-radioactive L-azidohomoalanine Labeling Method at JoVE.com

Isolation of Primary Mouse Hepatocytes for Nascent Protein Synthesis Analysis by Non-radioactive L-azidohomoalanine Labeling Method

Изоляция первичного мыши гепатоцитов для зарождающейся белка синтез анализа методом маркировки нерадиоактивные L-azidohomoalanine

Здесь мы представляем протокол для изоляции здоровых и функциональных мыши гепатоцитов. Инструкции для обнаружения синтеза гепатопротеинов зарождающейся нерадиоактивные маркировки субстрата были предоставлены помочь понять механизмы, лежащие в основе синтеза белка в контексте гомеостаза энергии метаболизма в печени.

Hepatocytes are parenchymal cells of the liver and engage multiple metabolic functions, including synthesis and secretion of proteins essential for ...

Этот метод может помочь ответить на ключевые вопросы в различных областях исследования метаболических заболеваний о молекулярных изменениях печеночной энергии и биосинтеза белка при ожирении, безалкогольной жировой печени и диабете второго типа. Основными преимуществами этого метода являются то, что он облегчает изоляцию функциональных первичных гепатоцитов мыши и обнаружение печеночными зарождающимися белками с помощью нерадиоактивного маркировки субстрата. Визуальная демонстрация этого метода имеет решающее значение, как шаг перфузии трудно узнать из-за малых и тонких кровеносных сосудов мыши.Для перфузии печени, тщательно вставьте 24 калибровочный катетер в Нижняя Vena Cava или IVC только при бифуркации с правой почечной вены. Удалите катетерную иглу, поддерживая положение канюли в IVC, и соедините 24-калиберную канюлю с перфузиольной трубкой с помощью разъема. Начните perfusing печени с теплым HBSS минус на четыре миллилитров постоянной скорости потока быстро резки splenic вены для слива внутренней крови.Через 10 минут, perfuse мыши печени с 35 миллилитров HBSS плюс дополняется Collagenase Тип X со скоростью потока четыре миллилитров в минуту, зажимая splenic вены в течение примерно 10 секунд каждые несколько минут, чтобы облегчить распределение перфуза по всей печени. Когда все коллагеназы была пролита, передать печень на лабораторные ткани перед остановкой насоса, чтобы избежать обратного потока крови в печень. Используйте типсы, чтобы удалить желчный пузырь и аккуратно протрите печень свежей лабораторной тканью, чтобы удалить кровь.Поместите печень в 100-миллиметровую чашку Петри, содержащую пять миллилитров свежего теплого HBSS плюс дополненный коллагеназы и использовать бродячих наконечником типса, чтобы аккуратно удалить капсулу печени. Используйте щипцы, чтобы тщательно разогнать паренхимальной ткани и добавить 15 миллилитров холодной DMEM в чашку Петри. Встряхните разорванную печень осторожно, чтобы освободить остаточные паренхимальные клетки в среду и добавить еще 15 миллилитров холодного DMEM к блюду, чтобы приобрести остальные клетки.Затем фильтруй навоз ткани через 100 микрон-клеточный ситечко в 50 миллилитровую коническую трубку на льду. Чтобы изолировать первичные гепатоциты мыши, соберите клетки путем центрифугации и повторно посовеще гранулы в 10 миллилитров свежего DMEM. Тщательно слой клетки над 40%density градиент буфер для разделения градиента плотности, отбрасывая клетки из верхнего и среднего слоев после центрифугации.Resuspend первичной паренхимальной гранулы гепатоцитов с двух до трех миллилитров Среднего E Уильяма, чтобы избежать сбора мертвых клеток от стенки трубки и передачи клеток в новую 50 миллилитровую трубку. Смешайте клетки с дополнительными 7 до 8 миллилитров Уильяма E Medium до центрифугации и повторно гранулы в 10, 20, или 30 миллилитров свежих Средний E Уильяма в зависимости от размера гранулы. После подсчета, семена шесть раз от 10 до пятой клетки к каждому хорошо из шести хорошо пластины для двух-трехчасовой инкубации при 37 градусов по Цельсию.В конце инкубации замените среду DMEM, дополненную 10%Fetal Bovine Serum и анти-анти, чтобы удалить мертвые и незакрепленные клетки и вернуть клетки в инкубатор на ночь. Для азед-модифицированной зарождающейся маркировки белка добавьте от 20 до 40 микрограммов клеточного лизата до 50 микролитров буфера реакции 2X. Довнесите объем до 80 микролитров с дистиллированной деионизированной водой и вихрем белкового раствора в течение пяти секунд.Добавьте пять микролитров сульфата меди в клетки для другого пятисекторного вихря, а затем пять микролитров реакционной буферной добавки один с пятью секундами вихря. После трехминутной инкубации добавьте 10 микролитров восстановленной реакционной буферной добавки два к клеткам для другого пятисекторного вихря и поверните образец в течение 20 минут при четырех градусах Цельсия на многогниторной машине, защищенной от света. В конце вращения добавьте в лизат 300 микролитров метанола, за которыми последуют 75 микролитров хлороформа и 200 микролитров двойной дистиллированной воды.Соберите помеченный белок центрифугой и добавьте в гранулы 250 микролитров свежего метанола. После вихря, центрифуга лисат снова и покрыть голые гранулы с ворс свободной ткани в течение 15 минут при комнатной температуре. Для анализа PAGE, solubilize сушеные гранулы в 20 микролитров загрузки буфера без бета-меркаптоэтанола и вихрь гранулы в течение 10 минут.Затем нагрейте белок в тепловом блоке 70 градусов по Цельсию в течение 10 минут и загрузите образец на 10% сульфатный гель додедил сульфата натрия для обнаружения теттраметилродамина. Затем используйте лазерный сканер переменного режима для точной количественной оценки зарождающихся белков, помеченных AHA. Гистологически, живые и прикрепленные первичные гепатоциты кажутся типично многоугольными или шестиугольными по форме с четко изложенной мембранной границей после 24 часов культуры.Чтобы подтвердить, являются ли изолированные клетки первичными гепатоцитами, в этом эксперименте уровни экспрессии белка альбумин были сравнены в эмбриональных фибробластах мыши, линии клеток гепатомы мыши, изолированных первичных гепатоцитах мыши и печени мыши. Выражение белка альбумин было обнаружено в первичных гепатоцитах мыши и печени мыши, но не было обнаружено ни в эмбриональных фибробластах мыши, ни в клетках линии гепатомы. Первичное лечение гепатоцитов с помощью 10 микромоляных ротенонов в течение четырех-шести часов выявило надежную индукцию печеночным киназы с активацией АМП, как это было обнаружено повышенным уровнем фосфорилирования на печеночным киназе T172, активированном AMP, аналогичном наблюдаемому in vivo.Действительно, пять часов из 10 микромоляных ротенон лечение было глубокое ингибирующее воздействие на зарождающийся синтез белка в обработанных первичных гепатоцитов по сравнению с необработанных контрольных клеток, как попродемонстрировано химиоселективной перевязки реакции анализа. При попытке этой процедуры, важно помнить, чтобы подготовить все необходимые реагенты и среды заранее. Этот метод проложил путь для исследователя в области печеночной метаболической патофизиологии, чтобы исследовать молекулярный механизм регуляции энергетического белка при ожирении и диабете второго типа в изолированных первичных гепатоцитах мыши.

Research

JoVE Journal

Medicine

A Model of Disturbed Flow-Induced Atherosclerosis in Mouse Carotid Artery by Partial Ligation and a Simple Method of RNA Isolation from Carotid Endothelium

Модель возмущенного течения индуцированного атеросклероза в сонной артерии мыши по частичному Лигирование и простой способ выделения РНК из сонной эндотелия

Despite the well-known close association, direct evidence linking disturbed flow to atherogenesis has been lacking. We have recently used a modified ...

In vitro Organoid Culture of Primary Mouse Colon Tumors

In vitro Organoid Culture of Primary Mouse Colon Tumors

В пробирке Organoid культуры первичных опухолей толстой мыши

Several  human and murine colon cancer cell lines have been established, physiologic  integrity of colon tumors such as multiple cell layers, basal-apical ...

Coculture Analysis of Extracellular Protein Interactions Affecting Insulin Secretion by Pancreatic Beta Cells

Coculture Анализ внеклеточных белковых взаимодействий влияющие секрецию инсулина клетками поджелудочной железы бета

Interactions between cell-surface proteins help coordinate the function of neighboring cells. Pancreatic beta cells are clustered together within ...

A Modified Method for Heterotopic Mouse Heart Transplantion

Модифицированный метод для гетеротопической Mouse сердца Transplantion

Mice are often used as heart transplant donors and recipients in studies of transplant immunology due to the wide range of transgenic mice and reagents ...

Method for Obtaining Primary Ovarian Cancer Cells From Solid Specimens

Способ получения первичных клеток рака яичников от твердых образцов

Reliable tools for investigating ovarian cancer initiation and progression are urgently needed. While the use of ovarian cancer cell lines remains a ...

Isolation and Culture of Primary Endothelial Cells from Canine Arteries and Veins

Выделение и культуры первичных эндотелиальных клеток от клыка артериями и венами

Cardiovascular disease is studied in both human and veterinary medicine. Endothelial cells have been used extensively as an in vitro model to study ...

Fluorescent Dye Labeling of Erythrocytes and Leukocytes for Studying the Flow Dynamics in Mouse Retinal Circulation

Флуоресцентная маркировка красителей эритроцитов и лейкоцитов для изучения динамики потока в циркуляции сетчатки мышей

The retinal and choroidal blood flow dynamics may provide insight into the pathophysiology and sequelae of various ocular diseases, such as glaucoma, ...

Lentiviral Vector-mediated Gene Therapy of Hepatocytes Ex Vivo for Autologous Transplantation in Swine

Lentiviral Vector-mediated Gene Therapy of Hepatocytes Ex Vivo for Autologous Transplantation in Swine

Лентивирусные вектор опосредованной генотерапии гепатоцитов Ex Vivo аутологичной трансплантации в свиней

Gene therapy is an ideal choice to cure many inborn errors of metabolism of the liver. Ex-vivo, lentiviral vectors have been used successfully in the ...

Ultrasonic-augmented Primary Adult Fibroblast Isolation

Ультразвуковое дополненное первичное взрослое фибробластновая изоляция

Primary adult fibroblasts have become an important tool to study fibrosis, fibroblast interactions and inflammation in all body tissues. Since primary ...

A Non-Invasive Method for Generating the Cyclic Loading-Induced Intra-Articular Cartilage Lesion Model of the Rat Knee

Неинвазивный метод генерации модели внутрисуставного поражения внутрисуставного хряща крысы, вызванной циклической нагрузкой

The pathophysiology of primary osteoarthritis (OA) remains unclear. However, a specific subclassification of OA in relatively younger age groups is likely ...