Name: noninvasive monitoring of lesion size in a heterologous mouse model of endometriosis
Uploaded: 2019-02-26T13:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Noninvasive Monitoring of Lesion Size in a Heterologous Mouse Model of Endometriosis at JoVE.com

Ce travail a été soutenu par le ministère espagnol de l’économie et la compétitivité par le biais de Miguel Servet programme [CP13/00077] a cofondé par le FEDER (fonds européen de développement régional) et attribué au docteur R. Gómez, ainsi que par Carlos III Institut de la santé subventions accordées Dr R Gómez [IP14/00547 et PI17/02329] et Prof A. Cano [PI12/02582].

L’utilisation d’échantillons de tissus humains a été approuvée par l’Institutional Review Board et le Comité d’éthique de l’Hospital Universitario La Fe. Consentement éclairé a fourni tous les patients. L’étude impliquant des animaux a été approuvé par le Comité institutionnel de protection Animal au Centro de Investigacion Principe Felipe de Valencia, et toutes les procédures ont été réalisées suivant les directives pour le soin et l’utilisation des mammifères auprès des instituts natio...

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	<li>Nap, A. W., Groothuis, P. G., Demir, A. Y., Evers, J. L., Dunselman, G. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pathogenesis+of+endometriosis.">Pathogenesis of endometriosis.</a> Best Practice &amp; Research: Clinical Obstetrics &amp; Gynaecology. 18, 233-244 (2004).</li><li>Holoch, K. J., Lessey, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Endometriosis+and+infertility.">Endometriosis and infertility.</a> Clinical Obstetrics and Gynecology. 53, 429-438 (2010).</li><li>Eskenazi, B., Warner, M. 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M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+novel+non-invasive+model+of+endometriosis+for+monitoring+the+efficacy+of+antiangiogenic+therapy.">A novel non-invasive model of endometriosis for monitoring the efficacy of antiangiogenic therapy.</a> The American Journal of Pathology. 168 (6), 2074-2084 (2006).</li><li>Laschke, M. W., Giebels, C., Nickels, R. M., Scheuer, C., Menger, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Endothelial+progenitor+cells+contribute+to+the+vascularization+of+endometriotic+lesions.">Endothelial progenitor cells contribute to the vascularization of endometriotic lesions.</a> The American Journal of Pathology. 178 (1), 442-450 (2011).</li><li>Nap, A. 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C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Prodrug+of+green+tea+epigallocatechin-3-gallate+(Pro-EGCG)+as+a+potent+anti-angiogenesis+agent+for+endometriosis+in+mice.">Prodrug of green tea epigallocatechin-3-gallate (Pro-EGCG) as a potent anti-angiogenesis agent for endometriosis in mice.</a> Angiogenesis. 16 (1), 59-69 (2013).</li><li>Delgado-Rosas, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effects+of+ergot+and+non-ergot-derived+dopamine+agonists+in+an+experimental+mouse+model+of+endometriosis.">The effects of ergot and non-ergot-derived dopamine agonists in an experimental mouse model of endometriosis.</a> Reproduction. 142 (5), 745-755 (2011).</li><li>Al-Jefout, M., Andreadis, N., Tokushige, N., Markham, R., Fraser, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+pilot+study+to+evaluate+the+relative+efficacy+of+endometrial+biopsy+and+full+curettage+in+making+a+diagnosis+of+endometriosis+by+the+detection+of+endometrial+nerve+fibers.">A pilot study to evaluate the relative efficacy of endometrial biopsy and full curettage in making a diagnosis of endometriosis by the detection of endometrial nerve fibers.</a> American Journal of Obstetrics &amp; Gynecology. 197 (6), 578 (2007).</li><li>Fortin, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Quantitative+assessment+of+human+endometriotic+tissue+maintenance+and+regression+in+a+noninvasive+mouse+model+of+endometriosis.">Quantitative assessment of human endometriotic tissue maintenance and regression in a noninvasive mouse model of endometriosis.</a> Molecular Therapy. 9 (4), 540-547 (2004).</li><li>Liu, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Improved+nude+mouse+models+for+green+fluorescence+human+endometriosis.">Improved nude mouse models for green fluorescence human endometriosis.</a> Journal of Obstetrics and Gynaecology Research. 36 (6), 1214-1221 (2010).</li><li>Wang, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+red+fluorescent+nude+mouse+model+of+human+endometriosis:+advantages+of+a+non-invasive+imaging+method.">A red fluorescent nude mouse model of human endometriosis: advantages of a non-invasive imaging method.</a> European Journal of Obstetric Gynecologic and Reproductive Biology. 176, 25-30 (2014).</li></ol>

Le protocole détaillé ci-après décrit la mise en œuvre d’un modèle animal de l’endométriose, dont l’architecture d’implantation architecture des lésions est préservée tout en permettant simultanément en temps réel de la fluorescence émise par mCherry marqués de tissu endométrial. Dans ce protocole, nous décrivons l’utilisation d’un appareil d’imagerie in vivo spécifique et des logiciels d’évaluation non invasive fluorescence émise par la lésion étiquetée. Chaque utilisateur doit adap...

L’endométriose est une affection gynécologique chronique initiée par l’implantation de l’endomètre fonctionnel en dehors de la cavité utérine. Les lésions ectopiques croissent et induisent des processus inflammatoires, conduisant à la chronique pelvienne douleur et l’infertilité1. On estime que vers le haut à 10 – 15 % des femmes en âge de procréer sont influencés par endometriosis2, et elle est présente dans environ 40 – 50 % des femmes infertiles3. Les traitements pharmacologiques actuels pour l’endométriose sont incapables d’éradiquer complètement les lésions et pas sans effets secondaires4,5. La recherche des thérapies plus efficaces requiert du raffinement des modèles animaux existants de l’endométriose, de telle sorte que les lésions humaines peuvent être imitées de manière appropriée, et évaluer attentivement les effets des composés sur la taille de la lésion entre autres.
Modèles de primates ont été utilisés pour imiter l’endométriose par implantation ectopiques lésions histologiquement identiques et sur des sites similaires comme les humains6,7,8; Toutefois, les préoccupations éthiques et le coût économique élevé liée à l’expérimentation avec les primates limite leur utilisation9. En conséquence, l’utilisation de petits animaux, surtout des rongeurs, pour la mise en œuvre de modèles in vivo de l’endométriose continue à être favorisée car elle permet des études avec un plus grand nombre de personnes10,11. L’endométriose peut être induite chez ces animaux en transplantant des morceaux de rongeurs cornes utérines (modèles « homologues »)12,13 ou tissu endométrial/endometriotic humain aux sites ectopiques (modèles hétérologues)14 . Contrairement aux humains, les rongeurs ne perdent pas leur tissu endométrial et ainsi l’endométriose ne peut pas être développé spontanément chez ces espèces. Par conséquent, homologue souris modèles de l’endométriose ont été critiquées en raison du fait qu’implanté des tissus utérins souris ectopique ne reflète pas les caractéristiques des lésions endometriotic humaines15.
Physiologie appropriée de l’endométriose peut être imitée dans les modèles hétérologues d’endométriose où des fragments de l’endomètre humains frais sont implantés chez des animaux immunodéficients. Les modèles conventionnels hétérologues, les effets thérapeutiques des composés d’intérêt sont généralement évalués à la fin par l’évaluation de la taille de la lésion à l’aide d’étriers16. Une limitation évidente est que, par conséquent, les modèles animaux de point de terminaison ne permettent pas étudier la dynamique de l’implantation ou le développement des lésions endometriotic au fil du temps. Une autre limite est que l’utilisation des étriers ne permet pas de mesures précises de la taille de la lésion. En effet, l’écart-type fourni par étriers est dans la même gamme (c.-à-d. millimètres) que la taille des lésions implantés chez des souris, limitant ainsi la capacité de ces outils pour détecter les variations réelles dans la taille.
Afin de surmonter ces limitations, dans les présentes, nous décrivons la génération d’un modèle de souris hétérologues d’endométriose dans lequel les tissus humains implantés sont conçu pour exprimer une protéine fluorescente de journaliste m-Cherry. Détection du signal fluorescent avec un système d’image appropriée permet une surveillance non invasive de l’état de la lésion avec quantification simultanée de sa taille en temps réel. Ainsi, notre modèle prévoit des avantages évidents par rapport aux modèles de point de terminaison conventionnelle car elle apporte la possibilité de surveillance non invasive en temps réel et la possibilité d’effectuer les plus objectives et une estimation précise des variations dans la taille de la lésion.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>Endosampler&#8482;</td>
			<td>Medgyn</td>
			<td>22720</td>
			<td>Cannula for sampling the uterine endometrium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DMEM Medium</td>
			<td>VWR</td>
			<td>HYCLSH30285.FS</td>
			<td>Medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ad-mCherry</td>
			<td>Vector Biolabs</td>
			<td>1767</td>
			<td>Adenoviral vector expressing mCherry</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PBS, 1X solution, sterile, pH 7,4</td>
			<td>VWR</td>
			<td>E504-500ML</td>
			<td>Buffer for washes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pellets 17-B-Estradiol 18 mg/ 60 days</td>
			<td>Innovative Research of America</td>
			<td>SE-121</td>
			<td>Hormone pellets for rodents</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vetbond&#8482; Tissue Adhesive</td>
			<td>3M</td>
			<td>780-680</td>
			<td>Tissue adhesive</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Petri dishes in polystyrene crystal</td>
			<td>Levantina</td>
			<td>367-P101VR20</td>
			<td>Petri dishes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Penicillin-Streptomicin</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>P4333-100ML</td>
			<td>Antibiotics</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringes, medical 10 ml 0,5 ml</td>
			<td>VWR</td>
			<td>CODA626616</td>
			<td>Syringes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nitrile gloves, powder-free</td>
			<td>VWR</td>
			<td>112-2754</td>
			<td>Gloves</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Soft swiss nude mice</td>
			<td>Charles River</td>
			<td>SNUSSFE05S</td>
			<td>Mice for animal experiment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ivis Spectrum In vivo Imaging system</td>
			<td>Perkin Elmer</td>
			<td>124262</td>
			<td>In vivo Monitoring equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Living Image&#174; (Ivis software)</td>
			<td>Perkin Elmer</td>
			<td>---</td>
			<td>In vivo monitoring software</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fetal Bovine Serum</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>10082147</td>
			<td>Enrichment serum</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>96-well cell culture treated plates</td>
			<td>Life technologies</td>
			<td>167008</td>
			<td>Culture plates</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Urine flasks</td>
			<td>Summedical</td>
			<td>4004-248-001</td>
			<td>Flasks for washes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile surgical blades</td>
			<td>(Aesculap Division) Sanycare</td>
			<td>1609022-0008</td>
			<td>Surgical blades</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isovet 1000 mg/g</td>
			<td>B-BRAUN</td>
			<td>---</td>
			<td>Isoflurane (Anesthetic)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Buprex&#174; 0.3 mg</td>
			<td>Schering Plough S.A.</td>
			<td>---</td>
			<td>Buprenorphine (Analgesic solution)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Injectable morphine solution 10 mg/mL</td>
			<td>B BRAUN</td>
			<td>---</td>
			<td>Morphine (Analgesic solution)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Monofyl&#174; Absorbable Sutures</td>
			<td>COVIDIEN</td>
			<td>---</td>
			<td>Sutures</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Desinclor chlorhexidine</td>
			<td>Promedic SA</td>
			<td>---</td>
			<td>Antiseptic solution</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscopy DMi8</td>
			<td>Leica Mycrosystems</td>
			<td>---</td>
			<td>fluorescence microscope</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hera Cell 150 Incubator</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>51026282</td>
			<td>Incubator</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

noninvasive monitoring of lesion size in a heterologous mouse model of endometriosis

Nous décrivons ici un protocole pour la mise en œuvre d’un modèle de souris hétérologues dans lequel la progression de l’endométriose peut être évaluée en temps réel grâce à une surveillance non invasive de la fluorescence émise par le tissu endométrial humain ectopique implanté. À cette fin, biopsie de l’endomètre humain proviennent de don d’ovocytes en cours de donateurs femmes. Des fragments de l’endomètre humains sont cultivées en présence de l’adénovirus machinés pour cDNA express pour le mCherry de protéine fluorescente de journaliste. Après visualisation, étiqueté tissus avec un taux optimal de fluorescence après infection sont par la suite choisi pour l’implantation chez les bénéficiaires. Une semaine avant la chirurgie d’implantation, souris bénéficiaires sont chez et pastilles d’estradiol sont placés par voie sous-cutanée pour soutenir la survie et la croissance des lésions. Le jour de la chirurgie souris sont cavité péritonéale et anesthésiée, accédée via une incision de petite taille (1,5 cm) de la linea alba-. Les implants fluorescent étiquetés sont épilés, brièvement trempés dans la colle et attachées à la couche péritonéale. Incisions sont suturées et animaux à gauche pour récupérer pendant quelques jours. Fluorescence émise par les implants endometriotic est habituellement non invasive surveillé tous les 3 jours pendant 4 semaines avec un système d’imagerie in vivo. Variations de la taille des implants endometriotic peuvent être estimées en temps réel par quantification du signal mCherry et normalisation contre le temps-point initial indiquant l’intensité de la fluorescence maximale.
Les rongeurs précliniques traditionnelles des modèles de l’endométriose ne permettent pas la surveillance non invasive de la lésion en temps réel mais plutôt permettent une évaluation des effets des médicaments testés à la fin. Ce protocole permet de suivre en temps réel des lésions et est plus utile d’explorer le potentiel thérapeutique des médicaments dans les modèles précliniques de l’endométriose. La principale limitation du modèle ainsi produite est que surveillance non invasive n’est pas possible sur de longues périodes de temps en raison de l’expression épisomiques d’Ad-virus.

Nous décrivons ici le processus de création d’un modèle hétérologue d’endométriose dans lequel l’architecture des lésions est préservée par l’implantation de fluorescent étiquetés morceaux d’endomètre humain dans des souris immunodéficientes, permettant ainsi non invasif suivi de la progression de la lésion. Étiquetage des fragments de l’endomètre est réalisée par l’infection à adénovirus machinés pour express mCherry, une protéine à l’émission de f...

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Noninvasive Monitoring of Lesion Size in a Heterologous Mouse Model of Endometriosis

Nous présentons ici un protocole pour vivre-imagerie des fragments de l’endomètre humains fluorescent étiquetés greffés chez des souris. La méthode permet d’étudier les effets des médicaments de choix sur la taille de la lésion endometriotic grâce à la surveillance et la quantification de la fluorescence émise par le journaliste fluorescent en temps réel

Surveillance non invasive de la taille de la lésion dans un modèle murin hétérologues d’endométriose

Here, we describe a protocol for the implementation of a heterologous mouse model in which progression of endometriosis can be assessed in real time ...

Cette méthode peut aider à répondre aux questions clés dans l’évaluation des effets thérapeutiques des médicaments dans le domaine de l’endométriose, tels que les effets des composés anti-androgènes sur la taille des lésions endométriotiques. Le principal avantage de cette technique est que les effets des médicaments spécifiques peuvent être évalués dans des modèles animaux d’endométriose en temps réel, plutôt qu’au point final. Jessica Martinez, technicienne de mon laboratoire, ainsi que Viviana Bisbal et Nerea Marin, vétérinaires du Centro de Investigacion Principe Felipe, sont des collaborateurs proches de notre équipe.Deux à trois jours avant la chirurgie de l’implant, transférez des fragments de biopsie de tissu endométrial sain rincés en une boîte de Pétri de 10 centimètres contenant un milieu complet, et utilisez des scalpels pour hacher le tissu en morceaux en cubes de cinq à dix millimètres. À l’aide d’une micropipette, ajouter de 30 à 50 gouttes de microlitres de DMEM au fond d’un nouveau plat de culture de 10 centimètres, laissant suffisamment d’espace entre chaque goutte afin qu’elles n’entrent pas en contact les unes avec les autres. Lorsque toutes les gouttes ont été placées, utilisez une aiguille de seringue pour placer un seul morceau de fragment de tissu de biopsie dans chaque goutte.Ensuite, ajoutez 100 à 200 microlitres d’adéno-mCherry fraîchement préparé à un puits d’une plaque de puits de 96 par fragment de tissu, plus trois puits avec DMEM sans adénovirus comme contrôle négatif. Ensuite, utilisez l’aiguille pour transférer un échantillon de tissu dans chaque puits de solution adéno-mChéry pour une incubation d’une nuit à 37 degrés Celsius et 5% de CO2. Le lendemain matin, placez la plaque sur un stade de microscope à fluorescence et utilisez un laser de 568 nanomètres pour vérifier les fragments pour un étiquetage optimal.L’utilisation de la dilution appropriée de l’infection de l’adénovirus mCherry est essentielle pour une étiquetage efficace du tissu. Donc, pour déterminer la concentration appropriée, plusieurs pour la dilution mCherry, pour chaque expérience individuelle, doivent être évalués. Ensuite, transférez les fragments les plus brillants dans les puits individuels d’une nouvelle plaque de puits 96 contenant un milieu frais et complet.Au moins sept jours après l’oophorectomie, décanter les fragments de tissu endométrial dans une boîte de Pétri, et confirmer un manque de réponse à la pincement des orteils chez un animal anesthésié et oophorectomisé. Avec la souris dans la position supine désinfecter la zone ventrale et faire une incision longitudinale de 1,5 centimètre dans l’abdomen. Séparez la peau du muscle et faites une deuxième incision de 1,5 centimètre dans le muscle pour accéder à la cavité péritonéale.Tenant le bord gauche de la paroi musculaire abdominale avec des mini-forceps, pliez le muscle pour exposer la face intérieure du péritoine à l’extérieur de l’animal. Utilisez des mini-pinces à épiler pour tremper brièvement un implant endométrial dans l’adhésif cyanoacrylate n-butyl ester et fixer le fragment au péritoine. Lorsque l’adhésif est séché, placez un deuxième implant sur le côté contralatéral du péritoine comme il vient de le démontrer.Utilisez une suture absorbable 6-0 pour fermer la couche musculaire et une suture 6-0 non absorbable pour fermer la peau. Nettoyez ensuite l’incision cutanée avec une solution antiseptique et placez l’animal dans la zone de récupération avec surveillance jusqu’à ce qu’il soit complètement couché. Pour l’imagerie fluorescente in vivo des fragments de tissu implantés, 24 à 48 heures après l’implantation, allumez le système d’imagerie in vivo, initialisez le logiciel et laissez la caméra CCD refroidir pendant quelques minutes.Une fois l’instrument prêt, placez la première souris anesthésiée dans la cage du système d’imagerie in vivo, en position supine, avec la tête à l’intérieur d’un tubule relié à la machine d’anesthésie, et fermez le couvercle. Cliquez ensuite sur acquérir et enregistrer les cinq images qui en résultent. Pour quantifier la fluorescence in vivo, dans le logiciel d’analyse d’image approprié cliquez sur parcourir et sélectionnez le fichier d’intérêt non mélangé à analyser.Une nouvelle fenêtre apparaîtra. Cliquez sur ajouter à la liste pour inclure tous les fichiers non mélangés de chaque animal à différents points de temps et cliquez sur la charge en groupe. Toutes les images doivent apparaître en une seule séquence.Dans la fenêtre de palette d’outils, désélectionner la case à cocher à l’échelle individuelle pour ajuster toutes les images à la même échelle, et double clic sur une image de la séquence. Pour créer une région d’intérêt, dans la région des outils d’intérêt sélectionnez le contour et l’auto une options, et cliquez sur la forme du cercle pour placer le cercle au centre du signal fluorescent. Cliquez sur créer pour créer la région d’intérêt et copier et coller la région d’intérêt sur un fond où il n’y a pas de signal.Cliquez ensuite sur mesurer les régions d’intérêt et sélectionnez toutes pour afficher les valeurs de l’intensité de fluorescence de chaque région et copier et coller ces valeurs dans une feuille de calcul. L’étiquetage des fragments endométrials est réalisé par infection par l’adénovirus conçu pour exprimer mCherry, une protéine qui émet la fluorescence dans la section proche infrarouge qui est sensiblement plus robuste que l’autofluorescence non infectée de tissu endométrial. Pendant la surveillance, en plus de la longueur d’onde de référence pour mCherry, des images fluorescentes sont prises avec différentes paires de filtres à longueur d’onde d’émission d’excitation.Pour définir les profils caractéristiques d’émission des tissus fluorescents des lésions de l’arrière-plan, et l’autofluorescence émise par les tissus hôtes, les images de surveillance contenant la fluorescence brute émise par les animaux à chaque point de temps sont réunies, non normalisées, dans un seul fichier. Ensuite, la fluorescence n’est pas mélangée, normalisée et représentée comme une image de fausse couleur, et les régions d’intérêts correspondant à des signaux spécifiques de légion et d’arrière-plan sont automatiquement reconnues par le programme et quantifiées. La région d’arrière-plan de la signalisation d’intérêt est soustrayée de la région de la légion de signalisation d’intérêt.Et les résultats de l’intensité à chaque point de temps sont normalisés par rapport au moment où l’intensité est maximale. Après plusieurs semaines de surveillance, les implants viables peuvent être récupérés pour une analyse plus approfondie en aval. Tout en essayant cette procédure, il est important de se rappeler de sélectionner la concentration d’Ad-mCherry qui fournit le signal le plus brillant sans compromettre la viabilité du tissu.Après cette procédure, les lésions peuvent être récupérées et utilisées pour étudier des paramètres distinctifs supplémentaires. Cette procédure est optimisée pour la surveillance non invasive des lésions humaines de xénogreffe d’endométriose. Cependant, il peut être facilement adapté pour évaluer les effets d’un médicaments spécifiques d’intérêt sur les sites d’une xénogreffe en temps réel.

Research

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Nuclear migration and anchorage within developing and adult tissues relies heavily upon large macromolecular protein assemblies called LInkers of the ...

Trans-inner Cell Mass Injection of Embryonic Stem Cells Leads to Higher Chimerism Rates

TRANS-intérieur cellulaire massive Injection de cellules souches embryonnaires conduit à des taux plus élevés de chimérisme

In an effort to increase efficiency in the creation of genetically modified mice via ES Cell methodologies, we present an adaptation to the current ...

A Mouse Model of Intestinal Partial Obstruction

Un modèle de souris d’une Obstruction intestinale partielle

Intestinal obstructions, that impede or block peristaltic movement, can be caused by abdominal adhesions and most gastrointestinal (GI) diseases including ...

Mass Spectrometry Analysis to Identify Ubiquitylation of EYFP-tagged CENP-A (EYFP-CENP-A)

Mass Spectrometry Analysis to Identify Ubiquitylation of EYFP-tagged CENP-A EYFP-CENP-A

Analyse de spectrométrie de masse pour identifier l’ubiquité de cenp-A marqué par EYFP (EYFP-CENP-A)

Studying the structure and the dynamics of kinetochores and centromeres is important in understanding chromosomal instability (CIN) and cancer ...

Visualization of Replisome Encounters with an Antigen Tagged Blocking Lesion

Visualisation de rencontres répliquantes avec une lésion bloquante marquée avec un antigène

Considerable insight is present into the cellular response to double strand breaks (DSBs), induced by nucleases, radiation, and other DNA breakers. In ...

A Mouse Model of Lumbar Spine Instability

Un modèle de souris de l’instabilité lombaire de colonne vertébrale

Intervertebral disc degeneration (IDD) is a common pathological change leading to low back pain. Appropriate animal models are desired for understanding ...

Monitoring Dynamic Growth of Retinal Vessels in Oxygen-Induced Retinopathy Mouse Model

Surveillance de la croissance dynamique des vaisseaux rétiniens dans un modèle murin de rétinopathie induite par l’oxygène

Oxygen-induced retinopathy (OIR) is widely used to study abnormal vessel growth in ischemic retinal diseases, including retinopathy of prematurity (ROP), ...