Name: identification, histological characterization, and dissection of mouse prostate lobes for in vitro 3d spheroid culture models
Uploaded: 2018-09-18T14:30:00
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Diese Arbeit wurde durch den Zuschuss vom National Cancer Institute, R01CA161018, LK unterstützt.

Alle hier beschriebenen Maus-Experimente wurden nach den Richtlinien in der institutionellen IACUC zugelassene Protokolle SUNY Upstate Medical University durchgeführt.
(1) die Dissektion des Urogenitalsystems (UGS)
Hinweis: Der Schaltplan ist in Abbildung 1dargestellt.
<ol><li>Einschläfern Sie eine 3-Monate-alten männliche C57BL/6-Maus mit CO2 inhalativer Euthanasie Methode oder eine andere anerkannte Technik. Hinweis...

<ol>
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P., Adisetiyo, H., Liang, M., Roy-Burman, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cancer-associated+fibroblasts+enhance+the+gland-forming+capability+of+prostate+cancer+stem+cells.">Cancer-associated fibroblasts enhance the gland-forming capability of prostate cancer stem cells.</a> Cancer Research. 70 (18), 7294-7303 (2010).</li></ol>

Dieses Papier beschreibt die Methoden zur Präparation der Maus Prostata und Identifikation der einzelnen Lappen. Auch beschrieben, ist das Protokoll für die Kultivierung der Maus Prostata-Zellen in einer 3D Kultur für in-vitro- Analyse.
Ein wichtiger Schritt bei der Dissektion-Protokoll ist (1) Ernte die gesamte UGS aus der Maus und trennen die einzelnen Organe unter dem Mikroskop Dissektion. Das Prostatagewebe ist sehr klein und umgeben von den Rest des UGS; So ist es praktisch un...

Die wissenschaftliche Gemeinschaft hat versucht, die komplexen Mechanismen der menschlichen Krebsentstehung jahrzehntelang aufzuklären. Während Identifizierung von potenziellen Akteure und Drogeziele mit Patienten Zellen und Gewebe-Studien beginnt, erfordert die translatorische Anwendung solcher Befunde oft die Verwendung von präklinischen Tiermodellen. Die Verwendung von gentechnisch veränderten Mäusen Modelle (GEMMs) bis Modell menschlichen Krebsarten ist kontinuierlich gestiegen, seit der Gründung des Maus Modelle der menschlichen Krebserkrankungen Consortium (NCI-MMHCC), ein Ausschuss, der versucht, zu beschreiben und zu vereinheitlichen Eigenschaften von Maus-Krebs Modelle für Wissenschaftler weltweit1,2. Maus-Modelle erfüllen die Notwendigkeit mechanistische Studien in präklinischen Studien für die meisten Krebsarten, für das Verständnis von Entwicklung, Fortschritt, Reaktion auf Behandlungen, und Resistance3erworben.
Prostatakrebs ist die am häufigsten auftretende Krebserkrankung bei Männern, betrifft mehr als 160.000 Männer jedes Jahr4. Aggressivere Formen der Erkrankung Anspruch auf Zehntausende von Leben jedes Jahr. Allerdings ist der Mechanismus des Fortschreitens der Krankheit immer noch schlecht verstanden. Dies führt zu einem gravierenden Mangel an effektiven Behandlungsmöglichkeiten für fortgeschrittenen und metastasierten Prostata-Krebs, wie die hohe Sterblichkeitsrate in fortgeschrittenem Prostatakrebs Patienten4belegt. Daher gibt es ein wachsendes Bedürfnis nach präklinischen Modellen, Prostata-Krebs zu studieren. Allerdings aufgrund der inhärenten Unterschiede zwischen der Maus und der menschlichen Prostata, Modellierung von Prostatakrebs bei GEMMs nicht Popularität gewinnen bis Bar Harbor Klassensystem im Jahr 2004 eingeführt wurde, die histopathologischen in der Maus Veränderungen Prostata auf Genmanipulation, Identifikation von neoplastischen Veränderungen und ihre Beziehung zu Stadien der Krebsentwicklung im Menschen5. Ein wichtiges Merkmal der Maus Prostata, die während des Studiums Prostata GEMM-Modell berücksichtigt werden muss ist das Vorhandensein von vier verschiedene Paare von Lappen: anterior, seitliche, ventral und dorsal. Die Lappen zeigen signifikante Unterschiede in der Histopathologie und Gen Ausdruck Muster6. Probasin Protein Expressionsmuster variiert zwischen Lappen in jungen Post-Pubertät Mäusen7, die da GEMM Cre-basierte Modelle meist sollen berücksichtigt werden müssen, mit einer probasin-basierte Promotor Pb-Cre4-7genannt. Die daraus resultierenden unterschiedlichen räumlichen und zeitlichen Cre Ausdruck oft führen zu Unterschieden im Tumor Initiation und Progression Timelines sowie Unterschiede in neoplastischen Veränderungen zwischen den Lappen. Also, es ist wichtig, um diese Unterschiede zu berücksichtigen, während seines Studiums der Tumorentstehung in der Prostata GEMMs, und die einzelnen Lappen müssen separat bewertet werden, um reproduzierbare Ergebnisse zu erzielen. Der erste Teil dieses Artikels beschreibt die richtigen Methoden, um eine Maus Prostata zu sezieren, identifizieren und jeder Lappen zu trennen und erkennen die histologischen Unterschiede zwischen den Lappen.
Während die Analyse von Tumorwachstum und Histopathologie wertvolle Einblicke in die Entwicklung von Tumoren bereitstellen kann, bieten sie nicht viele Informationen über molekulare Mechanismen. Um den Mechanismus der Tumorentstehung und Progression zu studieren, ist es oft sinnvoll, die Tumor-Zellen in Vitrozu analysieren. Im Laufe der Jahre, die Kulturen dieser Zellen, einschließlich Suspensionskulturen, 3D Kulturen8 beinhalten verschiedene Methoden vorgeschlagen worden und vor kurzem, regelmäßigen 2D Kulturen9. Während die meisten dieser Methoden gute Zelle überleben und Verbreitung Preise führen, bieten 3D Kulturen eine Umgebung, die physiologischen Bedingungen am nächsten kommt. In 3D oder Sphäroid Kulturen in einer Basalmembran extrazelluläre Matrix (ECM) angebaut haben der luminalen ausdifferenzierten Zellen in der Regel sehr geringe Überlebensrate; die basalen und mittleren Zellen (meist Stammzellen) sind jedoch in der Lage zu propagieren und zellcluster namens Sphäroide10zu produzieren. Dies macht es geeignet für eine Krebs-Studie, da epitheliale Krebsarten werden geglaubt, um aus Stammzellen (im Volksmund bekannt als Krebs-Stammzellen)11stammen. Der zweite Teil dieses Protokolls beschreibt eine Methode für die Kultivierung der Maus Prostatazellen in 3D Kulturen. Die daraus resultierende Sphären können für verschiedene Arten von nachgeschalteten Analysen, einschließlich das Studium der organoide Morphologie und Verhalten von live Cell imaging, Immunfluoreszenz-Färbung für verschiedene Proteine und das Studium der Antworten auf Chemotherapeutika verwendet werden Behandlungen.
Insgesamt ist das Ziel dieses Protokolls, optimale Methoden für die Verwendung von Maus-Modellen bei Prostatakrebs durch die Beschreibung der Anatomie und Dissektion Techniken der Maus Prostata und die Verarbeitung des Gewebes für Sphäroid Kulturen und in-vitro- Analyse zu skizzieren .

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:1491px;" width="1491">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:415px;">Mouse surgical instruments (Mouse Dissecting kit)</td>
			<td style="width:260px;">World Precision Instruments</td>
			<td style="width:196px;">MOUSEKIT</td>
			<td style="width:620px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:415px;">Dissection microscope</td>
			<td style="width:260px;"></td>
			<td style="width:196px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:415px;">RPMI medium</td>
			<td style="width:260px;">Thermofisher Scientific</td>
			<td style="width:196px;">11875093</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:415px;">Dissection medium (DMEM + 10%FBS)</td>
			<td style="width:260px;">Thermofisher Scientific</td>
			<td>11965-084</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:415px;">Fetal Bovine Serum</td>
			<td style="width:260px;">Thermofisher Scientific</td>
			<td>10438018</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:415px;">PBS (Phosphate buffered saline)</td>
			<td style="width:260px;">Thermofisher Scientific</td>
			<td style="width:196px;">10010031</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:415px;">Collagenase</td>
			<td style="width:260px;">Thermofisher Scientific</td>
			<td style="width:196px;">17018029</td>
			<td>Make 10x stock (10mg/ml) in RPMI, filter sterilize, aliquot and store at -20 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:415px;">Trypsin-EDTA (0.05%)</td>
			<td style="width:260px;">Thermofisher Scientific</td>
			<td style="width:196px;">25300054</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:415px;">DNase I</td>
			<td style="width:260px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td>10104159001&#160;ROCHE</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:415px;">Syringes and Needles</td>
			<td style="width:260px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:196px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:415px;">Fisherbran&#160;Sterile Cell Strainers, 40&#956;m</td>
			<td style="width:260px;">Fisher Scientific</td>
			<td>22-363-547</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">PrEGM BulletKit&#160;</td>
			<td style="width:260px;">Lonza</td>
			<td>CC-3166</td>
			<td>Add all componenets, aliquot and store at -20 &#176;C.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:415px;">Matrigel membrane matrix</td>
			<td style="width:260px;">Thermofisher Scientific</td>
			<td>CB-40234</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:415px;">Dispase II powder</td>
			<td style="width:260px;">Thermofisher Scientific</td>
			<td style="width:196px;">17105041</td>
			<td>Make 10x stock (10mg/ml) in PrEGM, filter sterilize, aliquot and store at -20 &#176;C</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

identification, histological characterization, and dissection of mouse prostate lobes for in vitro 3d spheroid culture models

Gentechnisch veränderte Mausmodelle (GEMMs) dienen als effektive präklinischen Modellen zur Untersuchung von den meisten Arten von menschlichen Krebsarten, einschließlich Prostatakrebs (PCa). Verständnis der Anatomie und Histologie der Maus Prostata ist wichtig für die effiziente Nutzung und richtige Charakterisierung von solchen Tiermodellen. Die Maus-Prostata hat vier verschiedene Paare von Lappen, mit jeweils eigenen Merkmalen. Dieser Artikel beschreibt die richtige Methode der Dissektion und Identifikation der Maus Prostata Lappen für Krankheit-Analyse. Post-Dissektion der Prostata-Zellen weiter kultiviert in Vitro zum mechanistischen Verständnis kann. Seit Maus Prostata Primärzellen neigen dazu, ihre normale Eigenschaften verlieren wenn kultivierte in Vitro, beschreiben wir hier eine Methode für die Zellen zu isolieren und wächst sie als 3D Sphäroid Kulturen, die effektiv für die Erhaltung der physiologischen Eigenschaften der Zellen. Diese 3D Kulturen einsetzbar für Zellmorphologie und Verhalten in der Nähe von physiologischen Bedingungen untersuchen verändert Ebenen und Lokalisierungen der wichtigsten Proteine und Bahnen an der Entwicklung beteiligt und Verlauf der Krankheit zu analysieren und mit Blick auf Antworten auf medikamentöse Behandlungen.

Die Maus Prostata Lappen identifiziert werden können und seziert mit ihren Standorten in Bezug auf die Samenbläschen und der Harnröhre. Die Maus-Prostata besteht aus 4 Paare der Lappen liegt dorsal und ventral, der Samenbläschen und der Harnröhre. Abbildung 4a und 4 b (oben) zeigen den dorsalen und ventralen intakt Prostata, zusammen mit der Samenbläschen und der Harnröhre. Die unteren Verkleidungen (Abbildung 4 c<...

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Identification, Histological Characterization, and Dissection of Mouse Prostate Lobes for In Vitro 3D Spheroid Culture Models

Identifikation, histologische Charakterisierung und Dissektion der Maus Prostata Lappen für In-vitro-3D Sphäroid Kultur Modelle

Gentechnisch veränderte Mäuse sind nützliche Modelle für die Untersuchung von Prostata-Krebs-Mechanismen. Hier präsentieren wir ein Protokoll zur Identifizierung und sezieren Prostate Lappen aus einer Maus Urogenitales System, basierend auf Histologie, zu unterscheiden und zu isolieren und als Sphäroide für nachgelagerte Analysen der primären Prostata-Zellen in Vitro Kultur.

Genetically engineered mouse models (GEMMs) serve as effective pre-clinical models for investigating most types of human cancers, including prostate ...

Diese Methode kann beim Start von gentechnisch veränderten Mausmodellen von Prostatakrebs und der Untersuchung des Prostatakrebsmechanismus durch In-vivo- und In-vitro-Analysen helfen. Der Hauptvorteil dieser Technik ist, dass sie eine vollständige Analyse des Prostatakrebs-Mausmodells ermöglicht, von der Gewebesektion bis zur Zellisolierung und -kultivierung. Nach der Exposition des Urogenitalsystems, oder UGS, greifen Sie die Harnblase fest mit mittlerer stumpfer Zange und heben Sie das gesamte System aus dem Bauch der Maus.Schieben Sie eine Schere unter die Blase und Prostata bis zur Wirbelsäule, um einen Schnitt durch das Rückenmark zu machen, und schneiden Sie alle verbleibenden Verbindungen zur Bauchhöhle durch, um die Entfernung der gesamten UGS zu ermöglichen. Übertragen Sie das UGS unter einem Seziermikroskop auf eine sechs Zentimeter lange Petrischale mit zwei bis sechs Millilitern PBS. Und verwenden Sie ein Paar feine Zangen und Mikrodissektionschere, um sorgfältig das gesamte Fett von den dorsalen und ventralen Seiten des Gewebesystems zu entfernen, ohne Prostatagewebe zu schnippeln.Wenn das gesamte Fett entfernt wurde, ziehen Sie die Blase mit der Zange und verbrauchen die Blase an ihrer Basis. Legen Sie die verbleibende Gewebe-Ventralseite nach oben und halten Sie einen Kanal endet mit der Zange, folgen Sie dem Gefäß zu seiner Basis mit einer Schere und verbrauchen das Gefäß an seiner Basis. Entfernen Sie das gleiche Gefäß auf der anderen Seite und setzen Sie die Zange zwischen den Samenbläschen und der Prostata ein, um bei Bedarf das Schnipseln des angrenzenden Bindegewebes zu ermöglichen.Dann verfolgen Sie die Samenbläschen zu ihrer Basis an der Harnröhre und entfernen Sie die Gefäße, ohne sie zu punktieren. Wenn beide Vesikel entfernt wurden, legen Sie das Gewebe dorsale Seite nach oben, so dass die rückenden Lappen, die einem Schmetterling Flügel ähneln sichtbar sind. Halten Sie jeden dorsalen Lappen mit Zange, schneiden Sie das Gewebe an seiner Basis mit einer Schere, um die dorsalen Lappen zu sammeln und drehen Sie das Gewebe auf die ventrale Seite.Sammeln Sie die seitlichen Lappen, die klein sind und in der Regel die Harnröhre auf der Seite wickeln und sind zwischen den vorderen, ventralen und dorsalen Lappen in der gleichen Weise verkeilt. Sammeln Sie die ventralen Lappen, die größer als die seitlichen Lappen sind und liegen auf der Harnröhre ventral. Dann schneiden und entsorgen Sie die Harnröhre, um die vorderen Lappen zu ernten.Um das Prostatagewebe für die 3D-Kultur zu verarbeiten, übertragen Sie die Lappen auf eine 10-Zentimeter-Schale mit zwei bis drei MilliliterDMEM und verwenden Sie ein Skalpell, um die Prostatatubuli so fein und gleichmäßig wie möglich zu zerkleinern. Übertragen Sie die Gewebefragmente auf eine sterile Gewebekulturhaube und fügen Sie die Gewebelösung zu einer neuen 15-Milliliter-Röhre hinzu. Bringen Sie das Volumen in die Röhre bis zu neun Milliliter mit frischem Medium, und fügen Sie dem Gewebegemisch einen Milliliter TenX Kollagennase-Stammlösung hinzu.Nach dem Wirbeln, inkubieren Sie die Röhre mit Schütteln für zwei Stunden bei 37 Grad Celsius, um die extrazelluläre Matrix zu verschlechtern. Am Ende der Inkubation das Gewebe durch Zentrifugation sammeln und das Pellet in zwei Millilitern warmer 05%Streifen in EDTA wieder aufhängen. Nach fünf Minuten von 37 Grad Celsius, um das Spalten der Zell-zu-Zelle und Zell-zu-Matrix-Verklebungen zu erleichtern, verwenden Sie einen P1000 Pipehead mit einer breiten Brettspitze, um das Gewebe acht- bis zehnmal zu triturat, um Klumpen aufzubrechen.Wiederholen Sie die Dissoziation mit einer P200-Rohrkopfspitze. Dann neutralisieren Sie das Trypsin mit drei Millilitern komplettem Medium. Mischen Sie 500 Einheiten DNASE1 in die Gewebeschlämme und geben Sie die Lösung fünf- bis zehnmal durch eine Fünf-Milliliter-Spritze mit einer 18-Spur-Nadel, gefolgt von fünfmal durch eine 20-Spur-Nadel.Wenn keine großen Gewebestücke mehr sichtbar sind, filtern Sie die Suspension durch einen 40-Mikrometer-Filter in ein 50-Milliliter-Konustube und sammeln Sie die Zellen durch Zentrifugation. Für die Zellbeschichtung und Kultur, re-suspendieren Sie das Pellet in 0,5 Milliliter des vollständigen Prostataepithelzellwachstums Medium, und zeigen Sie die Zellen auf eine fünf mal 10 bis die fünfte Zelle pro Milliliter Prostataepithel Zell Wachstum mittlere Konzentration. Mischen Sie die Zellen mit der extrazellulären Konverstheponierung der Kellermembran in einem Lösungsverhältnis von zwei bis drei Volumen und verfestigen Sie die Zellsuspension im entsprechenden experimentellen Zellkulturbehälter.Legen Sie die Zellen dann 30 Minuten lang in einen Zellkultur-Inkubator. Wenn die extrazelluläre Matrix verfestigt ist, decken Sie die Kultur mit einem vorgewärmten vollständigen Prostataepithelzellwachstumsmedium ab, wobei darauf zu achten ist, dass die Kellermembran der extrazelluläre Matrixstecker nicht gestört wird. Dann kehren Sie die Zellen für fünf bis zehn Tage in den Zellkultur-Inkubator zurück und erfrischen Sie die Hälfte des Mediums alle zwei bis drei Tage.Um Kugeln zu ernten, aspirieren Sie das Medium sorgfältig, ohne die Kellermembran extrazellulären Matrix-Gel-Stecker stören, und fügen Sie einen Milliliter Disbase-Lösung für 100 Mikroliter Kellermembran extrazelluläre Matrix. Mit einem Zellschaber, kratzen entlang der Unterseite der Platte, um die Kellermembran extrazelluläre Gele von der Unterseite der Platte in den Überstand zu heben, und rohren Die gesamte Lösung einmal, um den Stecker in kleinere Stücke aufzuteilen. Inkubieren Sie die zusätzlichen zellulären Matrixstücke im Zellkultur-Inkubator für ein bis zwei Stunden, bis sich die extrazelluläre Matrix der Kellermembran vollständig aufgelöst hat.Dann die Zellsuspension in ein 15-Milliliter-Rohr übertragen. Und sammeln Sie die Zellen durch Zentrifugation für weitere nachgelagerte Manipulationen. Die Mausprostata besteht aus vier Paaren von Lappen, die dorsal und ventral zu den Samenbläschen und Harnröhren liegen.Die Prostatalappen bestehen aus mehreren Drüsenprofilen, die jeweils aus einem Lumen bestehen, umgeben von sekretorischen Epithelzellen. Die Formen der Lappen, die Organisation der Zellen und die Art der Sekretion variieren von Lappen zu Lappen. Die isolierten Prostatazellen beginnen bereits vier Tage nach der extrazellulären Matrixkultur der Kellermembran zu Organoiden zu wachsen.In den nächsten ein bis sechs Tagen wachsen die meisten Zellen zu festen Kugeln heran, wobei ein Bruchteil der Kugeln ein partielles oder vollständiges Lumen aufweist. Die Sphäroide zeigen auch eine starke Beta-Catenin-Färbung an den Zell-zu-Zell-Kreuzungen, die mit F-Actin-Färbung kolokalisieren. Beim Versuch dieses Verfahrens ist es sehr wichtig, die Schritte der Mikrodissektion sorgfältig zu befolgen.Zum Beispiel, isolieren Sie die Prostatalappen, während sie noch an der Harnröhre befestigt sind, so dass Sie wissen, welcher Lappen ist, je nachdem, wo sie in Bezug auf die Harnröhre sind. Nach dem Sezierverfahren können die isolierten Lappen für nachgelagerte Analysen wie RMA-Sequenzierung, Western Blotting oder Immunostaining verwendet werden. Die primäre 3D-Kulturtechnik ermöglicht es Ihnen, weitere Einblicke in den Prostatakrebs-Mechanismus zu gewinnen, da Sie das Leben mit Sphäroiden auf Morphologie- und Verhaltensänderungen überwachen und neoplastische Veränderungen in diesem identifizieren können.Zusammenfassend lässt sich sagen, dass diese Prostata-Sektions- und Kulturmethoden in verschiedene nachgelagerte Anwendungen integriert werden können, um wertvolle Informationen für die Untersuchung des Mechanismus von Prostatakrebs mit gentechnisch veränderten Mausmodellen bereitzustellen.

Research

JoVE Journal

Cancer Research

A Rapid Filter Insert-based 3D Culture System for Primary Prostate Cell Differentiation

Ein Rapid-Filtereinsatz-basierte 3D-Kultursystem für die primäre Prostata Zelldifferenzierung

Conditionally reprogrammed cells (CRCs) provide a sustainable method for primary cell culture and the ability to develop extensive &#34;living ...

Forschung

Krebsforschung

Evaporation-reducing Culture Condition Increases the Reproducibility of Multicellular Spheroid Formation in Microtiter Plates

Verdunstungsmindernde Kultur Zustand Erhöht die Reproduzierbarkeit von mehrzelligen Sphäroidformation in Mikrotiterplatten

Tumor models that closely imitate in vivo conditions are becoming increasingly popular in drug discovery and development for the screening of potential ...

Sectioning Mammary Gland Whole Mounts for Lesion Identification

Sektion Mammary Gland Ganze Mounts für Läsion Identifizierung

Normal mammary gland development may be altered by exposure to environmental toxicants and pharmaceutical products, excessive exposure to hormones, and ...

Therapy Testing in a Spheroid-based 3D Cell Culture Model for Head and Neck Squamous Cell Carcinoma

Therapie, die Tests in einem Sphäroid-basierten 3D Kultur Zellmodell für Kopf und Hals Squamous Zelle Krebsgeschwür

Current treatment options for advanced and recurrent head and neck squamous cell carcinoma (HNSCC) enclose radiation and chemo-radiation approaches with ...

A 3D Organotypic Melanoma Spheroid Skin Model

Ein 3D organotypischen Melanom Sphäroid Hautmodell

Malignant transformation of melanocytes, the pigment cells of human skin, causes formation of melanoma, a highly aggressive cancer with increased ...

Assessing Cell Viability and Death in 3D Spheroid Cultures of Cancer Cells

Beurteilung der Zelllebensfähigkeit und des Todes in 3D-Sphäroidkulturen von Krebszellen

Three-dimensional spheroids of cancer cells are important tools for both cancer drug screens and for gaining mechanistic insight into cancer cell biology. ...

Establishment of Gastric Cancer Patient-derived Xenograft Models and Primary Cell Lines

Etablierung von vom Magenkrebs abgeleiteten Xenograft-Modellen und Primärzelllinien

The use of preclinical models to advance our understanding of tumor biology and investigate the efficacy of therapeutic agents is key to cancer research. ...

A 3D Spheroid Model as a More Physiological System for Cancer-Associated Fibroblasts Differentiation and Invasion In Vitro Studies

Ein 3D-Spheroid-Modell als physiologischeres System für krebsassoziierte Fibroblasten Differenzierung und Invasion In Vitro-Studien

Defining the ideal model for an in vitro study is essential, mainly if studying physiological processes such as differentiation of cells. In the tumor ...

Evaluating the Differentiation Capacity of Mouse Prostate Epithelial Cells Using Organoid Culture

Bewertung der Differenzierungskapazität von Mausprostataepithelzellen mithilfe der organoiden Kultur

The prostate epithelium is comprised predominantly of basal and luminal cells. In vivo lineage tracing has been utilized to define the differentiation ...

Characterization of the Effects of Migrastatic Inhibitors on 3D Tumor Spheroid Invasion by High-resolution Confocal Microscopy

Charakterisierung der Auswirkungen von Migrastatischen Inhibitoren auf die 3D-Tumorsphäroid-Invasion durch hochauflösende Konfokalmikroskopie

Drug discovery and development in cancer research is increasingly being based on drug screens in a 3D format. Novel inhibitors targeting the migratory and ...