Name: generation of cationic nanoliposomes for the efficient delivery of in vitro transcribed messenger rna
Uploaded: 2019-02-01T12:30:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Generation of Cationic Nanoliposomes for the Efficient Delivery of In Vitro Transcribed Messenger RNA at JoVE.com

1. génération de Nanoliposomes cationique (Figure 1)
<ol><li>Dissoudre les lipides DC-cholestérol (3β-[N-(N′,N′-dimethylaminoethane)-carbamoyl] cholestérol chlorhydrate) et DOPE (dioléoyl phosphatidyléthanolamine), livrés sous forme de poudre, dans le chloroforme à une concentration finale de 25 mg/mL. Note : Stocker les lipides dissous à-20 ° C.</li>
	<li>Travailler avec 25 mg/mL de solution de ces deux lipides. Mix 40 µL de la DC-cholestérol dissous et 80 µL de la D...

Le protocole présenté décrit la génération du PNV avec efficacité d’encapsulation élevée d’ARNm synthétiquement mis à jour le, ainsi que la fiabilité transfection des cellules in vitro. En outre, le PNV garantie la libération des ARNm, qui à son tour, est traduit en une protéine fonctionnelle à l’intérieur des cellules. En outre, les transfections utilisant le PNV peut être effectuée dans un milieu ordinaire cellulaire, résultant en grande viabilité de cellules au cours de la transfecti...

L’utilisation du mRNA modifiés pour des applications thérapeutiques a montré beaucoup de potentiel dans les deux dernières années. Maladies cardiovasculaires, inflammatoires et monogénique, ainsi que dans le développement de vaccins, l’ARNm est agent thérapeutique prometteur1.
Thérapie de remplacement de protéines avec l’ARNm offre plusieurs avantages sur la thérapie génique classique, qui repose sur la transfection d’ADN dans les cellules de cible2. La fonction ARNm lance directement dans le cytosol. Bien que le plasmide ADN (pDNA), une construction de double-brin, circulaire ADN contenant une région promotrice et une séquence de gène codant pour la protéine thérapeutique3, également des actes dans le cytosol, il peut seulement être incorporé dans les cellules qui traversent la mitose au moment de la transfection. Cela réduit le nombre de cellules transfectées dans le tissu1,4. Plus précisément, la transfection des tissus ayant une activité faible mitose, telles que les cellules cardiaques, est difficile5. Contrairement à pDNA, la transfection et la traduction des ARNm produisent dans les cellules mitotiques et non-mitotique dans le tissu1,6. L’intégration virale d’ADN dans le génome hôte peut venir avec des effets mutagènes ou réactions immunitaires7,8, mais après la transfection de cellules avec un ARNm codant des protéines, la synthèse de novo de la protéine désirée commence de manière autonome9,10. En outre, la synthèse des protéines peut être ajustée précisément au besoin du patient par le biais de doses individuelles, sans interférer avec le génome et risquer des effets mutagènes11. Le potentiel d’activation immunitaire des ARNm synthétiquement généré pourrait être considérablement réduit en utilisant des pseudo-uridine et 5'-méthylcytidine au lieu de l’uridine et cytidine12. Pseudo-uridine, mis à jour le mRNA a également été montré pour avoir une meilleure stabilité biologique et une significativement plus élevée capacité translationnelle13.
Pour pouvoir bénéficier des propriétés prometteuses de la thérapie axée sur les ARNm en applications cliniques, il est essentiel de créer un véhicule adapté pour le transport de l’ARNm dans les cellules. Ce véhicule devrait porter non toxique propriétés in vitro et in vivo, de protéger l’ARNm contre la nucléase-dégradation et fournir absorption cellulaire suffisante pour une disponibilité prolongée et la traduction de l’ARNm de14.
Parmi tous les types de support possible pour in vivo l’administration de médicaments, tels que les nanotubes de carbone, points quantiques et liposomes, ces derniers ont été étudiées les plus de15,16. Liposomes sont des vésicules constituée d’une bicouche de lipides10. Ils sont amphiphiles comporte un hydrophobe et une partie hydrophile, et grâce à l’entente autonome de ces molécules, une double couche sphérique est formé de17. Dans les liposomes, agents thérapeutiques ou drogues peuvent encapsulés et, ainsi, protégés de dégradation enzymatique18. Liposomes contenant N-[1-(2,3-dioleyloxy)propyl]-N,N,N-trimethylammonium chlorure (DOTMA)19, [1, 2-bis (oleoyloxy) -3-(triméthylammonio) propane] (DOTAP)20et21de dioctadecylamidoglycylspermine (chiens), ou DC-cholestérol22, sont bien caractérisées et fréquemment utilisé pour la transfection cellulaire avec l’ADN ou d’ARN.
Les liposomes cationiques forment un lipide chargé positivement et un phospholipide sans inculpation23. La transfection par l’intermédiaire des liposomes cationiques est l’une des méthodes plus courantes pour le transport d’acides nucléiques dans des cellules24,25. Les particules de lipide cationique forment des complexes avec les groupes phosphates chargés négativement dans le squelette de l’acide nucléique molécules26. Ces soi-disant lipoplexes fixent à la surface de la membrane cellulaire et entrer dans la cellule par endocytose ou endocytose-mécanismes27.
En 1989, Malone et al. avec succès décrits médiée par les lipides cationiques ARNm transfection28. Toutefois, à l’aide d’un mélange de DOTMA et 1,2-dioleoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine (DOPE), le groupe a estimé que DOTMA manifeste des effets cytotoxiques28. En outre, Zohra et coll. ont montré que DOTAP (chlorure de 1, 2-dioleoyloxy-3-triméthylammonium-propane) peut être utilisé comme un ARNm transfection réactif29. Toutefois, pour la transfection efficace des cellules, DOTAP doit être utilisé en combinaison avec d’autres réactifs, tels que la fibronectine29 ou30de la DOPE. Jusqu'à présent, DOTMA a été le premier lipide cationique sur le marché utilisé pour la livraison de gène31. Autres lipides sont utilisées comme supports thérapeutiques ou sont actuellement testés à différents stades d’essais cliniques (p. ex., EndoTAG-I, contenant DOTAP comme un transporteur de lipides), est actuellement à l’étude dans un essai clinique de phase II32.
Cet ouvrage décrit un protocole pour la génération du PNV contenant DC-cholestérol et DOPE. Cette méthode est facile à réaliser et permet la génération du PNV de différentes tailles. L’objectif général de génération de PNL à l’aide de la méthode sèche-film est de créer des liposomes pour la complexation de l’ARNm, ce qui permet de transfection de cellules efficace et biocompatible en vitro14,33.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>(3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide (MTT)</td>
			<td>AppliChem, Darmstadt, Germany</td>
			<td>A2231</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>(3&#946;-[N-(N&#8242;,N&#8242;-dimethylaminoethane)-carbamoyl]cholesterol hydrochloride (DC-Cholesterol)</td>
			<td>Avanti, Alabama, USA</td>
			<td>700001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4&#160;&#8242;,6-diamidino-2-phenylindole (DAPI)</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific, Darmstadt, Germany</td>
			<td>D1306</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD FACScan system</td>
			<td>BD Biosciences, Heidelberg, Germany</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cell Fix (10x)</td>
			<td>BD Biosciences, Heidelberg, Germany</td>
			<td>340181</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Chloroform</td>
			<td>Merck, Darmstadt, Germany</td>
			<td>102445</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dimethyl sulfoxid (DMSO)</td>
			<td>Serva Electrophoresis GmbH, Heidelberg, Germany</td>
			<td>20385.02</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dioleoyl phosphatidylethanolamine (DOPE)</td>
			<td>Avanti, Alabama, USA</td>
			<td>850725</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fluorescence microscope</td>
			<td>Zeiss Axio, Oberkochen, Germany</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lipofectamine 2000</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific, Darmstadt, Germany</td>
			<td>11668019</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mini extruder</td>
			<td>Avanti, Alabama, USA</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nuclease-free water</td>
			<td>Qiagen, Hilden, Germany</td>
			<td>129114</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Opti-Mem</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific, Darmstadt, Germany</td>
			<td>11058021</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PBS buffer (w/o Ca2+/Mg2+)</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific, Darmstadt, Germany</td>
			<td>70011044</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Quant-iT Ribo Green RNA reagent kit</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific, Darmstadt, Germany</td>
			<td>Q33140</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>RPMI (w/o phenol red)</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific, Darmstadt, Germany</td>
			<td>11835030</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Silica gel</td>
			<td>Carl Roth, Karlsruhe, Germany</td>
			<td>P077</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Trypsin/EDTA (0.05%)</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific, Darmstadt, Germany</td>
			<td>25300054</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HotStar HiFidelity Polymerase Kit</td>
			<td>Qiagen, Hilden, Germany</td>
			<td>202602</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>QIAquick PCR Purification Kit</td>
			<td>Qiagen, Hilden, Germany</td>
			<td>28104</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td> 
			Pseudouridine-5&#39;-Triphosphate (&#936;-UTP)</td>
			<td>TriLink Biotechnologies, San Diego, USA</td>
			<td>N-1019</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>5-Methylcytidine-5&#39;-Triphosphate (Methyl-CTP)</td>
			<td>TriLink Biotechnologies, San Diego, USA</td>
			<td>N-1014</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cyanine 3-CTP</td>
			<td>PerkinElmer, Baesweiler, Germany</td>
			<td>NEL580001EA</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>RNeasy Mini Kit</td>
			<td>Qiagen, Hilden, Germany</td>
			<td>74104</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MEGAscript T7 Transcription Kit</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific, Darmstadt, Germany</td>
			<td>AM1333</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3&#180;-O-Me-m7G(5&#39;)ppp(5&#39;)G RNA Cap Structure Analog</td>
			<td>New England Biolabs, Ipswich, USA</td>
			<td>S1411L</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Antarctic Phosphatase</td>
			<td>New England Biolabs, Ipswich, USA</td>
			<td>M0289S</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Agarose</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific, Darmstadt, Germany</td>
			<td>16500-500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>GelRed</td>
			<td>Biotium, Fremont, USA</td>
			<td>41003</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>peqGOLD DNA ladder mix</td>
			<td>VWR, Pennsylvania, USA</td>
			<td>25-2040</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Invitrogen 0.5-10kb RNA ladder</td>
			<td>Fisher Scientific, G&#246;teborg, 
			Sweden</td>
			<td>11528766</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

generation of cationic nanoliposomes for the efficient delivery of in vitro transcribed messenger rna

Le développement de l’ARN messager (ARNm)-fonction thérapeutique pour le traitement de diverses maladies devient plus important à cause de la positive propriétés de in vitro transcrit mRNA (IVT). Avec l’aide de l’ARNm de l’IVT, la synthèse de novo d’une protéine désirée peut être induite sans changer l’état physiologique de la cellule cible. En outre, biosynthèse des protéines peut être contrôlée avec précision en raison de l’effet transitoire du mRNA IVT.
Pour la transfection efficace des cellules, nanoliposomes (PNV) peut représenter un véhicule de livraison sûre et efficace pour l’ARNm thérapeutique. Cette étude décrit un protocole pour générer sûre et efficace cationique PNV composée de DC-cholestérol et 1,2-dioleoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine (DOPE) comme un vecteur de livraison d’ARNm IVT. PNV ayant une taille, une répartition homogène et une capacité élevée de complexation et peut être produites à l’aide de la méthode sèche-film. Par ailleurs, nous présentons des systèmes de test différent afin d’analyser leur complexation et efficacité de transfection utilisant synthétique renforcée protéine fluorescente verte (eGFP) mRNA, ainsi que leur effet sur la viabilité des cellules. Globalement, le protocole présenté fournit une approche efficace et sans danger pour la complexation d’ARNm, qui peut faire avancer et améliorer l’administration de l’ARNm thérapeutique.

En utilisant le protocole comme décrit, PNV consistant en des lipides DC-cholestérol et DOPE ont été préparés selon la méthode de sec-film (Figure 1). Pendant la préparation, la solution de nanoliposome montre différentes étapes de la turbidité (Figure 2).
L’efficacité de l’encapsulation de la PNV peut ensuite être analysée après l’encapsulation de ...

Watch this Scientific Journal Video about Generation of Cationic Nanoliposomes for the Efficient Delivery of In Vitro Transcribed Messenger RNA at JoVE.com

Generation of Cationic Nanoliposomes for the Efficient Delivery of In Vitro Transcribed Messenger RNA

Génération de Nanoliposomes cationiques pour la prestation efficace de In Vitro transcrit l’ARN messager

Ici nous décrivons un protocole pour la génération de nanoliposomes cationiques, qui repose sur la méthode sèche-film et peut être utilisé pour la sécurité et la prestation efficace de in vitro transcrit l’ARN messager.

The development of messenger RNA (mRNA)-based therapeutics for the treatment of various diseases becomes more and more important because of the positive ...

Ce protocole permet la production de nanoliposomes sûrs et efficaces qui peuvent être utilisés comme véhicules de transfection pour l’ARN messager thérapeutique. Ces nanoliposomes facilitent l’absorption de l’ARNm dans les cellules, ce qui augmente les niveaux d’expression des protéines sans affecter la viabilité cellulaire. Le principal avantage de cette technique est la génération rapide et facile de nanoliposomes stables avec une taille définie et une distribution homogène.En outre, ils protègent l’ARNm encapsulé contre la dégradation et conduisent à une traduction prolongée. Antonia Link, doctorante de notre laboratoire, démontrera la procédure. Pour commencer cette procédure, préparer des solutions de stock pour les lipides, dc-cholestérol et DOPE en dissolvant chacun dans le chloroforme à une concentration finale de 25 milligrammes par millilitre.Mélanger 40 microlitres du cholestérol DC dissous avec 80 microlitres du DOPE dissous dans un flacon de verre. Vaporiser le chloroforme sous un flux de gaz argon pendant 15 minutes. Ensuite, remplissez un dessiccator avec du gel de silice.Placez le flacon de verre ouvert à l’intérieur et appliquez un vide pendant la nuit pour vous assurer que le chloroforme restant est évaporé. Le film lipidique qui en résultera se formera à l’intérieur du flacon de verre. Le lendemain, ajouter un millilitre d’eau sans nucléase pour réhydrater le film lipidique.Et vortex de la suspension pendant 15 minutes. Placez la suspension dans un bain de sonication pendant une heure. Après cela, assembler le mini extrtruder selon les instructions des fabricants.Remplissez une seringue avec la suspension liquide et placez-la d’un côté de l’extrème. Placez une seringue vide de l’autre côté. Appuyez sur la suspension lipidique à travers la membrane d’une seringue à l’autre, environ 20-25 fois pour extruder la suspension.Ensuite, conservez les nanoliposomes dans un flacon de verre à quatre degrés Celsius jusqu’à ce qu’ils soient prêts à l’emploi. Tout d’abord, décongeler l’ARNm synthétique sur la glace. Vortex de l’ARNm congelé, puis centrifugeuse peu de temps avant l’ouverture du tube.Ensuite, mélangez un microgramme de l’ARNm synthétique avec diverses quantités de suspension nanoliposome. Centrifugeuse brièvement et incuber à température ambiante pendant 20 minutes pour la formation de nanolipoplex. Ensuite, ajoutez millilitre de milieu cellulaire régulier au nanolipoplex et mélanger en pipetting de haut en bas.Préparer les cellules un jour avant la transfection. Par conséquent, plaque 150.000 cellules A549 dans chaque puits d’une plaque de puits 12 un jour avant la transfection. Incuber les cellules à 37 degrés Celsius avec 5% de dioxyde de carbone et milieu cellulaire régulier pendant 24 heures.Puis le lendemain, lavez chaque puits de cellules préparées une fois avec un millilitre de PBS. Ajouter un millilitre d’un mélange de nanolipoplex préparé à l’un des puits contenant les cellules A549. Incuber à des conditions régulières pendant 24 heures pour analyser l’efficacité de la transfection, ou pendant 24-72 heures pour analyser la viabilité cellulaire après la transfection.Retirer le supernatant et bien laver avec un millilitre de PBS pour enlever les nanoliposomes restants. Pour préparer les cellules à la cytométrie, ajoutez d’abord 500 microlitres de trypsine EDTA à chaque puits et incubez à 37 degrés Celsius pendant trois minutes pour trypsiniser les cellules. Ensuite, ajoutez 500 microlitres de milieu régulier contenant du FBS pour arrêter le processus et inactiver la trypsine.Centrifuger les cellules à 400 fois G pendant cinq minutes. Et retirez soigneusement le surnatant sans déranger la pastille cellulaire. Lavez les cellules avec un millilitre de PBS.Puis re-suspendre les cellules dans 300 microlitres de solution de fixation cellulaire et les transférer dans des tubes de cytométrie d’écoulement. Utilisez un cytomètre d’écoulement pour analyser les cellules à 488 nanomètres. Pour préparer les cellules à la microscopie par fluorescence, ajouter un millilitre de méthanol réfrigéré à chaque puits pour fixer les cellules.Ajouter 500 microlitres d’une solution nanomolaire de 300 nanomolaires de DAPI dissous dans PBS à chaque puits. Incuber dans le noir pendant cinq minutes. Après cela, retirez la solution DAPI et lavez les cellules à nouveau avec 100% de méthanol qui était précédemment stocké à moins 20 degrés Celsius.Utilisez un microscope à fluorescence pour analyser les cellules à l’aide des longueurs d’onde d’excitation et d’émission montrées ici. Dans cette étude, les nanoliposomes sont générés avec une efficacité élevée d’encapsulation pour l’ARNm synthétiquement modifié. À l’aide du kit de quantification de l’ARN, l’efficacité de l’encapsulation des nanoliposomes peut être analysée après l’encapsulation d’un microgramme d’ARNm codant eGFP en analysant la quantité libre d’ARNm qui n’est pas encapsulée.Après l’encapsulation de l’ARNm EGFP en différentes quantités de nanoliposomes, les nanolipoplexes formés peuvent être incubés avec des cellules in vitro et le pourcentage de cellules exprimant l’eGFP peut être analysé à l’aide de la cytométrie du débit 24 heures après la transfection. Comme on le voit ici, même un seul microlitre de la solution nanoliposomes est suffisant pour atteindre une transfection élevée des cellules invitro. Lorsque les cellules sont transfectées avec des nanoliposomes contenant de l’ARNm EGFP étiqueté Cy3, la présence de l’ARNm eGFP dans le cytoplasme, ainsi que la protéine eGFP déjà produite, peuvent être visualisées.Puisque la transfection des cellules utilisant des nanolipoplexes peut avoir des effets défavorables sur des cellules, la viabilité des cellules a été examinée après 24 heures et 72 heures post-transfection. Aucun effet sur la viabilité des cellules n’a pu être détecté lorsque les cellules ont été traitées avec 2,5 ou cinq microlitres de nanolipoplexes. Lorsque vous essayez cette procédure, il est important de se rappeler de travailler dans un environnement sans éthanol tout le temps parce que cela pourrait nuire à la stabilité nanoliposome.Tout en préparant et en mélangeant le DC-cholestérol avec DOPE, vous devriez utiliser une pipette en verre pour éviter la contamination des lipides dissous avec des composants solubles des bouts de pipette en plastique. Suivant ce protocole, les nanoliposomes générés peuvent être facilement manipulés pendant ou après la préparation. Par exemple, l’incorporation de molécules PEG ou d’anticorps spécifiques entraînerait une stabilité accrue ou lancerait un ciblage actif des tissus.Les nanoliposomes générés remplissent les aspects de sécurité nécessaires et facilitent l’absorption de l’ARNm dans les cellules cibles. Les nanoliposomes complexes avec un ARN thérapeutique spécifique peuvent apporter une contribution essentielle au développement de nouvelles thérapeutiques à base d’ARNm dans le domaine de l’ingénierie tissulaire ou de la thérapie de remplacement par exemple.

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Generation of Cationic Nanoliposomes for the Efficient Delivery of In Vitro Transcribed Messenger RNA

Microscale Vortex-assisted Electroporator for Sequential Molecular Delivery

Electroporateur pour livraison séquentielle moléculaire microscopique assistée Vortex-

Electroporation has received increasing attention in the past years, because it is a very powerful technique for physically introducing non-permeant ...

Recherche

Bio-ingénierie

Generation of a Three-dimensional Full Thickness Skin Equivalent and Automated Wounding

Génération d&#39;une épaisseur en trois dimensions équivalent de peau et automatisé Blessant

In vitro models are a cost effective and ethical alternative to study cutaneous wound healing processes. Moreover, by using human cells, these models ...

Eye Irritation Test (EIT) for Hazard Identification of Eye Irritating Chemicals using Reconstructed Human Cornea-like Epithelial (RhCE) Tissue Model

Eye Irritation Test EIT for Hazard Identification of Eye Irritating Chemicals using Reconstructed Human Cornea-like Epithelial RhCE Tissue Model

Irritation des yeux Test (IET) pour l&#39;identification des dangers des produits chimiques irritants oculaires utilisant épithélial (RHCE) Tissue modèle reconstruit humain Cornea-like

To comply with the Seventh Amendment to the EU Cosmetics Directive and EU REACH legislation, validated non-animal alternative methods for reliable and ...

Adapting the Electrospinning Process to Provide Three Unique Environments for a Tri-layered In Vitro Model of the Airway Wall

Adapting the Electrospinning Process to Provide Three Unique Environments for a Tri-layered In Vitro Model of the Airway Wall

Adapter le processus Électrofilage de fournir trois environnements uniques pour un Tri-couches<em&gt; In Vitro</em&gt; Modèle du mur Airway

Electrospinning is a highly adaptable method producing porous 3D fibrous scaffolds that can be exploited in in vitro cell culture. Alterations to ...

Delivery of Therapeutic siRNA to the CNS Using Cationic and Anionic Liposomes

Livraison de siRNA thérapeutique du SNC Utilisation cationique et anionique Liposomes

Prion diseases result from the misfolding of the normal, cellular prion protein (PrPC) to an abnormal protease resistant isomer called PrPRes.  The ...

Polyelectrolyte Complex for Heparin Binding Domain Osteogenic Growth Factor Delivery

Complexe de polyélectrolyte pour Heparin Binding Domain Growth Factor ostéogénique Livraison

During reconstructive bone surgeries, supraphysiological amounts of growth factors are empirically loaded onto scaffolds to promote successful bone ...

An In Vitro Organ Culture Model of the Murine Intervertebral Disc

An In Vitro Organ Culture Model of the Murine Intervertebral Disc

Un<em&gt; In vitro</em&gt; Orgue Culture Modèle de la murine disque intervertébral

Intervertebral disc (IVD) degeneration is a significant contributor to low back pain. The IVD is a fibrocartilaginous joint that serves to transmit and ...

Efficient Generation and Editing of Feeder-free IPSCs from Human Pancreatic Cells Using the CRISPR-Cas9 System

Génération efficace et l’édition de CISP exempte d’engraissement de cellules pancréatiques humaines en utilisant le système CRISPR-Cas9

Embryonic and induced pluripotent stem cells can self-renew and differentiate into multiple cell types of the body. The pluripotent cells are thus coveted ...

Preparation and Characterization of Nanoliposomes for the Entrapment of Bioactive Hydrophilic Globular Proteins

Préparation et caractérisation des nanoliposomes pour le piégeage des protéines globulaires hydrophiles bioactives

Liposome nanocapsules have been applied for many purposes in the pharmaceutical, cosmetic, and food industries. Attributes of liposomes include their ...

Bioparticle Microarrays for Chemotactic and Molecular Analysis of Human Neutrophil Swarming in vitro

Microarrays de bioparticules pour l’analyse chimiotaxique et moléculaire de l’ésaimage humaine de neutrophile in vitro

Neutrophil swarming is a cooperative process by which neutrophils seal off a site of infection and promote tissue reorganization. Swarming has classically ...