Name: microdialysis of excitatory amino acids during eeg recordings in freely moving rats
Uploaded: 2018-11-08T13:30:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Microdialysis of Excitatory Amino Acids During EEG Recordings in Freely Moving Rats at JoVE.com

著者の優先順位で掲載された論文等への貢献のアンナ Binaschi、パオロ ・ Roncon、エレオノーラ パルマを感謝したいです。

フェラーラ機関動物ケアおよび使用委員会の大学、イタリア保健省、すべての実験プロシージャを承認されている (承認: D.M. 246/2012-B) 欧州共同体で説明したガイドラインに従い1986 年 11 月 24 日 (86/609/EEC) の理事会指令」。このプロトコルは、てんかんと非てんかんラットにおけるマイクロダイアリシス セッションの脳波制御の下で得られたラット脳透析におけるグルタミン酸とアスパラギン...

この作品では TLE の実験モデルにおけるマイクロダイアリシスと相まって連続ビデオ脳波記録を実行する方法を示す.動物の病気の進行の各段階を正しく診断するビデオ脳波記録技術が使用され (変更はありませんの時間で発生するグルタミン酸放出の変化を記述するマイクロダイアリシス法を使用以前に発行された研究2ではアスパラギン酸)。強くお勧めできる単一のデバイ...

興奮性グルタミン酸性の機能障害および gaba 作動性抑制性神経伝達側頭葉てんかん (TLE) の自然発作の結果への洞察力を提供するために我々 は体系的に監視の細胞外濃度GABA1と後で自然の病気の様々 な時点でラットの腹側海馬におけるマイクロダイアリシスによってグルタミン酸とアスパラギン酸の2レベル コース、すなわちてんかんの発生と進行中。我々 は行動、電気生理学的および病理組織学的変化の3,の4の面で非常に正確に病気を模倣しているラットでは, TLE ピロカルピン モデルの利点を取り、我々 はアミノ酸の透析液の濃度相関そのさまざまな段階酸: てんかんの侮辱、潜伏段階、最初の自然発作の慢性 phass5,6,7時間後急性期。病相をフレーミングは、長期ビデオ脳波モニタリングし正確な脳波と自然発作の臨床評価によって有効にされました。マイクロダイアリシス法のアプリケーション関連付けられて長期ビデオ脳波モニタリング TLE 分子病態のメカニズムの仮説を提案することができました。要約すると、本稿で説明する手法により開発てんかん動物モデルでの進行と定義されている脳領域内の神経化学的変化の組み合わせ。
マイクロダイアリシス カニューレに並置されている深度電極から成っているペアのデバイスは、神経活動に神経伝達物質の代謝やエネルギー基質の変化を関連付ける必要がありますのあるてんかんの研究に用いられます。広大な大部分のケースでは、自由に行動、使われますが、例えば手術8前深度電極調査薬物抵抗性てんかん患者の人間において、同様の方法でも実施することができます。脳波記録と透析液のコレクションの両方を個別に実行することがあります (例えば、1 つの半球で、マイクロダイアリシス電極を埋め込む他の半球または動物の 1 グループで、マイクロダイアリシスを実行するも実行中のプローブ唯一の脳波の動物の別のグループ)。ただし、電極をプローブに結合が複数の利点をある: それは定位手術を簡素化、のみ 1 つの半球に組織損傷を制限 (他、そのまま組織学のコントロールとして、そのまま)、これら結果をビードブラストアロイ同じ脳の領域と同じ動物から取得されます。
その一方で、結合マイクロダイアリシス プローブ電極素子の作製には、自家製の場合、スキルと時間が必要です。市場から購入した場合、1 つはお金の比較的高い量を過ごすことができました。また、マイクロダイアリシス プローブのとき (プローブ ・ チップは通常 200-400 μ m 径、長さ 7-12 mm)9、脳波電極 (電極、通常利息10の頭脳の構造に到達する 300-500 μ m、直径と十分な長さの)、結合、マウントされたデバイスは、動物の面倒は、透析ポンプと硬銅線脳波記録システムに接続されているとき特に失われる傾向が頭の片側にかさばるし、比較的重いオブジェクトを表します。この側面は、扱いにくく、マイクロダイアリシス セッションにあまり適応てんかん動物でより適切です。適切な手技と適切な術後ケアは最小限の動物の不快感を引き起こすと組合せマイクロダイアリシス脳波実験10、11,のために追求する必要があります長期的なインプラントにつながる12。
利点とマイクロダイアリシス法の制限は、多くの神経科学者によって詳細に検討されています。その他体内灌流のテクニック (例えば、高速流プッシュプルまたは皮質カップ灌流) をその主な利点は関心13,14、比較的正確な領域をカバーするプローブの小径 15。第二に、透析膜は、組織と出納; の間の物理的な障壁を作成しますしたがって、高分子量物質を横断しないし、解析16,17に干渉しません。さらに、組織は、出納18の流れから保護されています。もう一つの重要な利点液検体濃度を最大化するための流量を変更する可能性がある (すなわちマイクロダイアリシスのプロセスも数学的に定義することができ、高収量に変更することができますサンプルの試料の濃度)19。最後に、興味の組織に薬や薬理活性物質を注入して介入の20のサイトに及ぼす影響を確認する技術を使用可能性があります。その一方で、マイクロダイアリシス; 電気化学的または生物学的センサーと比較して解像度に制限時間 (サンプルを収集するために必要な時間のため通常より 1 分) にはそれは組織の損傷を引き起こす襲です。興味の analyte と出納に入るすべての可溶性物質の連続濃度勾配による膜の周りの空間内で神経バランスが損なわれます。最後に、マイクロダイアリシス法は非常に出納9,21,22,23 物質の定量化のための解析技法の制限による影響します。.高速液体クロマトグラフィー (HPLC) 生体試料中のグルタミン酸とアスパラギン酸の分析のための orthophthaldialdehyde 誘導体化が非常に有効24,25,26をされた後,27と広範な議論は本稿の範囲外ですが、このメソッドを使用して、生成されるデータの詳細に記載されます。
適切かつ液組成の変更なしに実行される、マイクロダイアリシスは伝達物質の放出の基底のレベルについての信頼できる情報を提供できます。基底レベルの最大の部分はシナプス9からの波及の送信機の結果が。神経細胞を刺激するためにまたは重要な奪うマイクロダイアリシス法ことができますも採用不足のため多くの場合で余分なシナプス領域の神経伝達物質の簡単なサンプリング調査の目標を追求する、K+または Ca2 +、するために呼び起こす神経伝達物質の放出を防ぐなどの生理的イオン。
高 K+刺激は、神経生物学目を覚まし動物のみならずプライマリおよび切片培養における神経細胞の活動を刺激するために使用されます。高濃度 K+ (40-100 mM) のソリューションに健康的な中枢神経系の露出は、神経伝達物質28の流出を連想させます。てんかん動物1その他神経変性疾患29,30高 K+に応えて追加リリースを提供するニューロンのこの機能が損なわれる可能性があります。同様に、2 +剥奪 (Ca2 +無料ソリューションを灌によって得られた) は、カルシウム依存性を確立に使用される Ca はマイクロダイアリシスによるほとんどの神経伝達物質のリリースします。グリア細胞に由来する Ca2 +独立したリリースが、多くの研究は、Ca2 +の意味の論争を提起に対し神経起源の Ca2 +依存リリースであることを一般に考えられている-の高感度測定などグルタミン酸や GABA9: したがって、可能であれば、それはこれらの後者より高い空間分解能と電極がシナプス31に近づくようにマイクロ センサーの研究、マイクロダイアリシス研究をサポートすることをお勧めします。
てんかん動物マイクロダイアリシス研究に関するそれらのほとんどから得られたデータがビデオまたはビデオ脳波モニタリング発作、すなわち、徴候および/または異常に起因する症状の一時的な発生の依存を強調することが重要です。32脳の神経活動を過度または同期。ピロカルピン扱われる動物実験を準備する際に考慮すべきアノキシア発作のいくつかの詳細があります。自然発作は頻繁に脳波発作間欠期スパイク3落ち込んで活動が続いているし、クラスター33,34で発生します。偽運営非てんかん動物が発作のような活動35を示すことがありますしたがって脳波記録の評価パラメーターは、標準化された36をする必要があり、可能であれば、マイクロダイアリシス セッションのタイミングが明確に定義する必要があります。最後に、彼らの非常に最近のレポート37 の国際連盟はてんかんに対して、アメリカてんかん学会の専門家によって説明次の原理と方法論的規準ビデオ脳波モニタリング コントロール アダルト齧歯動物でお勧め ,38。
ここでは、グルタミン酸とアスパラギン酸てんかん動物の長期脳波ビデオと高速液体クロマトグラフィーによる透析液の分析と並行しての透析について述べる。1 つは最もよい結果のための世話をする必要がありますプロトコルの重要なステップを強調します。

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>3-channel two-twisted electrode</td>
			<td>Invivo1, Plastic One, Roanoke, Virginia, USA</td>
			<td>MS333/3-B/SPC</td>
			<td>Material</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>guide cannula</td>
			<td>Agn Tho&#39;s, Lindig&#246;, Sweden</td>
			<td>MAB 4.15.IC</td>
			<td>Material</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Resin KK2 Plastik</td>
			<td>Elettra Sport, Lecco, Italy</td>
			<td>KK2</td>
			<td>Material</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Super Attack gel Loctite</td>
			<td>Henkel Italia Srl, Milano, Italy</td>
			<td>2047420_71941</td>
			<td>Material</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Imalgene-Ketamine</td>
			<td>Merial, Toulouse, France</td>
			<td>221300288 (AIC)</td>
			<td>Solution</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Xylazine</td>
			<td>Sigma, Milano, Italy</td>
			<td>X1251</td>
			<td>Material</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isoflurane-Vet</td>
			<td>Merial, Toulouse, France</td>
			<td>103120022 (AIC)</td>
			<td>Solution</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Altadol 50 mg/ ml - tramadol</td>
			<td>Formevet, Milano, Italy</td>
			<td>103703017 (AIC)</td>
			<td>Solution</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gentalyn 0.1% crm - gentamycine</td>
			<td>MSD Italia, Roma, Italy</td>
			<td>20891077 (AIC)</td>
			<td>Material</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>simplex rapid dental cement</td>
			<td>Kemdent, Associated Dental Products Ltd, Swindon, United Kingdom</td>
			<td>ACR811</td>
			<td>Material</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>GlasIonomer CX-Plus Cement</td>
			<td>Shofu, Kyoto, Japan</td>
			<td>PN1167</td>
			<td>Material</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>probe clip holder</td>
			<td>Agn Tho&#39;s, Lindig&#246;, Sweden</td>
			<td>p/n 100 5001</td>
			<td>Equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Histoacryl&#174; Blue Topical Skin Adhesive</td>
			<td>TissueSeal, Ann Arbor, Michigan, USA</td>
			<td>TS1050044FP</td>
			<td>Material</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Valium 10 mg/2 ml - diazepam</td>
			<td>Roche, Monza, Italy</td>
			<td>019995063 (AIC)</td>
			<td>Material</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1 mL syringe with 25G needle</td>
			<td>Vetrotecnica, Padova, Italy</td>
			<td>11.3500.05</td>
			<td>Material</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>rat flexible feeding needle 17G</td>
			<td>Agn Tho&#39;s, Lindig&#246; Sweden</td>
			<td>7206</td>
			<td>Material</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Grass Technology apparatus</td>
			<td>Grass Technologies, Natus Neurology Incorporated, Pleasanton, California, USA</td>
			<td>M665G08</td>
			<td>Equipment (AS40 amplifier, head box, interconnecting cables, telefactor model RPSA S40)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>modular data acquisition and&#160;analysis system MP150</td>
			<td>Biopac, Goleta, California, USA</td>
			<td>MP150WSW</td>
			<td>Equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>digital video surveillance system</td>
			<td>AverMedia Technologies, Fremont, California, USA</td>
			<td>V4.7.0041FD</td>
			<td>Equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>microdialysis probe</td>
			<td>Agn Tho&#39;s, Lindig&#246; Sweden</td>
			<td>MAB 4.15.1.Cu</td>
			<td>Material</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>microdialysis probe</td>
			<td>Synaptech, Colorado Springs, Colorado, USA</td>
			<td>S-8010</td>
			<td>Material</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>block heater</td>
			<td>Grant Instruments, Cambridge, England</td>
			<td>QBD2</td>
			<td>Equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>stirrer</td>
			<td>Cecchinato A, Aparecchi Scientifici, Mestre, Italy</td>
			<td>711</td>
			<td>Equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>infusion pump</td>
			<td>Univentor, Zejtun, Malta</td>
			<td>864</td>
			<td>Equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>fine bore polythene tubing</td>
			<td>Smiths Medical International Ltd., Keene, New Hampshire, USA</td>
			<td>800/100/100/100</td>
			<td>Material</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>blue tubing adapters</td>
			<td>Agn Tho&#39;s, Lindig&#246; Sweden</td>
			<td>1002</td>
			<td>Material</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>red tubing adapters</td>
			<td>Agn Tho&#39;s, Lindig&#246; Sweden</td>
			<td>1003</td>
			<td>Material</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2.5 mL syringe with 22G needle</td>
			<td>Chemil, Padova, Italy</td>
			<td>S02G22</td>
			<td>Material</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>vial cap</td>
			<td>Cronus, Labicom, Olomouc, Czech Republic</td>
			<td>VCA-1004TB-100</td>
			<td>Material</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>septum</td>
			<td>Thermo Scientific, Rockwoood, Tennessee, USA</td>
			<td>National C4013-60 8 mm TEF/SIL septum</td>
			<td>Material</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>glass insert with bottom spring</td>
			<td>Supelco, Sigma, Milano, Italy</td>
			<td>27400-U</td>
			<td>Material</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>autosampler vial</td>
			<td>National Scientific, Thermo Fisher Scientific, Monza, Italy</td>
			<td>C4013-2</td>
			<td>Material</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Smartline manager 5000 system controller and degasser unit</td>
			<td>Knauer, Berlin, Germany</td>
			<td>V7602</td>
			<td>Equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Smartline 1000 quaternary gradient pump</td>
			<td>Knauer, Berlin, Germany</td>
			<td>V7603</td>
			<td>Equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>spectrofluorometric detector</td>
			<td>Shimadzu, Kyoto, Japan</td>
			<td>RF-551</td>
			<td>Equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>chromatogrphic column</td>
			<td>Knauer, Berlin, Germany</td>
			<td>25EK181EBJ</td>
			<td>Material</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>chromatogrphic pre-column</td>
			<td>Knauer, Berlin, Germany</td>
			<td>P5DK181EBJ</td>
			<td>Material</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>mobile phase solution A</td>
			<td>0.1 M sodium phosphate buffer, pH 6.0</td>
			<td></td>
			<td>Solution</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>mobile phase solution B</td>
			<td>40% 0.1 M sodium phosphate buffer, 30% methanol, 30% acetonitrile, pH 6.5</td>
			<td></td>
			<td>Solution</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ringer solution</td>
			<td>composition in mM: MgCl2 0.85, KCl 2.7, NaCl 148, CaCl2 1.2, 0.3% BSA</td>
			<td></td>
			<td>Solution</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>modified Ringer solution</td>
			<td>composition in mM: MgCl2 0.85, KCl 100, NaCl 50.7, CaCl2 1.2, 0.3% BSA</td>
			<td></td>
			<td>Solution</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>saline</td>
			<td>0.9% NaCl, ph adjusted to 7.0</td>
			<td></td>
			<td>Solution</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>sucrose solution</td>
			<td>10% sucrose in distilled water</td>
			<td></td>
			<td>Solution</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

microdialysis of excitatory amino acids during eeg recordings in freely moving rats

マイクロダイアリシスは病理学 (例えば発作の結果および/または動作と脳の間質性スペースに拡散神経学的活性物質の変化と相関関係を確立された神経科学技術てんかん)。てんかんを勉強、マイクロダイアリシス法、しばしば短期もしくは長期的ビデオ-脳波 (EEG) 自発性発作頻度、重症度、進行およびクラスタ リングを評価する年次モニタリングと組み合わせてください。複合マイクロダイアリシス脳波は、いくつかのメソッドと楽器の使用に基づいています。ここでは、体内マイクロダイアリシスと連続ビデオ脳波モニターのグルタミン酸とアスパラギン酸の流出ラットモデルにおけるてんかんの自然史のさまざまなフェーズでの時間をかけて記録を行った。この手法により、病気の発症や進行の特定の段階で神経伝達物質のリリースにおける変更点の組み合わせ。液体クロマトグラフィーによる透析液中アミノ酸濃度を測定しました。ここでは、メソッドおよびプリンシパルの予防措置の 1 つは生体内で透析中に取る必要がありますのアウトラインについて述べる-定位手術には特に注意、マイクロダイアリシス、深さの中に基底部および高カリウム刺激と脳波電極脳波記録と透析液中グルタミン酸とアスパラギン酸の高速液体クロマトグラフィー分析。このアプローチを適合させることが薬物や疾患の様々 なテストするアスパラギン酸とグルタミン酸が脳内の生理学的濃度変化を誘発します。適切な分析法によります、それがさらに使用する同時に脳波記録を採用する際に異なる水溶性分子をテストします。

プローブの回復
平均の回復 (つまり、バイアル ソリューションの等量のコンテンツに対するパーセンテージとして出納の平均アミノ酸含量) は 6.32 ± 0.64 3 μ L/分、グルタミン酸の 2 μ L/分の流量で 15.49 ± 0.42% と 2 の流量で 14.89 ± 0.36% Μ L/min. 10.13 ± 0.51 3 μ L/分 cuprophane 膜プローブを使用するときはアスパラギン酸、平?...

Watch this Scientific Journal Video about Microdialysis of Excitatory Amino Acids During EEG Recordings in Freely Moving Rats at JoVE.com

Microdialysis of Excitatory Amino Acids During EEG Recordings in Freely Moving Rats

ここでは、腹側海馬脳波との組み合わせで、てんかんと非てんかんラットのアスパラギン酸とグルタミン酸のリリースを分析する体内マイクロダイアリシス法について述べる。アスパラギン酸とグルタミン酸の細胞外濃度は、病気のさまざまな段階と相関があります。

自由行動ラットの脳波記録中に興奮性アミノ酸の透析

Microdialysis is a well-established neuroscience technique that correlates the changes of neurologically active substances diffusing into the brain ...

この方法は、神経疾患の自然史の間に神経化学の変化などの神経科学の主要な質問に答えることができます。提案されたマイクロ透析脳科学の主な利点は、このような組み合わせアプローチは、疾患の発症および進行の特定段階内の神経伝達物質放出の変化の組み合わせを可能にすることです。まず、ファラデーケージの外側に配置されたアンプをオンにします。EEGソフトウェアを開き、EEGの取得を開始し、接続されていないケーブルによって生成されるEEG信号を観察します。次に、片手の2本の伸びた指の間に動物の頭を保持し、もう一方のフリーハンドを使用してコネクタを電極台座にねじ込むことで、動物をつなぎ形のEEG記録システムに接続します。EEG信号がスケールになるように、単一動物の電極信号に従って増幅器の各チャンネルに増幅係数を設定する。その後、動物は研究者の直接観察の下で少なくとも1時間、新しいケージを探検してみましょう。動物の商品に合わせてケーブルを調整し、ケーブルが動物の動きや姿勢を妨げないようにします。最後に、ビデオカメラで正しい画像のフレーミングを確認し、ビデオEEGの録画を開始します。メーカーのユーザーズガイドに従って最初の使用のためにマイクロ透析プローブを準備し、リンガーのソリューションでそれらを埋めることから始めます。次に、長さ10センチのFEPチューブをカットし、異なる色のチューブアダプタを使用してプローブの入口と出口のカニューレに接続します。すべての接続で、空きスペースのないアダプターにチューブが接触していることを確認します。動物の頭をしっかりと保持して、ピンセットを使用してガイドからダミーカニューレを取り外します。マイクロ透析プローブをガイドカニューレに挿入し、モデリング粘土を使用してカニューレをさらに固めます。次に、動物をつなぎ EEG 記録システムに接続します。その後、プレキシガラスシリンダーに動物を入れて、新しい環境を探索してみましょう。目を覚まし、自由に動くネズミの動きに従ってください。次に、プローブの入口を、チューブアダプターを使用してリンガーの溶液を含む鈍い22ゲージ針で2.5ミリリットルのシリンジに接続します。2.5ミリリットルのシリンジのピストンを連続的に押し込み、10秒でリンガーの溶液を1ミリリットルプローブに押し込みます。プローブが使用できる状態であることを示すために、コンセントに表示される液体のドロップを確認します。最後に、RINGERのソリューションでアダプターをチューブしてFEPチューブに接続された2.5ミリリットルのシリンジを充填し、輸液ポンプに取り付けます。毎分2マイクロリットルでポンプを起動し、一晩実行させます。ビデオEEGを介して確認した後、サンプル収集前の3時間で発作の不在を記録し、リンガーの溶液で満たされたFEPチューブカニューレートシリンジを運ぶポンプを停止します。100ミリモルカリウム溶液を含む修飾リンガーの溶液で満たされたチューブアダプターでFEPチューブに接続された2.5ミリリットルのシリンジの別のセットをマウントします。毎分2マイクロリットルでポンプを起動し、それを実行させてください。システムに気泡が入っていないかどうかを確認し、チューブがすべての接続にデッドスペースのないアダプターに接触していることを確認します。次に、プローブが使用できる状態であることを示すために、出口に現れる液体の落下を確認します。次に、リンガーの溶液で満たされた注射器のFEPチューブを各動物のプローブの入口カニューレに接続し、出口の先端に液体が滴下するのを待ちます。プローブの出口を試験管内の回収につながるFEPチューブに接続します。FEPチューブを穿ゲートキャップ付きの密閉された0.2ミリリットル試験管に挿入し、モデリング粘土で固定することでチューブが所定の位置にとどまることを確認します。システムを平衡化するためにサンプルを収集することなく、毎分2マイクロリットル/分でポンプを実行した後、ベースライン条件下で5つの連続した30分の透析サンプルを収集し、氷の上にサンプルを保存します。10分後、100ミリモルカリウムリンジャーの溶液を含む注射器から通常のリンガー溶液にチューブを切り替え、ポンプを動かします。5回目の平衡透析の収集後、10分ごとに20マイクロリットル透析画分を1時間収集します。次に、30分の透析サンプルを3個収集し、ポンプを停止します。最後に、HPLC分析まで、実験後にマイナス80°Cでサンプルを保存します。実験が完了したら、使用済みマイクロ透析プローブを蒸留水で洗い流し、次の使用まできれいな蒸留水で満たされたバイアルに保管します。最後に、蒸留水でマイクロ透析のセットアップ全体をリンスし、その後70%エタノールを使用します。エタノールを空気に置き換え、滅菌環境でセットアップを保管します。これらは、疾患の慢性期の間に対照およびてんかんラットの海馬から記録された代表的なEEG痕跡である。コントロールラットではEEGの変化は認められなかったが、同時に発作性発作性のてんかん活性は、てんかんラットにおける行動発作の前後に約500ミリ秒観察された。慢性てんかんラットに見られる基底グルタミン酸濃度は、対照動物よりも有意に高かった。高カリウムは、対照ラットで約30分間、慢性てんかんラットで約60分間グルタミン酸の追加放出を誘発した。この手順を試みる間、装置を移植した動物は長時間の実験で失われやすいので、動物の移動性を妨げないように、ライトヘッドセットと十分に長いケーブルを使用することを覚えておくことが重要です。適切な分析エッセイの入手可能性に応じて、脳脳記録を同時に使用する場合、脳内の異なる可溶性分子をテストするためにさらにこの方法を使用することができる。その開発後、この技術は、てんかん学の分野の研究者が側頭葉てんかんの場合の興奮性神経伝達の変化に関する洞察を提供することを可能にした。このビデオを見た後、私たちはあなたが自由に動くてんかんラットで深度電極EEG記録と一緒に生体内マイクロジアルシスを行う方法のより良い理解を持っていると信じて。

Research

JoVE Journal

Neuroscience

High-density EEG Recordings of the Freely Moving Mice using Polyimide-based Microelectrode

ポリイミドベースのマイクロ電極を用いて自由に動くマウスの高密度脳波録音

Electroencephalogram (EEG) indicates the averaged electrical activity of the neuronal populations on a large-scale level. It is widely utilized as a ...

Hippocampal Insulin Microinjection and In vivo Microdialysis During Spatial Memory Testing

Hippocampal Insulin Microinjection and In vivo Microdialysis During Spatial Memory Testing

海馬のインスリンおよびマイクロインジェクション<emインビボ&gt;</em空間記憶テスト中&gt;マイクロダイアリシス

Glucose metabolism is a useful marker for local neural activity, forming the basis of methods such as 2-deoxyglucose and functional magnetic resonance ...

Recording EEG in Freely Moving Neonatal Rats Using a Novel Method

新しい方法を用いた自由に動く新生児ラットの脳波記録

EEG is a useful method to detect electrical activity in the brain. Moreover, it is a widely used diagnostic tool for various neurological conditions, such ...

Simultaneous Recordings of Cortical Local Field Potentials, Electrocardiogram, Electromyogram, and Breathing Rhythm from a Freely Moving Rat

皮質局所電界電位、心電図、筋電図、呼吸リズム自由行動ラットからの同時録音

Monitoring the physiological dynamics of the brain and peripheral tissues is necessary for addressing a number of questions about how the brain controls ...

Noninvasive EEG Recordings from Freely Moving Piglets

子豚を自由に移動するから非侵襲的脳波

The method allows the recording of high-quality electroencephalograms (EEGs) from freely moving piglets directly in the pigpen. We use a one-channel ...

Multi-Fiber Photometry to Record Neural Activity in Freely-Moving Animals

自由に動く動物の神経活動を記録するマルチファイバー光メトリー

Recording the activity of a group of neurons in a freely-moving animal is a challenging undertaking. Moreover, as the brain is dissected into smaller and ...

Intracerebroventricular Delivery of Gut-Derived Microbial Metabolites in Freely Moving Mice

自由に動くマウスにおける腸由来微生物代謝物の脳室内送達

The impact of gut microbiota and their metabolites on host physiology and behavior has been extensively investigated in this decade. Numerous studies have ...

Extracellular Electrophysiological Recording in the Motor Cortex of Mice

Multichannel Extracellular Recording in Freely Moving Mice

Advancements in Multichannel Extracellular Recording for Studying Neuronal Activity in Freely Moving Mice (Video) | JoVE

自由に動くマウスにおけるマルチチャンネル細胞外記録

The protocol aims to uncover the properties of neuronal firing and network local field potentials (LFPs) in behaving mice carrying out specific tasks by ...

Cerebrospinal Fluid and Blood Withdrawal from Rats with Concurrent EEG Recording

Sampling Cerebrospinal Fluid and Blood from Lateral Tail Vein in Rats During EEG Recordings

Obtaining High-Quality CSF and Blood Samples for Epilepsy Biomarker Discovery (Video) | JoVE

脳波記録中のラットの側尾静脈からの脳脊髄液および血液のサンプリング

Because the composition of body fluids reflects many physiological and pathological dynamics, biological liquid samples are commonly obtained in many ...

Multilayer Imaging with Microprism in Head-Fixed and Freely Moving Animals

Long-Term Imaging of Identified Neural Populations using Microprisms in Freely Moving and Head-Fixed Animals

Author Spotlight: Comparative Imaging of Neural Activity in Awake and Freely Moving States

自由に動く動物と頭部固定動物におけるマイクロプリズムを用いた同定された神経集団の長期イメージング

With the advancement of multi-photon microscopy and molecular technologies, fluorescence imaging is rapidly growing to become a powerful approach for ...