Name: simultaneous cryosectioning of multiple rodent brains
Uploaded: 2018-09-18T15:00:00
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PCH Mission Fördermittel unterstützt die Forschung in diesem Manuskript berichtet. Die Autoren möchte Daniel Griffiths danken für die Aufnahme der Bilder, die in den Figuren verwendet.

Die Megabrain-Technik wurde optimiert, mit ganzen und Hemisected Gehirne von männlichen Erwachsenen C57Bl6 Mäuse5, juvenile Sprague-Dawley Ratten und Erwachsenen Sprague-Dawley Ratten, die Transcardially durchströmt mit 1 x Phosphat gepufferte Kochsalzlösung (PBS) gefolgt waren von 4 % Paraformaldehyd6. Ähnliche Ergebnisse können in andere Stämme von Maus und Ratte, bei beiden Geschlechtern und in den verschiedenen Altersstufen durchgeführt werden. Die Studie zur Da...

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	<li>Lyck, L., Dalmau, I., Chemnitz, J., Finsen, B., Schroder, H. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Immunohistochemical+markers+for+quantitative+studies+of+neurons+and+glia+in+human+neocortex.">Immunohistochemical markers for quantitative studies of neurons and glia in human neocortex.</a> Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 56 (3), 201-221 (2008).</li><li>Fritz, P., Wu, X., Tuczek, H., Multhaupt, H., Schwarzmann, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Quantitation+in+immunohistochemistry.+A+research+method+or+a+diagnostic+tool+in+surgical+pathology?.">Quantitation in immunohistochemistry. A research method or a diagnostic tool in surgical pathology?.</a> Pathologica. 87 (3), 300-309 (1995).</li><li>Walker, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Quantification+of+immunohistochemistry--issues+concerning+methods,+utility+and+semiquantitative+assessment+I.">Quantification of immunohistochemistry--issues concerning methods, utility and semiquantitative assessment I.</a> Histopathology. 49 (4), 406-410 (2006).</li><li>Evilsizor, M. N., Ray-Jones, H. F., Lifshitz, J., Ziebell, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Primer+for+immunohistochemistry+on+cryosectioned+rat+brain+tissue:+example+staining+for+microglia+and+neurons.">Primer for immunohistochemistry on cryosectioned rat brain tissue: example staining for microglia and neurons.</a> Journal of Visualized Experiments. (99), (2015).</li><li>Harrison, J. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Resolvins+AT-D1+and+E1+differentially+impact+functional+outcome,+post-traumatic+sleep,+and+microglial+activation+following+diffuse+brain+injury+in+the+mouse.">Resolvins AT-D1 and E1 differentially impact functional outcome, post-traumatic sleep, and microglial activation following diffuse brain injury in the mouse.</a> Brain, Behavior, and Immunity. 47, 131-140 (2015).</li><li>Gage, G. J., Kipke, D. R., Shain, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Whole+animal+perfusion+fixation+for+rodents.">Whole animal perfusion fixation for rodents.</a> Journal of Visualized Experiments. (65), (2012).</li><li>Kilkenny, C., Browne, W. J., Cuthill, I. C., Emerson, M., Altman, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Improving+bioscience+research+reporting:+the+ARRIVE+guidelines+for+reporting+animal+research.">Improving bioscience research reporting: the ARRIVE guidelines for reporting animal research.</a> PLoS Biology. 8 (6), e1000412 (2010).</li><li>Kennedy, H. S., Puth, F., Van Hoy, M., Le Pichon, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+method+for+removing+the+brain+and+spinal+cord+as+one+unit+from+adult+mice+and+rats.">A method for removing the brain and spinal cord as one unit from adult mice and rats.</a> Lab Animal (NY). 40 (2), 53-57 (2011).</li><li>Fischer, A. H., Jacobson, K. A., Rose, J., Zeller, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hematoxylin+and+eosin+staining+of+tissue+and+cell+sections.">Hematoxylin and eosin staining of tissue and cell sections.</a> CSH Protocols. 2008, (2008).</li><li>Ji, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Impact+of+Repeated+Freeze-Thaw+Cycles+on+the+Quality+of+Biomolecules+in+Four+Different+Tissues.">The Impact of Repeated Freeze-Thaw Cycles on the Quality of Biomolecules in Four Different Tissues.</a> Biopreservation and Biobanking. 15 (5), 475-483 (2017).</li><li>Pegg, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+history+and+principles+of+cryopreservation.">The history and principles of cryopreservation.</a> Seminars in Reproductive Medicine. 20 (1), 5-13 (2002).</li></ol>

Während dieses Vorgangs zu berücksichtigen, dass die Temperatur der Megabrain und seine Umgebung ständig überwacht werden muss, um zu verhindern, Auftauen und wieder einfrieren des Gewebes. Das Gehirn kann nur aus dem Tiefkühler-20 ° C bis zu 3 mal als entfernt werden jedes Mal, wenn es berührt wird und Links in den Kryostaten mit wärmeren schwankende Temperaturen, das Gewebe auftaut und gefriert, wodurch eine Gelee wie Textur und krankhaftes Gewebe Integrität10. Daher ist es optimal, um ...

Hier präsentieren wir Ihnen das Protokoll für eine neuartige Methode, die wir Megabrain nennen, zu Cryosection mehrere Nagetier gleichzeitig für nachgeschaltete immunhistochemische Verfahren Gehirne entwickelt. Ein Megabrain ermöglicht die Herstellung der einzelnen Folien mit Gewebe aus mehreren Tieren. Diese Technik wurde optimiert, um koronalen Abschnitte aus 9 Erwachsene Ratte Hemisphären oder 5 Erwachsene voller Gehirne gleichzeitig geschnitten. Daher ist die Technik am ehesten zutreffenden in großen immunhistochemische Studien oder andere Analysen auf Schlitten montiert Hirngewebe aus einer großen Kohorte von Tieren gemacht.
Immunohistochemistry beinhaltet die Verwendung von spezifischen Antikörpern gegen Proteine des Interesses zu verstehen und zu charakterisieren ihren Ausdruck und zelluläre Veränderungen in bestimmten Gewebe1,2,3. Die Verwendung von Immunohistochemistry ist in der neurowissenschaftlichen Forschung, unter anderen wissenschaftlichen Disziplinen, Beihilfe bei der zellulären und molekularen Verständnis des Gehirns4verbreitet. Groß angelegte Studien, an denen viele Tiere und Gehirn Abschnitte können Ressourcen- und zeitintensiv sein. Als solche gibt es eine vielfältige Beweggründe für die Entwicklung der Megabrain: Verkürzung verbrachte Kryoschneiden, Montage und Färbung Gewebe, wobei folglich weniger Reagenzien. Darüber hinaus die Möglichkeit, den Prozess zu optimieren und Flecken auf mehrere Köpfe in der gleichen Runde hilft, einige der Variabilität zwischen Chargen, eine Beschränkung von Immunohistochemistry3Färbung zu lindern. Darüber hinaus ein Megabrain-Schnitt ist eine zeitsparende Alternative zum Schneiden einzelne gefrorene Nager Gehirne und ermöglicht schnellen Vergleich der Gewebe zwischen Tieren oder sogar Behandlungsgruppen durch mikroskopiertechniken.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>Andwin scientific tissue-tek CRYO-OCT compound (case of 12)</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>14-373-65</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thermo Scientific Shandon Peel-A-Way Disposable Embedding Molds</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>18-41</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fisherbrand High Precision Straight Broad Strong Point Tweezers/Forceps</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>12-000-128</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fisherbrand 20mL HDPE Scintillation Vials with Polypropylene Cap</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>03-337-23</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sucrose, poly bottle 2.5 kg</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>S2-212</td>
			<td>Both 15% and 30% sucrose concentrations need to be made up.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2-Methylbutane (Certified), Fisher Chemical</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>O3551-4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PYREX Tall-Form Beakers</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>02-546E</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fisherbrand General Purpose Liquid-in-Glass Partial Immersion Thermometers (-50&#176; to +50&#176;C)</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>13-201-642</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fisherbrand&#160;Scoopula Spatula</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>14-357Q</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>STANLEY Razor Blade</td>
			<td>Grainger</td>
			<td>4A807</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Edge-Rite Microtome blades</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>14-070-60</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscope slides (1&#34; frost) - white</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>22-034-979</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gibco&#160;PBS (Phosphate Buffered Saline) 10X, pH 7.2</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>70-013-032</td>
			<td>Dilute to 1X&#160; before use</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>15 piece fine paint brushes</td>
			<td>Amazon</td>
			<td>B079J12ZRV</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PAP pen</td>
			<td>abcam</td>
			<td>ab2601</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Chuck Shown in Figure 4 was custom made by a lab technician, however similar sizes are available to order from other companies commercially.</td>
			<td>Electron Microscopy Sciences</td>
			<td>EMS065</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

simultaneous cryosectioning of multiple rodent brains

Histologie und Immunhistochemie sind Routineverfahren der Analyse zu visualisieren mikroskopische Anatomie und Proteine in biologischen Geweben zu lokalisieren. In Neurowissenschaften, sowie eine Fülle von anderen wissenschaftlichen Bereichen sind diese Techniken verwendet. Immunohistochemistry kann auf Schlitten montiert Gewebe- oder frei schwebenden Abschnitte erfolgen. Probenvorbereitung von Folie montiert, ist eine zeitintensive Prozess. Das folgende Protokoll für eine Technik, genannt die Megabrain reduziert den Zeitaufwand für Cryosection und Mount Hirngewebe um bis zu 90 % durch die Kombination mehrerer Gehirne in einem gefrorenen Block. Darüber hinaus reduziert diese Technik Variabilität zwischen runden, in einer großen Studie histochemische Färbung gesehen. Die aktuelle Technik wurde optimiert für die Verwendung von Nagetier Hirngewebe in nachgeschalteten immunhistochemische Analysen; jedoch kann es zu verschiedenen wissenschaftlichen Bereichen angewendet werden, die Kryoschneiden verwenden.

Eine positive Bilanz für diese Prozedur ist Gewebe, das liegt flach auf der Folie, ohne Bläschen oder Risse in der Ausrichtung, in der sie eingefroren waren. Gewebeschnitte werden gleichmäßig verteilt auseinander und leicht erkennbar durch gute Platzierung des Gehirns im Office-Anpassungstool und gute Schreibweise wie in Abbildung 1dargestellt. Vorausgesetzt, dass das Hirngewebe von Tieren in einem ähnlichen Alter gesammelt wurde, und das Gewebe wurde im...

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Simultaneous Cryosectioning of Multiple Rodent Brains

Hier präsentieren wir ein Protokoll, um einzufrieren und Abschnitt Gehirngewebe von mehreren Tieren als eine zeitsparende Alternative zur Bearbeitung einzelner Gehirne. Dies senkt die Färbung Variabilität bei Immunohistochemistry und reduziert Zeit Kryoschneiden und Imaging.

Gleichzeitige Kryoschneiden mehrere Nagetier Gehirne

Histology and immunohistochemistry are routine methods of analysis to visualize microscopic anatomy and localize proteins within biological tissue. In ...

Diese zeitsparende Methode reduziert die Variabilität zwischen den Runden immunhistochemischer Verfahren in neurowissenschaftlichen Studien, um die Visualisierung von Anatomie und lokalen Proteinen und Geweben zu optimieren. Der Hauptvorteil dieser Technik ist, dass es die Zeit reduziert, die für die Kryosektion und die Aufnahme von Hirngewebe erforderlich ist, indem mehrere Gehirne zu einem einzigen gefrorenen Block kombiniert werden. Während diese Technik für koronare Abschnitte von Nagetiergehirnen optimiert ist, kann sie an sagittale oder transversale Abschnitte oder verschiedene Arten von Geweben wie Muskel oder Leber angepasst werden.Nach erfolgreicher transkardialer Perfusion, post-fix die Gehirne von den Tieren in einer 25 Milliliter Durchstechflasche von 4%Paraformaldehyd in PBS für 24 Stunden. Danach verwenden Sie stumpf gekippte Zangen, um das Gehirn aus dem Paraformaldehyd zu entfernen. Übertragen Sie das Gehirn in eine Durchstechflasche mit ca. 20 Millilitern 30%Saccharoselösung in TBS.Halten Sie das Gehirn und die Lösung, bis sie auf den Boden der Durchstechflasche sinken. Als nächstes legen Sie einen 500 Milliliter Glasbecher auf ein Trockeneisbett in einen Eiskübel. Dann 300 bis 400 Milliliter Isopentan in den Becher gießen.Bewahren Sie das Isopentan zwischen negativen 45 und negativen 50 Grad Celsius. Füllen Sie auf der Bankplatte eine Einweg-Einbettform etwa halb voll mit optimaler Schnitttemperatur oder OCT-Verbindung. Verwenden Sie eine Nadel, um Luftblasen aus der Form zu entfernen.Verwenden Sie die stumpf gekippten Zangen, um das erste Gehirn aus der Saccharoselösung zu entfernen. Verwenden Sie dann eine neue Rasierklinge, um das Kleinhirn und die Olfaktor-Lampen zu entfernen, bevor Sie die Hemisphären trennen. Geben Sie als Nächstes dem Gehirn ein numerisches Benennungssystem.Verwenden Sie stumpfe Zange, nehmen Sie das Gehirn in Position zwei platziert werden, und orientieren Sie es mit der Seite zuerst nach oben geschnitten werden. Senken Sie das Gehirn in das OCT und verwenden Sie die Pinzette, um ihre Position anzupassen, bis sie unabhängig steht. Eine wichtige Änderung dieser Technik ist der Leerraum in Position eins.Dieser Raum ist so vorgesehen, dass die Megahirnausrichtung leicht identifiziert werden kann und somit das mit jedem Gehirn verbundene Tier identifiziert werden kann. Nachdem alle Gehirne in der Form positioniert wurden, fügen Sie genügend OCT, um die Oberseiten des Gehirns zu decken, dann verwenden Sie eine Nadel, um alle Luftblasen zu entfernen. Halten Sie die Ecke der Form mit Zangen, um sicherzustellen, dass die Zange nicht teilweise in das OCT eingetaucht wird.Dann senken Sie die Form in das Isopentan, so dass das untere Drittel der Form untergetaucht ist. Nach 30 Sekunden die gesamte Form in das Isopentan senken und aus der Zange lösen. Nach drei Minuten verwenden Sie die Zange, um die Form aus dem Isopentan zu entfernen.Die Form und ihren Inhalt sofort in Aluminiumfolie wickeln und entsprechend beschriften. Übertragen Sie das Megabrain für mindestens 24 Stunden in einen negativen 20 Grad Celsius Gefrierschrank. Stellen Sie zunächst die Temperatur des Kryostatschranks auf negative 19 Grad Celsius ein.Entfernen Sie das Megabrain aus dem Gefrierschrank und legen Sie es in den Kryostat. Dann legen Sie ein Futter und zwei dünne gekippte Pinsel in den Kryostat. Danach beschriften Sie die Dias mit der Megabrain-Identifikationsnummer und der Dianummer und legen sie auf den Diawärmer.Als nächstes, auspacken Sie das Megabrain und verwenden Sie eine Rasierklinge, um die Ecken der Form zu schneiden. Geben Sie eine dünne Oct-Schicht auf das Futter. Dann legen Sie das Megabrain schnell auf das Futter.Nachdem das OCT vollständig eingefroren ist, eine zwei Millimeter schichtoct um die Seiten des Megahirns auftragen und die Seiten auf das Futter herunterlaufen lassen. Verwenden Sie eine Rasierklinge, um überschüssiges OCT von den Seiten und der Unterseite des Futters zu entfernen. Positionieren Sie zunächst das mit dem Megabrain montierte Futter auf dem Futterkopf des Kryostats.Stellen Sie dann den Kryostat auf die gewünschte Dicke ein. Trimmen Sie das OCT und das Gewebe nach Bedarf, um die gewünschte Hirnregion für die Gewebesammlung zu erreichen. Dann senken Sie die Anti-Roll-Platte, bis sie auf der Bühne ruht und drehen Sie den Kryostatgriff, um einen einzigen Abschnitt zu nehmen.Heben Sie langsam die Anti-Roll-Platte ab, wobei Sie darauf achten, dass der Gewebeabschnitt nicht berührt wird. Verwenden Sie die Pinsel vorsichtig, um den Gewebeabschnitt zu entrollen, bis er flach liegt. Halten Sie bei Bedarf das OCT mit den Pinseln flach, um das Rollen zu verhindern.Entfernen Sie dann die Folie aus dem Schiebewärmer und bewegen Sie die Folienbeschriftung über den Megabrain-Abschnitt und lassen Sie sie an der Folie kleben. Wenden Sie schnell einen Tropfen PBS auf den Gewebeabschnitt an. Mit einem fein gekippten Pinsel in PBS getaucht, bürsten Sie alle Blasen im Gewebebereich und entfalten Sie das Gewebe, so dass es flach auf der Folie liegt.Schließlich legen Sie die Rutsche auf die Rutsche wärmer, um für 45 Minuten trocknen und speichern Sie die Rutsche bei negativen 80 Grad Celsius. In diesem Protokoll wurde Hirngewebe von neun Tieren gleichzeitig vorbereitet und kryosectioniert. Nach dem Kryosektionen kann die H&E-Färbung durchgeführt werden, um die Kryoschutzqualität zu bewerten.Repräsentative Ergebnisse des ionisierten Kalziumbindungsadaptermoleküls einoder Iba1 Färbung von Mikroglia zeigen konsistente Färbung zwischen jedem Studienhirn auf einem einzigen Megahirn. Beim Versuch dieses Verfahrens ist es wichtig, sich daran zu erinnern, ständig die Temperatur zu überwachen, während das Megabrain einfriert, um Risse oder Auftauen zu verhindern und dann das Gewebe wieder einzufrieren, was zu einer abnormalen Gewebeintegrität führt. Es wird nicht empfohlen, verschiedene Behandlungsgruppen in separaten Megahirnen zu trennen, da dies Varianz zwischen Gruppen während der Färbung erzeugen und Voreingenommenheit und Subjektivität während der Bildgebung und Analyse reduzieren kann.Vergessen Sie nicht, dass die Arbeit mit Paraformaldehyd extrem gefährlich sein kann und Vorsichtsmaßnahmen wie das Tragen von PBE und das Arbeiten in einer Kapuze sollten immer während der Durchführung dieses Verfahrens getroffen werden.

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Simultaneous fMRI and Electrophysiology in the Rodent Brain

Gleichzeitige fMRI und Elektrophysiologie in der Nager Gehirn

To examine the neural basis of the blood oxygenation level dependent (BOLD) magnetic resonance imaging (MRI) signal, we have developed a rodent model in ...

Forschung

Neurowissenschaften

Ex vivo Culturing of Whole, Developing Drosophila Brains

Ex vivo Culturing of Whole, Developing Drosophila Brains

Ex vivo Kultivierung von Whole, Entwickeln von Drosophila Brains

We describe a method for ex vivo culturing of whole Drosophila brains. This can be used as a counterpoint to chronic genetic manipulations for ...

Simultaneous Electroencephalography, Real-time Measurement of Lactate Concentration and Optogenetic Manipulation of Neuronal Activity in the Rodent Cerebral Cortex

Gleichzeitige Elektroenzephalographie, Real-time Messung der Laktat-Konzentration und optogenetische Manipulation der neuronalen Aktivität in der Nagetier Cerebral Cortex

Although the brain represents less than 5% of the body  by mass, it utilizes approximately one quarter of the glucose used by the body  at rest1. The ...

Simultaneous Electrophysiological Recording and Micro-injections of Inhibitory Agents in the Rodent Brain

Gleichzeitige Elektrophysiologische Aufzeichnung und Micro-Injektionen von Hemmstoffe im Gehirn von Nagetieren

Here we describe a method for the construction of a single-use &#8220;injectrode&#8221; using commercially accessible and affordable parts. A probing ...

Isolation, Culture and Long-Term Maintenance of Primary Mesencephalic Dopaminergic Neurons From Embryonic Rodent Brains

Isolation, Kultur und langfristige Wartung von Primär mesencephalen dopaminergen Neuronen aus embryonalen Nagetier Brains

Degeneration of mesencephalic dopaminergic (mesDA) neurons is the pathological hallmark of Parkinson&#8217;s diseae. Study of the biological processes ...

Homochronic Transplantation of Interneuron Precursors into Early Postnatal Mouse Brains

Homochronic Transplantation von Interneuron Vorstufen in frühen postnatalen Mäusegehirnen

Neuronal fate determination and maturation requires an intricate interplay between genetic programs and environmental signals. However, disentangling the ...

Metabolic Analysis of Drosophila melanogaster Larval and Adult Brains

Metabolic Analysis of Drosophila melanogaster Larval and Adult Brains

Stoffwechselanalyse von Drosophila Melanogaster Schildzecken und erwachsenen Gehirn

This protocol describes a method for measuring the metabolism in Drosophila melanogaster larval and adult brains. Quantifying metabolism in whole organs ...

Abbiategrasso Brain Bank Protocol for Collecting, Processing and Characterizing Aging Brains

Abbiategrasso Brain Bank Protocol zum Sammeln, Verarbeiten und Charakterisieren alternder Gehirne

In a constantly aging population, the prevalence of neurodegenerative disorders is expected to rise. Understanding disease mechanisms is the key to find ...

Free-floating Immunostaining of Mouse Brains

Frei schwebende Immunfärbung von Mausgehirnen

Immunohistochemical staining of mouse brains is a routine technique commonly used in neuroscience to investigate central mechanisms underlying the ...

Automated Multimodal Stimulation and Simultaneous Neuronal Recording from Multiple Small Organisms

Automatisierte multimodale Stimulation und simultane neuronale Ableitung von mehreren kleinen Organismen

Fluorescent genetically encoded calcium indicators have contributed greatly to our understanding of neural dynamics from the level of individual neurons ...