Name: continuous noninvasive measuring of crayfish cardiac and behavioral activities
Uploaded: 2019-02-06T14:00:00
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Questo studio è stato sostenuto dal Ministero della pubblica istruzione, gioventù e dello sport della Repubblica Ceca-progetti "CENAKVA" No. CZ.1.05/2.1.00/01.0024 e 'CENAKVA II ' n. LO1205 sotto la sostenibilità nazionale programma I, Grant dell'Agenzia dell'Università della Boemia meridionale a České Budějovice (012/2016/Z) e dall'Agenzia Grant della Repubblica Ceca (n. 16-06498S)

1. gamberi selezione
<ol><li>Per applicare con successo l'attuale approccio per aragoste, selezionare i rispettivi esemplari adulti con sufficienti dimensioni di carapace (che è una lunghezza del carapace di almeno 30 mm) per il fissaggio del sensore, visivamente esaminarlo per l'assenza di malattie e verifica Se si solleva entrambe chelae quando viene toccata. I parametri suddetti indicano uno stato ammissibile della salute di gamberi. Nota: Se diversi gamberi dovrebbero essere utilizzati nella sp...

<ol>
	<li>Bownik, A., Soko&#322;owska, N., &#346;laska, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+apomorphine,+a+dopamine+agonist,+on+Daphnia+magna:+Imaging+of+swimming+track+density+as+a+novel+tool+in+the+assessment+of+swimming+activity.">Effects of apomorphine, a dopamine agonist, on Daphnia magna: Imaging of swimming track density as a novel tool in the assessment of swimming activity.</a> Science of the Total Environment. 635, 249-258 (2018).</li><li>Jeong, T. Y., Yoon, D., Kim, S., Kim, H. Y., Kim, S. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mode+of+action+characterization+for+adverse+effect+of+propranolol+in+Daphnia+magna.+based+on+behavior+and+physiology+monitoring+and+metabolite+profiling.">Mode of action characterization for adverse effect of propranolol in Daphnia magna. based on behavior and physiology monitoring and metabolite profiling.</a> Environmental Pollution. 233, 99-108 (2018).</li><li>do Nascimento, M. T. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Determination+of+water+quality,+toxicity+and+estrogenic+activity+in+a+nearshore+marine+environment+in+Rio+de+Janeiro,+Southeastern+Brazil.">Determination of water quality, toxicity and estrogenic activity in a nearshore marine environment in Rio de Janeiro, Southeastern Brazil.</a> Ecotoxicology and Environmental Safety. 149, 197-202 (2018).</li><li>Xiao, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Water+quality+monitoring+using+abnormal+tail-beat+frequency+of+crucian+carp.">Water quality monitoring using abnormal tail-beat frequency of crucian carp.</a> Ecotoxicology and Environmental Safety. 111, 185-191 (2015).</li><li>Aagaard, A., Andersen, B. B., Depledge, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Simultaneous+monitoring+of+physiological+and+behavioral+activity+in+marine+organisms+using+non-invasive,+computer+aided+techniques.">Simultaneous monitoring of physiological and behavioral activity in marine organisms using non-invasive, computer aided techniques.</a> Marine Ecology Progress Series. 73 (2), 277-282 (1991).</li><li>Bloxham, M. J., Worsfold, P. J., Depledge, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Integrated+biological+and+chemical+monitoring:+in+situ.+physiological+responses+of+freshwater+crayfish+to+fluctuations+in+environmental+ammonia+concentrations.">Integrated biological and chemical monitoring: in situ. physiological responses of freshwater crayfish to fluctuations in environmental ammonia concentrations.</a> Ecotoxicology. 8 (3), 225-237 (1999).</li><li>Depledge, M. H., Andersen, B. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+computer-aided+physiological+monitoring+system+for+continuous,+long-term+recording+of+cardiac+activity+in+selected+invertebrates.">A computer-aided physiological monitoring system for continuous, long-term recording of cardiac activity in selected invertebrates.</a> Comparative Biochemistry and Physiology. A, Comparative Physiology. 96 (4), 473-477 (1990).</li><li>Depledge, M. H., Galloway, T. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Healthy+animals,+healthy+ecosystems.">Healthy animals, healthy ecosystems.</a> Frontiers in Ecology and the Environment. 3 (5), 251-258 (2005).</li><li>Holdich, D. M., Reynolds, J. D., Souty-Grosset, C., Sibley, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+review+of+the+ever+increasing+threat+to+European+crayfish+from+non-indigenous+crayfish+species.">A review of the ever increasing threat to European crayfish from non-indigenous crayfish species.</a> Knowledge and Management of Aquatic Ecosystems. 11, 394-395 (2009).</li><li>Vogt, G., Holdich, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Functional+anatomy.">Functional anatomy.</a> Biology of freshwater crayfish. , 53-151 (2002).</li><li>Bierbower, S. M., Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Measures+of+heart+and+ventilatory+rates+in+freely+moving+crayfish.">Measures of heart and ventilatory rates in freely moving crayfish.</a> Journal of Visualized Experiments. (32), e1594 (2009).</li><li>Li, H., Listerman, L. R., Doshi, D., Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Heart+rate+in+blind+cave+crayfish+during+environmental+disturbances+and+social+interactions.">Heart rate in blind cave crayfish during environmental disturbances and social interactions.</a> Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular &amp; Integrative Physiology. 127 (1), 55-70 (2000).</li><li>Listerman, L. R., Deskins, J., Bradacs, H., Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Heart+rate+within+male+crayfish:+social+interactions+and+effects+of+5-HT.">Heart rate within male crayfish: social interactions and effects of 5-HT.</a> Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular &amp; Integrative Physiology. 125 (2), 251-263 (2000).</li><li>Burnett, N. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+improved+noninvasive+method+for+measuring+heartbeat+of+intertidal+animals.">An improved noninvasive method for measuring heartbeat of intertidal animals.</a> Limnology and Oceanography: Methods. 11 (2), 91-100 (2013).</li><li>Fedotov, V. P., Kholodkevich, S. V., Strochilo, A. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Study+of+contractile+activity+of+the+crayfish+heart+with+the+aid+of+a+new+non-invasive+technique.">Study of contractile activity of the crayfish heart with the aid of a new non-invasive technique.</a> Journal of Evolutionary Biochemistry and Physiology. 36 (3), 288-293 (2000).</li><li>Kholodkevich, S. V., Ivanov, A. V., Kurakin, A. S., Kornienko, E. L., Fedotov, V. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Real+time+biomonitoring+of+surface+water+toxicity+level+at+water+supply+stations.">Real time biomonitoring of surface water toxicity level at water supply stations.</a> Environmental Bioindicators. 3 (1), 23-34 (2008).</li><li>Kuznetsova, T. V., Sladkova, S. V., Kholodkevich, S. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evaluation+of+functional+state+of+crayfish+Pontastacus+leptodactylus+in+normal+and+toxic+environment+by+characteristics+of+their+cardiac+activity+and+hemolymph+biochemical+parameters.">Evaluation of functional state of crayfish Pontastacus leptodactylus in normal and toxic environment by characteristics of their cardiac activity and hemolymph biochemical parameters.</a> Journal of Evolutionary Biochemistry and Physiology. 46 (3), 241-250 (2010).</li><li>Sladkova, S. V., Kholodkevich, S. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Total+protein+in+hemolymph+of+crawfish+Pontastacus+leptodactylus+as+a+parameter+of+the+functional+state+of+animals+and+a+biomarker+of+quality+of+habitat.">Total protein in hemolymph of crawfish Pontastacus leptodactylus as a parameter of the functional state of animals and a biomarker of quality of habitat.</a> Journal of Evolutionary Biochemistry and Physiology. 47 (2), 160-167 (2011).</li><li>Pautsina, A., Kuklina, I., &#352;tys, D., C&#237;sa&#345;, P., Koz&#225;k, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Noninvasive+crayfish+cardiac+activity+monitoring+system.">Noninvasive crayfish cardiac activity monitoring system.</a> Limnology and Oceanography: Methods. 12 (10), 670-679 (2014).</li><li>C&#237;sa&#345;, P., Saberioon, M., Koz&#225;k, P., Pautsina, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fully+contactless+system+for+crayfish+heartbeat+monitoring:+Undisturbed+crayfish+as+bio-indicator.">Fully contactless system for crayfish heartbeat monitoring: Undisturbed crayfish as bio-indicator.</a> Sensors and Actuators B: Chemical. 255, 29-34 (2018).</li></ol>

Ampiamente è stato suggerito che la misura di alcuni parametri fisiologici (ad esempio cuore o tasso di ventilazione o entrambi) è un metodo più affidabile per la registrazione delle reazioni di gamberi che la valutazione delle risposte comportamentali che non sempre si verificano immediatamente11. Tuttavia, è evidente che l'approccio più efficace per valutare le reazioni di gamberi reali ai cambiamenti ambientali è la combinazione di attività cardiaca e registrazioni di comportamento, dal ...

Oggetto di domande gli organismi acquatici sia come organismi modello per1,varie indagini di laboratorio2 strumenti per il monitoraggio industriale e naturale/ambientale acqua qualità3,4 , sembra essere ben studiato. Tuttavia, questo argomento è ancora di notevole interesse per gli esseri umani, indipendentemente dalla loro appartenenza alla comunità scientifica o ad altre occupazioni. Nonostante l'esistenza di un certo numero di metodi avanzati per il monitoraggio di alcuni parametri (cosiddetti "biomarcatori")5,6,7,8, i requisiti più importanti per la selezione di un indicatore è costituito da tre semplici fattori: (i) semplicità, (ii) affidabilità e disponibilità (iii) generale.
Gamberi di fiume, come un essenziale rappresentante della fauna d'acqua dolce, si distingue perché si trova in tutto il mondo, è molto diffusa e, nella maggior parte dei casi9, ha un carapace sufficientemente grande e duro adatto per la manipolazione. Questo crostaceo appartiene al gruppo degli invertebrati superiori che forniscono sufficienti dello sviluppo di sistemi fisiologici vitali e rispettivi organi mentre, allo stesso tempo, mantenendo un' organizzazione relativamente semplice10.
Metodi basati sulla valutazione della gamma di parametri biologici e/o comportamentali dei gamberi, come descritto nella letteratura scientifica, hanno contribuito significativamente allo sviluppo di studi di biomonitoraggio e gamberi di fiume in generale. La maggior parte dei metodi invasivi attualmente disponibili per le misure di frequenza cardiaca di gamberi sono basata sulle registrazioni elettrocardiogramma che richiedono una procedura chirurgica complessa e precisa11,12,13; tali manipolazioni possono causare notevole stress a e possono richiedere adattamento prolungato dal Gambero di fiume. Inoltre, non è noto come lungo un gambero può trasportare tali elettrodi e se esso verrà correttamente muta mentre lo si trasporta questo attaccamento. I metodi descritti non invadenti sono basati sulle registrazioni pletismografica, che sono complicate dalla complessità dell'hardware e richiedono un circuito condizionata per segnale filtraggio14 e un'amplificazione o precisione e costose componenti ottiche15 ,16.
In questo studio, abbiamo descritto un approccio che contribuisce ai risultati esistenti e offre nuove alternative per migliorare le attuali procedure di misurazione frequenza cardiaca di gamberi. Tra i vantaggi, ci sono (i) un collegamento veloce e non invasivo che non richiede un adattamento fisiologico prolungato; (ii) capacità di gamberi portare il sensore entro un periodo di pochi mesi da muta a muta; (iii) il software in grado di monitoraggio cardiaco in tempo reale e comportamentali attività e la valutazione dei dati ottenuti simultaneamente da più gambero di fiume; (iv) una produzione basso prezzo e la semplicità. Il sistema di biomonitoraggio che descriviamo consente la non invadente e continuo monitoraggio delle attività di gamberi cardiache e dell'apparato locomotore basata sui cambiamenti nelle caratteristiche etho-fisiologiche degli astaci. Questo sistema può essere applicato facilmente negli esami del laboratorio di fisiologia cardiaca gamberi e/o etologia, oltre alle implementazioni industriali per il controllo di qualità delle acque: Servizi di trattamento e fornitura di acqua.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:717px;" width="718">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">IR LED diode</td>
			<td style="width:180px;">KINGBRIGHT ELECTRONIC</td>
			<td style="width:155px;">KP-3216F3C</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Phototransistor</td>
			<td style="width:180px;">EVERLIGHT</td>
			<td>ELPT15-21C</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Resistor</td>
			<td style="width:180px;">ROYAL OHM</td>
			<td style="width:155px;">0805S8J0201T5E</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Resistor</td>
			<td style="width:180px;">ROYAL OHM</td>
			<td style="width:155px;">0805S8F2200T5E</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Capacitor</td>
			<td style="width:180px;">KEMET</td>
			<td style="width:155px;">C0805C334K5RACTU</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Cable</td>
			<td style="width:180px;">TECHNOKABEL</td>
			<td style="width:155px;">FTP KAT.5E 4X2X0,14C</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Connector</td>
			<td style="width:180px;">HARTING</td>
			<td style="width:155px;">21348100380005</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Connector</td>
			<td style="width:180px;">HARTING</td>
			<td style="width:155px;">21348000380005</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Dielectric gel</td>
			<td style="width:180px;">KRAYDEN</td>
			<td style="width:155px;">Sylgard 535</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Analogue-to-digital convertor</td>
			<td style="width:180px;">TEDIA</td>
			<td style="width:155px;">UDAQ-1416CA</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Glue</td>
			<td style="width:180px;">KUPSITO.SK</td>
			<td>7338723044</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Kinect video camera</td>
			<td style="width:180px;">ABCSTORE.CZ</td>
			<td style="width:155px;">GT3-00002</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="126">
			<td height="126" style="height:126px;width:216px;">Analysis software</td>
			<td style="width:180px;">University of South Bohemia in Ceske Budejovice, Faculty of Fisheries and Protection of Waters, Institute of Complex Systems</td>
			<td style="width:155px;"></td>
			<td style="width:167px;">Link to the software: www.frov.jcu.cz/crayfishmonitoring 
			User name: frov 
			Password: CF2018</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

continuous noninvasive measuring of crayfish cardiac and behavioral activities

Un gambero di fiume è un organismo acquatico cardine che serve sia come un pratico modello biologico per studi comportamentali e fisiologici di invertebrati come un utile indicatore biologico della qualità delle acque. Anche se gamberi non è possibile specificare direttamente le sostanze che causano il deterioramento della qualità dell'acqua, si possono immediatamente (entro pochi secondi) avvertono gli esseri umani di deterioramento della qualità dell'acqua tramite cambiamenti acuti nella loro attività cardiaca e comportamentali.
In questo studio, presentiamo un metodo non invasivo che è abbastanza semplice da attuare nelle varie circostanze a causa di una combinazione di semplicità e affidabilità in un modello.
Questo approccio, in cui gli organismi biologici vengono implementati nei processi di valutazione ambientale, fornisce un affidabile e tempestivo allarme per l'allarme e prevenendo il deterioramento acuto dell'acqua in un ambiente. Pertanto, questo sistema non invasivo basato su gamberi fisiologici e registrazioni di parametro etologico è stato studiato per la rilevazione dei cambiamenti nell'ambiente acquatico. Questo sistema è ora applicato a una birreria locale per il controllo della qualità dell'acqua utilizzata per la produzione di bevande, ma può essere utilizzato in qualsiasi trattamento dell'acqua e l'impianto per l'approvvigionamento per la valutazione della qualità dell'acqua di continuo, in tempo reale e per laboratorio regolare indagini di fisiologia cardiaca gamberi e comportamento.

Di conseguenza, abbiamo ottenuto una combinazione di gamberi attività cardiaca e comportamentali, registrate e salvate in un file di formato txt (Figura 3). Oltre al numero di gamberi sperimentali, la data e la frequenza di campionamento, il file è costituito da tre colonne: (1) l'orario continuo in formato HH; (2) la frequenza cardiaca viene calcolata automaticamente in battiti al minuto; (3) la locomozione registrato come assenza (0) o presenza (1) di qua...

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Continuous Noninvasive Measuring of Crayfish Cardiac and Behavioral Activities

Continua la misurazione non invasiva dell'attività cardiaca e comportamentali di gamberi

Questo articolo presenta un sistema di biomonitoraggio non invadente per la registrazione continua e l'analisi dell'attività cardiaca e locomotore gamberi. Questo sistema è costituito da un sensore ottico infrarosso, un modulo di rilevamento video e software per la valutazione di battiti cardiaci gamberi che riflette il suo stato fisiologico e caratterizza il comportamento di gamberi durante le fluttuazioni di battito cardiaco.

A crayfish is a pivotal aquatic organism that serves both as a practical biological model for behavioral and physiological studies of invertebrates and as ...

Questo metodo può aiutare a rispondere a domande chiave in campo ambientale ed ecotossicologico che coinvolgono il rapporto tra attività cardiache e locomotorie sulle varie condizioni stressanti acute e prolungate. I principali vantaggi di questa tecnica sono che i gamberi non richiedono complesse manipolazioni precedenti o adattamento prolungato e sono in grado di portare sensori per alcuni mesi tra i metodi. Le implicazioni di questa tecnica si estendono verso applicazioni eziologiche, fisiologiche, ecotossicologiche e industriali in quanto il biomonitoraggio non invasivo aiutato dai gamberi può essere implementato nei laboratori e negli impianti di trattamento e fornitura delle acque.Sebbene questo metodo possa fornire informazioni interne sul cuore di gamberi cardiaco, fisiologia e comportamento e controllo della qualità dell'acqua, può potenzialmente essere applicato ad altri grandi crostacei d'acqua dolce e marina. La dimostrazione visiva di questo metodo è fondamentale per comprendere il legame tra il sensore non invasivo che utilizza la luce vicino all'infrarosso per la valutazione nel cuore dei gamberi e i moduli di rilevamento del movimento basati sull'elaborazione delle immagini. Pochi giorni prima di iniziare la procedura, selezionare esemplari adulti con una dimensione carapace di almeno 30 millimetri.Ed esaminare ogni campione per l'assenza di malattia e se sollevano entrambi i cheli quando vengono toccati. Quindi consentire ai gamberi sani di acclimatarsi in un serbatoio di acqua del rubinetto depositata fino al giorno della procedura. Non appena i sensori sono stati preparati, aprire il software del sensore sul computer e inserire il numero di gamberi da fissarsi ai sensori e visualizzati sullo schermo.Impostare il numero di frequenza cardiache dei gamberi da visualizzare. E usa un tovagliolo di carta per asciugare il carapace dorsale del primo animale. Avvolgere la cheli e l'addome del gambero nell'asciugamano di carta per evitare danni ed eliminare ulteriori stress per l'animale.E attaccare il censore al carapace dorsale in una posizione che facilita un'ampiezza massima del segnale cardiaco. Tenendo il gambero con il sensore in una mano, utilizzare l'altra mano per aggiungere una goccia di colla epossidica appena miscelata su ciascuno dei quattro fili ausiliari situati sul sensore. Quindi lasciare asciugare la colla senza spostare il sensore per almeno cinque minuti.Quando la colla non è più appiccicosa al tatto, posizionare il gambero scartato e il sensore in una scatola senza acqua per qualche minuto in più fino a quando la colla non è completamente asciutta. Prima di spostare di nuovo i gamberi nel serbatoio, immergere il cefalotorace nell'acqua del serbatoio per alcuni secondi più volte per scaricare l'aria che si è accumulata nelle branchie. E lasciare i gamberi nel serbatoio dell'acqua di detenzione per circa un'ora per rimuovere eventuali sostanze chimiche in eccesso.Quindi, rilasciare i gamberi nei serbatoi sperimentali dell'acqua per una o due settimane di acclimatazione e nelle condizioni sperimentali appropriate a seconda degli indici fisiologici osservati. Non appena i gamberi vengono collocati nei serbatoi sperimentali, avviare il software. La videocamera si accenderà automaticamente.Quindi selezionare l'opzione di rilevamento del movimento e individuare ogni serbatoio sullo schermo per iniziare a tracciare il comportamento e collegare il comportamento dei gamberi con le registrazioni di attività cardiache. Le attività cardiache e comportamentali dei gamberi registrate possono essere salvate in un file in formato TXT. È fondamentale includere la locomozione del gambero nell'analisi in quanto questa attività può causare cambiamenti nella frequenza cardiaca.Ad esempio, in questo esperimento dieci secondi dopo l'inizio dell'esperimento un odore alimentare è stato consegnato nel serbatoio tramite una pompa peristaltica. A 14 secondi il gambero ha riconosciuto lo stimolo e la sua frequenza cardiaca è leggermente diminuita a causa della cosiddetta risposta orientante. Dopo 20 secondi, la frequenza cardiaca è aumentata con conseguente diminuzione degli intervalli cardiaci.A 26 secondi il gambero si è spostato verso la fonte di stimolo e sia l'eccitazione fisiologica causata dall'odore alimentare che l'iniziazione della locomozione hanno portato a un sostanziale aumento della frequenza cardiaca. A 37 secondi ci sono state prove di un brusco movimento dei gamberi che avrebbe potuto contribuire sostanzialmente alla crescita della frequenza cardiaca durante le reazioni allo stimolo. In effetti, un gambero disturbato in genere dimostra un aumento della frequenza cardiaca che è spesso associato a locomozione occasionale.Tuttavia, anche i gamberi immobile possono dimostrare un'alta frequenza cardiaca che indica anche uno stress pronunciato. La frequenza cardiaca di un gambero indisturbato è caratterizzata da un'ampiezza monotona della curva del battito cardiaco e da intervalli cardiaci approssimativamente uguali tra ogni picco cardiaco. Durante il tentativo di questa procedura è importante ricordare che un attacco del sensore rapido e completo causerà meno stress agli animali da esperimento consentendo l'acquisizione di precise caratteristiche fisiologiche.I metodi di monitoraggio più avanzati includono l'uso di un monitoraggio del gambero completamente contactless che consente di determinare la frequenza del battito cardiaco utilizzando solo la combinazione di un sensore vicino all'infrarosso e di una telecamera sensibile. Dopo il suo sviluppo, questo approccio ha spianato la strada ai ricercatori nei campi del comportamento, della fisiologia, della riproduzione e dell'androgina di gamberi senza restrizioni e altri grandi invertebrati acquatici per esplorare l'impatto ambientale e antropogenico sugli organismi bioindicatori. Per il biomonitoraggio non invasivo, ha un'applicazione molto pratica presso la varietà locale nella Repubblica ceca come sistema di monitoraggio precoce della qualità dell'acqua in tempo reale.Mentre la stabilità dello stato dell'acqua viene continuamente valutata in base alla dinamica delle caratteristiche ecofisiologiche dei gamberi.

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Basic Methods for the Study of Reproductive Ecology of Fish in Aquaria

Metodi di base per lo studio dell&#39;ecologia riproduttiva dei pesci in Aquaria

Captive-rearing observations are valuable for revealing aspects of fish behavior and ecology when continuous field investigations are impossible. Here, a ...

A Wireless, Bidirectional Interface for In Vivo Recording and Stimulation of Neural Activity in Freely Behaving Rats

A Wireless, Bidirectional Interface for In Vivo Recording and Stimulation of Neural Activity in Freely Behaving Rats

Una connessione Wireless, interfaccia bidirezionale per registrazione In Vivo e la stimolazione dell'attività neurale a comportarsi liberamente ratti

In vivo electrophysiology is a powerful technique to investigate the relationship between brain activity and behavior at a millisecond and micrometer ...

Noninvasive, High-throughput Determination of Sleep Duration in Rodents

Determinazione non invasiva, High-throughput di durata di sonno in roditori

Traditionally, sleep is monitored by an electroencephalogram (EEG). EEG studies in rodents require surgical implantation of the electrodes followed by a ...

An Automated T-maze Based Apparatus and Protocol for Analyzing Delay- and Effort-based Decision Making in  Free Moving Rodents

Un t-labirinto automatizzato basato apparato e protocollo per l'analisi basate su ritardo e sforzo decisionale nei roditori in movimento libero

Many neurological and psychiatric patients demonstrate difficulties and/or deficits in decision making. Rodent models are helpful to produce a deeper ...

Noninvasive, In-pen Approach Test for Laboratory-housed Pigs

Test di avvicinamento non invasivo e in-pen per suini ospitati in laboratorio

Traumatic brain injury (TBI) incidences have increased in both civilian and military populations, and many researchers are adopting a porcine model for ...