Name: ex vivo corneal organ culture model for wound healing studies
Uploaded: 2019-02-15T12:30:00
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이 작품은 NIH NEI R01 EY024942, 실명 방지, 북부 의료 대학 무제한 연구 자금, 연구에 의해 지원 되었다 및 라이온 스 지구 20 Y. 현미경 검사 법 및 파라핀 섹션의 이미지 분석 현미경 코어에서 수행 했다, 조직학 슬라이드 준비 Biorepository 마운트 시 나이에서 아이 칸 의학 학교에서 병 리 코어에서 수행 되었다.

1. 기관 문화
<ol><li>
준비
	<ol>
<li>다음과 같이 한 솔루션을 준비 합니다. 작은 술병에 준비 1% 한 천은 1 mg/mL 소 콜라겐 DMEM F12에 최대 20 mL. 뜨거운 접시에 끓여 야 가져와. 솔루션 50 mL 원뿔 튜브에 넣어. 응고에서 솔루션을 유지 하는 뜨거운 접시에 물 욕조에 튜브를 배치 합니다.</li>
		<li>보충 세럼-무료 미디어 (SSFM) 재료의 테이블에에서 제공 된 구성에 따라 준비 합니다.<...

이 프로토콜 상처 치유는 자연 층 화 3D 환경에서 공부에 대 한 모델을 설명 합니다. 세포 배양 그리고 vivo에서 학문 사이 중간 장기 문화의 사용 비용 뿐만 아니라 살아있는 동물에 감소 절차에 크게 줄일 수 있습니다. 다른 3D 모델 되었습니다 자체 콜라겐 젤 기본 인간 각 막 섬유 아 세포2 또는이 같은 세포에서 만들어진 합성을 포함 하는 필드에 큰 혜택의 임베디드 젤 동물 파?...

상해, 외상, 또는 감염에서 발생 하는 각 막에 흉터 불투명도 및 영구적인 시력 상실을 쇠 약하게 될 수 있습니다. 따라서, 치료 적 개입에 대 한 대상으로 지정할 수 경로 식별 하는 중요 한 필요가 있다. 현재 치료 옵션 제한 되며 전 세계에 걸쳐 환자에 액세스할 수 있습니다 각 막 이식, 주로 이루어져 있다. 둘 다 (그림 1) 인간과 동물 각 차원에 대 한 이용 될 수 있다 고 3D 세포 배양 연구1,2. 인간 시체 각 막 이식에 적합 하지 않은 안구 은행 또는 중앙된 조직 은행 (국가 질병 연구 교환 (NDRI))에서 얻어질 수 있다 그리고 동물 눈은 도살 장에서 얻어질 수 있다. 기본 각 막 상피 세포, stromal 섬유 아 세포, 그리고 더 최근에, 내 피 세포, 절연 수 및 상처 치유에 대 한 이러한 조직에서 경작 그리고 독물학 연구3,,45. 눈부신 눈 질병의 분자 기준 이해의 중요성 뿐만 아니라 조직과 문화 1 차 셀 수의 접근이 했다 각 막 연구에 대 한 중요 한 모델 시스템을. 각 막 흉터 정상적인 각 막 투명 하 고 상처의 특정 유형을 만드는 불투명도 또는 fibrotic 흉터 (6에서검토)에 에이전트의 효과 테스트에 이상적입니다. 몇 가지 vivo에서 각 막 상처 치유 모델은 또한 광범위 하 게 이용 되어 상처 연구1. 덜 활용 되었습니다 전 비보 각 막 상처 치유 모델7,8 여기에서 설명 하는. 이 방법의 목표는 흉터 결과 3d 다세포 거리 제조 업체에 의해 특징을 계량 하는 ex vivo 모델 시스템 각 막.
24-72 h9내 닫습니다 각 막 상피 부상 하 일반적으로 상피의 지하실 멤브레인을 위반 하지 않습니다. 부상, 곧 후 상피의 가장자리에 세포 확산 하 고 상피 무료 표면 상피 장벽 기능을 다시 설정으로 이동 시작 합니다. 이 활동은 순차적으로 먼저 하 고, 상피 세포 대량10,11의 복구를 달성 하기 위해 외부 limbal 지역에 있는 선구자 세포의 나중 단계에서 각 막 기저 세포 증식의 활성화를 옵니다. 이러한 상처는 종종 흉터 없이 치료. 그러나, 종종 지하실 막 기질에 침투 상처 흉터 형성1발생 합니다. 각 막 실질 부상 후 기질 차별화 된 주민 stromal 세포 골 수에서 파생 된 fibrocytes12,,1314포함 한 여러 기원 세포로 채워집니다. Fibrotic 흉터 치료 상처에 myofibroblasts의 지 속성에 의해 특징입니다. 이러한 병 적인 myofibroblasts 보여 초점 유착, 수축 성 α-부드러운 근육 걸 (α-SMA) 스트레스 섬유와 세포 외 기질 (ECM)의 현지 활성화 integrins의 축적을 통해 증가 접착-압수 잠재성 변형 성장 인자-베타 (TGFβ). 엽 전환 (응급), 상피로 알려진 파생 된 상피 세포의 분화 형성6흉터에 기여할 수 있습니다.
부상 후 세포 분화 및 apoptosis 사이의 미묘한 균형이 있다. 혈소판 파생 된 성장 인자 (PDGF)과 눈물에서 TGFβ 상피 목욕 기질, 유도 myofibroblast 차별화, TGFβ 활성화의 지속적인된 autocrine 루프와 같은 성장 요인 지하실 멤브레인에 위반 때문에 그리고 비 조직적인된 거리 ECM15,16분 치료 상처에 myofibroblasts의 지 속성 안개 및 (그림 2) 각 막에 흉터를 촉진 합니다. 그러나, regeneratively 치유 상처 myofibroblasts 개발, 비록 그들은 apoptose 및 따라서 결 석 또는 치유 조직 (참조6,10검토)에서 크게 감소 된 수. 따라서, fibrotic 흉터에 대 한 연구를 적어도 부분 과도 한 myofibroblast 개발 또는 myofibroblast 지 속성17,18을 방지 하는 분자를 대상으로에 집중 했다. Myofibroblast 지 속성 특징 모든 조직19에 흉터와 거리 질병, 때문에 각 막 섬유 증의 일반적인 셀룰러 메커니즘 연구를 모델 시스템으로 유용할 수 있습니다.
우리의 모델 시스템에서 각 막 원통형 블레이드 라는 세계에 판형으로 부상입니다. 인간 돼지 각 중 하나는 6 또는 7 m m 판형;와 부상 수 있습니다 토끼 각 막에 대 한 6 m m 판형이 좋습니다. 돼지 막은 인간 각 막 크기에서 유사 합니다. 때문에 비용 효과적이 고 쉽게 사용할 수 있는 많은 수에서 돼지 각 기관 문화 정기적으로 사용 됩니다. 또한, 항 체 및 인간 반응 했다 siRNAs 돼지7cross-reacted 일관 되 게 있다. 부상, 후 각 막을 절단 하는 limbus로 전 세계에서 그대로 한 천/콜라겐 베이스에 탑재. 각 혈 청 무료 미디어에서 교양 플러스 섬유 아 세포 증식과 ECM 증 착20를 시뮬레이션 하기 위해 비타민 C를 안정화. 혈 청의 추가 없으며 성장 요인 유도 myofibroblast 형성7필요 합니다. 각 막은 정기적으로 고정 하 고 문화의 2 주 후 조직학에 대 한 처리. 유전자 최저, 또는 상처 치유에 에이전트의 결과 테스트, 상처는7 명이 후 상처에 siRNA로 대우 될 수 있다 또는 수용 성 에이전트 각각8미디어에 추가할 수 있습니다.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>PBS</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>10-010-023</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pen Strep&#160;</td>
			<td>MP Biomedicals</td>
			<td>91670049</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bovine Collagen Solution</td>
			<td>Advance Biomatrix</td>
			<td>5005</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pig eyes with lids attached&#160;</td>
			<td>Pel-freeze, Arkansas</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>6.0 mm trephine&#160;</td>
			<td>Katena</td>
			<td>K28014</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Blade&#160;</td>
			<td>Personna</td>
			<td>0.009</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Small scissor</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>895110</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Forceps</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>08953-F</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Kim Wipes&#160;</td>
			<td>Kimberly-Clark&#8482; 34120</td>
			<td>06-666</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>60 mm cell culture dishes&#160;</td>
			<td>Falcon</td>
			<td>08-772B</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Supplemented Serum- Free media (SSFM)</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Add all of the following components to DMEM/F-12:&#160; ITS, RPMI, Glutathione, L-Glutamine, MEM Non essential amino acids, MEM Sodium Pyruvate, ABAM, Gentamicin, Vitamin C.&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DMEM/F-12</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>11330</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ITS Liquid Media Supplement&#160;</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>I3146</td>
			<td>100X</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>RPMI 1640 Vitamins Solution&#160;</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>R7256</td>
			<td>100X</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glutathione</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>G6013</td>
			<td>Use at 1 &#181;g/mL. Freeze aliquots; do not reuse after thawing.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1% L-glutamine solution&#160;</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>25030-081</td>
			<td>100X</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MEM Non-essential amino acids solution&#160;</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>11140</td>
			<td>100X</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MEM Sodium pyruvate solution&#160;</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>11360</td>
			<td>1 M Stocks (1000X) and freeze in single use aliquits.&#160; Use from freezer each time media is made.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ABAM&#160;</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>A7292</td>
			<td>100X</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gentamicin&#160;</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>30-005-CR</td>
			<td>200X</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vitamin C&#160;</td>
			<td>Wako</td>
			<td>070-0483</td>
			<td>2-0-aD Glucopyranosyl-Ascorbic Acid. 1 mM stocks (1000x)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10% Iodine&#160;</td>
			<td>Fisher Chemical</td>
			<td>SI86-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tissue Path Cassettes&#160;</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>22-272416</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Normal Goat Serum (NGS)</td>
			<td>Jackson Immuno Research</td>
			<td>005-000-121</td>
			<td>We use 3% NGS</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mounting Media&#160;</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>TA-030-FM</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Safe Clear&#160;</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>314-629</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ethyl Alcohol</td>
			<td>Ultra Pure</td>
			<td>200CSGP</td>
			<td>200 Proof, diluted at 100%, 70%, 50%)&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium citrate&#160;</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>BP327</td>
			<td>10mM, pH 6.4</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hematoxylin</td>
			<td>EMD Millipore</td>
			<td>M10742500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bluing agent&#160;</td>
			<td>Ricca Chemical Company</td>
			<td>220-106</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1% Triton X-100</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>9002-93-1</td>
			<td>Diluted in PBS</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>0.1% Tween 20&#160;</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>BP337</td>
			<td>Diluted in PBS</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3% Hydrogen Peroxide&#160;</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>H324</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DAB Kit&#160;</td>
			<td>Vector Laboratories</td>
			<td>SK-4100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Agar&#160;</td>
			<td>Fisher&#160;</td>
			<td>BP1423-500</td>
			<td>Agar solution: prepare 1% agar and 1 mg/mL bovine collagen in DMEM-F12 up to 20 mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Parafilm</td>
			<td>Bermis</td>
			<td>13-374-12</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Moist Chamber</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Use any chamber, cover it with wet Wipe Tissue and then put a layer of Parafilm over it.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lipofectamine 2000</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Qiagen RNAprotect Cell Reagent</td>
			<td>Qiagen</td>
			<td>&#160;76104</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ambion PureLink RNA Mini Kit</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>12183018A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Anti-Fibronectin-EDA Antibody</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>F6140</td>
			<td>1:200 Diluted in&#160; 3% normal goat serum</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Anti-alpha smooth muscle actin Antibody</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>A2547 or C6198 (cy3 conjugated)</td>
			<td>1:200 Diluted in 3% normal goat serum</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Permafluor&#160;</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>TA-030-FM</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DAPI&#160;</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>P36931</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gt anti -MS IgG (H+L) Secondary Antibody, HRP&#160;</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>62-6520</td>
			<td>1:100 diluted in 3% normal goat serum (for a-SMA, DAB staining)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gt anti -MS IgM (H+L) Secondary Antibody, HRP&#160;</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>PA1-85999</td>
			<td>1:100 diluted in 3% normal goat serum (for FN-EDA, DAB staining)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gt anti -MS IgG (H+L) Secondary Antibody, Cy3&#160;</td>
			<td>Jackson Immuno Research</td>
			<td>115-165-146</td>
			<td>1:200 Diluted in&#160; 3% normal goat serum (for a-SMA, Fluorescence staining)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>&#160;Zeiss Axioplan2&#160;</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td></td>
			<td>Microscope</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SPOT-2</td>
			<td colspan="2">Diagnostic Instruments, Sterling Heights, Michigan</td>
			<td>CCD camera</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

ex vivo corneal organ culture model for wound healing studies

각 막은 상처 치유를 공부 하는 모델 시스템으로 광범위 하 게 사용 되었습니다. 능력을 생성 하 고 2 차원 (2D)과 3 차원 (3D) 문화에 기본 포유류 세포를 활용 풍부한 정보 뿐만 아니라 각 막 생물학에 대 한 뿐만 아니라 상처 치유, myofibroblast 생물학, 그리고 일반적으로 흉터에 대 한 발생 . 프로토콜의 목적은 myofibroblast 개발, 흉터 특징을 측정 하는 분석 결과 시스템입니다. 우리는 돼지 눈을 사용 하는 각 막 기관 문화 비보 전 모델을 보여 줍니다. 이 앞쪽 keratectomy 상처, 세계에서 아직도 각 원형 블레이드는 판형 이라는 부상는. 앞쪽 각 막의 약 1/3의 플러그는 상피, 지하실 멤브레인와 스트로 마의 앞쪽 부분을 포함 하 여 제거 됩니다. 부상, 후 각 지구에서 잘라, 콜라겐/한 천 자료에 있으며 주민 섬유 아 세포에 의해 세포 증식과 세포 외 기질 분 비를 증가 시키기 위해 안정화 된 비타민 c 보충 세럼 무료 매체에 2 주 동안 경작. 앞쪽 기질에 myofibroblasts의 활성화 치료 각 막에 분명 하다. 이 모델은 상처 폐쇄, myofibroblasts과 거리, 그리고 독성 연구 개발 시험을 사용할 수 있습니다. 또한,이 시스템에서 유전자 최저에 대 한 지질 중재 siRNA transfection 작은 분자 억제제의 효과 테스트할 수 있습니다.

Immunohistochemistry 기본 분석 결과 활용은 전의 성공을 분석 하 비보 상처 치유 실험. 그림 4 에 상피 및 제어 조직 (그림 4A, 4B)에서 앞쪽 기질 보여 주며. 6 시간 후에 부상, 상피 (그림 4C, 4d)에 결 석 했다. 6 일 예상 대로 부상 후 상피 (4E 그림, 4 층) r...

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Ex Vivo Corneal Organ Culture Model for Wound Healing Studies

전직에 대 한 프로토콜 vivo 막 기관 문화 모델 부상 치료 연구는 설명 하는 유용한. 이 모델 시스템 재생 치유를 촉진 하는 에이전트 또는 조직된 3D 다세포 환경에서 약물 독성의 효과 평가 하기 위해 사용할 수 있습니다.

Ex Vivo 막 기관 문화 모델에 대 한 상처 치유 연구

The cornea has been used extensively as a model system to study wound healing. The ability to generate and utilize primary mammalian cells in two ...

이 논문은 3차원, 다세포 장기 배양 모델 시스템에서 상처를 속이는 간단한 방법을 설명했다. 우리는 돼지 눈을 사용하여이 작업을 수행하지만, 당신이 눈에 익숙하지 않은 경우에도,이 분석 작업을 수행 할 수 있습니다. 개요로, 우리는 돼지 눈을 받고, 지구를 잘라, 상피와 스트로마의 약 3 분의 1을 통과하는 각막에 원형 상처를.우리는 각막을 잘라, 한천 기지에 장착하고, 인큐베이터에이 구조를 넣어. 조직은 각막에 흉터를 만드는 채우기 위해 채울 것입니다. 성장 요인, 심지어 혈청을 추가 할 필요가 없습니다.이것은 혈청이없는 미디어에서 이루어집니다. 이것은 각막에서 수행되지만, 일반적으로 섬유성 치유를위한 모델 시스템으로 사용될 수 있습니다. 흉터 를 만드는 동안 활성화 되는 셀 룰 러 경로의 많은 시스템 사이 유사.생체 안전 후드에서 직선 가장자리 수술 블레이드를 사용하여 에탄올 청소 도마의 뚜껑에서 지구를 제거하고 각 눈에서 과도한 지방 조직을 제거하십시오. 청소된 글로브를 집게로 뒤로 잡고 PBS에서 즉시 눈을 담그고 10%의 요오드에 3회 빠르게 딥을, PBS에서 2회 빠르게 딥을 기록했습니다. 그런 다음 깨끗한 실험실 조직으로 눈을 감싸서 각막에 닿지 않고 팽팽한 각막 표면을 달성하기에 충분한 압력으로 감쌉합니다.6mm 트레핀을 사용하여 각막 중앙의 전방 기질에서 상피를 관통하고 각막 전체를 통해 전체 두께의 상처를 입히지 않고, 감기를 깊게하기 위해 가벼운 압력을 가하면서 시계 방향으로 시계 반대 방향으로 180도 회전합니다. 상처가 집게로 들어 올릴 수 있을 만큼 깊을 때, 수술용 블레이드를 사용하여 상처 마진 내에서 전방 각막을 계속 들어 올리면서 전 세계에 플랩을 자른다. 플랩 전체가 제거되면 원형 상처가 각막 중앙에 있어야 합니다.각막을 수확하기 위해 실험실 조직으로 눈을 파악하고 외과 블레이드를 사용하여 각막 가장자리에서 1밀리미터 떨어진 작은 절개를 하여 림푸스와 조직 수집을 포함합니다. 작고 날카로운 가위를 사용하여 전 세계의 절개를 계속하여 각막을 가로질러 밀리미터 의 마진을 유지하여 림을 선극에 유지합니다. 그런 다음 각막, 상처 쪽, 60 밀리미터 또는 PBS 1 밀리리터를 포함하는 100 밀리미터 접시를 놓습니다.각막을 장착하려면 두 쌍의 집게를 사용하여 각막 상피 면을 최대 위로 잡고 멸균 이송 파이펫을 사용하여 컵이 가득 찰 때까지 각막에 따뜻한 천용액을 추가하십시오. 한천이 굳어진 후, 각막을 새로운 60mm 플레이트 에 조심스럽게 놓고 뚜껑으로 접시를 덮습니다. 그런 다음 각막의 각 접시에 각막분리기를 37°C의 세포 배양인 인큐베이터에서 공기-액체 인터페이스에 유지하며, 1회 1방울의 보충혈청 이음새를 사용하여 각막 표면을 습윤하여 소화된 티슈에 보관한다.유전자 녹다운의 경우, 작은 간섭 또는 siRNa의 5 마이크로리터를 50 마이크로리터의 최소 필수 중간 및 2개의 미약 시약과 혼합합니다. 각막 당 감소 된 혈청 매체의 50 마이크로 리터. 5분 후, 두 혼합물을 함께 섞고 각 siRNA 혼합물에 200마이크로리터의 최소 혈청 최소 배지를 첨가한다.그런 다음 siRNA 솔루션이 각 상처에 현명하게 떨어뜨립니다. 그런 다음 각막을 인큐베이터에 넣습니다. 3시간 후 각 접시에 배지를 사용하여 각 접시표면에서 siRNA를 세척하고 각 접시의 조건부 배지를 신선한 보충 세럼 프리 배지와 항생제로 대체합니다.그런 다음 각막 배양을 세포 배양 배양인 인큐베이터로 되돌리고 2주 동안 배양합니다. 상처 후 6 시간, 각막 상피는 결석. 상처가 난 지 6일 후, 상피가 다시 커집니다.알파 부드러운 근육 액틴으로 염색하는 형광 아미노산은 전방에서 후방 스트로마에 이르기까지 상처 마진을 따라 활성 심섬유 아세포의 그라데이션을 보여줍니다. 알파 스무스 근육 액틴을 위한 면역-히스토케미칼 염색은 상처입은 알파 스무스 근육 액틴 단백질 발현의 극적인 증가와 대조군 siRNA 각막을 드러낸다. 상처없이 표적 단백질 siRNA 치료, 상처받은 각막에 비해.유사하게, fibronectin 엑스트라 도메인 A는 상처받지 않은 각막을 치료하고 부상당한 각막을 치료한 진각막에 비해 siRNA에서 강화된다. 표적 단백질의 성공적인 노크를 시연. 또한, 대상 단백질을 비구체적으로 표적으로 하는 독소로 상처받은 각막의 치료는 재상피화를 방지하고 질적 세포 사멸, 무질서한 매트릭스 및 기질 진공 부올레를 초래하여 독소가 분석된 농도에서 치유를 촉진하지 않는다는 것을 시사한다.결론적으로,이 절차를 시도하는 동안 절단하는 동안 조직에 평행 블레이드를 유지하는 것이 중요합니다, 그래서 그것은 지구를 관통하지 않습니다. 화학 적 화상 이나 상피 긁힌 자국을 포함 하 여 이 분석으로 다른 상처 기법 사용할 수 있습니다. 또한 약물 독성 검사에 사용할 수 있어 상피가 치유되는지, 어떤 속도로 치유되는지 확인할 수 있다.이것은 생체 내 상처 치유 연구를 선행할 수 있는 비용 절감 전 생체, 장기 배양 모형 시스템입니다.

Research

JoVE Journal

Medicine

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연구

의학

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Murine Endoscopy for In Vivo Multimodal Imaging of Carcinogenesis and Assessment of Intestinal Wound Healing and Inflammation

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