Name: ldl cholesterol uptake assay using live cell imaging analysis with cell health monitoring
Uploaded: 2018-11-17T14:00:00
Duration: 8 min 45 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about LDL Cholesterol Uptake Assay Using Live Cell Imaging Analysis with Cell Health Monitoring at JoVE.com

Diese Arbeit wurde unterstützt durch die folgenden Zuschüsse an LAS: National Institute of Health (R56HL132209 und 1R01HL140468) und Miami Heart Research Institute. KY ist American Heart Association Predoctoral Fellow (18PRE33960070). HepG2-Zellen wurden freundlicherweise zur Verfügung gestellt von Dr. Emmanuel Thomas, Universität von Miami-Miller-Schule von Medizin46,47,48.

(1) Aussaat Zellen in einer 24-Well-Platte
<ol><li>Aspirieren Sie Medien aus den Zellen, waschen Sie die Zellen mit 5 mL Dubelco Phosphat gepufferte Kochsalzlösung (dPBS) und aspirieren Sie des dPBS. Verwenden Sie für HepG2 Zellen in einer Petrischale 100 mm, 1,5 mL von 0,25 % Trypsin/EDTA, und für HK2 Zellen oder HCAECs 1,5 mL 0,05 % Trypsin/EDTA-Lösung, um die Zellen zu lösen.</li>
	<li>Inkubieren Sie die Platte in einem Inkubator 37 ° C, 4 Minuten lang oder bis die Zellen gelöst werden. Nach einer Inkubationszeit von 4 Minuten zu neutralisieren Trypsin durch Zugabe von 3 mL komplette Medien für HepG2 und HK2 oder 3 mL Trypsin neutralisierende Lösung, dPBS plus 5 % fetalen bovine Serum (FBS), für HCAEC Zellen.</li>
	<li>Übertragen Sie die Zellen in 15 mL konische Röhrchen bei 250 X g für 5 min Zentrifugieren, aspirieren Sie die Medien und erneut aussetzen der Zelle Pellet in komplette Medien.</li>
	<li>Filtern Sie die Zellsuspension vorsichtig durch ein Sieb 40 μm zu Zelle Klumpen brechen. Waschen Sie die Zellen nicht durch das Sieb.</li>
	<li>Zählen der Zellen und sie auf eine optimale Dichte Platte. Zum Beispiel führen 5.000 Zellen pro Bohrloch HepG2-Zellen oder 10.000 Zellen pro Bohrloch HK2 Zellen oder HCAECs in einer 24-Well-Platte zu optimalen Ergebnissen.</li>
	<li>Inkubieren Sie die Platte über Nacht bei 37 ° C damit Zellen befestigen.</li>
	<li>Am nächsten Tag ändern Zelle Media Base-Medien für die Zell-Linie (ohne FBS) plus 5 % Lipo-Protein mangelhaft Serum (LPD) oder niedrig (2 %) FBS-Medien je nach Behandlung (siehe 1.7). Dann weiter Inkubation für 24 h die Zellen verhungern. Verwenden Sie 500 μL der gesamten Medien pro Bohrloch in einer 24-Well-Platte.</li>
	<li>Behandeln die Zellen in eine der drei Möglichkeiten: Fügen Sie 10 µg/mL rPCSK9 (oder Fahrzeug) und zurück die Zellen in den Inkubator 37 ° C für 1 Stunde, 40 µM Dynasore-Hydrat (oder Fahrzeug, Dimethyl Sulfoxid) hinzufügen und die Zellen in den Inkubator 37 ° C für 10 Minuten zurück , oder fügen Sie 1 µM Simvastatin (oder Fahrzeug, Dimethyl Sulfoxid) und die Zellen in den Inkubator 37 ° C für 12, 18 oder 24 Stunden zurück. Verwenden Sie Medien mit 5 % LPDS für rPCSK9 oder Dynasore Behandlungen. Verwenden Sie niedrig (2 %) FBS-Medien oder mit 5 % LPDS Simvastatin Behandlungen. Hinweis: Behandlung der Zellen mit gewünschten Verbindungen kann zum Zeitpunkt der Medienwechsel für Lipoprotein Hunger (Schritt 1.6) für langfristige Experimente oder vor der Analyse für kurzfristige Experimente durchgeführt werden. Alternativ können individuelle Behandlungszeiten basierend auf der Art und der Zweck der Experimente gewählt werden.</li>
	<li>Als nächstes fügen Sie 5 µL pHrodo rot-markierten LDL (1 mg/mL Brühe) in jede Vertiefung, eine Endkonzentration von 10 µg/mL zu erhalten. Dann entfernen Sie sorgfältig alle Bläschen aus dem Brunnen.</li>
</ol>2. live-Cell-Analyse
<ol><li>Sofort nach dem Hinzufügen des gekennzeichneten LDL, platzieren Sie die Platte in den live Zelle Analyse System Inkubator (siehe Tabelle der Materialien) und die Platte zu equilibrate für 15 Minuten zu Kondensation in der Platte reduzieren lassen.</li>
	<li>In der Zwischenzeit öffnen Sie die Software und planen Sie den Scan, indem man das Schiff die Halteplatte. Bild 16 Bilder pro Bohrloch in Abständen von 1 Stunde bei 10 X für 4 Stunden über die Kanäle rot und Phase.</li>
	<li>Erstellen Sie eine Platte Karte für Datenverarbeitung zu verwenden.<ol>
<li>Klicken Sie auf die Registerkarte " Eigenschaften " wählen Sie die Platte Karte. Geben Sie den Zelltyp und Behandlungen in der Registerkarte " Verbindungen ".</li>
		<li>Klicken Sie auf die Registerkarte " Regionen ", wählen Sie jeden Satz von Wiederholungen, und speichern Sie als Regionen.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. richten Sie Analyseparameter
<ol><li>Sobald eine experimentelle abgeschlossen ist, erstellen Sie ein Bild-Set in der Software des Computers auf jeden Parameter in der Zählung enthalten quantifizieren zu trainieren.<ol>
<li>Öffnen Sie in der Software die Platte Ansicht zu, dann wählen Sie im Feld Analyse Job Dienstprogramme erstellen "oder" Add an Image Collection.</li>
		<li>Wählen Sie Neue Bildsammlung, geben Sie einen Namen für die Bildersammlung, und wählen Sie die Kanäle rot und Phase durch Markieren der Kästchen neben den Kanälen.</li>
		<li>Wählen Sie 5 weitere Bilder aus und Bild-Auflistung fügen Sie hinzu, indem Sie das aktuelle Bild-Sammlung hinzufügen.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Erstellen Sie eine Verarbeitung Definition für die Zellen. Tabelle 1 enthält die Parameter für die Verarbeitung von Definitionen für dieses LDL Zustrom Protokoll HepG2 HK2 und HCAE Zelle.<ol>
<li>Wählen Sie im Feld Analyse Job Utilities Verarbeitung Neudefinition. Wählen Sie die Bildersammlung benannt im Schritt 2.1.2 aus dem Drop-down-Menü. Geben Sie die Parameter für die Art der Zellen aus der Tabelle 1.</li>
		<li>Im Feld Vorschau Vorschau allewählen Sie mit der Drop-down-Menü.</li>
		<li>Überprüfen Sie im Feld Analyse-Maske der Zusammenfluss Maske und das Rote Objekt Maske Boxen um den Bereich in der Analyse für die Verarbeitung Definition enthalten anzeigen. Siehe Abbildung 1.</li>
		<li>Blättern Sie durch die Bildersammlung um sicherzustellen, dass die Zellen und LDL in der Maske enthalten sind. Wählen Sie Datei und die Definition der Bearbeitung Speichern .</li>
	</ol>
</li>
	<li>Analysieren Sie den Satz von Bildern aus dem experimentellen Lauf.<ol>
<li>Öffnen Sie das Experiment in Platte Ansicht. Wählen Sie im Feld Analyse Job Dienstprogramme Starten neue Analyse-Auftrag. Wählen Sie die gespeicherte Definition Verarbeitung.</li>
		<li>Nennen Sie den Analyse-Auftrag zu, wählen Sie den Zeitraum für die Analyse und markieren Sie die experimentelle Brunnen zu analysieren. Klicken Sie auf die Schaltfläche " starten ".</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. Analyse und Verarbeitung von Daten
<ol><li>Sobald die Analyse-Auftrag abgeschlossen ist, exportieren Sie die Daten:<ol>
<li>Wählen Sie die fertige Analyse und Ansicht. Wählen Sie im Menü " Dienstprogramme " Metrisch/Grafik zu exportieren.</li>
		<li>Im Menü Regionen wählen Sie Alle Brunnen, und die Gruppe um zu erhalten die Mittelwerte für jede Gruppe von Brunnen als Gruppe wählen Sie im Menü repliziert, und für den Export die Einzelwerte für jede Vertiefung wählen Sie keine.</li>
		<li>Wählen Sie im Menü rot Objekt Metrik die Red Objekt integrierten Gesamtintensität (RCU X µm2StraßenrandVerkaufsförderung). Dieser Parameter gibt der Summe der roten Signalzeiten Intensität (in RCU) Bereich das rote Signal (in µm2) in den Bildern über jedes gut, das entspricht insgesamt LDL-Aufnahme durch die Zellen.</li>
		<li>Klicken Sie auf die Schaltfläche " Daten exportieren ". Überprüfen Sie die Daten in Einzelbilder zerlegen. Die Daten werden automatisch in einer Zwischenablage kopiert und können in eine neue Tabellenkalkulationsdatei eingefügt werden.</li>
		<li>Wählen Sie im Menü Phase Objekt Metrik Zusammenfluss (Prozent). Überprüfen Sie die Daten in Einzelbilder zerlegen. Klicken Sie auf die Schaltfläche " Daten exportieren ". Die Daten werden automatisch in einer Zwischenablage kopiert und können auf die Kalkulationstabellendatei mit roten Objekt integrierten Gesamtintensität Daten kopiert werden.</li>
		<li>Die Umwandlung von Prozent Zusammenfluss auf Gesamtfläche mit der folgenden Gleichung anwenden. Gesamtfläche (µm2StraßenrandVerkaufsförderung) Phase = Zusammenfluss (%) × (Bildhöhe (Pixel) × Auflösung) × (Bildbreite (Pixel) × Auflösung) Hinweis: der Zusammenfluss (%)-Parameter gibt die Prozent Zusammenfluss des Bereichs Phase pro Bild, das auf den Bereich der Zellen in jedem Bohrloch entspricht. Diese Kennzahl sollte in totale Phase Bereich umgewandelt werden, für jeden einzelnen Bild einmal exportiert. Die Bild-Spezifikationen für Phase-Kanal (Bildhöhe, Breite und Auflösung) mit der obigen Formel für jedes experimentelle Schiff verwendet werden finden Sie unter Verweis auf Schiff Eigenschaften unter Bild-Kanäle.</li>
		<li>Normalisieren Sie Total rot Objekt integrierte Intensität auf die Gesamtfläche der Phase berechnet in 4.1.6 mithilfe der folgenden Formel für jedes einzelne Bild, um die Variabilität in der Zelldichte über den Brunnen zu beseitigen.<ol>
<li>Teilen Sie die Total rot Objekt integrierten (RCU X µm2StraßenrandVerkaufsförderung) Intensitätswerte jedes Bild durch seine entsprechende Phase Gesamtfläche (µm2StraßenrandVerkaufsförderung) , LDL-Aufnahme (RCU) Werte pro Bild zu erhalten.</li>
			<li>Dann, durchschnittliche LDL-Aufnahme (RCU) Daten aller Bilder von jedem gut zu erhalten die durchschnittlichen LDL-Aufnahme in jede Vertiefung und dann Durchschnittswerte der LDL Aufnahme der replizieren Brunnen Gruppe Mittel zu erhalten. Diese Daten sind die Endwerte der LDL-Aufnahme und für Illustration und statistische Analyse mit Hilfe der Software der Wahl verwendet werden.</li>
		</ol>
</li>
	</ol>
</li>
</ol>

Die Autoren erklären, dass sie keine finanziellen Interessenkonflikte.

In das aktuelle Protokoll zeigen wir Ihnen die Nutzung von live Cell Imaging als eine neue und effektivere Methode zur Messung der Echtzeit LDL-Aufnahme über einen zeitlichen Verlauf in verschiedenen humanen Zelllinien. Menschlichen hepatischen Karzinomzellen (HepG2) werden häufig in Studien screening für Cholesterin-senkende Therapie21,22,23,24,25,26verwendet, 39,40. Daher entschieden wir uns für die Prüfung der Fähigkeit eines live Cell imaging Systems für LDL Zustrom Studien dieser Zellentyp. Unsere Ergebnisse deuten darauf hin, dass HepG2-Zellen mit dieser neuen Technik und führen zu einer sigmoid-ähnliche Kurve, die kontinuierliche LDL-Aufnahme für die Dauer der Zustrom Assay bis 4,33 h als den finalen Endpunkt kompatibel sind (Abbildung 2A und Abbildung 3 ).
Cholesterin-Homöostase spielt eine wichtige Rolle in der Pathophysiologie der verschiedenen Nephropathies. In der Tat, Cholesterin-Ansammlung in renal Gewebe ist ein wesentlicher Faktor für renale Fibrose führt zu chronischer Nierenerkrankung und ist eine große Pathologie in verschiedenen Nephropathies28,29,30,31. Daher haben wir unsere Methode im menschlichen Nieren (HK2) Epithelzellen als eine beliebte und zuverlässige Zelllinie verwendet auf dem Gebiet der Nephrologie untersucht. Unsere Daten unterstützt auch die Machbarkeit des live Cell imaging Systems, LDL Zustrom in HK2 Zellen zu messen. Wie in Abbildung 2Bdargestellt, nahm HK2 Zellen LDL-Cholesterin linear während der gesamten Dauer der Zustrom Studie (4 Stunden).
Aufgrund der Bedeutung der Cholesterin-Stoffwechsel in der Entwicklung und Progression der Atherosklerose32,33,41, die führende Ursache von Herz-und Kreislauferkrankungen, die wiederum die Nummer eins Todesursache weltweit 42, wollten wir unsere Methode in einer Atherosklerose-relevanten Zelltyp zu validieren. Wir haben menschliche koronare arterielle Endothelzellen (HCAECs), sind eines der ersten Zelle Arten eine Beleidigung des Cholesterin in die Koronararterie Lumen eine Arteriosklerose-Patienten ausgesetzt werden. Unsere Daten, dargestellt in Abbildung 2C zeigt, dass diese LDL Zustrom Methode auch mit HCAECs effektiv funktioniert. Das resultierende Diagramm ist eine sigmoid-ähnliche Kurve ähnlich dem von HepG2-Zellen.
Um die Gültigkeit und die Empfindlichkeit des verbesserten LDL Zustrom Assays für das screening von Verbindungen beeinflussen LDL-Cholesterin-Aufnahme zu testen, haben wir drei Steuerelemente, LDL Aufnahme-senkende Mittel Dynasore und rPCSK9 und LDL Zustrom Aktivator Simvastatin. Hier behandelt wir die oben genannten Zelllinien (HepG2, HK2 und HCAECs) mit optimierten Konzentrationen von Dynasore oder rPCSK9 vor dem Zustrom-Assay. Unsere Resultate zeigten, dass alle drei getesteten Zelllinien auf die Behandlungen mit signifikante Reduzierung des LDL Zustrom über einen 4-Stunden-Kurs (Abbildung 2 reagierte). Zum Beispiel bei 4,33 h als der endgültige Zeitpunkt, Behandlung mit Dynasore bei 40 µM deutlich reduziert LDL Zustrom in HepG2-Zellen, HK2 Zellen und HCAECs um 53 %, 68 % bzw. 54 %, bzw. (p < 0,0001; Abbildung 2 A-C und Tabelle 2A-C). Darüber hinaus verursacht rPCSK9 bei 10 µg/mL eine deutliche Reduktion von 55 % im LDL Zustrom in HK2 Zellen (p < 0,0001; Abbildung 2 B und Tabelle 2 b). Darüber hinaus zeigten unsere Ergebnisse, dass die Behandlung von HepG2-Zellen mit Simvastatin führte zu einer deutlichen Zunahme LDL-Aufnahme (Abbildung 3), unterstützen die Empfindlichkeit dieser Methode, wesentliche Veränderungen in der LDL-Zustrom zu erkennen. Studien zur Behandlung mit rPCSK9 in HepG2 und HCAEC Zellen sind in diesem Protokoll nicht berücksichtigt, da rPCSK9 als zusätzliche Kontrollbehandlung mit gut dokumentierten Ergebnissen dient, aber teuer ist, in kleinen Mengen zu kaufen. Deshalb war rPCSK9 nur verwendet, um dieses Protokoll in HK2 Zellen zu validieren.
Live Cell imaging-Analyse, sowie die funktionale und zeitnahe Messung von LDL Zustrom, zugelassen für eine kontinuierliche Überwachung der Gesundheit und der Morphologie der Zellen. Dieser Vorteil kann effizient mögliche Zytotoxizität der angewandten Verbindungen, so dass diese Methode eine ideale Technik für die Überwachung gleichzeitig pharmakologische Aktivität und Zytotoxizität erkennen. Zahlen 5 bis 7 repräsentative Bilder der drei getesteten Zelllinien an den finalen Endpunkt (4,33 h) als visuelle Referenz für den Effekt der Behandlungen auf Netto LDL Zustrom zu veranschaulichen und zeigt auch die gesunde Morphologie der Zellen nach der getesteten Behandlungen. Wir empfehlen Sichtprüfung aller Bilder aus jedem Brunnen um die heathy Morphologie der Zellen für die Dauer der Studie zu gewährleisten. Zum Beispiel in Daten nicht angezeigt, wenn Bilder von HepG2-Zellen mit 80 μM behandelt Dynasore geprüft wurden, beobachteten wir Hinweise auf Zelle ablösen, wie die Zellränder erschien die Platte abheben, was auf Zelle Ablösung bei höheren Konzentrationen von Dynasore. Darüber hinaus induzierte hohe Konzentrationen von Simvastatin (3 – 10 μM) führte auch zu veränderten Morphologie zeigt Apoptose wie für hohe Dosierungen von Statinen45berichtet. Dieses Protokoll wurde verwendet, um eine Titrierung der Dynasore Behandlung bei 20-80 μM und Simvastatin bei 0,5-10 μM Konzentration, woraufhin die Zelle Bilder verwendet wurden, um die Gesundheit der Zellen zu analysieren und ermitteln potenzielle Ctotoxicity der Behandlungen im durchführen verschiedenen Konzentrationen. Ergebnisse vorgeschlagen, die Verwendung von 40 μM für Dyansore und 1 μM für Simvastatin als optimalen Konzentrationen.
Zu guter Letzt empfehlen wir eine Zelle Dichte Titration Studie durchführen, wenn eine andere Zell-Linie mit dieser Methode untersucht werden, Ermittlung der optimalen Zellzahl pro Bohrloch um konsistente Ergebnisse zu erhalten soll. Unsere Zelle Dichte Optimierungsstudie zeigte, dass 10.000 Zellen/Brunnen in einer 24-Well-Platte zu konsequenten LDL Zustrom Ergebnissen für HK2 und HCAE Zellen führen. Es ist wichtig zu beachten, dass für diese LDL Zustrom Assay mit live Cell imaging-System, eine Monolage von nicht-Zusammenfluss Zellen verteilt sich gleichmäßig auf die Brunnen wünschenswert ist, wie Klumpen von Zellen zu Fehlern in der normalisierten LDL Zustrom Endwerte führen können. Der Grund dafür ist, dass für die Normalisierung der Zustrom Daten, der Objektbereich Phase als Maß für die Zelldichte dient und dieser Parameter kann beeinträchtigt werden, wenn Zelle Klumpen gebildet werden. Wir beobachteten, dass HepG2-Zellen eine Tendenz zu Form Klumpen haben wenn bei dichten höher als 5.000 Zellen/Brunnen verursacht inkonsistente Zustrom Ergebnisse ausgesät; Daher haben wir 5.000 Zellen pro Bohrloch in einer 24-Well-Platte als optimale Dichte für HepG2-Zellen.
Gemeinsam, bietet unsere Methode eine mittlere-hohe Durchsatz-Plattform für das screening der pharmakologischen Aktivität und Zytotoxizität von Verbindungen gleichzeitig LDL Zustrom regulieren. Diese Methode kann für die Verwendung mit anderen Fluoreszent-markierten Liganden leicht angepasst werden, die das lysosomale Fach um Liganden Aufnahme in Echtzeit auswerten eingeben. Während dieses Protokoll bietet Spezifikationen für InCucyte live imaging und Analysesystem, das Protokoll für alternative bildgebende Systeme wie Cellomics angepasst werden kann.

Die LDL Low Density Lipoprotein Rezeptor LDLR-vermittelte Endozytose ist ein wichtiger Bereich der Studie, da zirkulierende LDL-Cholesterinspiegel das Herzstück des Herz-Kreislauf-Krankheit1, Niere-Krankheit2 , sowie eine Vielzahl von entzündlichen sind transport von Krankheiten3 und genetische Erkrankungen mit Mutationen in Cholesterin Gene4,5,6,7. Studien in LDLR-vermittelten Cholesterin Zustrom führten zur Identifizierung von mehrere Recherche-Tools, wie z. B. Dynamin-Inhibitoren sowie die chemische Dynasore8,9,10, LDL-Regulierung Proteine wie Proprotein Konvertase Subtilisin/Kexin Typ 9 (PCSK9)11,12.
Der LDL-LDLR-Endozytose-Weg beginnt mit den LDL-LDLR-Komplex auf der Zelloberfläche in Clathrin-coated Pits13Sequestrierung. Bläschen werden dann durch Einstülpung der Zellmembran Oberfläche Verinnerlichung des LDL-LDLR-Komplexes in Vakuolen für den Transport innerhalb der Zelle gebildet. Die gebildeten Vesikel in frühe und dann späte Endosomen reift, sinkt der pH-Wert innerhalb der späten Endosom, Distanzierung von der LDL von seinen Rezeptor14verursacht. In der Vergangenheit hing die Methoden zur Quantifizierung von LDL Zustrom von Radio-Label 125-LDL Co Inkubation mit Zellen und anschließende Extraktion des radioaktiv markierten Proteins aus Zellen zur Quantifizierung15. Dies wurde dann durch die Verwendung von Eindringmittel gekennzeichneten LDL-Proteine wie DiI-LDL und anschließende Immunostaining oder Extraktion des Proteins für fluoreszierende Lesungen mit einem Spektralphotometer oder Platte Leser15,16ersetzt. Eindringmittel gekennzeichnet wurde LDL auch in Fluoreszenz-aktivierte Zelle sortieren (FACS) für die Analyse der Internalisierung der LDL und Zelle Oberfläche LDL Bindung17eingesetzt. Während diese Methoden für die Erfassung von Daten nach der Behandlung ermöglichen, ist die Überwachung der Lebensfähigkeit der Zellen während der Behandlung nicht möglich.
Der saure pH-Wert in der späten Endosom ermöglicht den Einsatz einer pH aktiviert fluoreszierende LDL-Sonde wie pHrodo rot-LDL, die nach Internalisierung18,19fluoresziert. Diese Eigenschaft ermöglicht einen kontinuierlichen zeitlichen Verlauf der LDL-Aufnahme-Bewertung in lebenden Zellen. Daher nutzt dieses Protokoll pHrodo rot-LDL-Fluoreszenz-Bildgebung in live Zellanalyse, seriell Maßnahme LDL Aufnahme mit gleichzeitiger Überwachung für die Zellgesundheit. Die Ergebnisse zeigen die Zuverlässigkeit dieser neuartigen Technik wie über einen vier-Stunden-Kurs in drei verschiedenen humanen Zelllinien, menschlichen hepatischen Karzinomzellen (HepG2), menschlichen Nieren (HK2) Epithelzellen und menschlichen koronare arterielle Endothelzellen (HCAEC getestet ). Diese Zelllinien sind klinisch signifikanter LDL Abstand20,21,22,23,24,25,26,27 , Niere Krankheit28,29,30,31, und Herz-Kreislauferkrankungen32,33, beziehungsweise. Dieses Protokoll beinhaltet zusätzlich zur Überwachung des LDL-Zustroms, Behandlung mit zwei bekannten LDL-Aufnahme-Hemmer, Dynasore Hydrat und rekombinanten Proteins PCSK9 sowie ein statin Induktor von LDLR Ausdruck und LDL-Aufnahme, Simvastatin. Dynasore und rekombinante PCSK9 jedes arbeiten über verschiedene Wege zur Verringerung der LDL-Aufnahme.
Dynasore ist ein kleines Molekül-Hemmer von Dynamins10 und senkt LDL-Aufnahme blockieren Clathrin-abhängige Endozytose von LDL-LDLR Komplex10,34. Rekombinante PCSK9 ist auf der anderen Seite Mitglied Peptidase S8-Familie, die LDLR bindet und hemmt das recycling an die Zelloberfläche nach der Veröffentlichung von LDL aus dem verinnerlichten Komplex durch die Blockierung erforderlich Konformationsänderungen35,36 . Verminderte Oberfläche LDLR Zelldichte führt schließlich zum reduzierten LDL-Aufnahme von der Zelle. Statine, sind beim direkt Blocken der 3-hydroxy-3-Methylglutaryl-Coenzym (HMG-CoA)-Reduktase Enzym und damit die Cholesterin-Biosynthese, auch Upregulate den Ausdruck des LDLR25,38 führt zu erhöhte LDL-Aufnahme bekannt. Die Empfindlichkeit dieses Protokolls wird überprüft, indem er erkennt erhebliche Reduzierungen in LDL Zustrom in drei klinisch relevante humanen Zelllinien, HK2, HepG2 und HCAECs, durch Dynasore und/oder rekombinante PCSK9, und eine deutliche Zunahme der LDL-Aufnahme in HepG2-Zellen durch Simvastatin in einem vier-Stunden-Kurs mit Überwachung für Zelle Morphologie/Gesundheit. Zusammen genommen bietet diese Methode eine mittlere-hohe Durchsatz-Plattform für das screening gleichzeitig die pharmakologische Aktivität und Zytotoxizität von Verbindungen, die Regulierung der LDL-Aufnahme in lebenden Zellen.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:761px;" width="760">
	<tbody>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:281px;">pHrodo Red-LDL</td>
			<td style="width:208px;">ThermoFisher Scientific</td>
			<td style="width:149px;">L34356</td>
			<td style="width:123px;"></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">HepG2 cells</td>
			<td>E. Thomas Lab, U. Miami</td>
			<td>HB-8065</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">MEM</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>M0325</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">Sodium Pyruvate</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>P5280</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">L-Glutamine 200mM solution</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>G7513</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">FBS</td>
			<td>Atlas Biologicals</td>
			<td>FP-0500-A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">HK2 cells</td>
			<td>ATCC</td>
			<td>CRL-2190</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">Keratinocyte SFM media kit</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>17005-042</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">Primary Coronary Artery Endothelial Cells</td>
			<td>ATCC</td>
			<td>PCS-100-020</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">Vascular Cell Basal Medium</td>
			<td>ATCC</td>
			<td>PCS-100-030</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">Endothelial Cell Growth Kit-VEGF</td>
			<td>ATCC</td>
			<td>PCS-100-041</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">Human Lipoprotein Deficient Serum</td>
			<td>Millipore</td>
			<td>LP4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">PBS</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>D8537</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">Trypsin-EDTA (0.25%)</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>25200056</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">Trypsin-EDTA (0.05%)</td>
			<td>Gemini Bio-Products</td>
			<td>400-150</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">Trypsin Neutralizing Solution</td>
			<td>ATCC</td>
			<td>PCS-999-004</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">24 well plate</td>
			<td>Falcon</td>
			<td>353226</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">40 &#956;M mesh cell strainer</td>
			<td>VWR</td>
			<td>10199-654</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">15 mL conical tubes</td>
			<td>VWR</td>
			<td>89039-666</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">50 mL conical tubes</td>
			<td>VWR</td>
			<td>89039-658</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">Trypan Blue Staining (0.4%)</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>T10282</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="25">
			<td height="25" style="height:25px;">Counting Slides</td>
			<td>Bio-Rad</td>
			<td>145-0011</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">Incucyte Zoom</td>
			<td>Sartorius</td>
			<td>Zoom</td>
			<td>Imaging and analysis platform</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;">Dynasore Hydrate</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>D7693</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="33">
			<td height="33" style="height:33px;">PCSK9 Recombinant Protein</td>
			<td>Cayman Chemicals</td>
			<td>20631</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

ldl cholesterol uptake assay using live cell imaging analysis with cell health monitoring

Die Verordnung der LDL-Cholesterin-Aufnahme durch LDLR-vermittelte Endozytose ist ein wichtiger Bereich der Studie in verschiedenen wichtigen Krankheiten einschließlich Stoffwechselstörung, kardiovaskulären Erkrankungen und Nierenerkrankungen. Derzeit gibt es keine Methode, LDL-Aufnahme zu bewerten, während gleichzeitig Überwachung für die Gesundheit der Zellen. Die aktuelle Studie zeigt ein Protokoll, mit einer live Cell imaging Analysesystem auf Reihenmessungen LDL Zustrom mit gleichzeitiger Überwachung für Zellgesundheit erwerben. Diese neuartige Technik wird über einen vier-Stunden-Kurs in drei humanen Zelllinien (hepatische, renale tubuläre Epithelzellen und koronaren Arterie Endothelzellen) getestet. Darüber hinaus wird die Empfindlichkeit dieser Technik mit bekannten LDL-Aufnahme-Hemmer, Dynasore und rekombinante Protein PCSK9 sowie durch eine LDL-Aufnahme-Promotor, Simvastatin validiert. Zusammen genommen bietet diese Methode eine mittlere-hohe Durchsatz-Plattform für gleichzeitig screening pharmakologische Aktivität sowie die Überwachung der Zellmorphologie, also Zytotoxizität von Verbindungen, die Regulierung von LDL Zustrom. Die Analyse kann mit verschiedenen bildgebenden Systemen und Analyse-Software verwendet werden.

Live Cell Imaging ermöglicht zuverlässige Überwachung der Zellgesundheit während Cholesterin Zustrom Studien in drei humanen Zelllinien Wir validiert unsere Assay in drei humanen Zelllinien, welche Cholesterin Homöostase Verordnung eine wichtige pathophysiologische Rolle spielt, einschließlich der menschlichen Leber (HepG2) Karzinomzellen, menschlichen Nieren (HK2) Epithelzellen und menschlichen koronaren Endothelzellen (HCAECs). Wir haben ein live Cell imaging Systems den LDL-Aufnahme-Test in einem 4 h Zeit Kurs mit Reihenmessungen in 1 h Abständen durchführen. Unsere Ergebnisse deuten darauf hin, dass alle Zelltypen, die getestet mit dieser neuen Technik und Ergebnis in Kurven wurden, die kontinuierliche LDL-Aufnahme für die Dauer der Zustrom Studie mit 4,33 h als den finalen Endpunkt (Abbildung 2) kompatibel. Der Zustrom in Abbildung 2 gezeigt wurden Daten durch die Normalisierung der gesamten pHrodo rot-markierten LDL Fluoreszenz (total rotes Objekt integriert Intensität pro Bild in RCU x µm2/Bild) zum Bereich Ergebniszelle in jedem Bild von jedem Bohrloch (Phase Objektbereich pro Bild in µ m2StraßenrandVerkaufsförderung), die Variabilität in der Zelldichte über den Brunnen zu beseitigen. Darüber hinaus um die Empfindlichkeit des LDL Zustrom Assays für die Zwecke der screening-Verbindungen beeinträchtigen LDL-Cholesterin-Aufnahme zu überprüfen, haben wir zwei Positivkontrollen bekannt, LDL Zustrom, Dynasore und rPCSK9 zu hemmen und eine Positivkontrolle induzieren LDL bekannt Aufnahme, Simvastatin. Durch unsere Ergebnisse nach der Behandlung mit Dynasore und rPCSK9, überprüft getestet alle drei humanen Zelllinien (HepG2, HK2 und HCAEC) zeigten signifikante Reduktion in LDL Zustrom über ein 4 h zeitlicher Verlauf (Abbildung 2A-C). Abbildung 2A zeigt beispielsweise, dass der LDL-Zustrom in HepG2-Zellen mit der Behandlung von Dynasore Laufe der Zeit, im Vergleich zu den Zellen behandelt mit DMSO reduziert wird; während die DMSO als der Fahrzeugsteuerung für Dynasore Kontrolle keinen signifikanten Einfluss auf LDL Zustrom im Vergleich zu den unbehandelten Kontrollgruppe hatte. Darüber hinaus unsere Ergebnisse zeigten einen deutlichen Anstieg in LDL-Aufnahme durch HepG2-Zellen nach der Behandlung mit Simvastatin (Abbildung 3), unterstützen die Empfindlichkeit dieser Methode, wesentliche Veränderungen in der LDL-Zustrom zu erkennen. Am Drehpunkt der 4,5 h Zeit, die eine typische Zeitpunkt in LDL-Aufnahme-Studien, ist der LDL-Zustrom deutlich reduziert mit entweder Dynasore oder rPCSK9 Behandlung, und erhöht durch Simvastatin-Behandlung (Abbildung 4).
Ein großer Vorteil bei der Verwendung von live Cell imaging für LDL-Aufnahme-Studien ist, dass dieses System Echtzeit-Bilder der Zellen in jedem Bohrloch, das verwendet werden könnte bietet, um potenzielle Zytotoxizität der untersuchten Verbindungen überwachen. Abbildungen 5 bis 7 zeigen repräsentative Bilder der drei Zelllinien als visuelle Referenz für den net LDL-Zustrom in die Anfangszeit (0,33 h) und letzten Endpunkt (4,33 h) untersucht. Die Bilder bestätigen die normale Morphologie der Zellen nach Dynasore oder rPCSK9 Behandlungen, Wirksamkeit und Sicherheit dieser Verbindungen anzeigt.
Live Cell Analyse gibt zuverlässige serielle Quantitative Cholesterin Zustrom Messungen mit verschiedenen Behandlungen
Ein großer Vorteil der Verwendung dieses Protokolls mit einem live Cell imaging-System ist die Fähigkeit, Daten im Laufe der Zeit sammeln und LDL Zustrom an mehreren Zeitpunkten anstatt nur ein letztes Mal Punkt so traditionell zu vergleichen. Dieses Protokoll können wir die prozentuale Ausstiegsversuch LDL Zustrom am terminal Zeitpunkt sowie in 1 h Abständen im Laufe der Zeit zu berechnen. Tabelle 2 fasst die Verringerung der LDL-Zustrom in drei getesteten humanen Zelllinien, die nach 10 min vor der Behandlung mit 40 µM Dynasore oder 1 h vor der Behandlung mit 10 µg/mL rPCSK9. Bei 4,33 h als Endpunkt der letzten Studie Behandlung mit Dynasore bei 40 µM deutlich reduziert LDL Zustrom in HepG2-Zellen, HK2 Zellen und HCAECs um 53 %, 68 % bzw. 54 %, bzw. (Tabelle 2A-C) und Behandlung mit rPCSK9 bei 10 µg/mL führte zu 55 % Verringerung der LDL Zustrom in HK2 Zellen (Tabelle 2 b). Neben der Quantifizierung des terminal Zeitpunkt wie bei herkömmlichen Tests, sind wir in der Lage, eine Quantitative Analyse bei der Reduktion von LDL Zustrom durch Behandlung zu jedem Zeitpunkt des Experiments. Tabelle 2 b zeigt beispielsweise, dass die Behandlung mit rPCSK9 in HK2 Zellen eine Verringerung der LDL-Aufnahme von 79 % auf 1,33 h, 67 % bei 2,33 h führte, 59 % bei 3,33 h Behandlung im Vergleich zu unbehandelten Zellen post. Dieses Protokoll bietet eine zuverlässige Methode zur quantitativen Analyse der LDL-Zustrom nach der Behandlung.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58564/58564fig1.jpg"> Abbildung 1 : Definition Maske Verarbeitung. Repräsentative Bilder von HK2 Zellen sind nach der Anwendung die entsprechende Verarbeitung-Definition (siehe Tabelle 1) dargestellt. AreHK2 Zellen ohne Maskierung (A), mit Phase Maskapplied (B) gezeigt, mit roten Objekt Maske angewendet (C) oder mit Phase und roten Objekt Masken angewendet (D). Maßstabsleiste = 100 µm. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58564/58564fig1large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58564/58564fig2.jpg"> Abbildung 2 : Reduzierung der LDL Aufnahme mit live cell imaging-System über einen zeitlichen Verlauf 4,33 h. Live-Zelle Analyse System verwendet, um LDL Zustrom in menschlichen Leber (HEPG2) Karzinomzellen (A), menschliche renale tubuläre (HK2) Epithelzellen (B) und menschliche Koronararterie (HCAE) Endothelzellen (C) zu messen. Die Zellen wurden mit Dynasore (10 min vor dem Lauf) oder rPCSK9 (1 h vor dem Rennen) als Positivkontrollen behandelt. DMSO diente als Vehikel für Dynasore Behandlungen. Positivkontrollen verringerte sich deutlich die LDL-Zustrom in allen 3 Zelllinien. LDL-Zustrom-Werte wurden durch die Normalisierung der roten Gesamtobjekt integriert Intensität (RCUxµm2StraßenrandVerkaufsförderung) zu den gesamten Phase Objektbereich (µm2StraßenrandVerkaufsförderung) erhalten. Daten sind Mean±SEM. N = 6 Wells/Gruppe. Daten sind repräsentativ für 2 oder 3 unabhängigen Experimenten. p < 0,0001 Vs leer, und ###p < 0,0001 Vs DMSO, mit zwei-Wege-ANOVA. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58564/58564fig2large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58564/58564fig3.jpg"> Abbildung 3 . Zunahme der LDL-Aufnahme mit live Cell imaging-System über einen zeitlichen Verlauf 4,33 h. Live-Zelle Analyse System verwendet, um LDL Zustrom in menschlichen hepatischen Karzinomzellen (HEPG2) zu messen. LDL-Aufnahme wird deutlich erhöht, nach der Behandlung mit Simvastatin für 12 h (A), 18 h (B) oder 24 h (C) Verwendung von Medien mit 2 % FBS. Der 24 h-Zeitpunkt erfolgte auch mit Medien, die 5 % LPDS (ohne FBS). DMSO diente als Negativkontrolle. LDL-Zustrom-Werte wurden durch die Normalisierung der roten Gesamtobjekt integriert Intensität (RCU X µm2StraßenrandVerkaufsförderung) zu den gesamten Phase Objektbereich (µm2StraßenrandVerkaufsförderung) erhalten. Daten sind Mean±SEM. N = 6 Wells/Gruppe. Daten sind repräsentativ für eine unabhängige Experiment. p < 0,0001 Vs DMSO, mit der Student t-Test. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58564/58564fig3large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58564/58564fig4.jpg"> Abbildung 4 . Signifikante Reduktion der LDL-Zustrom von LDL Aufnahme-senkende Mittel Zeitpunkt 4,3 h. LDL-Zustrom ist in menschlichen Leber (HepG2) Karzinomzellen (A), menschliche renale tubuläre (HK2) Epithelzellen (B) und menschliche Koronararterie (HCAE) Endothelzellen (C) nach der Behandlung mit LDL-Aufnahme deutlich reduziert. Dynasore Inhibitoren für 10 min oder rPCSK9 für 1 Stunde. LDL-Zustrom wird Simvastatin in HepG2-Zellen nach 12, 18 oder 24 h Behandlungen (D) deutlich gesteigert. Daten sind Mean±SEM. N = 6 Wells/Gruppe. Daten sind repräsentativ für 2 oder 3 unabhängigen Experimenten. mit zwei-Wege-ANOVA p < 0,0001. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58564/58564fig4large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58564/58564fig5.jpg"> Abbildung 5 . Reduziert LDL Zustrom in hepatozellulären Karzinom (HepG2) Zellen durch LDL Aufnahme-senkende Mittel, Dynasore. Repräsentative Bilder des Phase-Objekts und rotes Objekt für HepG2-Zellen werden bei 0,33 h (linken Panels) dargestellt und der 4,33 h Endpunkt (richtigen Platten) zeigen gesunde Status der Zellen. 40 µM Dynasore, Senkung der LDL-Cholesterin-Aufnahme, bekannt als Positivkontrolle (C) verwendet wurde. Bilder wurden bei 10 X Vergrößerung. Maßstabsleiste = 100 µm. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58564/58564fig5large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.</a>
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58564/58564fig6.jpg"> Abbildung 6 . Reduziert LDL Zustrom in menschlichen renale tubuläre (HK2) Epithelzellen von LDL-Aufnahme-senkende Mittel, Dynasore und rPCSK9. Repräsentative Bilder des Phase-Objekts und rotes Objekt für HK2 Zellen dargestellt bei 0,33 h (linken Panels) und den Endpunkt des 4,33 h (richtigen Platten) zeigen gesunde Status der Zellen. 40 µM (C), Dynasore oder 10 µg/mL rPCSK9 (D), bekannt, LDL-Cholesterin-Aufnahme zu reduzieren wurden als Positivkontrolle verwendet. Bilder werden bei 10facher Vergrößerung aufgenommen. Maßstabsleiste = 100 µm. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58564/58564fig6large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.</a>
<img alt="Figure 7" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58564/58564fig7.jpg"> Abbildung 7 . Reduziert LDL Zustrom in menschlichen koronaren Endothelzellen (HCAECs) von LDL Aufnahme-senkende Mittel, Dynasore. Repräsentative Bilder des Phase-Objekts und rotes Objekt für HCAECs dargestellt bei 0,33 h (linken Panels) und den Endpunkt des 4,33 h (richtigen Platten) zeigen gesunde Status der Zellen. 40 µM Dynasore, Senkung der LDL-Cholesterin-Aufnahme, bekannt als Positivkontrolle (C) verwendet wurde. Bilder wurden bei 10 X Vergrößerung. Maßstabsleiste = 100 µm. Daten sind Mean±SEM. N = 6 Wells/Gruppe. Daten sind repräsentativ für 2 oder 3 unabhängigen Experimenten. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58564/58564fig7large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.</a>
<img alt="Table 1" src="/files/ftp_upload/58564/58564table1.jpg"> Tabelle 1: Definition Verarbeitungsparameter. Diese Parameter sind spezifisch für das Analysesystem in diesem Protokoll verwendet. Parameter ist rot im roten Kanal und der Bereich der Zelle in den Kanal Phase analysieren aufzustellen. Parametereinstellungen für HepG2, HK2, werden HCAE-Zell-Linien dargestellt.
<img alt="Table 2" src="/files/ftp_upload/58564/58564table2.jpg"> Tabelle 2: prozentuale Veränderung im LDL Zustrom in HepG2, HK2 und HCAE Zellen mit Dynasore, rPCSK9 oder Simvastatin behandelt um 4,3 h (A) HepG2 (D) HepG2-Zellen, Zellen, (B) HK2 Zellen und (C) HCAE Zellen.

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LDL Cholesterol Uptake Assay Using Live Cell Imaging Analysis with Cell Health Monitoring

Dieses Protokoll bietet einen effizienten Ansatz zur Messung von LDL-Cholesterin-Aufnahme mit Real-Time Zustrom Raten mit einem live Cell imaging-System in verschiedenen Zelltypen. Diese Technik bietet eine Plattform die pharmakologische Aktivität von Verbindungen beeinflussen LDL Zustrom während der Überwachung für Zellmorphologie und damit potenzielle Zytotoxizität auf dem Bildschirm.

LDL-Cholesterin-Aufnahme-Assay mit Live Cell Imaging-Analyse mit Zelle Systemüberwachung

The regulation of LDL cholesterol uptake through LDLR-mediated endocytosis is an important area of study in various major pathologies including metabolic ...

Wir präsentieren eine Methode zur Live-Bildanalyse der LDL-Cholesterinaufnahme in verschiedenen menschlichen Zelltypen. Dies ermöglicht es, auf Verbindungen zu überprüfen, die den Transport von LDL-Cholesterin modifizieren. Der Hauptvorteil der Verwendung von Live-Zell-Bildgebung für Die LDL-Influxquantifizierung ist, dass es die Überwachung der Zellmorphologie während der gesamten Assay-Dauer ermöglicht, so dass potenziell die toxischen Verbindungen nachgewiesen werden können.Zunächst sollten Sie die Medien von den zuvor vorbereiteten Zellen absaugen und die Zellen mit 5 Millilitern der phosphatgepufferten Saline von Dulbecco waschen. Aspirieren Sie die DPDS. Fügen Sie neben dem Lösen der Zellen von der 100-Millimeter-Schale 1,5 Milliliter 0,25%Trypsin-EDTA für die HepG2-Zellen hinzu und fügen Sie 1,5 Milliliter 0,05%Trypsin-EDTA-Lösung für die HK2-Zellen oder die HCAECs hinzu.Die Platten vier Minuten lang bei 37 Grad Celsius bebrüten. Dann neutralisieren Sie das Trypsin, indem Sie 3 Milliliter komplette Medien für die HepG2- und HCAEC-Zellen hinzufügen. Verwenden Sie 3 Milliliter der Trypsin-Neutralisierungslösung, kompromittieren Sie die DPDS mit 5% fetalem Rinderserum oder FBS für die HK2-Zellen.Übertragen Sie die Zellen in 15 Milliliter konische Röhren, dann zentrifugieren Sie die Rohre bei 250g für fünf Minuten. Nach dem Drehen die Medien ansaugen und das Zellpellet in vollständigen Medien wieder aussetzen. Filtern Sie die Zellsuspension sanft durch ein 40-Mikron-Netzsieb, um Zellklumpen aufzubrechen.Zählen Sie die Zellen und verdichten Sie sie in einer optimierten Dichte in einer 24-Well-Platte. Inkubieren Sie die Platte über Nacht bei 37 Grad Celsius, damit sich die Zellen anbringen können. Ändern Sie am nächsten Tag das Zellmedium in das Basismedium ohne FBS für die Zelllinie, plus 5% Lipoprotein-Mangelserum oder 2%FBS-Medien.Verwenden Sie 500 Mikroliter Gesamtmedien pro Brunnen in einer 24-Well-Platte. Dann setzen Sie die Inkubation für 24 Stunden fort, um die Zellen auszuhungern. Zusammen mit dem Hungerschritt oder dem folgenden Tag können Zellen mit gewünschten Verbindungen und geeigneten Kontrollen behandelt werden.24 Stunden nach dem Hungertod 5 Mikroliter pHrodo rot mit LDL beschriftet zu jedem Brunnen mit 500 Mikroliter Medien hinzufügen, um eine Endkonzentration von 10 Mikrogramm pro Milliliter zu erhalten. Entfernen Sie vorsichtig alle Blasen aus den Brunnen. Legen Sie die Platte unmittelbar nach dem Hinzufügen der beschrifteten LDL in den Inkubator des Live-Zellanalysesystems und lassen Sie die Platte 15 Minuten lang ausdemalibrisieren, um die Kondensation in der Platte zu reduzieren.Während die Zellen inkubieren, öffnen Sie die Software und planen Sie den Scan, indem Sie das Gefäß hinzufügen, das die Platte hält. Bild 16 Bilder pro Brunnen, fügen Sie eine Stunde Intervalle bei 10x Vergrößerung für vier Stunden mit dem roten und Phasenkanäle. Erstellen Sie dann eine Plattenkarte, die für die Datenverarbeitung verwendet werden soll, wählen Sie die Registerkarte Eigenschaften aus und wählen Sie die Plattenzuordnung aus.Geben Sie den Zelltyp in die Registerkarte Zellen und die Behandlungen im zusammengesetzten Tippen ein. Klicken Sie dann auf die Registerkarte Regionen, wählen Sie jeden Satz von Replikationen aus und weisen Sie Regionen zu. Sobald ein experimenteller Lauf abgeschlossen ist, erstellen Sie einen Imagesatz in der Software, um den Computer zu trainieren, um jeden Parameter zu quantifizieren, der im Zählsatz enthalten ist.Öffnen Sie in der Software die Plattenansicht, und wählen Sie dann im Feld Analyseauftragsdienstprogramme Erstellen oder Hinzufügen zur Bildsammlung aus. Wählen Sie eine neue Bildsammlung aus, geben Sie einen Namen für die Bildsammlung ein, und wählen Sie die roten Kanäle und Die Phasenkanäle aus, indem Sie die Kontrollkästchen neben den Kanälen aktivieren. Wählen Sie fünf weitere Bilder aus verschiedenen Brunnen und Zeitpunkten aus, und fügen Sie sie der Bildsammlung hinzu, indem Sie sie der aktuellen Bildsammlung hinzufügen.Wählen Sie im Feld Analyseauftragsdienstprogramme eine neue Verarbeitungsdefinition aus, wählen Sie die Bildsammlung aus dem Dropdownmenü aus, geben Sie die Parameter für den Zellentyp ein. Verwenden Sie im Vorschaufeld das Dropdown-Menü, um alle Vorschau anzuzeigen. Aktivieren Sie im Feld Analysemaske die Einmündungsmaske und die felder roten Objektmasken, um den Bereich anzuzeigen, der in der Analyse für die Verarbeitungsdefinition enthalten ist.Führen Sie einen Bildlauf durch die Bildsammlung durch, um sicherzustellen, dass die Zellen und LDL in der Maske enthalten sind. Wählen Sie Datei aus, und speichern Sie die Verarbeitungsdefinition. Öffnen Sie anschließend die Experimentierplattenansicht, um den Satz von Bildern aus dem Versuchslauf zu analysieren.Wählen Sie im Feld Analyseauftragsdienstprogramme neue Analyseauftrag starten aus, und wählen Sie die gespeicherte Verarbeitungsdefinition aus. Benennen Sie den Analyseauftrag, wählen Sie den Zeitbereich für die Analyse aus, und markieren Sie die zu analysierenden experimentellen Bohrungen. Wählen Sie die Starttaste aus.Nachdem der Analyseauftrag abgeschlossen ist, exportieren Sie die Daten, wählen Sie die abgeschlossene Analyse und die Presseansicht aus. Wählen Sie im Menü Dienstprogramme den Metrikdiagrammexport aus. Wählen Sie im Menü "Regionen" alle Brunnen aus, und wählen Sie im Gruppenmenü die Replikationen aus, um den Mittelwert für jeden Satz von Bohrungen als Gruppe zu erhalten.Und für den Export der einzelnen Werte für jeden Brunnen, wählen Sie keine. Wählen Sie im Menü rote Objektmetrik die integrierte Gesamtintensität des roten Objekts aus. Wählen Sie die Schaltfläche Datenexport aus.Überprüfen Sie die Daten in einzelne Bilder aufteilen. Die Daten werden automatisch in eine Zwischenablage kopiert und können in eine neue Tabellenkalkulationsdatei eingefügt werden. Wählen Sie im Menü Phasenobjektmetrik die Konfluence aus, und klicken Sie dann auf die Schaltfläche Datenexport.Überprüfen Sie auf der Registerkarte Eingabeaufforderung, um Daten in einzelne Bilder aufzuteilen. Die Daten werden automatisch in eine Zwischenablage kopiert und können in die Tabellenkalkulationsdatei eingefügt werden, die integrierte Intensitätsdaten für rote Objekte enthält. Nun können die exportierten Daten gemäß den Schritten 4.1.7 und 4.1.8 des Protokolls normalisiert werden, um endgültige LDL-Aufnahmewerte zu erhalten.Nach der Behandlung mit Dynasore oder rekombinantem PCSK9 zeigten alle drei getesteten menschlichen Zelllinien signifikante Reduktionen des LDL-Zuflusses über einen vierstündigen Zeitverlauf. Die LDL-Zuflüsse reduzierten sich bei humanem Leberkarzinom oder HepG2-Zellen, mit Derbehandlung von Dynasore im Laufe des Zeitverlaufs, im Vergleich zu den Zellen, die mit DMSO als Kontrolle behandelt wurden. Die Live-Zell-Bildgebung des LDL-Zuflusses in HepG2-Zellen zu verschiedenen Zeitpunkten zeigte eine Marktzunahme der LDL-Aufnahme nach der Behandlung mit Simvastatin, die die Empfindlichkeit dieser Methode unterstützt, um signifikante Veränderungen im LDL-Zustrom zu erkennen.Echtzeit-Bilder, die am Anfangs- und Endpunkt untersucht wurden, bestätigen die normale Morphologie der Zellen nach dynasore-Behandlung, was auf die Wirksamkeit und Die Sicherheit dieser Verbindung hinweist. Nach dem Hinzufügen weiterer rot beschrifteter LDL zu den Zellen, um seine fluoreszierende Aktivität zu erhalten, ist es wichtig, die Platte vor Licht zu schützen, bis sie in den Inkubator des Live-Zell-Bildgebungssystems gelegt wird. Zellen aus verschiedenen Organen können unterschiedlich auf Behandlungen reagieren, d. h. in entgegengesetzte Richtungen, oder sie können in die gleiche Richtung reagieren, aber unterschiedliche Veränderungsraten in der Cholesterinaufnahme aufweisen.Nur mit der Live-Zell-Bildgebung können solche Unterschiede erkannt und genau quantifiziert werden.

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