Name: development and angiographic use of the rabbit vx2 model for liver cancer
Uploaded: 2019-01-07T14:00:00
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Vorremmo ringraziare il personale veterinario presso la University of Illinois - laboratorio Chicago biologico di risorse.

Il seguente protocollo segue tutti i requisiti e linee guida su mandato della University of Illinois - Chicago. Esso è stato rivisto e approvato dalla locale istituzionale Animal Care e uso comitato prima dell'esecuzione.
1. VX2 lo sviluppo del tumore dell'arto posteriore
<ol><li>Procurarsi le varietà di cellula tumore VX2 dalla nazionale Cancer Institute divisione di cancro trattamento diagnosi e trattamento del tumore/cella linea Repository. Nota: In questo momento, il catalogo di ord...

<ol>
	<li>Rous, P., Beard, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Progression+To+Carcinoma+of+Virus-Induced+Rabbit+Papillomas+(Shope).">The Progression To Carcinoma of Virus-Induced Rabbit Papillomas (Shope).</a> The Journal of Experimental Medicine. 62 (4), 523-548 (1935).</li><li>Kidd, J. G., Rous, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+transplantable+rabbit+carcinoma+originating+in+a+virus-induced+papilloma+and+containing+the+virus+in+masked+or+altered+form.">A transplantable rabbit carcinoma originating in a virus-induced papilloma and containing the virus in masked or altered form.</a> The Journal of Experimental Medicine. 71 (6), 813-838 (1940).</li><li>Galasko, C. S. B., Muckle, D. 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N., Gazelle, G. S., Compton, C. C., Mueller, P. R., McLoud, T. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Radio-frequency+tissue+ablation+of+VX2+tumor+nodules+in+the+rabbit+lung.">Radio-frequency tissue ablation of VX2 tumor nodules in the rabbit lung.</a> Academic Radiology. 3 (11), 929-935 (1996).</li><li>Rhee, T. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rabbit+VX2+Tumors+as+an+Animal+Model+of+Uterine+Fibroids+and+for+Uterine+Artery+Embolization.">Rabbit VX2 Tumors as an Animal Model of Uterine Fibroids and for Uterine Artery Embolization.</a> Journal of Vascular and Interventional Radiology. 18 (3), 411-418 (2007).</li><li>Parvinian, A., Casadaban, L. C., Gaba, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development,+growth,+propagation,+and+angiographic+utilization+of+the+rabbit+VX2+model+of+liver+cancer:+A+pictorial+primer+and+&amp;#34;how+to&amp;#34;+guide.">Development, growth, propagation, and angiographic utilization of the rabbit VX2 model of liver cancer: A pictorial primer and &amp;#34;how to&amp;#34; guide.</a> Diagnostic and Interventional Radiology. 20 (4), 335-340 (2014).</li><li>Xia, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intra-arterial+interleukin-12+gene+delivery+combined+with+chemoembolization:+Anti-tumor+effect+in+a+rabbit+hepatocellular+carcinoma+(HCC)+model.">Intra-arterial interleukin-12 gene delivery combined with chemoembolization: Anti-tumor effect in a rabbit hepatocellular carcinoma (HCC) model.</a> Acta Radiologica. 54 (6), 684-689 (2013).</li><li>Gaba, R. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ethiodized+oil+uptake+does+not+predict+doxorubicin+drug+delivery+after+chemoembolization+in+VX2+liver+tumors.">Ethiodized oil uptake does not predict doxorubicin drug delivery after chemoembolization in VX2 liver tumors.</a> Journal of Vascular and Interventional Radiology. 23 (2), 265-273 (2012).</li><li>Choi, Y. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Novel+Intraarterial+Therapy+for+Liver+Cancer+Using+Ethylbromopyruvate+Dissolved+in+an+Iodized+Oil.">Novel Intraarterial Therapy for Liver Cancer Using Ethylbromopyruvate Dissolved in an Iodized Oil.</a> Academic Radiology. 18 (4), 471-478 (2011).</li><li>Ma, H. L., Xu, Y. F., Qi, X. R., Maitani, Y., Nagai, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Superparamagnetic+iron+oxide+nanoparticles+stabilized+by+alginate:+Pharmacokinetics,+tissue+distribution,+and+applications+in+detecting+liver+cancers.">Superparamagnetic iron oxide nanoparticles stabilized by alginate: Pharmacokinetics, tissue distribution, and applications in detecting liver cancers.</a> International Journal of Pharmaceutics. 354 (1-2), 217-226 (2008).</li><li>Wang, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Liver+tumors:+Monitoring+embolization+in+rabbits+with+VX2+tumors+-Transcatheter+intraarterial+first-pass+perfusion+MR+imaging.">Liver tumors: Monitoring embolization in rabbits with VX2 tumors -Transcatheter intraarterial first-pass perfusion MR imaging.</a> Radiology. 245 (1), 130-139 (2007).</li><li>Bimonte, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Radio-frequency+ablation-based+studies+on+VX2rabbit+models+for+HCC+treatment.">Radio-frequency ablation-based studies on VX2rabbit models for HCC treatment.</a> Infectious Agents and Cancer. 11 (1), (2016).</li><li>Gaba, R., Obeid, M., Khabbaz, R., Garcia, K., Schachtschneider, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Translational+Animal+Models+for+Liver+Cancer.">Translational Animal Models for Liver Cancer.</a> American Journal of Interventional Radiology. 2 (2), 1-8 (2018).</li><li>Kuszyk, B. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Local+tumor+recurrence+following+hepatic+cryoablation:+radiologic-histopathologic+correlation+in+a+rabbit+model.">Local tumor recurrence following hepatic cryoablation: radiologic-histopathologic correlation in a rabbit model.</a> Radiology. 217 (2), 477-486 (2000).</li><li>Geschwind, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chemoembolization+of+Liver+Tumor+in+a+Rabbit+Model+Assessment+of+Tumor+Cell+Death+with+Diffusion-Weighted+MR+Imaging+and+Histologic+Analysis.">Chemoembolization of Liver Tumor in a Rabbit Model Assessment of Tumor Cell Death with Diffusion-Weighted MR Imaging and Histologic Analysis.</a> Journal of Vascular and Interventional Radiology. 11 (10), 1245-1255 (2000).</li><li>Virmani, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+Two+Different+Methods+for+Inoculating+VX2+Tumors+in+Rabbit+Livers+and+Hind+Limbs.">Comparison of Two Different Methods for Inoculating VX2 Tumors in Rabbit Livers and Hind Limbs.</a> Journal of Vascular and Interventional Radiology. 19 (6), 931-936 (2008).</li><li>Seldinger, S. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Catheter+replacement+of+the+needle+in+percutaneous+arteriography:+A+new+technique.">Catheter replacement of the needle in percutaneous arteriography: A new technique.</a> Acta Radiologica. 49 (SUPPL 434), 47-52 (2008).</li><li>Schook, L. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+genetic+porcine+model+of+cancer.">A genetic porcine model of cancer.</a> PLoS One. 10 (7), e0128864 (2015).</li></ol>

Il primo passo fondamentale nella metodologia del tumore VX2 è successo propagazione di un tumore dell'arto posteriore di un coniglio di donatore. Fare riferimento al primo paragrafo nella sezione "Rappresentante risultati" per ulteriori informazioni su questo passaggio.
Il prossimo passo critico consiste nel garantire che la capsula del tumore possibile è correttamente identificata. Non solo questo sarà necessario per la preparazione di sospensioni di tumore, ma è anche importante per la ...

Il modello di tumore VX2 coniglio ha svolto un ruolo in oncologia sperimentale dal suo sviluppo nel 19351,2. Questo tumore è un virus-indotta Anaplastico carcinoma di cellule squamous caratterizzato da hypervascularity, crescita rapida e facile propagazione in muscolo scheletrico3,4. Mentre il modello di tumore di coniglio VX2 è stato utilizzato per indagare una moltitudine di cancri5,6,7,8; il focus di questo lavoro è il cancro del fegato9.
Lo scopo del metodo descritto è quello di presentare un modello per cancro del fegato primario, o il carcinoma epatocellulare (HCC), che può essere utilizzato da radiologi interventisti per ricerca traslazionale. Può essere utilizzato per studi di farmacocinetica, le indagini terapeutiche e metodo ablativo test10,11,12,13,14,15.
Il metodo qui dettagliato dà più vantaggi rispetto ad altri modelli all'interno della stessa sfera come modelli di roditori come i ratti, topi e marmotte o modelli più grandi come primati16. Uno dei principali vantaggi è la crescita tumorale rapida e affidabile che permette ai ricercatori di stabilire una linea di tumore attivo entro un mese prima dell'arto propagazione17. Inoltre, questo tumore ha visibilità ecografica semplice e una periferia hypervascular che consente sia transarterial locoregionale trattamenti e le terapie ablative. Infine e soprattutto, la dimensione del vasculature coniglio consente fattibile e tecnicamente facile utilizzazione di strumentazione vascolare18.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>MethoCult (Methycellulose)</td>
			<td>Stemcell Technologies</td>
			<td>M3134</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>VX2 Cell Line</td>
			<td>NCI</td>
			<td>VX-2</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>5 mL Syringe</td>
			<td>BD</td>
			<td>309646</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>16-Gauge Needle</td>
			<td>BD</td>
			<td>305197</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>22-Gauge Needle</td>
			<td>BD</td>
			<td>305155</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hair Clippers</td>
			<td>Wahl</td>
			<td>41870-0438</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Foam Insulated Box</td>
			<td>Mr. Box Online</td>
			<td>10 x 10 x 4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Acepromazine</td>
			<td>Henry Schein</td>
			<td>003845</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Buprenorphine</td>
			<td>Par</td>
			<td>42023-179-05</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Meloxicam</td>
			<td>Henry Schein</td>
			<td>049755</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alcohol Pads</td>
			<td>Covidien</td>
			<td>5033</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ketamine</td>
			<td>Henry Schein</td>
			<td>056344</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Xylazine</td>
			<td>Akorn</td>
			<td>59399-110-20</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pentobarbital (Fatal-Plus)</td>
			<td>Vortech</td>
			<td>9373</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile Petri Dish</td>
			<td>Thermo Fisher</td>
			<td>172931</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DMEM</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>11965092</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Saline</td>
			<td>Baxter</td>
			<td>2F7124</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>15-Blade</td>
			<td>Steris</td>
			<td>02-050-015</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scalpel Handle x 2</td>
			<td>Steris</td>
			<td>22-2381</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Curved Hemostat</td>
			<td>WPI</td>
			<td>501288</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Atraumatic Forceps</td>
			<td>Sklar</td>
			<td>52-5077</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gauze</td>
			<td>Medline</td>
			<td>NON21430LF</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>11-Blade</td>
			<td>Steris</td>
			<td>02-050-011</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgicel</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>1951</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3-0 PDS / Taper</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>Z305H</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4 - 0 Vicryl / Cutting</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>J392H</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>40 micron strainer</td>
			<td>BD</td>
			<td>352340</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>50 mL conical tube</td>
			<td>Thermo Fisher</td>
			<td>339652</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>plastic pipette</td>
			<td>Thomas Scientific</td>
			<td>HS206371B</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Centrifuge</td>
			<td>Sorvall</td>
			<td>75004240</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1.40mL Tubes (Internal Thread)</td>
			<td>Micronic</td>
			<td>MP32131-Z20</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3-F VSI Micro-HV Introducer Kit</td>
			<td>Vascular Solutions</td>
			<td>Custom Order (P15180391)</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>.018 45-degree angle glidewire</td>
			<td>Terumo</td>
			<td>RG*GA1818SA</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Direxion bern-shape microcatheter</td>
			<td>Boston Scientific</td>
			<td>M001195230</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Omnipaque</td>
			<td>GE</td>
			<td>Y510</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

development and angiographic use of the rabbit vx2 model for liver cancer

Il tumore VX2 coniglio è un modello animale utilizzato comunemente per ricerca traslazionale per quanto riguarda il carcinoma epatocellulare (HCC) nel campo della radiologia interventistica. Questo modello si avvale di un carcinoma di cellule squamous anaplastico che è affidabile e facilmente propagato nel muscolo scheletrico dei conigli di donatore per eventuale impianto di vendemmia e allotrapianto nel fegato di destinatari ingenui. Questo innesto tumore cresce rapidamente all'interno del fegato dei conigli destinatari in un tumore angiograficamente identificabile caratterizzato da un nucleo necrotico circondato da una capsula di hypervascular praticabile. La dimensione fisica dell'anatomia coniglio è sufficiente per facilitare strumentazione vascolare che permette per l'applicazione e la sperimentazione di varie tecniche interventistiche. Nonostante questi vantaggi, esiste una scarsità di risorse tecniche per agire come un riferimento concreto per i ricercatori che lavorano con il modello. Qui, presentiamo un contorno visivo completo per gli aspetti tecnici di sviluppo, crescita, propagazione e angiografico utilizzazione del modello di tumore VX2 coniglio per uso da novizio e ricercatori esperti allo stesso modo.

Quando guardando la Figura 1, è chiaro che il quadricipite del coniglio è ingrandita. Inoltre, i piccoli noduli discreti multipli, in genere correla con la crescita del tumore attraverso la fascia, sono visibili. Alla palpazione, l'arto iniettato dovrebbe apparire che l'arto non iniettato. Se un ricercatore richiede più definitiva certezza della presenza del tumore, l'imaging ad ultrasuoni consente di identificare il tumore incorporato nel muscolo. Se un t...

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Development and Angiographic Use of the Rabbit VX2 Model for Liver Cancer

Sviluppo e uso angiografica del coniglio VX2 modello per cancro del fegato

L'obiettivo di questo articolo è di fornire un primer per lo sviluppo e l'utilizzo del VX2 carcinoma Coniglio modello per cancro del fegato.

The rabbit VX2 tumor is an animal model commonly utilized for translational research regarding hepatocellular carcinoma (HCC) in the field of ...

Questo modello preclinale di tumore al fegato può aiutare a rispondere a domande chiave sulla terapia regionale locale nei campi della radiologia interventistica e dell'oncologia interventistica. Il principale vantaggio di questa tecnica, è che si traduce in un'induzione tumorale affidabile mediante impianto di allografto ortotopico. Per l'implementazione del tumore, prima conferma la mancanza di risposta al riflesso del pedale.Una volta confermato, il soggetto animale viene posto in anestesia. Viene confermato un livello appropriato di anestesia e l'addome viene preparato e drappeggiato sterilemente. Dopo l'anestesia, utilizzare una lama numero 15 per fare un'incisione verticale della pelle da tre a quattro centimetri a metà linea a partire dal processo xifoide.Ritrai la pelle per identificare la linea alba, una fascia bianca riflettente di tessuto che viaggia in modo inferiore lungo la linea mediana. E utilizzare sia la dissezione smussata che acuta per attraversare la linea alba, esponendo il peritoneo, facendo attenzione a non perforare il tessuto intestinale sottostante. Sezionare attentamente attraverso il tessuto della cavità addominale, per localizzare il fegato, usando un emostato per estendere l'incisione della linea mediana da uno a due centimetri in modo inferiore attraverso la pelle, il muscolo e il peritoneo, se necessario.Identificare il lobo sinistro, che è inferolaterale al lobo mediale che si trova nella linea mediana. E posizionare un pezzo secco di garza all'aspetto inferiore dell'incisione per evitare che il fegato si ritrae nell'addome. Posizionare un nuovo pezzo di garza bagnata sul fegato estratto.Selezionare un pezzo di tessuto tumorale da uno a due millimetri cubi, con forcep. E usa una lama numero 11 per forare il tessuto epatico con un angolo di 45 gradi fino a una tasca profonda 0,5 centimetri, facendo attenzione a non penetrare nell'aspetto dorsale della capsula epatica. Sollevare delicatamente la lama ventralmente per creare una piccola tasca nel letto del fegato e posizionare il tumore in tasca.Posizionare un pezzo di agente emostatico sopra la tasca tumorale per promuovere l'emostasi e prevenire l'espulsione del pezzo tumorale. E, dopo aver confermato l'emostasi, riportare il fegato nella cavità addominale. Quindi utilizzare una sutura di polidioxanone a tre zero su un ago cono, in un semplice punto continuo per chiudere la parete addominale.E quattro suture zero di poliglactina 910 su un ago da taglio in un punto continuo e sub-cuticolare per chiudere la pelle. Per confermare un posizionamento tumorale riuscito, palpare il solco femorale nell'inguine e fare un'incisione lineare da due a tre centimetri lungo la scanalatura. Usando la dissezione smussata, individuare e isolare il fascio femorale contenente la vena femorale, l'arteria e il nervo e utilizzare la dissezione smussata per separare l'arteria femorale dal resto delle strutture nel fascio.Isolare l'arteria in cima a una maniglia bisturi e utilizzare la tecnica Seldinger e un kit di introduzione francese per introdurre un ago nel vaso. Inserire un filo guida nell'arteria. E rimuovere l'ago, per far avanzare attentamente le tre fante francesi nella nave.Rimuovere il dilatatore e il filo guida dalla foena per completare l'accesso vascolare. Sotto guida fluoroscopica, inserire il catetere nel tronco celiaco al livello T 12 e far avanzare il catetere nell'arteria epatica sinistra, attraverso le comuni arterie epatiche epatiche. Quando il catetere raggiunge l'arteria epatica sinistra, iniettare agente di contrasto per confermare la presenza di un tumore ipervascolare, che può quindi essere trattato con una terapia intra-arteriosa di scelta.E rimuovere il catetere. Usando tre suture di seta zero, legare l'arteria femorale prossimale e distossatamente al punto di inserimento della foena, facendo attenzione a stringere il nodo prossimale alla foena, in quanto viene ritirato per prevenire il sanguinamento. Quindi utilizzare quattro suture zero poliglactina 910, su un ago da taglio in un punto sottocuticolare per chiudere l'incisione inguine.Da tre a quattro settimane dopo l'impianto, il tumore può essere visualizzato macroscopicamente sul quadricipite sinistro del coniglio. L'uso dell'angiografia e l'iniezione di un agente di contrasto come dimostrato, possono essere utilizzati per confermare una propagazione tumorale di successo dopo il posizionamento. Dopo la necroscopia, un tumore impiantato con successo dovrebbe essere facilmente visibile.Fin dal suo sviluppo, questa tecnica ha spianato la strada ai ricercatori nei campi della radiologia interventistica e dell'oncologia interventistica per esplorare la terapia regionale locale del tumore al fegato in un piccolo modello animale.

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