Name: assaying for inorganic polyphosphate in bacteria
Uploaded: 2019-01-21T15:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Assaying for Inorganic Polyphosphate in Bacteria at JoVE.com

Dette prosjektet ble støttet av University of Alabama i Birmingham instituttet for mikrobiologi oppstart midler og NIH grant R35GM124590 (å MJG) og NIH grant R01AI121364 (til FW).

1. rensende gjær Exopolyphosphatase (ScPPX)
<ol><li>Forandre E. coli protein overuttrykte belastningen BL21(DE3)31 med plasmider pScPPX26 electroporation32 eller kjemisk forandring33.</li>
	<li>Vaksinere 1 L lysogeny kjøttkraft (LB) som inneholder 100 µg mL-1 ampicillin i en 2 L unbaffled bolle med en enkelt koloni av BL21(DE3) som inneholder pScPPX2 og Inkuber overnatting på 37 ° C uten riste, til e...

Protokollen beskrevet her forenkler og akselererer kvantifisering av polypp i forskjellige bakterier, med et vanlig sett med 24 prøver tar ca 1,5 t fullt behandle. Dette tillater rask screening av prøver og analyse av mutant biblioteker og forenkler kinetic eksperimenter måle akkumulering av polypp over tid. Vi har vist at protokollen fungerer effektivt på representanter for tre ulike rekker: proteobacteria, firmicutes, og actinobacteria, som er beryktet for sin elastiske, vanskelig å lyse cellevegger<sup class="xre...

Uorganiske polyphosphate (polypp) er en lineær Research phosphoanhydride knyttet fosfat enheter som finnes i alle domener livet1,2,3. I ulike bakterier er polypp avgjørende for stressrespons, motilitet, biofilm formasjon, celle målesyklus, antibiotikaresistens og virulens4,5,6,7,8 ,9,10,11. Studier av polypp metabolismen i bakterier derfor har potensial til å gi grunnleggende innsikt i evnen av bakterier forårsaker sykdommen og trives i ulike miljøer. I mange tilfeller er imidlertid metodene tilgjengelig for kvantifisere polypp i bakterieceller en begrensende faktor i disse studiene.
Det finnes flere metoder som brukes til å måle polypp nivåer i biologisk materiale. Disse metodene omfatter vanligvis to forskjellige trinn: utpakking polypp og kvantifisere polyP stede i disse ekstrakter. Den gjeldende gull standard metode, utviklet for gjær Saccharomyces cerevisiae med Bru og kolleger12ekstrakter polypp DNA og RNA med fenol og kloroform, etterfulgt av etanol nedbør, behandling med deoxyribonuclease (DNase) og ribonuclease (RNase), og fordøyelsen av resulterende renset polyP med S. cerevisiae polypp-nedverdigende enzymet exopolyphosphatase (ScPPX)13 å gi gratis fosfat, som er deretter kvantifisert ved hjelp av en malakitt grønn-baserte kolorimetrisk analysen. Denne fremgangsmåten er svært kvantitative men arbeidskrevende, begrense antall eksempler som kan behandles i ett enkelt eksperiment, og er ikke optimalisert for bakteriell prøver. Andre har rapportert utpakking polypp fra en rekke celler og vev silica perler ("glassmilk") eller silica membran kolonner6,14,15,16,17, 18. Disse metodene ikke effektivt pakke ut korte kjeden polypp (mindre enn 60 fosfat enheter)12,14,15, men dette er mindre bekymring for bakterier, som er vanligvis antatt å syntetisere primært langkjedede polypp3. Eldre metoder polypp ekstraksjon med sterke syrer19,20 er ikke lenger utbredt, siden polypp er ustabile under Sure forhold12.
Det er også en rekke rapporterte metoder for å kvantifisere polypp. Blant de vanligste er 4, 6-diamidino-2-phenylindole (DAPI), en fluorescerende farge flere vanligvis brukes stain DNA. DAPI-polypp komplekser har forskjellige fluorescens eksitasjon og utslipp maxima enn DAPI-DNA komplekser21,22, men det er betydelige forstyrrelser fra andre cellulære komponenter, inkludert RNA, nukleotider og inositol fosfater12,15,16,23, redusere spesifisitet og følsomhet av polypp målinger med denne metoden. Alternativt polypp og adenosindifosfat (ADP) kan konverteres til adenosin trifosfat (ATP) bruker renset Escherichia coli polypp kinase (PPK) og resulterende ATP kvantifisert bruk luciferase14,17 ,18. Dette gjør påvisning av svært små mengder polypp, men krever to enzymatiske reaksjonen trinn og både luciferin og svært ren ADP, som er dyre reagenser. ScPPX spesielt fordøyer polypp i gratis fosfat6,12,13,24, som kan oppdages ved hjelp av enklere metoder, men ScPPX er hemmet av DNA og RNA12, nødvendiggjør DNase og RNase behandling av polypp inneholder ekstrakter. PPK verken ScPPX er kommersielt tilgjengelige PPK rensing er relativt komplisert25,26.
Polypp i celle lysates eller ekstrakter kan også visualiseres på polyakrylamid gels DAPI negative flekker27,28,29,30, en metode som tillater vurdering av chain lengden, men er lav gjennomstrømming og dårlig kvantitative.
Vi nå rapporterer om en rask, billig, medium gjennomstrømming polypp analysen som tillater rask kvantifisering av polypp nivåer i ulike bakterie-art. Denne metoden starter ved lysing bakterieceller 95 ° c i 4 M guanidine isothiocyanate (GITC)14 for å deaktivere mobilnettet phosphatases, etterfulgt av en silica membran kolonnen utvinning optimalisert for rask behandling av flere eksempler. Den resulterende polypp inneholder ekstrakt er deretter fordøyd med en stor overskudd av ScPPX, eliminerer behovet for DNase og RNase. Vi inkluderer en protokoll for enkel nikkel affinitet rensing av mg mengder ScPPX. Endelig er polypp-avledet gratis fosfat kvantifisert med en enkel, følsom, askorbinsyre-baserte kolorimetrisk analysen24 og normalisert totale mobilnettet protein. Denne metoden strømlinjeformer måling av polypp i bakterielle celler, og vi viser bruken med representant arter av Gram-negative bakterier, Gram-positive bakteriene og mykobakterier.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>E. coli BL21(DE3)</td>
			<td>Millipore Sigma</td>
			<td>69450</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>plasmid pScPPX2</td>
			<td>Addgene</td>
			<td>112877</td>
			<td>available to academic and other non-profit institutions</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>LB broth</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>BP1427-2</td>
			<td>E. coli growth medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ampicillin</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>BP176025</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>isopropyl &#946;-D-1-thiogalactopyranoside (IPTG)</td>
			<td>Gold Biotechnology</td>
			<td>I2481C</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HEPES buffer</td>
			<td>Gold Biotechnology</td>
			<td>H-400-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>potassium hydroxide (KOH)</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>P250500</td>
			<td>for adjusting the pH of HEPES-buffered solutions</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>sodium chloride (NaCl)</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>S27110</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>imidazole</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>O3196500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>lysozyme</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>AAJ6070106</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>magnesium chloride (MgCl2)</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>BP214-500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pierce Universal Nuclease</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>PI88700</td>
			<td>Benzonase (Sigma-Aldrich cat. # E1014) is an acceptable substitute</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Model 120 Sonic Dismembrator</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>FB-120</td>
			<td>other cell lysis methods (e.g. French Press) can also be effective</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>5 mL HiTrap chelating HP column</td>
			<td>GE Life Sciences</td>
			<td>17040901</td>
			<td>any nickel-affinity chromatography column or resin could be substituted</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>nickel(II) sulfate hexahydrate</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>AC415611000</td>
			<td>for charging HiTrap column</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>0.8 &#181;m pore size cellulose acetate syringe filters</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>09-302-168</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bradford reagent</td>
			<td>Bio-Rad</td>
			<td>5000205</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tris buffer</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>BP1525</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Spectrum&#160;Spectra/Por 4 RC Dialysis Membrane Tubing 12,000 to 14,000 Dalton MWCO</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>08-667B</td>
			<td>other dialysis membranes with MWCO &#60; 30,000 Da should also work</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>hydrochloric acid (HCl)</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>A144-212</td>
			<td>for adjusting the pH of Tris-buffered solutions</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>potassium chloride (KCl)</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>P217500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>glycerol</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>BP2294</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10x MOPS medium mixture</td>
			<td>Teknova</td>
			<td>M2101</td>
			<td>E. coli growth medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>glucose</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>D161</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>monobasic potassium phosphate (KH2PO4)</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>BP362-500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>dibasic potassium phosphate (K2HPO4)</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>BP363-500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>dehydrated yeast extract</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>DF0886-17-0</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>tryptone</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>BP1421-500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>magnesium sulfate heptahydrate</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>M63-50</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>manganese sulfate monohydrate</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>M113-500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>guanidine isothiocyanate</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>BP221-250</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>bovine serum albumin (protease-free)</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>BP9703100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>clear flat bottom 96-well plates</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>M0812-100EA</td>
			<td>any clear 96-well plate will work</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tecan M1000 Infinite plate reader</td>
			<td>Tecan, Inc.</td>
			<td>not applicable</td>
			<td>any plate reader capable of measuring absorbance at 595 and 882 nm will work</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ethanol</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>04-355-451</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>silica membrane spin columns</td>
			<td>Epoch Life Science</td>
			<td>1910-050/250</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA)</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>BP120500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1.5 mL microfuge tubes</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>NC9580154</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ammonium acetate</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>A637-500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>antimony potassium tartrate</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>AAA1088922</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4 N sulfuric acid (H2SO4)</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>SA818-500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ammonium heptamolybdate</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>AAA1376630</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ascorbic acid</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>AC401471000</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

assaying for inorganic polyphosphate in bacteria

Uorganiske polyphosphate (polypp) er en biologisk polymer i celler fra alle livsområder og kreves for virulens og stressrespons i mange bakterier. Det finnes en rekke metoder for å kvantifisere polypp i biologisk materiale, hvorav mange er arbeidskrevende eller ufølsomme, begrenser deres nytten. Vi presenterer her en strømlinjeformet metode for polypp kvantifisering i bakterier, bruker en silica membran kolonnen utvinning optimalisert for rask behandling av flere eksempler, fordøyelsen av polypp med polypp-spesifikke exopolyphosphatase ScPPX og oppdagelsen av den resulterende gratis fosfat med en følsom askorbinsyre-baserte kolorimetrisk analysen. Denne fremgangsmåten er enkel, billig, og gir pålitelig polypp kvantifisering i ulike bakterie-art. Vi presenterer representant polypp kvantifisering Gram-negative bakterien (Escherichia coli), Gram-positive melkesyre bakterien (Lactobacillus reuteri) og den mycobacterial arten (Mycobacterium smegmatis). Vi har også en enkel protokoll for nikkel affinitet rensing av mg mengder ScPPX, som er ikke kommersielt tilgjengelig.

De viktigste trinnene av protokollen er diagrammed i forenklet form i figur 1.
For å demonstrere bruk av denne protokollen med Gram-negative bakterier, vill-type E. coli var MG165539 vokst til midten av Logg fase i LB rik medium på 37 ° C med skjelvende (200 rpm), deretter skylles og ruges i en ekstra 2 timer morpholinopropanesulfonate-bufret (MOPPER) minimal midd...

Watch this Scientific Journal Video about Assaying for Inorganic Polyphosphate in Bacteria at JoVE.com

Assaying for Inorganic Polyphosphate in Bacteria

Vi beskriver en enkel metode for rask kvantifisering av uorganiske polyphosphate i forskjellige bakterier, inkludert Gram-negative Gram-positive og mycobacterial art.

Assaying for uorganiske Polyphosphate i bakterier

Inorganic polyphosphate (polyP) is a biological polymer found in cells from all domains of life, and is required for virulence and stress response in many ...

Uorganisk polyfosfat er et sentralt element i bakteriell stressrespons. Men eldre metoder for å trekke ut og måle polyP i bakterier er komplekse og arbeidsintensive. Den største fordelen med denne teknikken er at den tillater rask, følsom og billig kvantifisering av polyP-nivåer i en rekke forskjellige bakterielle arter.Prosedyren vil bli demonstrert av Arya Pokhrel, en lavere student fra laboratoriet mitt. Til å begynne med, vokse lactobacillus reuteri bakterier i malic enzym induksjon medium uten cystin på 37 grader celsius over natten uten risting. Sentrifuge en milliliter av denne overnattingskulturen i et 1,5 milliliter mikrocentrifugerør for å høste nok celler til å gi totalt 50 til 100 mikrogram cellulært protein.Fjern supernatanten helt fra cellepelleten, og legg deretter til 250 mikroliter GITC lysisbuffer og gjenoppliving ved vortexing. Inkuber ved 95 grader celsius i 10 minutter for å lyse cellene. Oppbevar lysatet ved 80 grader celsius.Først klargjør du BSA-standarder som inneholder null, 1, 2 og 4 milligram per milliliter BSA i GITC lysisbuffer. Aliquot fem mikroliter av tinte, godt blandede cellelylater og fem mikroliter av BSA standarder for å skille brønner i en klar 96 brønnplate. Tilsett 195 mikroliter Bradford reagens til hver brønn og måle absorbans ved 595 nanometer i en plateleser.Beregn mengden protein i hver brønn i forhold til BSA standardkurve som beskrevet i manuskriptet. For å bestemme den totale mengden protein i hver prøve, multiplisere den resulterende verdien med 05. For å starte polyfosfatekstraksjon, tilsett 250 mikroliter med 95% etanol til hver GITC-lysed prøve, og vortex å blande.Pipette denne blandingen til en silika membran spinn kolonne plassert i en 1,5 milliliter sentrifuge rør. Sentrifuge ved 16, 100 g i 30 sekunder. Kast strømmen gjennom og tilsett 750 mikroliter av tris-hydroklorid, natriumklorid, EDTA og etanolblanding.Sentrifuge ved 16, 100 gs i 30 sekunder. Kast strømmen gjennom og sentrifuger spin-kolonnen ved 16, 100 gs i to minutter. Plasser kolonnen i et rent 1,5 milliliter mikrofugerør.Tilsett 150 mikroliter på 50 millimolar pH åtte tris-hydroklorid, og inkuber ved romtemperatur i fem minutter. Elute polyP ved sentrifugering ved 8. Start med å forberede standarder som inneholder null, fem, 50 eller 200 mikromosumfosfat i 50 millimolar pH åtte tris-hydroklorid.Aliquot 100 mikroliter av hver fosfatstandard og 100 mikroliter ekstrahert polyP-prøver i separate brønner av en klar 96 brønnplate. Forbered en masterblanding som inneholder, per prøve, 30 mikroliter 5X ScPPX reaksjonsbuffer, 19 mikroliter vann og en mikroliter renset ScPPX. Tilsett 50 mikroliter av masterblandingen til hver brønn av 96-brønnplaten.Og inkuber i 15 minutter ved 37 grader celsius. På registreringsdagen kan du lage en ny arbeidslager av deteksjonsløsning ved å blande ved 9,12 milliliter deteksjonsløsningsbase med 88 milliliter av en molaraskorbinsyre, og la den komme til romtemperatur før bruk. Tilsett 50 mikroliter deteksjonsløsning til hver prøve og standarder i 96-brønnplaten.For å tillate fargeutvikling, inkuber platen ved romtemperatur i ca. to minutter. Bruk en plateleser til å måle absorbans ved 882 nanometer og beregne fosfatkonsentrasjonen av hver prøve i forhold til kaliumfosfatstandardkurven. Deretter konvertere fosfatkonsentrasjonene til nanomoler av polyP avledet fosfat i hver cellelysat og normalisere cellulært polyP-innhold til totalt cellulært protein, som beskrevet i manuskriptet.Wild-type E.coli, en gram-negativ bakterie, dyrket i LB produsert ingen polyP. Men når dyrket i MOPS, produsert ca 192 nanomol polyP per mg av totalt protein. En E.coli delta ppk mutant, som mangler polyP kinase, produsert ingen polyP i begge medier.En delta ppx mutant, som mangler eksopolyfosfatase, produsert omtrent samme mengde polyP som vill-type. Og deltaet phoB mutant, som er defekt i fosfattransport, produserte betydelig mindre polyP enn villtypen. Wild-type L.reuteri, en gram-positiv bakterie dyrket over natten i MEIC medium akkumulert ca 51 nanomol polyP per mg av totalt protein.En L.reuteri ppk1 null mutant mangler polyP kinase inneholdt mindre enn halvparten av dette beløpet. Denne tilstedeværelsen av polyP i ppk1 null mutant skyldes sannsynligvis L.reuteri som inneholder en andre polyP kinase. Mycobacterium smegmatis stamme SMR fem, dyrket i Hartmans-de Bont medium i fravær av etanol akkumulert ca 141 nanomol polyP per mg av totalt protein.Mens etanolbehandling resulterte i en tredobling. Etter denne prosedyren kan akrylamid gel elektroforese utføres for å vurdere forskjeller i polyP kjedelengde. Mens du prøver denne prosedyren, unngå vanlige feil.Husk å unngå å få bobler i mikrotiterplatebrønner, og vær forsiktig med å overføre prøvene til riktig rør når du bytter fra kolonnen til mikrofusjonsrøret. Ikke glem at arbeid med GITC og sterke syrer kan være farlig, og riktig verneutstyr bør alltid brukes mens du utfører denne prosedyren.

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Multiplex Detection of Bacteria in Complex Clinical and Environmental Samples using Oligonucleotide-coupled Fluorescent Microspheres

Multiplex Påvisning av bakterier i Complex Clinical and Environmental Prøver å bruke oligonukleotid-coupled Fluorescent Mikrokuler

Bacterial vaginosis (BV) is a recurring polymicrobial syndrome that is characterized by a change in the "normal" microbiota from Lactobacillus-dominated ...

Detection of Bacteria Using Fluorogenic DNAzymes

Påvisning av bakterier Bruke Fluorogenic DNAzymes

Outbreaks linked to food-borne and hospital-acquired pathogens account for millions of deaths and hospitalizations as well as colossal economic losses ...

Tractable Mammalian Cell Infections with Protozoan-primed Bacteria

Medgjørlig pattedyrcelle Infeksjoner med protozoan-primet Bakterier

Many intracellular bacterial pathogens use freshwater protozoans as a natural reservoir for proliferation in the environment. Legionella pneumophila, the ...

Measuring Growth and Gene Expression Dynamics of Tumor-Targeted S. Typhimurium Bacteria

Measuring Growth and Gene Expression Dynamics of Tumor-Targeted S. Typhimurium Bacteria

Måling Vekst og Gene Expression Dynamics of Tumor-målrettet<em&gt; S. Typhimurium</em&gt; Bakterier

The goal of these experiments is to generate quantitative time-course data on the growth and gene expression dynamics of attenuated S. typhimurium ...

Fluorescence Microscopy Methods for Determining the Viability of Bacteria in Association with Mammalian Cells

Fluorescensmikroskopi metoder for å bestemme levedyktigheten til bakterier i foreningen med pattedyrceller

Central to the field of bacterial pathogenesis is the ability to define if and how microbes survive after exposure to eukaryotic cells. Current protocols ...

Fluorescence in situ Hybridizations (FISH) for the Localization of Viruses and Endosymbiotic Bacteria in Plant and Insect Tissues

Fluorescence in situ Hybridizations FISH for the Localization of Viruses and Endosymbiotic Bacteria in Plant and Insect Tissues

Fluorescens<em&gt; In situ</em&gt; Hybridiser (FISH) for lokalisering av virus og Endosymbiotic Bakterier i plante-og insekt Vev

Fluorescence in situ hybridization (FISH) is a name given to a variety of techniques commonly used for visualizing gene transcripts in eukaryotic cells ...

Following in Real Time the Impact of Pneumococcal Virulence Factors in an Acute Mouse Pneumonia Model Using Bioluminescent Bacteria

Etter i Real Time Impact of Pneumokokk virulens faktorer i en akutt Mouse Lungebetennelse Modell Bruke Bioluminescent Bakterier

Pneumonia is one of the major health care problems in developing and industrialized countries and is associated with considerable morbidity and mortality. ...

Rapid Identification of Gram Negative Bacteria from Blood Culture Broth Using MALDI-TOF Mass Spectrometry

Rapid Identifikasjon av gramnegative bakterier fra blodkultur buljong Bruke MALDI-TOF massespektrometri

An important role of the clinical microbiology laboratory is to provide rapid identification of bacteria causing bloodstream infection. Traditional ...

A Reference Broth Microdilution Method for Dalbavancin In Vitro Susceptibility Testing of Bacteria that Grow Aerobically

A Reference Broth Microdilution Method for Dalbavancin In Vitro Susceptibility Testing of Bacteria that Grow Aerobically

En Reference buljong mikrofortynningsplater Metode for dalbavancin<em&gt; In Vitro</em&gt; Resistenstesting av bakterier som vokser Aerobt

Antimicrobial susceptibility testing (AST) is performed to assess the in vitro activity of antimicrobial agents against various bacteria. The AST results, ...

Biomimetic Materials to Characterize Bacteria-host Interactions

Biomimetiske Materialer som skal prege Bakterier-vert interaksjoner

Bacterial attachment to host cells is one of the earliest events during bacterial colonization of host tissues and thus a key step during infection. The ...