Name: inducement and evaluation of a murine model of experimental myopia
Uploaded: 2019-01-22T14:30:00
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Wir danken für die Beratung über die SDOCT, F. Schaeffel für Beratung auf Messungen der Brechung und Hornhautkrümmung, Herr Sanshouo für die Rekonstruktion der dreidimensionalen Rahmendaten, M. Miyauchi M.T. Pardue; K. Tsubota; Y. Tanaka; S. Kondo; C. Shoda; M. Ibuki; Y. Miwa; Y. Hagiwara; A. Ishida; Y. Tomita; Y. Katada; E. Yotsukura; K. Takahashi; und Y. Wang für kritische Diskussionen. Diese Arbeit wurde durch Zuschüsse InAid für wissenschaftliche Forschung (KAKENHI, Nummer 15 K 10881) vom Ministerium für Bildung, Kultur, Sport, Wissenschaft und Technologie (MEXT), TK unterstützt. Diese Arbeit wird auch durch den Zuschuss für die Kurzsichtigkeit Forschung von Tsubota Laboratory, Inc. (Tokio) unterstützt.

Alle Verfahren wurden von der Ethikkommission auf Animal Research von der Keio University School of Medicine genehmigt die ARVO-Anweisung für den Einsatz von Tieren in Ophthalmic und Vision Research, die institutionellen Richtlinien auf Tier-Experimente im Keio eingehalten Universität und der Animal Research: Berichterstattung von In Vivo Experimente (Ankunft) Richtlinien für die Verwendung von Tieren in der Forschung.
1. Montage der Brillen für Mäuse
<ol><li>Bereiten Sie die erforderli...

<ol>
	<li>Dolgin, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+myopia+boom.">The myopia boom.</a> Nature. 519 (7543), 276-278 (2015).</li><li>Ohno-Matsui, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pathologic+Myopia.">Pathologic Myopia.</a> Asia-Pacific Journal of Ophthalmology (Philadelphia, Pa). 5 (6), 415-423 (2016).</li><li>Morgan, I. G., Ashby, R. S., Nickla, D. 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T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Goggles+for+controlling+the+visual+environment+of+small+animals.">Goggles for controlling the visual environment of small animals.</a> Laboratory Animal Science. 44 (3), 292-294 (1994).</li><li>Tkatchenko, T. V., Tkatchenko, A. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ketamine-xylazine+anesthesia+causes+hyperopic+refractive+shift+in+mice.">Ketamine-xylazine anesthesia causes hyperopic refractive shift in mice.</a> Journal of Neuroscience Methods. 193 (1), 67-71 (2010).</li><li>Chou, T. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Postnatal+elongation+of+eye+size+in+DBA/2J+mice+compared+with+C57BL/6J+mice:+in+vivo+analysis+with+whole-eye+OCT.">Postnatal elongation of eye size in DBA/2J mice compared with C57BL/6J mice: in vivo analysis with whole-eye OCT.</a> Investigative Ophthalmology &amp; Visual Science. 52 (6), 3604-3612 (2011).</li><li>Park, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Assessment+of+axial+length+measurements+in+mouse+eyes.">Assessment of axial length measurements in mouse eyes.</a> Optometry and Vision Science. 89 (3), 296-303 (2012).</li></ol>

Um sicherzustellen, die Brille auf den Maus-Kopf stabil befestigt werden, müssen mehrere Schritte in diesem Protokoll große Aufmerksamkeit geschenkt werden. Das Periost muss vollständig entfernt werden, vor der Verwendung der zahnärztlichen Klebesystem. Das Blut auf den Schädel auch mit Sorgfalt gereinigt werden müssen. Während ein wenig Feintuning direkt nach dem Auftragen des Klebstoffs akzeptabel ist, bewegen Sie sich nicht den Stick häufig vor das Klebesystem vertrocknen. Folgen Sie den Anweisungen des Klebst...

Die Prävalenz der Myopie ist vor kurzem drastisch angestiegen, während der Mechanismus seiner Entstehung und Progression sind noch weitgehend unbekannter1. Der charakteristischste Phänotyp der Myopie ist die Verlängerung der axialen Länge (AL), das Risiko für Netzhautablösung Komplikationen oder sogar Blindheit2erhöht. Um besser zu verstehen die Pathogenese der Myopie und wirksame Therapien zu entwickeln, sind robuste kurzsichtigen Tiermodelle und stabile Phänotyp Bewertung notwendig.
Kurz gesagt, gibt es zwei Methoden zur Induktion kurzsichtiger Staaten bei Tieren: Form-Deprivation Myopie (FDM) und Objektiv-induzierte Myopie (LIM)3. Ersteres setzt Diffusoren vor dem Auge oder Nähte das Augenlid um das Bild undeutlich zu machen, das die normale Entwicklung des Augapfels, was zu einer Kurzsichtigkeit Phänotyp beeinflusst. Die letzteren Plätze minus Linsen vor dem Auge, der Brennpunkt hinter der Netzhaut zu bewegen. Die Netzhaut erkennt die Verschiebung des Fokus und verlängert den Augapfel um die Netzhaut und Brennpunkt auszurichten. Für FDM ist nach das Augenlid geschlossen oder der Diffusor vor dem Auge korrigiert wurde fast keine weitere Pflege erforderlich. Für LIM muss das Objektiv abgenommen werden, für die Reinigung um es transparent zu halten. FDM ist somit relativ einfach technisch induziert werden. Allerdings unterscheiden sich die Mechanismen der FDM und LIM, und welche Methode ahmt die Kurzsichtigkeit in der menschlichen besser ist noch in der Diskussion3. Eine der Stärken von LIM ist die stärkere Phänotyp im Vergleich mit FDM, zumindest bei Mäusen4.
Tiere, die zur Induktion Myopie verwendet wurden sind Küken5, Affen6, Spitzhörnchen7, Meerschweinchen8und Mäuse4. In Anbetracht der Möglichkeit, Genmanipulation, reichlich verfügbaren Antikörper und niedrige Kosten für die Zucht hätte Mäuse die erste Wahl als Tiermodell der Myopie. Ist jedoch im Vergleich mit anderen größeren Tieren, Befestigung, Linsen oder Diffusoren vor der Maus Auge relativ schwierig, vor allem für junge Mäuse wie Recht nach dem absetzen. Für die Experimente, die aktuelle Drug Administration oder Mehrfachmessung interim Auge benötigen, ist es auch notwendig für den Rahmen abnehmbar. Eine weitere Herausforderung ist die kleine morphologische Veränderung der Maus Augapfel, die ausgefeilte Technik und Geräte zu bewerten. Bis heute machen verschiedene induzieren und Messung in verschiedenen Forschungsteams verwendeten Protokolle es schwer zu vergleichen und die Ergebnisse in Labors zu wiederholen. Ein Standardprotokoll mit Details ist erforderlich.
Frühere Werken beschrieb mehrere Methoden zur Behebung Linsen oder Diffusoren vor der Maus Auge, z. B.9,10 und Goggle Head mounted Frame11,12Heften kleben. Wir kombinieren Exist Head mounted Goggle Technik11,12,13 mit unserem neu gestalteten Rahmen, um eine verbesserte Protokoll zur Induktion robust und effizient experimentelle Myopie bei Mäusen zu entwickeln. Das Protokoll kann den jungen Mäusen bald nach dem Absetzen auf postnatale Tag 21 (p21) angewendet werden. Wir haben auch die Prozesse für stabile und präzise Auswertung der Phänotypen einschließlich der Brechung und AL optimiert. Wir hoffen, diese standardisierte Protokoll dazu beitragen kann, kurzsichtigen Mäuse für Kurzsichtigkeit Forschung leichter zugänglich machen.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>screw</td>
			<td>NBK</td>
			<td>SNZS-M1.4-10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>washer</td>
			<td>MonotaRO</td>
			<td>42166397</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>nut</td>
			<td>MonotaRO</td>
			<td>42214243</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>stick</td>
			<td>DMM Make</td>
			<td>none</td>
			<td>designed by authers and output by the 3D printer rented from DMM Make.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>frame</td>
			<td>DMM Make</td>
			<td>none</td>
			<td>designed by authers and output by the 3D printer rented from DMM Make.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>lenses</td>
			<td>RAINBOW CONTACT LENS</td>
			<td>none</td>
			<td>customized for mice use by the company</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>cyanoacrylate glue</td>
			<td>OK MODEL</td>
			<td>MP 20g</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>dental adhesive resin cement</td>
			<td>SUN MEDICAL</td>
			<td>super bond</td>
			<td>contains the etching liquid used for removing the periosteum of the mouse skull</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>infrared photorefractor</td>
			<td>Steinbeis Transfer Center</td>
			<td>none</td>
			<td>designed and offered by Dr. Frank Schaeffel from university of T&#252;bingen</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Spectral domain OCT</td>
			<td>Leica</td>
			<td>R4310</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tropicamide, Penylephrine Hydrochloride solution</td>
			<td>Santen</td>
			<td>Mydrin-P</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>midazolam</td>
			<td>Sandoz K.K.</td>
			<td>SANDOZ</td>
			<td>components for the anesthetic</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>medetomidine&#160;</td>
			<td>Orion Corporation</td>
			<td>Domitor</td>
			<td>components for the anesthetic</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>butorphanol tartrate&#160;</td>
			<td>Meiji Seika Pharma</td>
			<td>Vetorphale</td>
			<td>components for the anesthetic</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>0.1 % purified sodium hyaluronate</td>
			<td>Santen</td>
			<td>Hyalein</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>atipamezole hydrochloride</td>
			<td>Zenoaq</td>
			<td>antisedan</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

inducement and evaluation of a murine model of experimental myopia

Mausmodell der Myopie kann ein mächtiges Werkzeug für die Erforschung der Myopie aufgrund der vergleichsweise einfachen genetischen Manipulation sein. Ein Weg, Myopie bei Tieren zu induzieren soll klare minus Linsen vor Augen für Wochen (Objektiv-induzierte Myopie, LIM) setzen. Allerdings variieren die erhaltenen Protokolle für Anreiz und Bewertung von Labor zu Labor. Wir hier eine äußerst praktische und reproduzierbare Methode zur LIM bei Mäusen mit neu gestalteten Brillen zu induzieren. Die Methode-Fixes Objektiv stabil vor der Maus Auge während die Linse zu Reinigungszwecken oder topische abgenommen werden kann drug Administration. Der Phänotyp ist robust und effizient, und die Varianz ist klein. Die hier beschriebene Methode kann direkt nach dem Absetzen die erstreckt sich der möglichen Dauer für Experimente auf Mäusen angewendet werden. Wir gaben auch technisch berät für reproduzierbare Resultate in Refraktion und axiale Längenmessungen. Wir hoffen die hier beschriebene Schritt für Schritt Protokoll und der detaillierte Artikel kann Forscher Myopie Experimente mit Myopie mehr reibungslos durchführen und die Daten über Labors vergleichbar zu machen.

At zuerst überprüfen, ob alle notwendigen Teile (Abbildung 1a) zubereitet werden. Abbildung 1 bzeigt ein Beispiel für ein Stück montierte Brillen. Außer den Hauptteil der Rahmen und die Mutter sind alle anderen Teile für jede Maus Einweg. Abbildung 1 czeigt eine Reihe von fertigen Brillen. Ändern Sie den Winkel zwischen den beiden Frames, die Maus mit unterschiedlichen Alters zu passen.
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Inducement and Evaluation of a Murine Model of Experimental Myopia

Dieses Protokoll beschreibt den gesamten Prozess der experimentellen Myopie Anreiz bei Mäusen mit neu gestalteten Brillen und die Technik für stabile und reproduzierbare Ergebnisse bei okulären Parameter Messungen benötigt.

Anreiz und Auswertung von einem Mausmodell der experimentellen Myopie

Murine model of myopia can be a powerful tool for myopia research because of the comparatively easy genetic manipulation. One way to induce myopia in ...

Diese Methode kann helfen, wichtige Fragen zur Induktion und Bewertung von linseninduzierter Kurzsichtigkeit bei Mäusen zu beantworten. Wie zum Beispiel, wie Linsen zu stabilisieren. Die wichtigste Stufe dieser Technik ist, dass alle Schritte optimiert und standardisiert wurden, was die Erfassung präziser, reproduzierbarer und vergleichbarer Ergebnisse in den Laboren ermöglicht.Im Allgemeinen ist Menschen neu zu dieser Methode ist schwierig, da es sehr schwer ist, die Brille auf die Mausköpfe stabil ohne jede Praxis zu kleben. Bereiten Sie für jede Maus Folgendes vor. Ein kopfmontierter Nylonstab.Ein höherer und ein niedrigerer Titanrahmen. Zwei Linsen mit den entsprechenden Kräften entsprechend dem Zweck des Experiments. Eine 10mm Länge M1.4 Größe Schraube.Eine Mutter für die Schraube m1.4. 1 Scheibenleger für die 0,3 Millimeter dicke Schraube der Größe M1.4. Und zwei künstliche Fingernagelspitzen.Um den rechten Brillenrahmen zu montieren, ordnen Sie eine Fingernagelspitze nach außen, um die beste Schutzwirkung zu erzielen. Und stellen Sie den Winkel zwischen Fingernagelspitze und Rahmen auf etwa 130 Grad ein, um zu vermeiden, dass das Maus-Vision-Feld masknt wird. Mit Cyanoacrylat-Klebstoff die künstliche Fingernagelspitze am Rahmen kleben und den Klebstoff 12 Stunden vollständig trocknen lassen.Verwenden Sie Nagelknipser, um die vollständig verkonierte Fingernagelspitze auf etwa eine um einen Zentimeter formende Form zu trimmen und die Linse auf den Rahmen zu legen. Den Cyanoacrylat-Klebstoff vom Rand der Linse injizieren und durch Oberflächenspannung verteilen lassen. Wenn der Klebstoff trocken ist, ziehen Sie die Schraube in den Nylonstab zusammen mit der Scheibe von der flachen Seite des Sticks.Bereiten Sie dann den linken Rahmen auf die gleiche Weise vor, wobei die Fingerspitze in die entgegengesetzte Richtung der rechten Rahmenspitze abgewinkelt ist. Für die Ausgangsmessung der Brechung in der axialen Länge, wenden Sie einen Tropfen des mydiriatischen Mittels, enthält fünf Milligramm pro Milliliter Tropicamid und fünf Milligramm pro Milliliter Phenylepherinhydrochlorid auf jeder Seite des Augapfels, um die Pupille zu verdorn. Warten Sie mindestens fünf Minuten vor der Vollnarkose und passen Sie die Richtung eines der Augen im Sucher eines Infrarot-Fotorefraktors an, um das erste Purkinje-Bild in der Mitte der Pupille zu positionieren und die Brechung entlang der optischen Achse zu messen.Nachdem Sie das andere Auge auf die gleiche Weise gemessen haben, platzieren Sie die Maus in das optische Kohärenztomographiesystem der Spektraldomäne und definieren Sie die axiale Länge als Denkweg vom Hornhautwirbel zur hellsten Grenze in der Nähe des optischen Nervs. Um den zuvor vorbereiteten Brillenrahmen auf die Maus zu fixieren, wenden Sie zunächst einen Tropfen von 0,1% gereinigtem Natriumhyaluronat-Augentropfen auf jedes Auge an und legen Sie das Kinn der anästhesierten Maus auf eine geneigte Oberfläche, damit die Vorderebene des Schädels horizontal ist. Verwenden Sie einen Wattestäbchen mit 70% Ethanol getränkt, um das Haar und die Kopfhaut zwischen den Ohren und Augen zu sterilisieren, und machen Sie einen 0,8 Quadratcm Schnitt in der Haut, zwischen den Ohren und den Augen, um den Schädel auszusetzen.Verwenden Sie Zahnätzflüssigkeit in einem Wattestäbchen, um das Periost zu entfernen und verwenden Sie ein Paar Rahmen ohne Linsen, um den Stick an der richtigen Position zu fixieren, indem Sie die Position der Rahmen sorgfältig anpassen, um sicherzustellen, dass sich beide Augen in der Mitte der leeren Rahmen befinden. Verwenden Sie ein selbstpflegeiges Zahnklebesystem, um den Stick am Mauskopf zu befestigen und warten Sie etwa fünf Minuten, bevor Sie den Rahmen und die Mutter vorsichtig entfernen, ohne die Position des Sticks zu ändern. Dann injizieren 0,75 Milligramm pro Kilogramm Atipamazolhydrochlorid intraperitoneal, um der Maus zu helfen, sich von der Anästhesie schneller zu erholen und legen Sie die Maus in einen einzelnen Käfig, bis vollständig erholt.24 Stunden nach der Operation greifen Sie den Stock und legen Sie die Rahmen mit Linsen auf das Tier, um die Kurzsichtigkeitsinduktion zu initiieren. Legen Sie dann ein Netz zwischen der Maus und dem Käfigboden, um die Futterreste zu filtern und das Körpergewicht und das Bruttoverhalten täglich zu überwachen, indem Sie die myppic Mäuse mit gleichaltnalten, unberührten Mäusen während des gesamten experimentellen Prozesses vergleichen. Entfernen Sie den Rahmen und reinigen Sie die Linsen und die Fingernagelspitze mindestens zweimal pro Woche mit Wattestäbchen, um die Transparenz der Linsen zu erhalten.Hier wird eine Fertigbrille gezeigt. Der Winkel zwischen den beiden Rahmen kann an Mäuse unterschiedlichen Alters angepasst werden. Nachdem die Brille wie gezeigt auf den Rahmen gestellt wurde, sollten die beiden Brillenstücke ziemlich symmetrisch sein.Für diese Brechungsmessung in einem Mausauge, die drei Wochen lang durch eine negative 30-Dioptrien-Linse induziert wurde, ab dem postnatalen Tag 21, wurde der Blick sowohl in der x- als auch in der y-Achse nahe null Grad kontrolliert, was darauf hindeutet, dass die Maus direkt vor der Kamera zu sehen war. Dieses ganze Augenbild, aufgenommen von einem optischen Kohärenztomographiesystem der Spektraldomäne, das auf Mäuse abgestimmt ist, ermöglicht es, jeden Teil des Auges zu definieren. In diesem repräsentativen Experiment induzierten negative 30 Dioptrien linsen eine starke kurzsichtige Verschiebung sowohl bei den Brechungs- als auch bei den Axiallängenmessungen im Vergleich zu den Null-Dioptrien-Objektiven.Die Änderung der Brechung erreichte ihren Höhepunkt in der ersten Woche und blieb für die folgenden zwei Wochen flach, während der Unterschied zwischen der Änderung der kurzsichtigen Augen- und Kontrollaugenaxiallängen ab der ersten Woche signifikant war und in den folgenden zwei Wochen immer größer wurde. Beim Versuch des Verfahrens ist es wichtig, die Anweisungen zur Messung der Brechung und der Axiallinse genau zu befolgen, damit das Ergebnis in den Versuchslaboren vergleichbar ist. Nach ihrer Entwicklung ebnet die Technik den Weg für Forscher auf dem Gebiet der Kurzsichtigkeit, um pathogene Mechanismen nicht nur bei gewöhnlichen Mäusen, sondern auch bei genetisch veränderten Mäusen zu erforschen.

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Experimental Demyelination and Remyelination of Murine Spinal Cord by Focal Injection of Lysolecithin

Experimentelle Demyelinisierung und Remyelinisierung von Murine Rückenmark von Focal Injektion von Lysolecithin

Multiple sclerosis is an inflammatory demyelinating disease of the central nervous system characterized by plaque formation containing lost ...

Forschung

Neurowissenschaften

Visual Evoked Potential Recording in a Rat Model of Experimental Optic Nerve Demyelination

Visuell evozierten Potential-Aufnahme in einem Rattenmodell für Experimentelle Optic Nerve Demyelinisierung

The visual evoked potential (VEP) recording is widely used in clinical practice to assess the severity of optic neuritis in its acute phase, and to ...

Evaluation of Bioenergetic Function in Cerebral Vascular Endothelial Cells

Auswertung der bioenergetischen Funktion in Cerebral Vascular Endothelial Cells

The integrity of the blood-brain-barrier (BBB) is critical to prevent brain injury. Cerebral vascular endothelial (CVE) cells are one of the cell types ...

Biodegradable Magnesium Stent Treatment of Saccular Aneurysms in a Rat Model - Introduction of the Surgical Technique

Biologisch abbaubare Magnesium Stent-Behandlung von Saccular Aneurysms in einem Rattenmodell - Einführung der Operationstechnik

The steady progess in the armamentarium of techniques available for endovascular treatment of intracranial aneurysms requires affordable and reproducable ...

A Volumetric Method for Quantification of Cerebral Vasospasm in a Murine Model of Subarachnoid Hemorrhage

Eine Volumetrische Methode zur Quantifizierung der zerebralen Vasospasmus in einem Mausmodell der Subarachnoidalblutung

Subarachnoid hemorrhage (SAH) is a subtype of hemorrhagic stroke. Cerebral vasospasm that occurs in the aftermath of the bleeding is an important factor ...

Functional Evaluation of Olfactory Pathways in Living Xenopus Tadpoles

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Funktionsauswertung olfaktorische Wege im Leben Xenopus Kaulquappen

Xenopus tadpoles offer a unique platform to investigate the function of the nervous system. They provide multiple experimental advantages, such as ...

Quantifying Spontaneous Ca2+ Fluxes and their Downstream Effects in Primary Mouse Midbrain Neurons

Quantifying Spontaneous Ca2+ Fluxes and their Downstream Effects in Primary Mouse Midbrain Neurons

Quantifizierung von Spontan-Ca2+-Fluxes und ihren nachgelagerten Auswirkungen in primären Maus-Midbrain-Neuronen

Parkinson&#8217;s disease (PD) is a devastating neurodegenerative disorder caused by the degeneration of dopaminergic (DA) neurons. Excessive Ca2+ influx ...

Pre-Chiasmatic, Single Injection of Autologous Blood to Induce Experimental Subarachnoid Hemorrhage in a Rat Model

Prächiasmatische, einmalige Injektion von Eigenblut zur Induktion einer experimentellen Subarachnoidalblutung in einem Rattenmodell

Despite advances in treatment over the last decades, subarachnoid hemorrhage (SAH) continues to carry a high burden of morbidity and mortality, largely ...

A Model for Epilepsy of Infectious Etiology using Theiler's Murine Encephalomyelitis Virus

Ein Modell für Epilepsie infektiöser Ätiologie am Beispiel des Theiler-Maus-Enzephalomyelitis-Virus

One of the main causes of epilepsy is an infection of the central nervous system (CNS); approximately 8% of patients who survive such an infection develop ...

A Mouse Model to Study Brain Physiology During Cardiac Arrest

Mouse Cardiac Arrest Model for Brain Imaging and Brain Physiology Monitoring During Ischemia and Resuscitation

A Unique Mouse Model of Asphyxia-Induced Cardiac Arrest (Video) | JoVE

Herzstillstandsmodell der Maus für die Bildgebung des Gehirns und die Überwachung der Gehirnphysiologie während Ischämie und Wiederbelebung

Most cardiac arrest (CA) survivors experience varying degrees of neurologic deficits. To understand the mechanisms that underpin CA-induced brain injury ...