Name: establishment of viral infection and analysis of host-virus interaction in drosophila melanogaster
Uploaded: 2019-03-14T13:30:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Establishment of Viral Infection and Analysis of Host-Virus Interaction in Drosophila Melanogaster at JoVE.com

Vi vil gjerne takke hele Pan lab i IPS. CAS. Vi takker Dr. Lanfeng Wang (IPS, CAS) for eksperimentell hjelp og Dr. Gonalo Cordova Steger (Springer natur), Dr. Jessica VARGAS (IPS, Paris) og Dr. Seng Zhu (IPS, Paris) for kommentarer. Dette arbeidet ble støttet av tilskudd fra strategiske prioritet forskningsprogrammet av det kinesiske vitenskapsakademi L.P (XDA13010500) og H.T (XDB29030300), National Natural Science Foundation i Kina L.P (31870887 og 31570897) og J.Y (31670909). L.P er medlem av CAS Youth innovasjon Promotion Association (2012083).

Merk: Før du starter eksperimentet, linjer og fly aksjer brukes må ikke være forurenset av andre patogener, spesielt for virus som DCV, FHV, Drosophila X virus (DXV) og Avian nefritt virus (ANV). Ideelt sett brukes RNA sekvensering eller en enklere PCR-baserte ID til å oppdage forurensning10,45. Hvis forurensning oppstod, linjer og fly aksjer bør ikke brukes lenger før de er dekontaminert helt46.
1. virus og...

I denne artikkelen presenterer vi en detaljert prosedyre på hvordan å etablere en viral smittsomme system i voksen Drosophila melanogaster med nano-injeksjon. Protokollene inkluderer utarbeidelse av aktuelle fly linjer og virus lager, infeksjon teknikker, evaluering av smittsomme indikatorer og måling av antivirale svaret. Selv om DCV er brukt som et eksempel på en viral patogen, er titalls ulike typer virus vellykket brukt for studier i Drosophila systemet. I tillegg har hundrevis av regulatoriske forhold, ...

Emerging viral infeksjoner, spesielt av arboviruses, som den Chikungunya virus1, Dengue virus, gulfeber virus2 og Zikavirus3, har blitt en stor trussel mot folkehelsen ved forårsaker pandemier 4. dermed en bedre forståelse av virus-vert interaksjon har blitt stadig viktigere for epidemien kontroll og behandling av sykdommer hos mennesker. For dette målet, må mer hensiktsmessig og effektiv modeller opprettes undersøke mekanismene bak virusinfeksjon.
Drosophilamelanogaster (D. melanogaster), gir et kraftig system for å undersøke virus vert samhandling5,6 og har vist seg for å være en av de mest effektive modellene å studere menneskelige sykdommer7 , 8 , 9. høyt konservert antiviral signalnettverk trasé og makeløs genetisk verktøy gjør flyr en flott modell å produsere betydelige resultater med reelle konsekvenser for menneskelig antiviral studier. I tillegg fluer er enkelt og billig å opprettholde i laboratoriet og er praktisk for store screening av romanen regulatoriske forhold6,10 i viruset og vert under infeksjon.
Fire store høyt konservert antiviral veier (f.eks., RNA forstyrrelser (RNAi) veien11, JAK-STAT veien12, NF-κB veien og autophagy veien13) er godt studert i Drosophila i siste år6. RNAi veien er en bred antiviral mekanisme som kan undertrykke de fleste typer virus infeksjon6,14. Forstyrrelse av denne veien av mutasjon i gener som Dicer-2 (Dcr-2) eller Argonaute 2 (AGO2) kan føre til økt virus titer og vert dødelighet15,16,17. JAK-STAT veien har vært innblandet i kontroll av infeksjon av virus fra Dicistroviridae familien og Flaviviridae familien i insekter, f.eks., Drosophila C-viruset (DCV) flyr16 og West Nile virus (WNV) og Dengue Virus i mygg18,19. Drosophila Toll (homologe til menneskelig NF-κB veien) og immunforsvarsvikt (IMD) veier (ligner menneskelige NF-κB og TNF veien) er involvert i å forsvare virus invasjonen20,21, 22. autophagy er en annen bevarte mekanisme involvert i regulering av virusinfeksjon, som er godt preget i Drosophila23,24. Dermed identifikasjon av romanen regulatoriske forhold av disse stier og dissecting crosstalk mellom disse antiviral signalering og andre biologiske banene, som metabolisme, aldring, neural reaksjon og så videre, kan enkelt defineres i Drosophila system.
Selv om mest veletablerte viral smittsomme modeller i Drosophila er indusert av RNA virus, infeksjon av virvelløse iriserende Virus 6I (IV-6) og Kallithea virus har vist potensialet for studier av DNA virus i fluer25, 26. Videre kan viruset også endres for å tillate infeksjon i Drosophila, for eksempel influensavirus9. Dette er betydelig utvidet bruk av Drosophila screening plattformen. Her bruker vi DCV som et eksempel for å beskrive hvordan å utvikle en viral smittsomme system i Drosophila. DCV er en positiv-følelse enkelt strandet RNA virus av ca 9300 nukleotider, koding 9 proteiner27. Som en naturlig patogen av D. melanogasteranses DCV som et passende virus å studere vert fysiologiske, adferd og basale immunrespons i verten-virus samhandling og samtidig evolusjon28. I tillegg gjør sin raske dødelighet etter infeksjon i vill type fluer DCV nyttig å skjermen for motstandsdyktig eller utsatt gener i vert29.
Men er det flere aspekter av bekymring når studere virusinfeksjoner i Drosophila. For eksempel har symbiotiske bakterier Wolbachia en evne for å hemme et bredt spektra av RNA-virus spredning i Drosophila og mygg30,31,32. Nyere bevis viser en mulig mekanisme som Wolbachia blokker Sindbis (SINV) smitte gjennom oppregulering av methyltransferase Mt2 uttrykk i de vert33. I tillegg er genetisk bakgrunn av insekter også avgjørende for virusinfeksjon. Den naturlige polymorfisme i genet, pastrel (pst), bestemmer for eksempel mottakelighet for DCV infeksjon i Drosophila34,35, mens loci Ubc-E2H og CG8492 er involvert i Cricket lammelse virus (CrPV) og Flock hus (FHV) smitte, henholdsvis36.
Den bestemte måten å etablere virus vert samspillet i fluer, må velges i henhold til forskningsformål som en høy gjennomstrømming skjerm for verten cellulære komponenter i Drosophila cellen linjer37,38, muntlig infeksjon å studere gut-spesifikk antiviral reaksjon22,39,40, nål pricking41,42 eller nano-injeksjon ved å sende epithelial barrierer for å stimulere systemisk immun svar. Nano-injeksjon kan nettopp kontroll viral dose for å indusere en kontrollert antiviral reaksjon og en fysiologisk lesjon43, dermed garantere høyt eksperimentell reproduserbarhet44. I denne studien beskriver vi en nano-injeksjon metode for å studere viruset vert interaksjoner i Drosophila, fremheve betydningen av fluene bakgrunn effekter.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>0.22um filter</td>
			<td>Millipore</td>
			<td>SLGP033RS</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1.5 ml Microcentrifuge tubes</td>
			<td>Brand</td>
			<td>352070</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1.5 ml RNase free Microcentrifuge tubes</td>
			<td>Axygen</td>
			<td>MCT-150-C</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10 cm cell culture dish</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>CLS430167</td>
			<td>Cell culture</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>100 Replacement tubes</td>
			<td>Drummond Scientific</td>
			<td>3-000-203-G/X</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>15 ml tube</td>
			<td>Corning</td>
			<td>352096</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ABI 7500 qPCR system</td>
			<td>ABI</td>
			<td>7500</td>
			<td>qPCR</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cell Incubator</td>
			<td>Sanyo</td>
			<td>MIR-553</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Centriguge</td>
			<td>Eppendof</td>
			<td>5810R</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Centriguge</td>
			<td>Eppendof</td>
			<td>5424R</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Chloroform</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>151858</td>
			<td>RNA extraction</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DEPC water</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>95284-100ML</td>
			<td>RNA extraction</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Drosophila Incubator</td>
			<td>Percival</td>
			<td>I-41NL</td>
			<td>Rearing Drosophila</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FBS</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>12657-029</td>
			<td>Cell culture</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>flat bottom 96-well-plate</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>CLS3922</td>
			<td>Cell culture</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fluorescence microscope</td>
			<td>Olympus</td>
			<td>DP73</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isopropyl alcohol</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>I9516</td>
			<td>RNA extraction</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lysis buffer (RNA extraction)</td>
			<td>Thermo Fisher</td>
			<td>15596026</td>
			<td>TRIzol Reagent</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lysis buffer (liquid sample RNA extraction)</td>
			<td>Thermo Fisher</td>
			<td>10296028</td>
			<td>TRIzol LS Reagent</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscope</td>
			<td>Olympus</td>
			<td>CKX41</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nanoject II Auto-Nanoliter Injector</td>
			<td>Drummond Scientific</td>
			<td>3-000-204</td>
			<td>Nanoject II Variable Volume (2.3 to 69 nL) Automatic Injector with Glass Capillaries (110V)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Optical Adhesive Film</td>
			<td>ABI</td>
			<td>4360954</td>
			<td>qPCR</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Penicillin-Streptomycin, Liquid</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>15140-122</td>
			<td>Cell culture</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>qPCR plate</td>
			<td>ABI</td>
			<td>A32811</td>
			<td>qPCR</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Schneider&#8217;s Insect Medium</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>S9895</td>
			<td>Cell culture</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>statistical software</td>
			<td>GraphPad Prism 7</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TransScript Fly First-Strand cDNA Synthesis SuperMix</td>
			<td>TransScript</td>
			<td>AT301</td>
			<td>RNA extraction</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vortex</td>
			<td>IKA</td>
			<td>VORTEX 3</td>
			<td>RNA extraction</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

establishment of viral infection and analysis of host-virus interaction in drosophila melanogaster

Viruset sprer seg er en viktig årsak til epidemien sykdommer. Dermed forstå samspillet mellom viruset og vert er svært viktig å utvide vår kunnskap om forebygging og behandling av virusinfeksjon. Frukt fly Drosophila melanogaster har vist seg for å være en av de mest effektive og produktive modell organismene å skjermen for antiviral faktorer og undersøke virus vert interaksjon, kraftige genetisk verktøy og høyt konservert medfødte immunsystemet signalveier. Fremgangsmåten som er beskrevet her viser en nano-injeksjon metode for å etablere viral infeksjon og indusere systemisk antiviral svar i voksen fluer. Presis kontroll av viral injeksjon dosen i denne metoden gjør det mulig for høyt eksperimentell reproduserbarhet. Protokoller som er beskrevet i denne studien omfatter utarbeidelse av fluer og viruset, injeksjon metoden, survival rate analyse, viruset belastning målingen og en antiviral veien vurdering. Innflytelse effekten av viral infeksjon av fluene bakgrunn ble nevnt her. Denne infeksjon metoden er enkel å utføre og kvantitativt repeterbare; Det kan brukes å skjermen for vert/viral faktorer virus vert samhandlingen og dissekere crosstalk mellom medfødte immunsystemet signalering og andre biologiske banene svar på virusinfeksjon.

Resultatene av denne delen er innhentet etter DCV infeksjon av D. melanogaster. Figur 1 viser flytdiagram for viral infeksjon i Drosophila. Fluene er injisert intra-thoracically, og deretter prøver er samlet for måling av viral TCID50 og genom RNA nivå (figur 1). Virusinfeksjon kan indusere celle lyse og CPE er observert på 3 dager innlegget infeksjon (figur 2A). Viruset belastning målt ved CPE analysen er linje målt ved qPCR (f...

Watch this Scientific Journal Video about Establishment of Viral Infection and Analysis of Host-Virus Interaction in Drosophila Melanogaster at JoVE.com

Establishment of Viral Infection and Analysis of Host-Virus Interaction in Drosophila Melanogaster

Denne protokollen beskriver hvordan du oppretter viral infeksjon i vivo i Drosophila melanogaster bruker nano-injeksjon metoden og grunnleggende teknikker for å analysere virus vert interaksjon.

Etablering av Viral infeksjon og analyse av Host-Virus samhandling i Drosophila Melanogaster

Virus spreading is a major cause of epidemic diseases. Thus, understanding the interaction between the virus and the host is very important to extend our ...

Denne metoden kan bidra til å svare på viktige spørsmål i virusvertinteraksjonsfeltet om hvordan man effektivt etablerer en virusinfeksjon i Drosophila melanogaster. Denne nanoinjeksjonsmetoden gir en nøyaktig kontroll av infeksjonsdosen av viruset og kan lett brukes på infeksjoner med andre mikrobielle patogener. Begynn med å vokse en gang 10 til den syvende levedyktige S2-stjernecellene per milliliter som løs, semi-tilhenger monolayer i en 10 centimeter cellekulturrett med 10 milliliter komplett Schneiders Drosophila Medium uten ekstra karbondioksid ved 25 grader Celsius i en time.Under inkubasjonen, resuspend nyopptinet Drosophila C Virus eller DCV til et mangfold av infeksjon på 0,01 i en milliliter komplett medium og legge virus løsning til celle kultur retter. Deretter returnerer platen til 25 grader Celsius inkubator i tre til fem dager. Viruset er klart for innsamling når cellemorfologien ser uklar ut og kulturmediet er fullt av svarte partikler som indikerer celleavfall.Bland det supernatante ved å pipettere noen ganger før du overfører hele cellekulturen til et 15 milliliter rør for lysis av vertscellene ved minus 80 grader Celsius. For å generere arbeidskonsentrasjoner av virus, tin cellesuspensjonen i et 25 grader Celsius vannbad med konstant risting før pelleting av celleavfall ved sentrifugering. Deretter overfører du supernatanten til et nytt sterilt 15 ml ml for vortexing og aliquot opptil 200 mikroliter virusløsning per rør.For å bestemme den gjennomsnittlige virusvevskulturen infeksiøs dose, første frø en ganger 10 til de fem S2 stjerneceller i 100 mikroliter av komplett medium i åtte brønner per kolonne i 12 rader med en 96 brønnplate. Deretter returnerer platen til 25 grader Celsius inkubator. Tilfeldig velge fem rør av virus fra minus 80 grader Celsius lagring.Mens cellene bosetter seg, fyll 10 sterile 1,5 milliliter mikrocentrifuge rør med 450 mikroliter sterilt komplett medium og tilsett 50 mikroliter virus lager til de første 1,5 milliliter røret som inneholder 450 mikroliter sterile komplett medium fortynne suspensjoner 10 ganger per trinn til 12th godt. På slutten av inkubasjonen legger du til 50 mikroliter av hver fortynning til riktig brønn i hver kolonne for det røret av virus og legger til 50 mikroliter kulturmedium uten virus til en brønn per kolonne som den negative kontrollen godt. Plasser deretter platen i 25 grader Celsius inkubator i tre dager og vurdere cytopatisk effekt av hvert virus lager under et Brightfield mikroskop på en 20X forstørrelse daglig.Klassifiser en brønn der cellene ser uskarpe ut og mediet er fullt av fragmenter som en positiv brønn og en brønn der cellemorfologien er normal som en negativ brønn. Før avl, bland grundig 400 mikroliter på 50 mikrogram per milliliter Tetracyklin med fire gram fersk standard maismelfluemat og legg maten på fire grader Celsius over natten for å fordampe etanol. Neste morgen, varm maten til romtemperatur og plasser maten og 20 kvinnelige og 10 mannlige nyåpnede voksne flyr inn i et avls hetteglass for en tre til fire-dagers avlsinkubasjon ved 25 grader Celsius og 60% fuktighet under en normal lys / mørk syklus.Når nok egg er lagt, samle de nylukkede voksne fluer under en lett strøm av karbondioksid og avle Drosophila igjen to ganger som nettopp demonstrert. Etter tre generasjoner tetracyklinbehandling samler du fem fluer under en lett strøm av karbondioksid og homogeniserer fluene med 250 mikroliter dobbeltdestiller vann og noen få 0,5 millimeter sterile keramiske perler. Etter ett minutt legger du til 250 mikroliter 2X Buffer A i prøven for vortexing før du fryser prøvene ved minus 80 grader Celsius.Deretter tine prøver fra minus 80 grader Celsius lagring i en 25 grader Celsius vannbad, etterfulgt av en 30-minutters inkubasjon i en 70 grader Celsius vannbad før ekstrahering genomisk DNA og forsterke DNA ved polymerase kjedereaksjon i henhold til standard protokoller. Bekreft fraværet av Wolbachia 16 liten RNA og wsp i hver flue homogenat ved gel elektroforese i henhold til standard protokoller. Deretter bak Wolbachia-fri fly lager på standard maismel fly mat som demonstrert.For virusinfeksjon, først bruke et stereomikroskop og tynne tang for å bryte spissen av en glass kapillær nål til riktig diameter for nanoinjeksjon. For å montere injektoren, plasser taket O-ringen og en hvit avstandsstramme på metallstempelet på injektoren med den store dimple vendt utover. Bruk en sprøyte utstyrt med en 30 gauge nål for å fylle glassnålen med mineralolje og plasser nålen gjennom kragen.Plasser den større O-ringen rundt bunnen av kragen omtrent en millimeter fra den stumpe enden av nålen og monter nålen på stempelet på injektoren. Fest nålen på stempelet og trykk på den tomme knappen for å forlenge stempelet på mikroinjektoren til et hørbart signal høres. Trykk nå på fyll for å trekke stempelet fem millimeter og dyppe nålen i en 100 plakkdannende enhet viral suspensjon.Rist forsiktig ett eller minst tre hetteglass med 20 Wolbachia-frie hann Drosophila på injeksjonsfatet. Mannlige begavede fluer foretrekkes under parring og reproduksjon kan påvirke kvinner. Injiser deretter thoraxen til hver flue med 50,6 nanoliter virusløsning i den litt lysere fargede regionen mellom mesopleura og pteropleura og mål DCV-belastningen ved cytopatisk effektanalyse og kvantitativ RT PCR fra bakkefluer som nettopp demonstrert.Etter injeksjonen overfører du forsiktig fluene til et friskt hetteglass og plasserer hetteglasset i horisontal stilling for å forhindre at fluene stikker til mediet mens de gjenoppretter fra anestesi. Injeksjonen er tidkrevende, men DCV-replikeringen er svært rask, så det er svært viktig å skrive ned den nøyaktige tiden på røret når alle fluene fra hvert hetteglass er injisert. Virusinfeksjon kan indusere cellelysis og cytopatiske effekter observeres ved tre dager etter infeksjon.Wolbachia 16s rRNA og wsp primere kan brukes til å oppdage tilstedeværelsen av Wolbachia og Drosophila som demonstrert. Wolbachia-frie fluer viser en signifikant redusert overlevelsesrate etter DCV-infeksjon og på en doseavhengig måte. DCV aktiverer antivirale signalveier i verten som er kritiske for antiviral infeksjon i Drosophila som det fremgår av redusert overlevelse og økt virusbelastning i Dicer-2 muterte fluer.Mens du prøver denne prosedyren, er det viktig å huske at forurensning med Wolbachia genotype kan påvirke følsomheten til Drosophila melanogaster fluer til DCV infeksjon. Etter denne prosedyren kan andre metoder som en større genetisk skjerm utføres for å svare på flere spørsmål om under definerte vertsgener som kreves for virusinfeksjon eller antivirale responser. Etter utviklingen banet denne teknikken vei for forskere innen menneskelig virussykdom for å utforske mekanismene underliggende utbrudd av endemiske menneskelige virusinfeksjoner i Drosophila melanogaster modell.Ikke glem at arbeid med virus kan være ekstremt farlig, og at forholdsregler som bruk av riktig verneutstyr alltid bør tas mens du utfører denne prosedyren.

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Establishment of Viral Infection and Analysis of Host-Virus Interaction in Drosophila Melanogaster

Isolation of Fidelity Variants of RNA Viruses and Characterization of Virus Mutation Frequency

RNA viruses use RNA dependent RNA polymerases to replicate their genomes. The intrinsically high error rate of these enzymes is a large contributor to the ...

Dissecting Host-virus Interaction in Lytic Replication of a Model Herpesvirus

In response to viral infection, a host develops various defensive responses, such as activating innate immune signaling pathways that lead to antiviral ...

Systemic Bacterial Infection and Immune Defense Phenotypes in Drosophila Melanogaster

Systemic Bacterial Infection and Immune Defense Phenotypes in Drosophila Melanogaster

Systemisk bakteriell infeksjon og immunforsvar fenotyper i<em&gt; Drosophila melanogaster</em

The fruit fly Drosophila melanogaster is one of the premier model organisms for studying the function and evolution of immune defense. Many aspects of ...

The Development of Lyophilized Loop-mediated Isothermal Amplification Reagents for the Detection of Coxiella burnetii

The Development of Lyophilized Loop-mediated Isothermal Amplification Reagents for the Detection of Coxiella burnetii

Utvikling av lyofilisert Loop-mediert Isotermiske amplifiseringsreagenser for deteksjon av<em&gt; Coxiella burnetii</em

Coxiella burnetii, the agent causing Q fever, is an obligate intracellular bacterium. PCR based diagnostic assays have been developed for detecting C. ...

Swab Sampling Method for the Detection of Human Norovirus on Surfaces

Pinne Prøvetaking metode for påvisning av humant Norovirus på overflater

Human noroviruses are a leading cause of epidemic and sporadic gastroenteritis worldwide. Because most infections are either spread directly via the ...

Extraction of Hemocytes from Drosophila melanogaster Larvae for Microbial Infection and Analysis

Extraction of Hemocytes from Drosophila melanogaster Larvae for Microbial Infection and Analysis

Utvinning av Hemocytes fra Drosophila melanogaster larver for mikrobielle infeksjoner og analyse

During the pathogenic infection of Drosophila melanogaster, hemocytes play an important role in the immune response throughout the infection. Thus, the ...

Detection of Low Copy Number Integrated Viral DNA Formed by In Vitro Hepatitis B Infection

Detection of Low Copy Number Integrated Viral DNA Formed by In Vitro Hepatitis B Infection

Oppdagelse av lavt kopi nummer integrert virus-DNA dannet av In Vitro hepatitt B-smitte

Hepatitis B Virus (HBV) is a common blood-borne pathogen causing liver cancer and liver cirrhosis resulting from chronic infection. The virus generally ...

Imaging Cell Interaction in Tracheal Mucosa During Influenza Virus Infection Using Two-photon Intravital Microscopy

Bildebehandling celle interaksjon i Tracheal Mucosa under influensa Virus smitte med to-fotonet Intravital mikroskopi

The analysis of cell-cell or cell-pathogen interaction in vivo is an important tool to understand the dynamics of the immune response to infection. ...

Establishment and Analysis of Tumor Slice Explants As a Prerequisite for Diagnostic Testing

Etablering og analyse av Tumor Slice Explants er en forutsetning for diagnostiske tester

Organotypic primary tissue explant cultures, which include precision-cut slices, represent the three-dimensional (3-D) tissue architecture as well as the ...

Toxicity Study of Zinc Oxide Nanoparticles in Cell Culture and in Drosophila melanogaster

Toxicity Study of Zinc Oxide Nanoparticles in Cell Culture and in Drosophila melanogaster

Toksisitet studie av sink oksid nanopartikler i Cell kultur og i Drosophila melanogaster

Zinc oxide nanoparticles (ZnO NPs) have a wide range of applications, but the number of reports on ZnO NP-associated toxicity has grown rapidly in recent ...