Name: functional magnetic resonance spectroscopy at 7 t in the rat barrel cortex during whisker activation
Uploaded: 2019-02-08T14:00:00
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Este trabalho foi financiado pela subvenção LabEx trilha, referência ANR-10-LABX-57 e um franco-suíço ANR-FNS concede referência ANR-15-CE37-0012. Os autores Aurélien Trotier agradecer seu suporte técnico.

Todos os procedimentos de animais foram conduzidos em conformidade com as diretrizes de Experimentação Animal da Directiva do Conselho das Comunidades Europeias de 24 de novembro de 1986 (86/609/CEE). O protocolo conheceu as diretrizes éticas do Ministério francês de agricultura e florestas e foi aprovado pelas comissões de ética locais (Comitê d 'éthique pour l'' expérimentation Animale Bordeaux n ° 50112090-A).
Nota: Durante as medições do senhor, um nível adequado de anestesia...

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D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+review+of+the+physiological+effects+of+alpha2-agonists+related+to+the+clinical+use+of+medetomidine+in+small+animal+practice.">A review of the physiological effects of alpha2-agonists related to the clinical use of medetomidine in small animal practice.</a> Canadian Veterinary Journal. 44, 885-897 (2003).</li><li>Weber, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+fully+noninvasive+and+robust+experimental+protocol+for+longitudinal+fMRI+studies+in+the+rat.">A fully noninvasive and robust experimental protocol for longitudinal fMRI studies in the rat.</a> Neuroimage. 29, 1303-1310 (2006).</li><li>Hartmann, M. J., Johnson, N. J., Towal, R. B., Assad, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mechanical+characteristics+of+rat+vibrissae:+resonant+frequencies+and+damping+in+isolated+whiskers+and+in+the+awake+behaving+animal.">Mechanical characteristics of rat vibrissae: resonant frequencies and damping in isolated whiskers and in the awake behaving animal.</a> The Journal of Neuroscience. 23, 6510-6519 (2003).</li><li>Prichard, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Lactate+rise+detected+by+1H+NMR+in+human+visual+cortex+during+physiologic+stimulation.">Lactate rise detected by 1H NMR in human visual cortex during physiologic stimulation.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 88, 5829-5831 (1991).</li><li>Sappey-Marinier, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+photic+stimulation+on+human+visual+cortex+lactate+and+phosphates+using+1H+and+31P+magnetic+resonance+spectroscopy.">Effect of photic stimulation on human visual cortex lactate and phosphates using 1H and 31P magnetic resonance spectroscopy.</a> Journal of Cerebral Blood Flow &amp; Metabolism. 12, 584-592 (1992).</li><li>Mazuel, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+neuronal+MCT2+knockdown+in+the+rat+somatosensory+cortex+reduces+both+the+NMR+lactate+signal+and+the+BOLD+response+during+whisker+stimulation.">A neuronal MCT2 knockdown in the rat somatosensory cortex reduces both the NMR lactate signal and the BOLD response during whisker stimulation.</a> PLoS One. 12, e0174990 (2017).</li><li>Castellano, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=NAA+and+NAAG+variation+in+neuronal+activation+during+visual+stimulation.">NAA and NAAG variation in neuronal activation during visual stimulation.</a> Brazilian Journal of Medical and Biological Research. 45, 1031-1036 (2012).</li><li>Sarchielli, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Functional+1H-MRS+findings+in+migraine+patients+with+and+without+aura+assessed+interictally.">Functional 1H-MRS findings in migraine patients with and without aura assessed interictally.</a> Neuroimage. 24, 1025-1031 (2005).</li><li>Baslow, M. H., Hrabe, J., Guilfoyle, D. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dynamic+relationship+between+neurostimulation+and+N-acetylaspartate+metabolism+in+the+human+visual+cortex:+evidence+that+NAA+functions+as+a+molecular+water+pump+during+visual+stimulation.">Dynamic relationship between neurostimulation and N-acetylaspartate metabolism in the human visual cortex: evidence that NAA functions as a molecular water pump during visual stimulation.</a> Journal of Molecular Neuroscience. 32, 235-245 (2007).</li><li>Mangia, S., Tkac, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dynamic+relationship+between+neurostimulation+and+N-acetylaspartate+metabolism+in+the+human+visual+cortex:+evidence+that+NAA+functions+as+a+molecular+water+pump+during+visual+stimulation.">Dynamic relationship between neurostimulation and N-acetylaspartate metabolism in the human visual cortex: evidence that NAA functions as a molecular water pump during visual stimulation.</a> Journal of Molecular Neuroscience. 35, 245-248 (2008).</li><li>Baslow, M. H., Hrabal, R., Guilfoyle, D. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Response+of+the+authors+to+the+Letter+by+Silvia+Mangia+and+Ivan+Tkac.">Response of the authors to the Letter by Silvia Mangia and Ivan Tkac.</a> Journal of Molecular Neuroscience. 35, 247-248 (2008).</li><li>Barros, L. F., Weber, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CrossTalk+proposal:+an+important+astrocyte-to-neuron+lactate+shuttle+couples+neuronal+activity+to+glucose+utilisation+in+the+brain.">CrossTalk proposal: an important astrocyte-to-neuron lactate shuttle couples neuronal activity to glucose utilisation in the brain.</a> The Journal of Physiology. 596, 347-350 (2018).</li><li>Bak, L. K., Walls, A. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CrossTalk+opposing+view:+lack+of+evidence+supporting+an+astrocyte-to-neuron+lactate+shuttle+coupling+neuronal+activity+to+glucose+utilisation+in+the+brain.">CrossTalk opposing view: lack of evidence supporting an astrocyte-to-neuron lactate shuttle coupling neuronal activity to glucose utilisation in the brain.</a> The Journal of Physiology. 596, 351-353 (2018).</li></ol>

O córtex de tambor, também chamado S1BF para o córtex somatossensorial ou barril de campo, é uma região dentro da camada cortical IV que pode ser observada usando o citocromo c oxidase coloração9, e sua organização é bem conhecida, uma vez que foi amplamente descrito 10,11. Um vibrissa é conectado a um barril, no qual cerca de 19.000 neurônios organizam-se em uma coluna de12. O caminho do córtex whisker...

O cérebro possui mecanismos intrínsecos que permitem a regulação do seu principal substrato (ou seja, glicose), tanto por sua contribuição e sua utilização, dependendo de variações na atividade cerebral local. Embora a glicose é o substrato principal energia para o cérebro, experimentos realizados nos últimos anos têm mostrado que lactato, que é produzido pelos astrócitos, poderia ser um substrato de energia eficiente para os neurônios. Isto levanta a hipótese de uma nave de lactato entre astrócitos e neurônios1. Conhecido como ANLS, para transporte de lactato neurônio astrocyte2, a teoria é ainda altamente controversa, mas levou a proposta a glicose, ao invés de ir diretamente para os neurônios, podem entrar os astrócitos, onde é metabolizado em lactato, um metabólito que é , em seguida, transferido para os neurônios, que usá-lo como substrato de energia eficiente. Se um serviço de transporte existe na vivo, ele teria várias consequências importantes, tanto para a compreensão das técnicas básicas em funcionais de imagem cerebral (tomografia por emissão de pósitrons [PET]) e para decifrar as alterações metabólicas observadas em patologias do cérebro.
Para estudar o metabolismo cerebral e, particularmente, metabólicas interações entre neurônios e astrócitos, quatro principais técnicas estão disponíveis (não incluindo micro-/ nanosensors): autoradiografia, PET, microscopia confocal fluorescente de dois fotões e MRS. Autoradiografia foi um dos primeiros métodos propostos e fornece imagens da acumulação regional de radioactivo 14C-2-deoxyglucose em fatias do cérebro, enquanto PET rendimentos na vivo imagens de captação regional de radioativo 18 F-deoxyglucose. Ambos têm a desvantagem de usar as moléculas ao produzir imagens de baixa-resolução. Microscopia de dois fotões fornece celular resolução de sondas fluorescentes, mas espalhamento de luz por tecido limita a profundidade de imagem. Estas três técnicas foram usadas anteriormente para estudar neuroenergetics em roedores durante estimulação Suiça3,4,5,de6. Na vivo MRS tem a dupla vantagem de ser não-invasiva e nonradioactive, e qualquer estrutura cerebral pode ser explorada. Além disso, a MRS pode ser executada durante a ativação neuronal, uma técnica chamada MRS funcional (fMRS), que tem sido desenvolvido muito recentemente em roedores7. Portanto, propõe-se um protocolo para monitorar o metabolismo do cérebro durante a atividade cerebral por 1H-MRS na vivo e de forma não invasiva. O procedimento é descrito em ratos adultos saudáveis com ativação cerebral obtida por uma estimulação de whisker ar-sopro executada diretamente em uma imagem de ressonância magnética (RM) T 7, mas pode ser adaptado em animais geneticamente modificados, assim como em qualquer condição patológica .

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>0.5 mL syringe with needle</td>
			<td>Becton, Dickinson and Company, USA</td>
			<td>2020-10</td>
			<td>0.33 mm (29 G) x 12.7 mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1H spectroscopy surface coil</td>
			<td>Bruker, Ettlingen, Germany</td>
			<td>T116344</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>7T Bruker Biospec system</td>
			<td>Bruker, Ettlingen, Germany</td>
			<td>70/20 USR</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Arduino Uno based pulsing device</td>
			<td>custom made</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Atipamezole</td>
			<td>V&#233;toquinol, S.A., France</td>
			<td>V8335602</td>
			<td>Antisedan, 4.28 mg</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Breathing mask</td>
			<td>custom made</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Eye ointment</td>
			<td>TVM laboratoire, France</td>
			<td>40365</td>
			<td>Ocry gel 10 g</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Induction chamber</td>
			<td>custom made</td>
			<td></td>
			<td>30x17x15 cm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Inlet flexible pipe</td>
			<td>Gardena, Germany</td>
			<td>1348-20</td>
			<td>4.6-mm diameter, 3m long</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isoflurane pump, Model 100 series vaporizer, classic T3</td>
			<td>Surgivet, Harvard Apparatus</td>
			<td>WWV90TT</td>
			<td>from OH 43017, U.S.A</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isoflurane, liquid for inhalation</td>
			<td>Vertflurane, Virbac, France</td>
			<td>QN01AB06</td>
			<td>1000 mg/mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>KD Scientific syringe pump</td>
			<td>KD sientific, Holliston, USA</td>
			<td>Legato 110</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>LCModel software</td>
			<td>LCModel Inc., Ontario, Canada</td>
			<td>6.2</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Medetomidine hydrochloride</td>
			<td>V&#233;toquinol, S.A., France</td>
			<td>QN05CM91</td>
			<td>Domitor, 1 mg/mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micropore roll of adhesive plaster</td>
			<td>3M micropore, Minnesota, United States</td>
			<td>MI912</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micropore roll of adhesive plaster</td>
			<td>3M micropore, Minnesota, United States</td>
			<td>MI925</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Monitoring system of physiologic parameter</td>
			<td>SA Instruments, Inc, Stony Brook, NY, USA</td>
			<td>Model 1025</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaCl</td>
			<td>Fresenius Kabi, Germany</td>
			<td>B05XA03</td>
			<td>0.9 % 250 mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Outlet flexible pipe</td>
			<td>Gardena, Germany</td>
			<td>1348-20</td>
			<td>4.6-mm diameter, 4m long</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Paravision software</td>
			<td>Bruker, Ettlingen, Germany</td>
			<td>6.0.1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Peripheral intravenous catheter</td>
			<td>Terumo, Shibuya, Tokyo, Japon</td>
			<td>SP500930S</td>
			<td>22 G x 1&#34;, 0.85x25 mm, 35 mL/min</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rat head coil</td>
			<td>Bruker, Ettlingen, Germany</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodic heparin, injectable solution</td>
			<td>Choai, Sanofi, Paris, France</td>
			<td>B01AB01</td>
			<td>5000 IU/mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Solenoid control valves, plunger valve 2/2 way direct-acting</td>
			<td>Burkert, Germany</td>
			<td>3099939</td>
			<td>Model type 6013</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Terumo 2 ml syringe</td>
			<td>Terumo, Shibuya, Tokyo, Japon</td>
			<td>SY243</td>
			<td>with 21 g x 5/8&#34; needle</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Terumo 5 mL syringe</td>
			<td>Terumo, Shibuya, Tokyo, Japon</td>
			<td>05SE1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Wistar RJ-Han rats</td>
			<td>Janvier Laboratories, France</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

functional magnetic resonance spectroscopy at 7 t in the rat barrel cortex during whisker activation

Espectroscopia de ressonância magnética nuclear (NMR) oferece a oportunidade de medir metabólito cerebral conteúdo em vivo e de forma não invasiva. Graças a evolução tecnológica ao longo da última década e o aumento da intensidade do campo magnético, é agora possível obter boa resolução espectros na vivo no cérebro de ratos. Neuroenergetics (ou seja, o estudo do metabolismo cerebral) e, especialmente, metabólicas interações entre os diferentes tipos de células têm atraído cada vez mais interesse nos últimos anos. Entre estas interações metabólicas, a existência de um serviço de transporte de lactato entre neurônios e astrócitos ainda é debatida. É, assim, de grande interesse para realizar espectroscopia de ressonância magnética funcional próton (1H-MRS) em um modelo do rato de lactato de monitor e ativação do cérebro. No entanto, o pico de lactato de metila sobrepõe-se picos de ressonância de lipídios e é difícil de quantificar. O protocolo descrito abaixo permite metabólico e lactato flutuações para ser monitorado em uma área do cérebro ativada. Ativação cerebral é obtida pela estimulação dos whiskers e 1H-MRS é executada no córtex ativado barril correspondente, cuja área é detectada usando sangue-oxigénio-dependente de nível ressonância magnética funcional (fMRI bold (realce)). Todas as etapas são descritas: a escolha dos anestésicos, bobinas e sequências, alcançar a estimulação eficiente whisker diretamente no ímã e processamento de dados.

Este protocolo permite a quantificação das flutuações do metabólito durante a ativação cerebral, que é obtida pela estimulação dos whiskers certo diretamente no imã.
Neste estudo, o objetivo geral de fMRI bold (realce) foi verificar que a estimulação dos whiskers era eficiente, para visualizar a área de S1BF registrada e para localizar corretamente o voxel para 1H-fMRS. O dispositivo construído para ati...

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Functional Magnetic Resonance Spectroscopy at 7 T in the Rat Barrel Cortex During Whisker Activation

Funcionais de ressonância magnética espectroscopia em 7 T no córtex de barril de rato durante a ativação dos whiskers

Após a verificação pelo sangue-oxigénio-dependente de nível funcional de ressonância magnética (fMRI bold (realce)) que a área correspondente do córtex campo barril somatossensorial (chamada S1BF) corretamente é ativado, o principal objetivo deste estudo é quantificar o teor de lactato flutuações nos cérebros rato ativado por espectroscopia de ressonância magnética de prótons localizados (1H-MRS) em 7 T.

Nuclear magnetic resonance (NMR) spectroscopy offers the opportunity to measure cerebral metabolite contents in vivo and noninvasively. Thanks to ...

Este método pode ajudar a responder perguntas-chave no campo da neurogenia e decifrar as alterações metabólicas que ocorrem entre o repouso e os estados ativados. A principal vantagem dessa técnica é acompanhar essa variação in vivo em tempo real de forma não invasiva. Notavelmente essa técnica pode ser aplicada a animais patológicos ou geneticamente modificados, por exemplo, para determinar o papel de uma proteína específica na interação metabólica entre neurônios e lyocélulas. Comece colocando um sensor de respiração na cama do ímã e transferindo o rato para a cama de ímã na posição propensa com seu nariz na máscara isoflurane e com o sensor de respiração localizado entre a caixa torácica e a cama de ímã. Certifique-se de que os bigodes certos estão livres e proteja o rato com fita adesiva. Use fita para fazer uma venda que aprisione todos os bigodes certos e alinhe o tubo de saída flexível do sistema de sopro de ar ao longo da cama de ressonância magnética de rato para que a parte que sai do tubo seja perpendicular e cerca de um centímetro e meio da venda. Em seguida, fixe o tubo em posição com mais fita. Em seguida, conecte o tubo de entrada flexível de uma fonte de ar comprimido a uma entrada da válvula de controle solenoide e o tubo de saída à saída da válvula de controle solenoide, tomando cuidado para que a válvula de controle do solenoide permaneça fora da sala de ímã. Use a porta transistor-lógica transistor para conectar o dispositivo pulsante na válvula solenoide e no ímã e configure o dispositivo para que a frequência de pulsação seja de oito Hertz, o tempo de pulsação seja de 20 segundos e o tempo de descanso seja de 10 segundos. Para estimulação do bigode coloque o rato com o cérebro em uma posição vertical e fixe o animal com barras de ouvido. Coloque a bobina do conjunto de volumes acima da cabeça e fixe a matriz com fita. Ligue o sistema puff de ar para verificar se a venda se move na direção anteroposterior sem rotação e sem atrito. Em seguida, desligue o sistema de sopro de ar e coloque a bobina da extremidade da cama no centro do ímã. Para a ressonância funcional dependente do nível de oxigênio no sangue, verifique novamente o movimento de venda e use uma sequência de localização para confirmar que o rato está bem posicionado. Arraste a guia sequência de localizador para o nome de instrução e clique em continuar. Se o local estiver bem arraste a guia de sequência T2 Star FID EPI para o nome de instrução, centralize o campo de visão no meio do cérebro e clique na plataforma de ajuste para abrir a instrução de digitalização editada. Em seguida, grave um mapa B0 e inicie a sequência T2 Star FID EPI. Adquira outra sequência de localização como apenas demonstrou para comparar com a primeira e verificar se o rato se moveu durante a sequência T2 Star FID EPI. Em seguida, devolva a cama à sua posição inicial e remova a bobina da matriz de volume. Para processar as imagens abra o arquivo T2 Star FID EPI e leia a imagem T2 Star FID EPI no visor de imagem. Abra a janela inicial do controlador funcional e na guia de processamento selecione a janela de imagem funcional. Defina o protocolo de estimulação e selecione a janela de protocolo, definindo o período on para 40 e o período de folga para 20.Clique na atribuição de inverter e arraste o controle deslizante do estado de estimulação para a esquerda para selecionar um valor de um. Na janela de pré-processamento, defina o filtro mediano em forma simples para pré-processamento e o filtro mediano 2D 3D para pós-processamento. Em seguida, clique em executar. Arraste os cursores para ajustar a tabela de procuração de sobreposição e visualize a área cerebral ativada. Para posicionar corretamente a bobina superficial para espectroscopia de ressonância magnética de prótons ou MRS, gire a cabeça aproximadamente 30 graus no sentido horário para que a bobina da superfície possa ser colocada logo acima do córtex do barril esquerdo em uma posição horizontal e localizada no centro do ímã quando estiver dentro do ímã. Conecte a bobina de superfície e fixe a bobina no lugar com fita adesiva. Verifique se a venda ainda pode se mover corretamente quando o sistema puff de ar estiver ligado. Em seguida, coloque a cama no ímã e verifique o movimento de venda novamente.Confirme a posição correta do animal com a sequência de localização como demonstrado e arraste a guia sequência T2-TurboRARE para a janela do nome de instrução. Em seguida, clique em continuar a executar o programa de varredura e para permitir a localização correta do voxel dentro do córtex de campo do barril somatosensorial. No final da varredura arraste a guia de sequência de laser para a janela do nome de instrução e coloque o voxel no centro da área do córtex do campo do barril somatosensorial. Clique na plataforma de ajuste para abrir a instrução de digitalização editada e clique em oscilar para alterar ligeiramente a impedância da bobina receptora para afinação. Quando a sintonia estiver concluída, clique em solicitar fechar o editor de instruções e aplicar as alterações na instrução editada. Registo um mapa B0 e inicie a aquisição pro diem MRS durante um período de descanso. Adquira outra sequência de localização para comparar com a primeira e confirmar que o rato não se moveu durante a aquisição a laser. Em seguida, ligue o sistema puff de ar e use a sequência de laser para executar um segundo próton MRS. Realize uma sequência final de localização para verificar se o rato se moveu antes de devolver a cama à sua posição inicial. Em seguida, remova a bobina da superfície e devolva o rato ao banco com monitoramento até a recuperação completa. Para processar as imagens MRS abra a combinação linear de espectro de modelo ou software modelo LC e selecione o tipo de dados e arquivo apropriados. Clique bem e na seção título digite manualmente um título e defina uma faixa de peças adequadas por mililitro. Em seguida, clique em executar o modelo LC para iniciar a quantificação do modelo LC. Quando os bigodes direito são estimulados usando o sistema puff de ar caseiro como demonstrado um sinal BOLD positivo é detectado no córtex do barril esquerdo, também chamado de campo de barril somatosensorial. Usando imagens de ressonância magnética anatômica e um esquema de atlas cerebral de rato, a área cerebral ativada visualizada pela ressonância magnética funcional BOLD permite que um voxel seja colocado na área do campo do barril somatosensorial que é ativado durante a estimulação do bigode. Quando o paradigma para a estimulação do bigode é ligado em um aumento no teor de lactato é observado no campo do barril somatosensorial esquerdo. Para melhor visualizar as flutuações metabólicas entre períodos de repouso e ativados, uma subtração espectral pode ser realizada. A partir deste espectro subtraído o aumento do teor de lactato com ativação cerebral pode ser visualizado muito mais facilmente. Por exemplo, neste rato, o sinal N-Acetylaspartate foi ligeiramente diminuído. Enquanto o pico de lactato dificilmente é detectado neste espectro de desconvolução in vivo no resto, o modelo LC foi capaz de quantificar o pico com uma boa precisão e Cram

Research

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