Name: assembling molecular shuttles powered by reversibly attached kinesins
Uploaded: 2019-01-26T14:45:00
Duration: 8 min 4 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Assembling Molecular Shuttles Powered by Reversibly Attached Kinesins at JoVE.com

Os autores reconhecem com gratidão apoio financeiro sob concessão NSF 1807514 NSF-DMR. Os autores agradecer Bachand G. e V. Vandelinder para fornecer a proteína GFP-cinesina. Este trabalho foi realizado, em parte, do centro de integrado de nanotecnologias, operado de uma instalação de usuário do Office da ciência para o escritório da ciência nos departamento de energia (DOE), pelo laboratório nacional de Los Alamos (contrato n. DE-AC52-06NA25396) e Sandia National Laboratories (con-tracto n º 97 DE-AC04-94AL85000). Os autores Obrigado Dr. Jennifer Neff e AllVivo Vascular para o dom do PEG-PPG-PEG acrescida com NTA.

1. preparação da solução
Atenção: Três dos reagentes usados no presente protocolo (tolueno, dimetildiclorossilano e ditiotreitol) são altamente tóxicos. Por favor, consulte as fichas de dados de segurança relevantes (MSDS) antes do uso. Além disso, as partes do presente protocolo precisam ser executada sob um maior nível de proteção, usando óculos de segurança e dois pares de luvas de protecção conforme indicado. A menos que caso contrário aconselhou, as experiências podem ser executadas em bancadas de laboratório durante o uso de todo o equipamento de protecção adequado (óculos de segurança, luvas, jaleco, calça comprida e sapatos fechados).
Nota: As concentrações do ATP, cinesina e microtúbulos que são utilizados no presente protocolo podem ser modificadas tendo em conta as necessidades de cada experimento. No entanto, se modificado, por favor, certifique-se que as concentrações finais dos outros reagentes permanecem os mesmos como dado abaixo. Todos os experimentos foram realizados em temperatura ambiente, (~ 25 ° C).
<ol><li>Preparação das soluções estoque Nota: Preparar e alíquota as seguintes soluções de antemão. Todas as alíquotas podem ser preparadas à temperatura ambiente (~ 25 ° C).<ol>
<li>
Buffer de BRB80 Nota: A reserva para a maioria das soluções utilizadas neste protocolo é BRB80. BRB80 pode ser preparado em grandes quantidades e armazenado em um freezer-20 ° C.<ol>
<li>Dissolver 24,2 g de piperazina-N, n-bis(2-ethanesulfonic acid) (tubos) e 3,1 g de hidróxido de potássio (KOH) em 800 mL de água desionizada para fazer 800 mL de tubos de 100 mM. Adicione 100 mL de 10 mM de cloreto de magnésio (MgCl2) e 100 mL de ácido de 10mm etilenoglicol etilenodiaminotetracético (EGTA) para obter um volume final de 1 L. elevando o pH a 8 com hidróxido de potássio (KOH) pode ajudar na dissolução dos tubos e EGTA. Nota: As concentrações finais dos produtos químicos no buffer BRB80 são tubos de 80 mM, 1 mM MgCl2e 1 mM EGTA.</li>
			<li>Ajuste o pH da reserva para 6,9 usando KOH e ácido clorídrico (HCl).</li>
		</ol>
</li>
		<li>
ATP
		<ol>
<li>Prepare uma solução de 1 mL de 100mm ATP em água ultrapura. A solução em 10 alíquotas μL de pipeta. Armazene as alíquotas em um freezer-80 ° C.</li>
		</ol>
</li>
		<li>
GTP
		<ol>
<li>Prepare uma solução μL 500 de 25mm GTP em água ultrapura. A solução em 5 alíquotas μL de pipeta. Armazene as alíquotas em um freezer-80 ° C.</li>
		</ol>
</li>
		<li>
MgCl2
		<ol>
<li>Prepare uma solução de 1 mL de 100 mM MgCl2 em água ultrapura. A solução em 10 alíquotas μL de pipeta. Armazene as alíquotas em um congelador-20 ° C.</li>
		</ol>
</li>
		<li>
Caseína
		<ol>
<li>Pesar 1 g de caseína seca e transferir para um tubo de centrifuga conico de 50 mL. Adicione 35 mL de tampão de BRB80 para o tubo para dissolver o pó de caseína.</li>
			<li>Coloque a solução em um copo em uma sala fria a dissolver-se durante a noite. Neste ponto, a solução ficará espesso e viscoso.</li>
			<li>Deixe o tubo na posição vertical em uma geladeira de 4 ° C para permitir qualquer grandes aglomerações não dissolvidas resolver. Transferi o sobrenadante para um tubo novo.</li>
			<li>Gire o tubo em uma centrífuga a 1.000 x g a pelota para fora mais precipitados. Mais uma vez, transferi o sobrenadante para um tubo novo.</li>
			<li>Repetidamente, filtre a solução usando filtros de 0,2 μm (7 bar pressão máxima). A solução a ser grosso, muitos filtros vão entupir, Então repita este passo até que o filtro é claro e desentupi.</li>
			<li>Determine a concentração de caseína na solução resultante utilizando espectrofotometria UV/Vis, usando o coeficiente de extinção da caseína de 19 mM-1∙cm-1 a 280 nm20. Assumindo um peso molecular de 23 kDa para caseína, dilua a solução com uma concentração de 20 mg∙mL-1 em BRB80.</li>
			<li>A solução em 20 alíquotas μL de pipeta e armazenar as alíquotas em um congelador-20 ° C.</li>
		</ol>
</li>
		<li>
D-glicose
		<ol>
<li>Prepare uma solução de 1 mL de 2 M-D-glicose em água ultrapura. A solução em 10 alíquotas μL de pipeta. Armazene as alíquotas em um congelador-20 ° C.</li>
		</ol>
</li>
		<li>
Glicose oxidase
		<ol>
<li>Prepare uma solução de 1 mL de 20 mg∙mL-1 glicose oxidase em BRB80. A solução em 10 alíquotas μL de pipeta. Armazene as alíquotas em um congelador-20 ° C.</li>
		</ol>
</li>
		<li>
Catalase
		<ol>
<li>Prepare uma solução de 1 mL de 0,8 mg∙mL-1 catalase em BRB80. A solução em 10 alíquotas μL de pipeta. Armazene as alíquotas em um congelador-20 ° C.</li>
		</ol>
</li>
		<li>
Ditiotreitol (DTT) Nota: Desde que a TDT é ligeiramente voláteis e tóxicos, por favor, realize as seguintes etapas sob uma coifa.<ol>
<li>Prepare uma solução de 1 mL de 1 M DTT diluído em água ultrapura. A solução em 10 alíquotas μL de pipeta. Armazene as alíquotas em um congelador-20 ° C.</li>
		</ol>
</li>
		<li>
Paclitaxel
		<ol>
<li>Prepare uma solução de 1 mL de 1 mM paclitaxel diluído em DMSO. A solução em 10 alíquotas μL de pipeta. Armazene as alíquotas em um congelador-20 ° C.</li>
		</ol>
</li>
		<li>
Dimetilsulfóxido (DMSO) Nota: O DMSO usado nesses experimentos é puro.<ol>
<li>Pipetar 1 mL de DMSO puro em 10 alíquotas μL. Armazene as alíquotas em um congelador-20 ° C.</li>
		</ol>
</li>
		<li>
Fosfato de creatina
		<ol>
<li>Prepare uma solução de 1 mL de 0,2 M de fosfato de creatina em água ultrapura. A solução em 10 alíquotas μL de pipeta. Armazene as alíquotas em um congelador-20 ° C.</li>
		</ol>
</li>
		<li>
Creatina fosfoquinase
		<ol>
<li>Preparar uma solução de 1 mL de 200 units· L-1 creatina fosfoquinase em água ultrapura. A solução em 10 alíquotas μL de pipeta. Armazene as alíquotas em um congelador-20 ° C.</li>
		</ol>
</li>
		<li>
Sulfato de níquel (II)
		<ol>
<li>Prepare 500 mL de uma solução de sulfato de níquel (II) de 50 mM em água ultrapura. Armazene a solução à temperatura ambiente (~ 25 ° C).</li>
		</ol>
</li>
		<li>
Poly(Ethylene glycol)-bloco-poly(propylene glycol)-bloco-poly(ethylene glycol) (PEG-PPG-PEG) solução
		<ol>
<li>Pesar 2 mg de PEG-PPG-PEG (número peso molecular médio: 14.600 g∙mol-1)-pó NTA no papel de pesagem. PEG-PPG-PEG-NTA é o copolímero tribloco acrescido com um grupo de (NTA) ácido nitrilotriacético. Consulte a Tabela de materiais para mais detalhes sobre o PEG-PPG-PEG-NTA.</li>
			<li>Transferi o pó em um tubo de microcentrifugadora de 1,5 mL. Adicione 1 mL da solução de sulfato de níquel (II) ao tubo. Vórtice até que o pó é dissolvido e não aglomerados visíveis permanecem.</li>
			<li>Armazenamento para até um mês em temperatura ambiente.</li>
		</ol>
</li>
	</ol></li>
	<li>Antes de iniciar um experimento
	<ol>
<li>Encha um balde com gelo.</li>
		<li>Tomar uma alíquota de cada um dos 13 reagentes descritos nas seções 1.1.1 para 1.1.13 acima e adicioná-los para o balde, assim, mantê-los no gelo. Descongele a cada um dos reagentes antes de usar.</li>
	</ol></li>
	<li>Preparação do microtubule Nota: Os microtúbulos foram polimerizados de uma alíquota de 20 μg de tubulina liofilizada tingir-etiquetados. O comprimento de onda de excitação da tintura é de 647 nm.<ol>
<li>
Preparação do buffer microtubule crescimento
		<ol>
<li>Pipeta 21,8 μL de tampão de BRB80 em microcentrifuga pequeno (0,6 mL) do tubo. Adicione 1 μL da solução-mãe MgCl2 , 1 μL da solução-mãe GTP e 1,2 μL da solução-mãe DMSO. Nota: Assim, as concentrações finais dos reagentes no buffer BRB80 são 4 mM MgCl2, 1mm GTP e dimetilsulfóxido 5% (v/v).</li>
		</ol>
</li>
		<li>
Polimerização de microtúbulos
		<ol>
<li>Adicione 6,25 μL de tampão de crescimento do microtúbulo diretamente em uma alíquota de 20 μg de tubulina liofilizada rotulada. Vórtice da alíquota para 5 s em 30 rps.</li>
			<li>Arrefecer a alíquota no gelo por 5 min antes a incubar a 37 ° C por 45 min e prossiga para a seção 1.3.3.</li>
		</ol>
</li>
		<li>
Estabilização do microtubule
		<ol>
<li>Adicione 5 μL da solução de paclitaxel aliquotadas para 490 μL de tampão de BRB80. Vórtice a solução por 10 s em 30 rps.</li>
			<li>Uma vez que a 45 min de incubação para os microtúbulos estão acima, adicione 5 μL da solução microtubule polimerizado para a solução de BRB80/paclitaxel. Nota: Esta solução de 100 vezes do microtubule diluído, estabilizada, será doravante referida como MT100. Ele pode ser usado por até 5 dias, e ele pode ser diluído para obter a densidade desejada microtubule para cada experimento.</li>
		</ol>
</li>
	</ol></li>
	<li>Solução de mobilidade
	<ol>
<li>
Media enzimática e sistema de regeneração de ATP ATP
		<ol>
<li>Adicione 9.0 μL da solução de caseína aliquotadas para 291 μL de tampão de BRB80.</li>
			<li>Se a concentração de ATP desejada para o experimento é inferior a 1 mM, pipetar 83 μL da solução de caseína/BRB80 para um novo tubo de microcentrifuga de 0,6 mL. Caso contrário, pipetar 85 μL dessa solução para um novo tubo de microcentrifuga de 0,6 mL.</li>
			<li>Adicione 1 μL de D-glicose, 1 μL de glicose oxidase, 1 μL de catalase e 1 μL de TDT para esse tubo. Nota: Estes produtos químicos constituem um enzimático antidesgaste coquetel21 que irá reduzir o fotobranqueamento removendo dissolvido radicais reativos de oxigênio e têmpera. Isso reduz o fotobranqueamento e microtubule desintegração causada pela iluminação da excitação durante a fluorescência de imagem22,23.</li>
			<li>Para experiências em que a concentração de ATP é escolhida para ser significativamente inferior a 1 mM, adicionar os seguintes reagentes a solução para criar um sistema de regeneração de ATP: 1 μL de solução de fosfato de creatina aliquotadas e 1 μL da creatina aliquotada fosfoquinase solução.</li>
			<li>Adicione 1 μL da solução ATP para a solução de mobilidade. Súbito ou vórtice alíquota homogênea, distribuir os produtos químicos. Nota: Assim, a concentração final de produtos químicos na solução são 10 μM paclitaxel, 0,5 mg·mL− 1 caseína, 20 mM D-glicose, 200 μg·mL− 1 glicose oxidase, 8 μg·mL− 1 da catalase, ditiotreitol 10 mM, 2 mM fosfato de creatina (se adicionados), 2 Units· L− 1 creatina fosfoquinase (se adicionado) e 1 mM de ATP. Esta solução será daqui em diante referida como a solução de mobilidade.</li>
		</ol>
</li>
		<li>
Cinesina Nota: A solução de estoque cinesina usada nesses experimentos é preparada pela G. Bachand no centro para nanotecnologias integradas no Sandia National Laboratories e disponibilizada sob um contrato de usuário (https://cint.lanl.gov/becoming-user/call-for-proposals.php). O buffer usado aqui consiste de imidazol 40 mM, 300 mM de NaCl, 0.76 g · L-1 EGTA, 37,2 mg· L-1 EDTA, 50 g · L-1 sacarose, 0,2 mM TCEP e 50 μM Mg-ATP. Para esta série de experimentos, utilizou-se a construção da cinesina rkin430eGFP. Esta é uma cinesina, consistindo o primeiro 430 aminoácidos da cadeia pesada de cinesina de rato fundido a eGFP e um C-terminal His-tag na cauda domínio24. Ele foi expressa em Escherichia coli e purified usando uma coluna de Ni−NTA. A concentração da solução-mãe GFP-cinesina foi de 1,8 ± 0,3 μM, conforme determinado por espectrofotometria UV/Vis, utilizando um coeficiente de extinção para GFP de 55mm-1·cm-1 às 489 nm25, e tendo em conta que a cinesina é um dímero.<ol>
<li>Determine a densidade de concentração ou superfície cinesina desejado para o experimento. Para ensaios típicos, esta concentração é de 20 nM. Se a concentração de cinesina precisa ser diluído mais de cem vezes mais, diluí-la em uma solução de BRB80 que contém mg·mL 0,5-1 da caseína.</li>
			<li>Adicionar 1 µ l de solução cinesina para a solução de mobilidade para obter uma concentração final de aproximadamente 20 nM.</li>
		</ol>
</li>
		<li>
Microtúbulos
		<ol>
<li>Adicione 10 μL da solução MT100 preparada na seção 1.3 para a solução de mobilidade. Nota: Esta solução de mobilidade pode ser usada por até 3 horas. Após esse tempo, o sistema antidesgaste perde sua eficácia porque a glicose na solução está esgotada pela reação enzimática.</li>
		</ol>
</li>
	</ol></li>
</ol>2. montagem das células de fluxo
<ol><li>
Lavar as lamínulas
	<ol>
<li>Para células de fluxo, use uma grande lamela (dimensão: 60 x 25 mm) e um pequeno (dimensões: 22 x 22 mm)19.</li>
		<li>Lave todas as lamelas duas vezes com etanol e duas vezes com água ultrapura. Proceda à sonicação as lamelas em água ultrapura para 5 min. seque-os em um forno a uma temperatura de 50-75 ° C.</li>
		<li>Usando um UV/ozônio limpa (ver Tabela de materiais e as instruções do fabricante), tratar um lado de cada lamela durante 15 min. executar este passo pode, à temperatura ambiente (~ 25 ° C) e em condições atmosféricas normais (pressão de 1 atm).</li>
		<li>Vire cuidadosamente cada lamela para seu outro lado (usando uma pinça) e UV/ozônio tratar esse lado também.</li>
		<li>Proceda à sonicação as lamelas em água ultrapura novamente por 5 min antes da secagem-los novamente no forno a uma temperatura de 50-75 ° C.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Tratando as lamelas para habilitar PEG PEG-PPG revestimento Nota: O dimetildiclorossilano e o tolueno usado nesta parte do protocolo sendo altamente tóxico, execute as seguintes etapas sob uma coifa, ao tomar as seguintes precauções: usar dois pares de luvas de protecção e uma camisa de manga comprida, em seu laboratório casaco. Dobre as bordas das luvas dentro as mangas da camisa para que sem pele do antebraço é diretamente exposto aos produtos químicos no caso de um derrame. Use óculos de protecção.<ol>
<li>Dilua 25 mL de puro dimetildiclorossilano em 475 mL de tolueno. Mergulhe cada lamela na solução dimetildiclorossilano e tolueno durante 15 segundos.</li>
		<li>Lave as lamínulas duas vezes em tolueno e três vezes em metanol. Seque as lamelas usando nitrogênio pressurizado.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
As lamelas de montagem em células de fluxo
	<ol>
<li>Uma vez que as lamelas são secas, corte um pedaço de 2 x 2,5 cm de fita dupla-face verticalmente em listras de duas 1 x 2,5 cm.</li>
		<li>Ponha a lamela grande um limpador de tarefa delicada e fique nas listras de fita longitudinalmente ao longo das bordas da lamela para criar uma área de 1 x 2,5 cm entre os pedaços de fita.</li>
		<li>Vara pequena lamela em cima das listras de fita para terminar a montagem de célula de fluxo.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. fluxo das soluções em uma célula de fluxo
<ol><li>Fluxo de cerca de 20 μL da solução de PEG-PPG-PEG dentro da célula de fluxo montado. O volume que voou na célula deve ser grande o suficiente para encher a câmara. Nas próximas etapas, use o mesmo volume ao trocar as soluções.</li>
	<li>Permitem a solução de PEG-PPG-PEG absorver na superfície por 5 minutos. Troca a solução de PEG-PPG-PEG com buffer BRB80 3 vezes pelo fluxo de buffer em. Flua a solução de mobilidade para a célula de fluxo.</li>
	<li>Sele as bordas da célula de fluxo com graxa para evitar a evaporação, se o experimento planejado é mais de uma hora. Nota: A célula de fluxo está agora pronta para ser fotografada.</li>
</ol>4. imagem de uma célula de fluxo
<ol><li>Execute a imagem usando uma configuração de fluorescência (TIRF) objetivo-tipo de reflexão interna total para ambos os microtúbulos e os motores cinesina (ver Tabela de materiais). Nota: Aqui, nós usamos um microscópio com um x 100 / 1.49 lente objetiva de abertura numérica, usando dois lasers, um com um comprimento de onda de 642 nm e uma potência máxima de 140 mW e outro com comprimento de onda de 488 nm e uma potência máxima de 150 mW.</li>
	<li>Coloque uma gota de óleo de imersão sobre o objetivo.</li>
	<li>Coloque a pilha de fluxo na plataforma do microscópio e trazer o objectivo até há contato entre o óleo sobre o objectivo e a célula de fluxo.</li>
	<li>Use o sistema de cobertura do bloqueio do microscópio para bloquear toda a luz do laser escapem.</li>
	<li>Sobre o laser e focar-se na superfície inferior da célula de fluxo. Os microtúbulos fluorescente são rotulados e animados no comprimento de onda de 647 nm. Eles vão ser fotografados usando um laser de nm 642 enquanto um 488 nm do laser é usada para os motores de GFP-cinesina.</li>
	<li>Grave as imagens ou vídeos de interesse. Normalmente, a potência do laser é de cerca de 30 mW e um tempo de exposição de 50 ms para os dois canais de laser. Imagens podem ser gravadas por enquanto há motilidade na célula de fluxo. Nota: A iluminação laser é prejudicial para o olho nu e pode causar danos irreparáveis. Por favor, certifique-se que a área iluminada é completamente coberta com uma tampa opaca.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Vale, R. D., Reese, T. S., Sheetz, M. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+of+a+Novel+Force-Generating+Protein,+Kinesin,+Involved+in+Microtubule-Based+Motility.">Identification of a Novel Force-Generating Protein, Kinesin, Involved in Microtubule-Based Motility.</a> Cell. 42, 39-50 (1985).</li><li>Ray, S., Meyhofer, E., Milligan, R. A., Howard, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Kinesin+Follows+the+Microtubule's+Protofilament+Axis.">Kinesin Follows the Microtubule's Protofilament Axis.</a> Journal of Cell Biology. 121, 1083-1093 (1993).</li><li>Dennis, J. R., Howard, J., Vogel, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Molecular+shuttles:+directed+motion+of+microtubules+along+nanoscale+kinesin+tracks.">Molecular shuttles: directed motion of microtubules along nanoscale kinesin tracks.</a> Nanotechnology. 10, 232-236 (1999).</li><li>Kawamura, R., Kakugo, A., Osada, Y., Gong, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Microtubule+bundle+formation+driven+by+ATP:+the+effect+of+concentrations+of+kinesin,+streptavidin+and+microtubules.">Microtubule bundle formation driven by ATP: the effect of concentrations of kinesin, streptavidin and microtubules.</a> Nanotechnology. 21, 145603 (2010).</li><li>Korten, T., Chaudhuri, S., Tavkin, E., Braun, M., Diez, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Kinesin-1+Expressed+in+Insect+Cells+Improves+Microtubule+in+Vitro+Gliding+Performance,+Long-Term+Stability+and+Guiding+Efficiency+in+Nanostructures.">Kinesin-1 Expressed in Insect Cells Improves Microtubule in Vitro Gliding Performance, Long-Term Stability and Guiding Efficiency in Nanostructures.</a> IEEE Transactions on Nanobioscience. 15, 62-69 (2016).</li><li>Whitesides, G. M., Grzybowski, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Self-assembly+at+all+scales.">Self-assembly at all scales.</a> Science. 295, 2418-2421 (2002).</li><li>Ringler, P., Schulz, G. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Self-assembly+of+proteins+into+designed+networks.">Self-assembly of proteins into designed networks.</a> Science. 302, 106-109 (2003).</li><li>Boncheva, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Magnetic+self-assembly+of+three-dimensional+surfaces+from+planar+sheets.">Magnetic self-assembly of three-dimensional surfaces from planar sheets.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 102, 3924-3929 (2005).</li><li>England, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dissipative+adaptation+in+driven+self-assembly.">Dissipative adaptation in driven self-assembly.</a> Nature Nanotechnology. 10, 919 (2015).</li><li>Fialkowski, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Principles+and+Implementations+of+Dissipative+(Dynamic)+Self-Assembly.">Principles and Implementations of Dissipative (Dynamic) Self-Assembly.</a> The Journal of Physical Chemistry B. 110, 2482-2496 (2006).</li><li>Boncheva, M., Whitesides, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Self-healing+systems+having+a+design+stimulated+by+the+vertebrate+spine.">Self-healing systems having a design stimulated by the vertebrate spine.</a> Angewandte Chemie-International Edition. 42, 2644-2647 (2003).</li><li>Rubenstein, M., Cornejo, A., Nagpal, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Programmable+self-assembly+in+a+thousand-robot+swarm.">Programmable self-assembly in a thousand-robot swarm.</a> Science. 345, 795-799 (2014).</li><li>Plaisted, T. A., Vakil Amirkhizi, A., Arbelaez, D., Nemat-Nasser, S. C., Nemat-Nasser, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Self-healing+structural+composites+with+electromagnetic+functionality.">Self-healing structural composites with electromagnetic functionality.</a> Proceedings of the Society of Photo-Optical Instrumentation Engineers. 5054, 372-381 (2003).</li><li>Ghosh, S. K., Ghosh, S. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Self-Healing Materials. , 1-28 (2009).</li><li>Burnworth, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Optically+healable+supramolecular+polymers.">Optically healable supramolecular polymers.</a> Nature. 472, (2011).</li><li>Bachand, G. D., Spoerke, E. D., Stevens, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Microtubule-Based+Nanomaterials:+Exploiting+Nature's+Dynamic+Biopolymers.">Microtubule-Based Nanomaterials: Exploiting Nature's Dynamic Biopolymers.</a> Biotechnology and Bioengineering. 112, 1065-1073 (2015).</li><li>Gao, Y. W., Lei, F. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Small+scale+effects+on+the+mechanical+behaviors+of+protein+microtubules+based+on+the+nonlocal+elasticity+theory.">Small scale effects on the mechanical behaviors of protein microtubules based on the nonlocal elasticity theory.</a> Biochemical and Biophysical Research Communications. 387, 467-471 (2009).</li><li>Lam, A. T. -. C., Tsitkov, S., Zhang, Y., Hess, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reversibly+Bound+Kinesin-1+Motor+Proteins+Propelling+Microtubules+Demonstrate+Dynamic+Recruitment+of+Active+Building+Blocks.">Reversibly Bound Kinesin-1 Motor Proteins Propelling Microtubules Demonstrate Dynamic Recruitment of Active Building Blocks.</a> Nano Letters. 18, 1530-1534 (2018).</li><li>Howard, J., Hunt, A. J., Baek, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Assay+of+microtubule+movement+driven+by+single+kinesin+molecules.">Assay of microtubule movement driven by single kinesin molecules.</a> Methods in Cell Biology. 39, 137-147 (1993).</li><li>Huppertz, T., Fox, P. F., Kelly, A. L., Yada, R. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Proteins in Food Processing (Second Edition). , 49-92 (2018).</li><li>Wettermark, G., Borglund, E., Brolin, S. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+regenerating+system+for+studies+of+phosphoryl+transfer+from+ATP.">A regenerating system for studies of phosphoryl transfer from ATP.</a> Analytical Biochemistry. 22, 211-218 (1968).</li><li>Vigers, G. P. A., Coue, M., McIntosh, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fluorescent+Microtubules+Break+Up+Under+Illumination.">Fluorescent Microtubules Break Up Under Illumination.</a> Journal of Cell Biology. 107, 1011-1024 (1988).</li><li>Brunner, C., Hess, H., Ernst, K. -. H., Vogel, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Lifetime+of+biomolecules+in+hybrid+nanodevices.">Lifetime of biomolecules in hybrid nanodevices.</a> Nanotechnology. 15, S540-S548 (2004).</li><li>Rogers, K. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=KIF1D+is+a+fast+non-processive+kinesin+that+demonstrates+novel+K-loop-dependent+mechanochemistry.">KIF1D is a fast non-processive kinesin that demonstrates novel K-loop-dependent mechanochemistry.</a> EMBO Journal. 20, 5101-5113 (2001).</li><li>Patterson, G. H., Knobel, S. M., Sharif, W. D., Kain, S. R., Piston, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Use+of+the+green+fluorescent+protein+and+its+mutants+in+quantitative+fluorescence+microscopy.">Use of the green fluorescent protein and its mutants in quantitative fluorescence microscopy.</a> Biophysical Journal. 73, 2782-2790 (1997).</li></ol>

Os autores não têm nada para divulgar.

Neste trabalho, apresentamos um sistema ativo de nanoescala que auto monta fraca ligação de blocos de construção para construir sua própria pista. Como mostrado na Figura 1, deslizando os microtúbulos acumular cinesina motores de solução e depositá-los na superfície. Os motores da cinesina permanecem na sequência do microtubule por um curto período de tempo antes de retornar a solução. Assim, neste experimento, cinesina motores alternativos entre 3 Estados:
(1) um estado de single-limite do microtubule: isto é, quando uma cinesina primeiro vincula a um microtúbulo. Existe em equilíbrio com o estado (2).
(2) um estado limite a dupla: neste caso, uma cinesina single-limite do microtubule também vincula para a superfície através de sua sua marca. Este estado limite duplo permite a propulsão do microtubule.
(3) um único estado de superfície-limite: uma duplo limite cinesina que andou fora da extremidade do microtubule e tem não ainda em estudo dessorvida da superfície está neste estado. Estes motores podem ser observados na Figura 1 (canais combinados e verdes): eles estendem-se por trás de cauda da microtubule para vários micrômetros e formar seu rastro de diminuição.
A etapa mais crítica do presente protocolo é a formação da superfície hidrofóbica no slide. Não só ele usa produtos químicos perigosos, mas também permite que o PEG-PPG-PEG acrescida com o grupo de NAT para revestir a superfície, o que permite que a cinesina reversivelmente vincular à superfície. Outro passo importante é a vedação a célula de fluxo com graxa. Isso permite que para a imagem latente prolongada sem o líquido evaporando a célula de fluxo.
As modificações principais para esta técnica consistem em alterar a concentração de microtúbulos, cinesina concentração e concentração de ATP. Mudando a concentração do microtubule mudará o número de microtúbulos deslizando na superfície. Mudando a concentração cinesina mudará o número de moléculas de cinesina que pode ligar para o microtúbulo. No entanto, aumentando a concentração de cinesina acima os montantes já definidas neste experimento poderia aumentar a fluorescência de fundo, tornando mais difícil de ver as trilhas cinesina deixadas para trás o deslizamento dos microtúbulos. Enquanto isso, reduzir as concentrações de ATP abaixo 10 µM irá diminuir microtubule velocidade de deslizamento. Se este efeito é desejado, é necessário utilizar um ATP regenerando sistema constituído fosfoquinase e da fosfatase de creatina.
Uma possível limitação dessa técnica é que, devido ao teor de grande cinesina ativo do sistema, o ATP pode ser consumido rapidamente, e experiências podem durar menos de uma hora em determinadas condições. Por exemplo seria o caso se um usado uma dupla maior concentração cinesina e cinco vezes maior concentração de microtúbulos do que o que é apresentado neste protocolo.
Em nosso trabalho anterior18, estudamos a distribuição espacial da cinesina motores através do encurtamento dos microtúbulos, provando que o deslizamento dos microtúbulos acumulam cinesina motores de solução, resultando em um aumento da densidade de motores ao longo do comprimento do microtúbulos. Também achamos que a estabilidade de deslizar dos microtúbulos demonstrou uma dependência não-linear na solução cinesina concentração e microtubule velocidade.
O protocolo apresentado abre o caminho para uma utilização mais eficiente dos motores de proteína em nanoescala engenharia de sistemas e para investigação na concepção de nanosistemas ativas que estão em equilíbrio dinâmico. Além disso, a natureza dinâmica desse sistema permite servir como um sistema de modelo para o estudo de substituição de auto-cura e dinâmica de componentes moleculares, fechando parte da diferença entre estruturas projetadas e naturais.

As interações que regem o comportamento de nanosistemas ativos sempre foram caracterizadas por laços quase irreversível, long-lived1,2,3,4,5,6 ,7,8. Um exemplo bem estudado é o sistema do microtubule-cinesina, onde Delta microtúbulos são movidos por irreversivelmente ligados a superfície cinesina motores1,2,3,4, 5. Sistemas em que os componentes reversível são ligados um ao outro tem sido estudado teoricamente9,10 e alcançado no macroescala11,12, mas dimensionamento destes sistemas para o nanoescala tem sido um desafio. Uma das principais razões para isso é o que quebra e reformar as ligações entre componentes muitas vezes requer uma grande mudança nas condições ambientais. Mesmo que tais mudanças foram implementadas nos últimos14,13,15, confiam em modificar o sistema em si, ao invés de adaptação ao seu ambiente. Concepção de sistemas de escala molecular em que componentes continuamente montam em reorganizar-se em estruturas sem perturbar o ambiente geral em que ocorrem as experiências abrirá a porta para a exploração de uma vasta gama de comportamentos dinâmicos 16 , 17.
Aqui, descrevemos e demonstrar o protocolo detalhado para criar uma montagem dinamicamente e desmontando o sistema de funcionamento em nanoescala. O sistema e seu comportamento geral tem sido introduzido anteriormente18: filamentos de microtúbulos são movidos por faixas de forma reversível ligados a superfície cinesina-1 motores. Estas proteínas motor cinesina são recrutadas a partir da solução para ajudar a impulsionar os microtúbulos para a frente, antes de desorbing novamente logo depois. Uma vez que, em solução, eles podem ser recrutados novamente para impulsionar um novo microtubule. No passado13,14,15, quebrando e reforma de obrigações necessárias modificações ambientais; em contraste, o ambiente da nossa célula de fluxo permanece inalterado, enquanto os motores da cinesina interagem com a superfície.
Este protocolo vai ajudar pesquisadores interessados (1) Visualizar todas as etapas do protocolo, e (2) ajudar a solucionar problemas deste tipo de ensaio. Isso foi derivado os procedimentos descritos em Howard et al 199319.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>488 nm laser</td>
			<td>Omicron Laserage</td>
			<td>LuxX 488-150</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>642 nm laser</td>
			<td>Omicron Laserage</td>
			<td>LuxX&#160;642</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Casein</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>C7078-500G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Catalase from bovine liver</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>C40-500MG</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Creatine Phosphate</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>P-7936</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Creatine Phosphokinase</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>C3755-500UN</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>D-Glucose</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>G2133-50KU</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dichlorodimethylsilane solution</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>40140-25ML</td>
			<td>Toxic</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dimethyl Sulfoxide</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>34869-100ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dithiothreitol</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>D0632-5G</td>
			<td>Toxic</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Eclipse TI</td>
			<td>Nikon Instruments</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>eGFP rkin430</td>
			<td>Provided by George Bachand</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>EGTA</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>E4378-25G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Falcon 50 mL Conical Centrifuge Tubes</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>14-959-49A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glucose Oxidase</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>G0543-10KU</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Guanosine Triphosphate</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>G8877-10MG</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Kimwipes Delicate Task Wipers</td>
			<td>Sigma Pharmaceuticals</td>
			<td>8089</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Magnesium Chloride</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>M1028-100ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Methanol</td>
			<td>Fisher Chemical</td>
			<td>A412</td>
			<td>Toxic</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Milli-Q Water Purification System</td>
			<td>Millipore Corporation</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nickel Sulfate</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>656895-50G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Paclitaxel</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>T1912-5MG</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PIPES</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>P-6757</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pluronic F108-NTA</td>
			<td>Provided by Jennifer Neff and AllVivo Vascular</td>
			<td></td>
			<td>PEG-PPG-PEG-NTA</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pluronic&#160;F-108</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>542342-250G</td>
			<td>PEG-PPG-PEG</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thermo Scientific Snap Cap Low Retention Microcentrifuge Tubes</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>21-403-190</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Toluene</td>
			<td>Fisher Chemical</td>
			<td>T324</td>
			<td>Toxic</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tubulin, HiLyte647-labeled</td>
			<td>Cytoskeleton, Inc.</td>
			<td>TL670M</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>UV Ozone Procleaner</td>
			<td>BioForce Nanosciences</td>
			<td>PC440</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Whatman&#160;Puradisc syringe filters</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>WHA67840402</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Zyla 4.2 sCMOS Camera</td>
			<td>Andor Technology</td>
			<td>sCMOS 4.2</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

assembling molecular shuttles powered by reversibly attached kinesins

Este protocolo descreve como criar naves moleculares cinesina-alimentado com um vínculo fraco e reversível do kinesins para a superfície. Em contraste com os protocolos anteriores, neste sistema, os microtúbulos recrutam cinesina motor proteínas da solução e colocá-los em uma superfície. O kinesins, por sua vez, facilitam a Delta dos microtúbulos ao longo da superfície antes de desorbing volta para a solução em massa, sendo assim disponível para ser recrutado novamente. Esta contínua montagem e desmontagem leva a marcante o comportamento dinâmico do sistema, tais como a formação de trilhas de cinesina temporária por deslizamento dos microtúbulos.
Vários métodos experimentais serão descritos ao longo deste experimento: espectrofotometria UV-Vis será usada para determinar a concentração de soluções estoque de reagentes, lamelas primeiro será ozônio e ultravioleta (UV) tratados e, em seguida, silanizadas antes de ser montado em células de fluxo e fluorescência de reflexão interna total microscopia (TIRF) será usada para imagem simultaneamente motores cinesina e filamentos de microtúbulos.

Nesses experimentos, usamos uma 1.000 vezes a diluição dos microtubules preparado na seção 1.3.2. A concentração de cinesina tinha 20 nM e a concentração de ATP foi de 1 mM. Imagem latente foi realizada usando microscopia TIRF. Microtúbulos Delta foram fotografados separadamente da cinesina motores: microtúbulos estavam visíveis a excitação com um laser de 647 nm (Figura 1, vermelho), e a cinesina-GFP foi visível quando animado com um laser de 488 nm (Figura 1, verde). O tempo entre excitação com a luz vermelha e verde foi menor do que 1 s. O tempo entre frames foi que 10 s. microtúbulos exibido Delta estável. O microtubule de média velocidade de deslizamento foi cerca de 800 nm/s. A densidade da superfície microtubule foi 400mm-2. Faixas da cinesina (verde) apareceram para estender além do final à direita dos microtúbulos (vermelhos) para vários micrômetros.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59068/59068fig1.jpg"> Figura 1: deslizando microtúbulos movidos por motores fracamente ligados a superfície cinesina. Como microtúbulos avançar, eles acumulam cinesina motores de solução. Estes motores alternam entre dois Estados: single-limite os microtúbulos e dobro-ligado para ambos os microtúbulos e a superfície. Quando um motor duplo limite atinge o fim dos microtúbulos, o motor é deixado para trás e lentamente desorbs da superfície com uma taxa de folga de aproximadamente 0.1 s-1. Como resultado, trilhas de cinesina motores permanecem atrás os microtúbulos. Linha superior: canal vermelho (microtúbulos). Fila do meio: canal verde (cinesina). Linha inferior: vermelho (microtúbulos) e verde (GFP-cinesina) canal combinados. Barra de escala: 20 µm. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59068/59068fig1large.jpg" target="_blank">clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>

Watch this Scientific Journal Video about Assembling Molecular Shuttles Powered by Reversibly Attached Kinesins at JoVE.com

Assembling Molecular Shuttles Powered by Reversibly Attached Kinesins

Montagem Molecular vaivéns alimentados por reversivelmente ligado Kinesins

Apresentamos um protocolo para construir naves moleculares, onde motor proteínas cinesina aderida a superfície propelir microtúbulos tintura-rotulados. Interações fracas da kinesins com a superfície permite sua fixação reversível para isso. Isto cria um sistema de nanoescala que exibe dinâmica montagem e desmontagem de seus componentes, mantendo sua funcionalidade.

This protocol describes how to create kinesin-powered molecular shuttles with a weak and reversible attachment of the kinesins to the surface. In contrast ...

Este protocolo é significativo porque abre as portas para uma investigação mais aprofundada no projeto de sistemas biológicos nanoescala que estão em equilíbrio dinâmico. Essa técnica preenche parte da lacuna entre estruturas projetadas e naturais porque permite o estudo do que poderíamos chamar, a auto-cura ou a substituição dinâmica de componentes moleculares. O conselho mais importante para tentar essa técnica pela primeira vez é garantir que o experimentador esteja seguindo todos os protocolos de segurança.Primeiro, prepare as soluções de ações conforme descrito no protocolo de texto. Pipeta 21,8 microliters de BRB80 Buffer em um pequeno tubo de micro centrífuga. Adicione 1 microliter da solução de estoque de cloreto de magnésio, 1 microliter da solução de estoque GTP e 1,2 microliters da solução de estoque DMSO para terminar de preparar o buffer de crescimento de microtúbulos.Para iniciar a polimerização de microtúbulos, adicione 6,25 microliters de tampão de crescimento de microtúbulos diretamente em uma alíquota de 20 microgramas de tubulina liofilizada;rotulada para ser animada em 647 nanômetros. Vórtice a 40 RPS por 5 segundos. Esfrie a alíquota no gelo por 5 minutos.Em seguida, incubar a 37 graus Celsius por 45 minutos. Para iniciar a estabilização dos microtúbulos, adicione 5 microliters da solução paclitaxel aliquoted a 490 microliters de buffer BRB80. Vórtice a solução a 30 RPS por 10 segundos.Uma vez que os 45 minutos de incubação para os microtúbulos se elevem, adicione 5 microliters dessa solução ao BRB80, e mistura de paclitaxel, para criar a solução MT100. Primeiro, adicione 9,0 microliters da solução de caseína aliquoted a 291 microliters de buffer BRB80. Pipette 83 microliters da solução de caseína BRB80 em um novo tubo de micro centrífuga de 6 mililitros.Adicione 1 microliter de D-glicose, glicose oxidase, catalase, DTT, fosfato de creatina e fosfokinase. Em seguida, adicione 1 microliter da solução ATP de estoque à solução de motilidade. Filme, ou vórtice a alíquota para distribuir homogêneamente os produtos químicos.Em seguida, adicione 1 microliter de solução de cinesina preparada à solução de motilidade, de tal forma que a concentração final seja de 20 nanomolar. Adicione 10 microliters da solução MT100 à solução de motilidade. Para células de fluxo, use uma tampa grande e uma pequena mancha de cobertura.Enxágüe todas as tampas duas vezes com etanol e duas vezes com água ultrauso. Sonicar as tampas lavadas em água ultrauso por 5 minutos. Em seguida, seque as tampas em um forno a uma temperatura entre 50 e 75 graus Celsius.Use um limpador de UV-ozônio para tratar um lado de cada tampa por 15 minutos em temperatura ambiente e em condições atmosféricas normais. Usando pinças, gire cada tampa e use UV-ozone para tratar o lado não tratado também. Sonicar as tampas tratadas em água ultrauso por 5 minutos.Em seguida, seque-os em um forno a uma temperatura entre 50 e 75 graus Celsius. Em seguida, don equipamento de proteção como descrito no protocolo de texto. Mergulhe cada tampa em solução salina por 15 segundos.Lave as tampas duas vezes em tolueno e três vezes em metanol. Use nitrogênio pressurizado para secar as tampas. Uma vez que as tampas estejam secas, corte um pedaço de fita dupla face que é de 2 centímetros por 2,5 centímetros.Corte esta peça ao meio verticalmente em duas tiras de 1 centímetro por 2,5 centímetros. Coloque a grande mancha de cobertura em um delicado limpador de tarefas e coloque as tiras de fita nele, em termos de comprimento ao longo das bordas para criar uma área de 1 centímetro por 2,5 centímetros entre as peças de fita. Coloque a pequena mancha de cobertura em cima das tiras de fita para terminar o conjunto da célula de fluxo.Primeiro, flua aproximadamente 20 microliters da solução PEG-PPG-PEG para a célula de fluxo montada. Deixe a solução absorver na superfície por 5 minutos, então, troque esta solução com 20 microliters de buffer BRB80 três vezes, fluindo o buffer. Flua 20 microliters da solução de motilidade para a célula de fluxo.Depois disso, sele as bordas da célula de fluxo com graxa para evitar a evaporação se o experimento planejado for superior a uma hora. Realize a imagem utilizando uma microscopia de florescónce interna do tipo objetivo. Coloque uma gota de óleo de imersão no objetivo.Em seguida, coloque a célula de fluxo na plataforma do microscópio. E trazer o objetivo até que haja contato entre o óleo no objetivo e a célula de fluxo. Use o sistema de cobertura de bloqueio do microscópio para impedir que toda a luz laser escape.Em seguida, ligue o laser e foque na superfície inferior da célula de fluxo usando um laser de 642 nanômetros para a imagem dos microtúbulos, e um laser de 488 nanômetros para a imagem dos motores gfp cinésin. Grave as imagens ou vídeos de interesse. As imagens podem ser gravadas enquanto houver motilidade na célula de fluxo.Neste estudo, é apresentado um sistema ativo de nanoescala, que se auto-monta blocos de construção fracamente vinculando para construir sua própria pista. Usando microscopia de tirf, microtúbulos deslizantes são imagem separadamente dos motores de cinesina. Microtúbulos são visíveis após excitação com um laser de 647 nanômetros.E a cinesina GFP é visível quando excitada com um laser de 488 nanômetros. O tempo entre excitação e a luz vermelha e verde foi inferior a um segundo. Como se pode ver, microtúbulos deslizantes acumulam motores de cinesina da solução e os depositam na superfície.Os motores de cinesina permanecem na esteira dos microtúbulos por um curto período de tempo antes de retornar à solução. É muito importante ter a concentração correta de reagentes no antifade da solução de motilidade, caso contrário, o branqueamento fotográfico faria com que o experimento falhasse. Esta técnica abre caminho para um uso mais eficiente de motores proteicos em sistemas de engenharia nanoescala.Assim, possibilitando o desenho e o estudo de nanoestruturas mais complexas.

Research

JoVE Journal

Engineering

Molecular Beam Mass Spectrometry With Tunable Vacuum Ultraviolet (VUV) Synchrotron Radiation

Molecular Beam Mass Spectrometry With Tunable Vacuum Ultraviolet VUV Synchrotron Radiation

Espectrometria de Massa Molecular Beam Com Tunable radiação ultravioleta de vácuo Síncrotron (VUV)

Tunable soft ionization coupled to mass spectroscopy is a powerful method to investigate isolated molecules, complexes and clusters and their spectroscopy ...

Engenharia

Ultrahigh Density Array of Vertically Aligned Small-molecular Organic Nanowires on Arbitrary Substrates

Ultra Density Array of alinhados verticalmente Nanofios orgânicos pequeno-moleculares sobre substratos Arbitrárias

In  recent years &pi;-conjugated  organic semiconductors have emerged as the active material in a number of  diverse applications including large-area, ...

Spatial Separation of Molecular Conformers and Clusters

Separação Espacial de Conformadores Moleculares e Clusters

Gas-phase molecular physics and physical chemistry experiments commonly use supersonic expansions through pulsed valves for the production of cold ...

Measurement and Analysis of Atomic Hydrogen and Diatomic Molecular AlO, C2, CN, and TiO Spectra Following Laser-induced Optical Breakdown

Measurement and Analysis of Atomic Hydrogen and Diatomic Molecular AlO, C2, CN, and TiO Spectra Following Laser-induced Optical Breakdown

Medição e Análise de hidrogênio atômico e Diatomic AlO Molecular, C<sub&gt; 2</sub&gt;, CN, e TiO Spectra Following induzida por laser Breakdown Optical

In this work, we present time-resolved measurements of atomic and diatomic spectra following laser-induced optical breakdown. A typical LIBS arrangement ...

Proton Transfer and Protein Conformation Dynamics in Photosensitive Proteins by Time-resolved Step-scan Fourier-transform Infrared Spectroscopy

Transferência de prótons e Proteína Conformação Dynamics em fotossensíveis Proteínas por Time-resolvido Passo-scan-Fourier Transform Infrared Spectroscopy

Monitoring the dynamics of protonation and protein backbone conformation changes during the function of a protein is an essential step towards ...

Investigating Single Molecule Adhesion by Atomic Force Spectroscopy

Investigando única molécula de adesão de Força Atômica Spectroscopy

Atomic force spectroscopy is an ideal tool to study molecules at surfaces and interfaces. An experimental protocol to couple a large variety of single ...

Probing C84-embedded Si Substrate Using Scanning Probe Microscopy and Molecular Dynamics

Probing C84-embedded Si Substrate Using Scanning Probe Microscopy and Molecular Dynamics

sondagem C<sub&gt; 84</sub&gt; -embedded Si substrato utilizando Scanning Probe Microscopy e Dinâmica Molecular

This paper reports an array-designed C84-embedded Si substrate fabricated using a controlled self-assembly method in an ultra-high vacuum chamber. The ...

Quantitative Hardness Measurement by Instrumented AFM-indentation

Medição de dureza quantitativa por Instrumented AFM-recuo

In this work, a combination of amplitude-modulated non-contact atomic force microscopy and atomic force spectroscopy is applied for instrumented hardness ...

Plasma-assisted Molecular Beam Epitaxy of N-polar InAlN-barrier High-electron-mobility Transistors

assistido por plasma Molecular Beam Epitaxy de N-polar InAlN barreiras Transistores de alta electron-mobility

Plasma-assisted molecular beam epitaxy is well suited for the epitaxial growth of III-nitride thin films and heterostructures with smooth, abrupt ...

Preparation of Liquid Crystal Networks for Macroscopic Oscillatory Motion Induced by Light

Preparação das redes de cristal líquido para macroscópica movimento oscilatório induzido pela luz

A strategy based on doped liquid crystalline networks is described to create mechanical self-sustained oscillations of plastic films under continuous ...