Name: three laboratory procedures for assessing different manifestations of impulsivity in rats
Uploaded: 2019-03-17T13:00:00
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Nous tenons à remercier Florencia Mata, María Elena Chávez, Miguel Burgos et Alejandro Tapia pour fournir une assistance technique. Nous souhaitons également remercier Sarah Gordon Frances pour ses commentaires utiles sur un projet précédent du présent article et Vladimir Orduña pour gentiment fournissant des données brutes d’un document publié. Merci à Claudio Nallen pour créer le diagramme de la Figure 1. Nous sommes reconnaissants à la Dirección de Investigación de la Universidad Iberoamericana Ciudad de México pour le financement des services de relecture/révision et la vidéo produisant des dépenses.

Les trois protocoles décrits dans cette section requièrent l’utilisation de rats comme des sujets. Souches de rats de laboratoire la plupart conviennent ; par exemple, Wistar, Long-Evans, Sprague-Dawley, etc.. Le Comité d’éthique de l’Universidad Iberoamericana, suivez le Guide pour le soin et l’utilisation des animaux de laboratoire (Institute of Laboratory Animal Resources, Commission des Sciences de la vie, National Research Council, 1996), a approuvé les protocoles de laboratoire d’être décrit.
...

Le présent article donne une description des divers divers protocoles de dépistage impulsivité chez les rats. On prétend que ces protocoles particuliers sont favorisés pour leur facilité d’analyse de données et de programmation et nécessitent moins de dispositifs d’exploitation et de la stimulation que les autres solutions de rechange disponibles. Il y a plusieurs étapes cruciales pour la mise en œuvre effective de ces protocoles, tels que (1) ce qui donne une question de recherche, (2) sélection d’une m...

Impulsivité peut être conceptualisée comme une dimension comportementale associée inadaptés résultats1. Malgré l’utilisation répandue de ce terme, il n’y a pas de consensus universel sur sa définition précise. En fait, plusieurs auteurs ont défini l’impulsivité en donnant des exemples de comportements impulsifs ou leurs conséquences, plutôt que de les délimiter quels aspects distinctifs régissent le phénomène. Par exemple, impulsivité est censée pour impliquer une incapacité à attendre, à planifier, à inhiber les comportements dominants, ou une insensibilité aux résultats retardée2, et il a été considéré comme une vulnérabilité noyau addictives3. Bari et Robbins4 ont caractérisé l’impulsivité comme la co-occurrence de fortes impulsions, déclenché par le dispositionnelle et situationnels variables et des processus inhibiteurs dysfonctionnels. Dalley et Robbins, qui a déclaré que l’impulsivité pouvait être considérée comme une prédisposition aux actions rapides, souvent prématurées, sans perspicacité approprié5a fourni une définition différente. Pourtant, une autre définition d’impulsivité, proposée par Sosa et dos Santos6, une tendance de comportement qui s’écarte d’un organisme de maximisation des récompenses disponibles en raison du contrôle acquis exercée sur l’organisme répond par des stimuli d’ailleurs associés à ces récompenses.
En raison du processus comportements liés à impulsivité, son substrat neurophysiologique implique des structures en commun avec celles des comportements motivés, prise de décision et l’évaluation de la récompense. Ceci est confirmé par des études qui montrent que les structures de la voie cortico-striataux (p. ex., noyau accumbens (ANC), cortex préfrontal [PFC], amygdale et noyau caudé, putamen [CPU]), ainsi que le système de neurotransmetteurs ascendantes monoaminergiques, participent dans l’expression du comportement impulsif7. Toutefois, le substrat neuronal d’impulsivité est plus complexe que cela. Bien que NAc et les PFC sont impliqués dans le comportement impulsif, ces structures font partie d’un système plus complexe et sont également composées de sous-structures qui ont des fonctions différentes (pour la documentation plus détaillée, voir Dalley et Robbins5).
Peu importe les controverses sur son caractère et son substrat biologique, cette dimension comportementale sait varient selon les individus, auquel cas il peut être considéré comme un trait, et les individus, auquel cas il peut être considéré comme un état8. Impulsivité est depuis longtemps reconnue comme une caractéristique de certaines affections psychiatriques, comme l’attention-déficit/hyperactivité (TDAH), l’abus de substances et d’épisodes maniaques9. Il semble y avoir un consensus élevé que l’impulsivité est composée par de multiples facteurs dissociables, y compris le manque de volonté d’attendre (c.-à-d., retarder l’actualisation), incapacité à s’abstenir de réponses dominants (c.-à-d., le déficit inhibiteur), difficulté à se concentrer sur les information (c.-à-d., inattention) et une tendance à s’engager dans des situations risquées (c'est-à-dire, la recherche de sensation)5,10,11. Chacun de ces facteurs peut être évaluée par le biais de tâches comportementales particulières, qui sont habituellement assignés à deux grandes catégories : choix et réponse d’inhibition (ceux-ci peuvent avoir différentes étiquettes entre chaque taxonomies des auteurs). Certaines caractéristiques importantes de ces tâches comportementales sont qu’elles pourraient s’appliquer à travers plusieurs espèces animales2 et qu’elles permettent d’étudier l’impulsivité dans des conditions contrôlées en laboratoire.
Une dimension comportementale avec des animaux non humains laboratoire de modélisation a un certain nombre d’avantages, y compris la possibilité de mesure tendances comportementales spécifiques et mettre en œuvre, ce qui permet aux chercheurs de largement réduire les variables confondantes (par exemple, contamination par des événements de vie passé4) et à mettre en œuvre des manipulations expérimentales telles que l’administration chronique pharmacologique, effectuant des lésions neurotoxiques, ou des manipulations génétiques. La plupart de ces protocoles ont des versions analogiques pour les humains, qui font des comparaisons facile5. Ce qui est important, l’utilisation des analogues de ces protocoles de laboratoire chez l’homme est efficace pour faciliter le diagnostic des troubles psychiatriques, tels que l’ADHD (en particulier lorsque plusieurs protocoles est appliquée12).
Comme tout autre indicateur psychologique, les protocoles de laboratoire pour évaluer l’impulsivité doivent respecter des critères particuliers afin de réaliser l’objectif de fournir un aperçu du phénomène à l’étude. Pour être considéré comme un modèle approprié de comportement impulsif, un laboratoire protocole devrait être fiables et possèdent (du moins, dans une certaine mesure) visage, construction et/ou validité prédictive13. Fiabilité pourrait impliquer qu’un effet sur la mesure reproduirait si une manipulation est réalisée deux fois ou plus, ou que la mesure est conforme au fil du temps ou à travers différentes situations14,15. La fonction d’ancienne serait particulièrement utile dans les études expérimentales, alors que ce dernier serait le cas pour les études corrélationnelles14. Une validité apparente se réfère à la mesure dans laquelle ce qui est mesuré ressemble à ce phénomène qui est censé être modélisée, quant à être, par exemple, touchés par les mêmes variables. Validité prédictive se réfère à la capacité d’une mesure de prévoir la performance future dans les protocoles, qui ont pour but de mesurer la même ou une construction connexe. Enfin, validité conceptuelle renvoie à la question de savoir si le protocole reproduit comportement qui est théoriquement solide concernant le processus ou les processus supposés d’être impliqués dans le phénomène à l’étude. Cependant, même si ce sont des caractéristiques hautement souhaitables, on doit être prudent lorsque indiquant qu’un protocole est valide purement fondée sur ces critères16.
Il existe plusieurs protocoles pour mesurer l’impulsivité en laboratoire. Toutefois, le présent article présente trois de ces méthodes : choix intertemporel, renforcement différentiel de taux bas et la discrimination négative caractéristique. Intertemporels procédures visent à évaluer le retard d’escompte (c.-à-d., la difficulté des résultats retardées pour contrôler le comportement) composante d’impulsivité. La raison d’être fondamentale du présent protocole fait face à des sujets avec deux récompenses qui diffèrent par la grandeur et retard17. Une alternative fournit une petite récompense immédiate (appelée plus tôt plus petit, SS) et l’autre une récompense plus grande mais retardée (appelé plus grande et plus tard, LL). La proportion de réponses à l’alternative de la SS peut servir comme indice d’impulsivité18. En renforcement différentiel des procédures de taux bas, le facteur d’impulsivité à évaluer est inhibition de réponse (p. ex., incapacité de retenir des réponses dominants) quand il y a une éventualité de punition négative sur une réponse inappropriée. La raison d’être du présent protocole met en place une situation dans laquelle le seul moyen d’obtenir des récompenses est à suspendre leur ayant répondu au questionnaire19sujets. Enfin, procédure de discrimination négative caractéristique évalue inhibition de réponse lorsqu’il n’y a aucune sanction explicite sur une réponse inappropriée. La raison d’être du présent protocole (également connu sous le nom pavlovien conditionné l’inhibition ou l’A + / AX-procédure) est d’évaluer la capacité des sujets à retenir les réponses inutiles20.
Ces procédures se démarquent en comparaison à d’autres personnes comme ayant certaines fonctionnalités pratiques. Par exemple, les procédures présentées ici conviennent aux menées dans des chambres très peu équipées de climatisation (également connu sous le nom « la boîte Skinner »). La figure 1 montre un diagramme d’une chambre de climatisation typique. Chambres climatisation sont des instruments de recherche utile en raison d’un certain nombre d’avantages. Ils permettent la collecte automatisée d’un volume relativement important de données, en maximisant le nombre de sujets évalués pour l’unité de temps et l’espace21. Par ailleurs, les études comportementales menées en conditionné chambres requièrent intervention chercheur minime, ce qui réduit le temps et les efforts investis par le personnel de laboratoire, contrairement aux autres méthodes disponibles (p. ex., non automatisé T-labyrinthes, boîtes de jeu-shifting) 21. minimiser l’intervention des chercheurs aussi aider à réduire les biais des chercheurs, diminuant les effets de la courbe d’apprentissage des chercheurs, et une réduction d’induite par le traitement stress22. Chambres climatisation typiques sont assez standardisées pour être utilisé sur des rongeurs de tailles moyennes, comme les rats (r. norvegicus), mais peuvent être utilisées pour étudier les autres taxons, comme les marsupiaux de taille similaire (par exemple, d. albiventris et L. crassicaudata 23). il y a aussi commerciale conditionné chambres adaptées pour les plus petits (p. ex., souris [M. musculus]) et plus grand (par exemple, les primates non humains) espèces. Mise en place et tenue les protocoles présentés dans cet article nécessitent un minimum de compétences en programmation et exigent un nombre assez faible d’entrée accessible et les périphériques de sortie, à la différence des méthodes alternatives plus perfectionnées (p. ex., temps de réaction série 5-choix tâche [5- CSRTT]24 et suivi du signe25).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59070/59070fig1.jpg"> Figure 1 : schéma d’un conditionnement prototype chambre. Les principaux composants de la chambre de climatisation comprennent : (1) gauche levier, prise alimentaire (2) (équipée latérales diodes infrarouges pour détecter les entrées de tête), la lumière focalisée (3) (4) haut-parleur pour émission de tonalité (vue arrière), lumière (5) maison (vue arrière), alimentaire (6) distributeur. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59070/59070fig1large.jpg" target="_blank">S’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.</a>

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:663px;" width="663">
	<tbody>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:216px;">25 Pin Cables</td>
			<td style="width:161px;">Med Associates</td>
			<td style="width:119px;">SG-213F</td>
			<td style="width:167px;">Connect smart control cards to smart control panels</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">40 Pin Ribbon Cable</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>DIG-700C</td>
			<td>Connects the computer with the interface cabinet</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Computer</td>
			<td>Dell Computer Company</td>
			<td>T8P8T-7G8MR-4YPQV-96C2F-7THHB</td>
			<td>For controlling and monitoring protocols&#8217; processes</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Conductor Cables</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>SG-210CP-8</td>
			<td>Provide power to the smart control panels via the rack mount power supply</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Food dispenser with pedestal</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-203M-45 (12937)</td>
			<td>Silently provides 45 mg food pellets&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Head-Entry Detector</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-254-CB</td>
			<td>Uses an infrared photo-beam to detect head entries into the food receptacle</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">House Light</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-215M</td>
			<td>For providing&#160; diffuse illumination inside the chamber&#160;&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Interface Cabinet</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>SG-6080D</td>
			<td>Pod that can hold up to eight smart control cards</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Med-PC IV Software</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>SOF-735</td>
			<td>Translate codes into commands for operating outputs and recording/storing input information</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Multiple tone generator&#160;</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-223 (597)</td>
			<td>For controlling the frequency of the tones</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Panel fillers</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-007-FP</td>
			<td>For filling modular walls when devices are not used</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Pellet Receptacle</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-200R2M</td>
			<td>Receives and holds food pellets delivered by the dispenser</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Rack Mount Power Supply</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>DIG-700F</td>
			<td>Provides power to the interface cabinet</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Retractable Lever</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-112CM (10455)</td>
			<td>Detects lever-pressing responses; projects into the chamber or retracts as needed</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Smart Control Cards</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>DIG-716</td>
			<td>Controls up to eight inputs and four outputs of a conditioning chamber&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Smart Control Panels</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>SG-716 (3341)</td>
			<td>Connect smart cards to the devices within the conditioning chambers</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Speaker&#160;</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-224AM</td>
			<td>For providing tones inside the chamber</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Standard Modular Chambers for Rat</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-008</td>
			<td>Made of aluminum channels designed to hold modular devices&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Standard sound-, light-, and temperature isolating shells</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-022MD</td>
			<td>Serve to harbor each conditioning chamber</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Stimulus Light</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-221M</td>
			<td>For providing a round focalized light stimulus</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Three Pin Cables</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>SG-216A-2</td>
			<td>Connects smart control panel with each of the input and output devices in the conditioning chambers</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

three laboratory procedures for assessing different manifestations of impulsivity in rats

Le présent article fournit un guide pour la conduction et l’analyse des trois protocoles axés sur le conditionnement pour évaluer l’impulsivité chez les rats. Impulsivité est un concept utile parce qu’il est associé à des troubles psychiatriques chez les humains et avec un comportement mésadapté chez les animaux non humains. On croit que l’impulsivité est composée de facteurs distincts. Il y a des protocoles de laboratoire conçus pour évaluer chacun de ces facteurs en utilisant des équipements automatisés normalisés. Retard d’escompte est associée à l’incapacité d’être motivés par les résultats retardées. Ce facteur est évalué au moyen de protocoles de choix intertemporel, qui consistent en présentant une situation de choix impliquant une récompense immédiate et une récompense plus grande mais retardée de l’individu. Déficit d’inhibition de réponse est liée à l’incapacité de retenir des réponses dominants. Renforcement différentiel de taux faibles (DLR) et protocoles de discrimination négative caractéristique d’évaluer le facteur de déficit de l’inhibition de réponse d’impulsivité. Le premier impose une condition pour une personne motivée dans laquelle la plupart attendre un délai minimum pour une réponse d’être récompensés. Ce dernier évalue la capacité des individus à s’abstenir de nourriture qui cherchent des réponses quand un signal de l’absence de nourriture est présenté. Le but de ces protocoles est de construire une mesure quantitative objective d’impulsivité, qui sert à faire des comparaisons interspécifique, prévoyant la possibilité de recherche translationnelle. Les avantages de ces protocoles particuliers comprennent leur installation facile et l’application, qui découle de la relativement faible quantité de matériel nécessaire et la nature automatisée de ces protocoles.

Trois protocoles décrits dans cet article peuvent être chacun menées seule ou conjointement avec d’autres procédures ; Cela dépendra de la question de recherche, qui à son tour permettra de déterminer le plan d’étude. Voici quelques exemples de plans d’études qui sont compatibles avec ces protocoles : études de séries de temps (1), qui ont pour but de décrire les changements longitudinaux dans la performance ; (2) la quantification de la variabilité individuelle, qui...

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Three Laboratory Procedures for Assessing Different Manifestations of Impulsivity in Rats

Trois procédures de laboratoire pour évaluer les différentes Manifestations d’impulsivité chez le rat

Nous présentons trois protocoles qui permettent d’évaluer différentes formes d’impulsivité chez les rats et autres petits mammifères. Procédures de choix intertemporel évaluent la tendance à la réduction de la valeur des résultats retardées. Renforcement différentiel de taux bas et la discrimination négative caractéristique évaluer la capacité d’inhibition de réponse avec et sans punition pour des réactions inappropriées, respectivement.

The present article provides a guide for the conduction and analysis of three conditioning-based protocols to evaluate impulsivity in rats. Impulsivity is ...

La conduite de procédures comportementales pour évaluer l’impulsivité chez les rats donne un aperçu de la base environnementale, neurophysiologique et neurochimique de l’impulsivité, c’est-à-dire des facteurs qui déclenchent et sous-tendent ces comportements. Ce protocole permet l’étude de l’impulsivité avec un bon équilibre entre efficacité et accessibilité, et l’instruction des données adaptées à l’analyse quantitative. La performance dans ces protocoles peut être considérée comme un analogue de l’impulsivité chez l’homme.Par conséquent, les versions humaines d’entre eux servent pour le diagnostic et le traitement des troubles psychiatriques connexes tels que le TDAH ou le jeu pathologique. Gustavo Lago, technicien, et Pablo Saavedra, étudiant de premier cycle de notre laboratoire, feront la démonstration de la procédure avec Patsy Moreno. Après avoir commencé le régime de restriction alimentaire, ajouter 60 boulettes alimentaires au réceptacle alimentaire pour habituer la néophobie alimentaire avant d’introduire les rats dans les chambres de conditionnement sans l’initiation d’un protocole pendant 30 minutes pour accoutumer les réponses d’exploration.Après l’étape d’accoutumation, introduisez les rats dans les chambres de conditionnement pour deux séances quotidiennes supplémentaires de 30 minutes de livraison d’une pastille alimentaire toutes les 45 secondes pour aider les rats à identifier la source des granulés. Pour le choix intertemporel et le renforcement différentiel des faibles taux de réponse, ou protocoles DRL, placez un ou deux leviers dans la chambre et livrez de la nourriture pour chaque presse de niveau en conjonction avec une livraison gratuite de granulés alimentaires toutes les 45 secondes. Pour un protocole de choix intertemporel, sélectionnez les valeurs pour le retard et l’ampleur de la récompense.Par exemple, les choix pour l’alternative plus grande- plus tard, ou LL, livrer cinq granulés alimentaires après un délai fixe de 20 secondes et les choix pour le petit-plus tôt, ou alternative SS, livrer une pastille alimentaire immédiatement. Sélectionnez un critère de finition et terminez automatiquement les sessions après l’achèvement du critère spécifié, par exemple, après 40 essais de choix ou après 50 minutes. Combinez chaque alternative avec un levier dans la chambre de conditionnement, contrebalancer la latéralité des alternatives entre les sujets, et rendre les alternatives SS et LL disponibles lors de l’accomplissement d’un calendrier d’intervalle variable.Dans les essais de libre choix, lorsque l’un des leviers est pressé après un certain intervalle s’est écoulé, l’alternative associée sera activée. Les deux leviers seront rétractés, et les conséquences associées aux alternatives SS ou LL après l’accomplissement d’un calendrier d’intervalle variable de renforcement seront activées. Après la livraison de récompense, exécutez une condition de délai d’exécution, ajustant la durée de cette condition pour assimiler la durée moyenne des intervalles interurtrials pour les deux alternatives.Le prochain essai de choix commence après la fin du délai d’attente. Si un sujet choisit une solution de rechange pour deux essais consécutifs, le programme déterminera que le prochain essai sera un essai forcé de l’autre solution de rechange, c’est-à-dire que, dans le prochain essai, les deux leviers seront disponibles, mais un seul fonctionnera pour s’assurer que le sujet connaît les résultats associés aux deux solutions de rechange. Pour la programmation DRL, sélectionnez la valeur du temps minimum après lequel la réponse produira une récompense.Après le début d’une session ou après toute réponse levier-presse, démarrez une minuterie de compte à rebours de la valeur de temps sélectionnée à zéro. Si le sujet affiche une réponse avant que la insurrateur n’atteigne la valeur de zéro, la urégiste sera réinitialisée de sorte que le sujet doit attendre une nouvelle occasion d’obtenir une récompense. Si le sujet émet une réponse après que la insurrateur a atteint la valeur de zéro, livrer une pastille alimentaire.La initiateur sera réinitialisé au bout de deux secondes pour permettre à l’animal de consommer la pastille. Pour la discrimination négative des fonctionnalités, sélectionnez d’abord les durées des stimuli, les durées d’intervalle intertriales et les critères de finition pour les sessions. Après avoir présenté un stimulus A dans les essais A-plus, livrer une pastille alimentaire.Après avoir présenté le même stimulus A accompagné d’un stimulus supplémentaire X dans les essais AX-moins, ne livrez pas de nourriture. Après avoir mis en place les protocoles dans le logiciel informatique, nettoyez les murs intérieurs, le plafond et le plancher du gril des chambres d’opéra avec une solution désinfectante appropriée pour éliminer les odeurs des sessions précédentes ou des études précédentes. Utilisez l’ordinateur pour activer et surveiller manuellement les entrées et les sorties cruciales pour s’assurer qu’elles fonctionnent et vérifier que le distributeur de nourriture contient suffisamment de nourriture pour être livré pendant la session.Déplacez les cages de logement avec les rats à l’intérieur près des chambres de conditionnement, et ouvrez la cage de logement. Placez délicatement le rat dans sa chambre de conditionnement correspondante avant de fermer les chambres de conditionnement dans les coquilles isolantes. Lancez le programme et attendez que le programme soit terminé.Si les données ne sont pas enregistrées automatiquement, enregistrez les fichiers de sortie de la session dans le lecteur d’ordinateur ou ailleurs. Lorsque le programme est terminé, retournez doucement les rats dans leurs cages de logement correspondantes et donnez des aliments complémentaires aux animaux selon le régime de restriction alimentaire choisi. Dans cette procédure de choix intertemporal, le log-ratio du taux de réponse de levier lié à l’alternative de SS était plus haut chez les rats spontanément hypertensifs comparés aux rats sauvages-type, suggérant que les rats de modèle de TDAH préfèrent une récompense immédiate au détriment d’une alternative plus riche mais retardée.Dans cette expérience représentative du protocole DRL, les données longitudinales d’un seul rat avec une retenue temporelle de 10 secondes sur la réponse démontrent qu’au fil du temps, l’animal a acquis de l’expérience dans la tâche, apprenant finalement à répondre environ 10 secondes. Cette expérience pharmacologique a examiné si la performance impulsive dans une procédure de DRL avec une restriction temporelle de 10 secondes a été diminuée avec un traitement se composant des niveaux bas d’un médicament antipsychotique. Les parcelles de densité bleue représentent la répartition des réponses lors de l’administration de la solution saline, et les parcelles de saumon représentent la distribution de ces réponses lorsque l’halopéridol a été administré.Les parcelles intégrées supérieures affichent des taux de réponse, et les plus faibles affichent des taux de récompense pour la solution saline et l’halopéridol avec le même code de couleur que les anciennes parcelles. Il peut être noté que le taux de réponse a été réduit pour trois à cinq sujets, spécifiquement pour les sujets avec une proportion élevée de réponses d’éclatement dans l’état salin. En règle générale, dans le protocole de discrimination caractéristique négative, répondre au cours du stimulus unique plus les essais alimentaires et pendant le stimulus composé sans essais alimentaires ne diffèrent pas considérablement dans les premières sessions.Cependant, après quelques séances, les rats réagissent différemment dans les deux types d’essais, révélant que l’ajout d’un deuxième stimulus contrecarre la tendance de réponse contrôlée par le premier. Fait important, les sujets présentent des différences individuelles assez solides dans les deux types d’essais. Faites en sorte que les protocoles appropriés soient chargés dans les chambres de conditionnement correspondantes, que les rats soient correctement assignés à chaque chambre et que toutes les chambres soient fermées.Une fois la procédure de base terminée, des traitements comportementaux, pharmacologiques ou chirurgicaux pourraient être administrés afin de tester leur effet sur la performance. Les résultats ne sont pas toujours concluants, de sorte que les chercheurs pourraient vouloir se demander si les données observées dépendent des paramètres sélectionnés ou sont en fait induites par des facteurs confusionnels. Assurez-vous de manipuler les rats de façon appropriée pour éviter de nuire aux rats et pour éviter que les rats ne vous nuisent.

Research

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Behavior

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