Name: three laboratory procedures for assessing different manifestations of impulsivity in rats
Uploaded: 2019-03-17T13:00:00
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Vorremmo ringraziare Florencia Mata, María Elena Chávez, Miguel Burgos e Alejandro Tapia per fornire assistenza tecnica. Desideriamo anche ringraziare Sarah Gordon Frances per i suoi commenti utili su una precedente bozza di questo articolo e Vladimir Orduña gentilmente fornendo dati grezzi da un documento pubblicato. Grazie a Claudio Nallen per creare il diagramma in Figura 1. Siamo grati alla Dirección de Investigación della Universidad Iberoamericana Ciudad de México per finanziare servizi di correzione di bozze/editing e video producendo le spese.

I tre protocolli descritti in questa sezione richiedono l'uso di ratti come soggetti. Maggior parte dei ceppi di ratti di laboratorio adatte; ad esempio, Wistar, lungo Evans, Sprague-Dawley, ecc. Il comitato etico della Universidad Iberoamericana, seguendo la guida per la cura e l'uso di animali da laboratorio (Istituto del laboratorio animale risorse, Commissione sulle scienze della vita, Consiglio nazionale delle ricerche, 1996), ha approvato i protocolli di laboratorio per essere descritto.
1...

Il presente articolo ha fornito una descrizione di una varietà varie di protocolli per lo screening di impulsività in ratti. Si è sostenuto che questi particolari protocolli sono favoriti per la loro facilità di programmazione e analisi dei dati e richiedono meno dispositivi di funzionamento e di stimolo rispetto ad altre alternative disponibili. Ci sono diversi passaggi cruciali per l'efficace implementazione di questi protocolli, ad esempio (1) producendo una domanda di ricerca, (2) selezione di un disegno dello st...

Impulsività può essere concettualizzata come una dimensione comportamentale associata con esiti disadattivi1. Malgrado l'uso molto diffuso di questo termine, non ci è consenso universale su sua precisa definizione. Infatti, parecchi autori hanno definito impulsività dando esempi di comportamenti impulsivi o delle loro conseguenze, anziché delineare quali aspetti distintivi governano il fenomeno. Per esempio, impulsività è presupposto di coinvolgere un'incapacità di attendere, pianificare, inibire comportamenti prepotent o un'insensibilità a esiti in ritardo2, ed è stato considerato una vulnerabilità di core a comportamenti di dipendenza3. Bari e Robbins4 hanno caratterizzato impulsività come il co-avvenimento di impulsi forti, essere innescato da variabili disposizionale e situazionale e processi inibitori disfunzionali. Una definizione diversa è stata fornita da Mitri e Robbins, che ha dichiarato che impulsività potrebbe essere considerata come una predisposizione alle azioni rapide, spesso precoce, senza comprensione appropriata5. Ancora, un'altra definizione di impulsività, proposta da Sosa e dos Santos6, è una tendenza di comportamento che devia un organismo da massimizzare premi disponibili grazie al controllo acquisito esercitata sopra l'organismo risponde da stimoli per inciso relativo a tali premi.
A causa dei processi comportamentali legati impulsività, suo substrato neurofisiologico coinvolge le strutture in comune con quelli del comportamento motivato, processo decisionale e valorizzazione di ricompensa. Questo è supportato da studi che dimostrano che le strutture del pathway cortico-striatali (ad es., nucleo accumbens [NAc], corteccia prefrontale [PFC], amigdala e caudato putamen [CPU]), come pure il sistema di neurotrasmettitori monoaminergici ascendente, partecipare nell'espressione del comportamento impulsivo7. Tuttavia, il substrato neurale di impulsività è più complesso di quella. Sebbene il NAc e PFC sono coinvolti nel comportamento impulsivo, queste strutture fanno parte di un sistema più complesso e anche sono composti da sottostrutture che hanno funzioni diverse (per la documentazione più dettagliata, vedi de Mitri e Robbins5).
Indipendentemente dalle polemiche sulla sua natura e il substrato biologico, è noto che questa dimensione comportamentale variano tra gli individui, nel qual caso può essere considerato come una caratteristica e negli individui, nel qual caso può essere considerato come una statale8. Impulsività è da tempo riconosciuta come una caratteristica di alcune condizioni psichiatriche, come attention-deficit/hyperactivity disorder (ADHD), abuso di sostanze e di episodi maniacali9. Sembra esserci un consenso elevato che impulsività è composta da molteplici fattori dissociabili, tra cui la mancanza di volontà di aspettare (cioè, un ritardo di attualizzazione), incapacità di astenersi prepotente risposte (cioè, deficit di inibitori), difficoltà a concentrarsi su rilevanti informazioni (cioè, disattenzione) e una tendenza a impegnarsi in situazioni a rischio (cioè, sensazione che cercano)5,10,11. Ciascuno di questi fattori può essere valutata attraverso speciali compiti comportamentali, che vengono generalmente assegnati a due grandi categorie: inibizione di risposta e di scelta (questi possono avere diverse etichette tra ogni tassonomie degli autori). Alcune caratteristiche importanti di tali mansioni comportamentistiche sono che potrebbe essere applicati in diverse specie animali2 e che permettono lo studio di impulsività in condizioni di laboratorio controllate.
Modellazione di una dimensione comportamentale con animali da laboratorio non umano ha una serie di vantaggi tra cui la possibilità di misurazione specifiche, operazionalizzate tendenze comportamentali, consentendo ai ricercatori di in gran parte ridurre le variabili di confusione (ad esempio, contaminazione da passato vita eventi4) e ad attuare le manipolazioni sperimentali quali l'amministrazione farmacologica cronica, eseguendo le lesioni neurotossiche o manipolazioni genetiche. La maggior parte di questi protocolli hanno versioni analogiche per gli esseri umani, che rendono i confronti facile5. D'importanza, utilizzando analoghi di questi protocolli di laboratorio in esseri umani è efficace ausilio alla diagnosi delle patologie psichiatriche, quali ADHD (soprattutto quando più di un protocollo è applicata12).
Come qualsiasi altra misura psicologica, protocolli di laboratorio per la valutazione di impulsività devono rispettare determinati criteri al fine di conseguire l'obiettivo di fornire la comprensione del fenomeno oggetto di studio. Per essere considerato come un appropriato modello di comportamento impulsivo un laboratorio protocollo dovrebbe essere affidabili e possiedono (almeno, in una certa misura) faccia, costrutto, e/o validità predittiva13. Affidabilità potrebbe implicare che un effetto sopra la misura sarebbe replicare se una manipolazione è condotto due o più volte o che la misura è coerenza nel tempo o tra diverse situazioni14,15. La caratteristica ex sarebbe particolarmente utile per gli studi sperimentali, mentre quest'ultimo sarebbe stato così per studi correlazionali14. Faccia validità si riferisce al grado in cui ciò che è misurato è simile al fenomeno che è supposto per essere modellato, quanto a essere, per esempio, risentono le stesse variabili. Validità predittiva si riferisce alla capacità di una misura di previsioni future prestazioni nell'uso dei protocolli, che mirano a misurare lo stesso o un costrutto correlato. Validità di costrutto menziona infine, se il protocollo viene riprodotto il comportamento che è teoricamente corretto per quanto riguarda il processo o processi che presume di essere coinvolti nel fenomeno oggetto di studio. Tuttavia, anche se queste sono le caratteristiche altamente desiderabili, uno dovrebbe essere prudente quando affermando che un protocollo è valido puramente basata su questi criteri16.
Esistono diversi protocolli per misurare impulsività nelle regolazioni del laboratorio. Tuttavia, il presente articolo presenta solo tre metodi: intertemporali, rinforzo differenziale di tassi bassi e la caratteristica negativa discriminazione. Intertemporale procedure mirano a valutare l'attualizzazione di ritardo (cioè, la difficoltà degli esiti in ritardo per controllare il comportamento) componente di impulsività. Il base razionale di questo protocollo sta confrontando soggetti con due ricompense che si differenziano sia in grandezza che in ritardo17. Un'alternativa fornisce una piccola ricompensa immediata (chiamato prima è più piccolo, SS) e l'altro fornisce una ricompensa più grande ma in ritardo (definito più grande dopo, LL). La percentuale di risposte per l'alternativa di SS può essere utilizzata come indice di impulsività18. In rinforzo differenziale delle procedure di tassi bassi, il fattore di impulsività da valutare è l'inibizione di risposta (cioè, incapacità di trattenere le risposte prepotente) quando c'è una contingenza di punizione negativa su blocca inappropriato. Il razionale di questo protocollo sta introducendo soggetti ad una situazione in cui l'unico modo di ottenere ricompense è quello di sospendere la loro risposta19. Infine, procedura di caratteristica negativa discriminazione valuta l'inibizione di risposta quando non c'è nessuna punizione esplicita su blocca inappropriato. Il razionale di questo protocollo (noto anche come pavloviano condizionato l'inibizione o la A + AX-procedura) è quello di valutare la capacità dei soggetti di trattenere inutili risposte20.
Queste procedure si distinguono in confronto agli altri come avendo alcune funzioni utili. Per esempio, le procedure qui presentate sono adatte per essere condotto nelle camere minimamente attrezzata condizionata (noto anche come ' la scatola della sbucciatrice'). La figura 1 Mostra un diagramma di una camera tipica condizionata. Condizionata alloggiamenti sono strumenti di ricerca utili a causa di una serie di vantaggi. Essi consentono la raccolta automatizzata di un relativamente grande volume di dati, massimizzando il numero di soggetti valutati per unità di tempo e spazio21. Inoltre, studi comportamentali condotti in condizionata camere richiedono un intervento minimo ricercatore, che riduce il tempo e lo sforzo investito da personale di laboratorio, a differenza di altri metodi disponibili (ad es., non automatizzata T-labirinti, scatole set-shifting) 21. riducendo al minimo intervento dei ricercatori anche aiutare a ridurre il bias dei ricercatori, diminuendo gli effetti di curva di apprendimento dei ricercatori, e una riduzione di movimentazione-indotto stress22. Tipico condizionata chambers sono abbastanza standardizzati per essere utilizzato con i roditori di dimensioni medie, come i ratti (r. norvegicus), ma può essere impiegato per studiare altri taxa, come marsupiali di dimensioni simili (ad es., d. albiventris e L. crassicaudata 23). ci sono anche commerciale condizionata camere adattate per più piccoli (ad es., topi [M. musculus]) e più grandi (ad es., primati non umani) specie. Impostazione e conduzione di protocolli presentati in questo articolo richiedono competenze di programmazione minimale e necessitano di un numero abbastanza basso di ingresso raggiungibile e dispositivi di output, a differenza dei più sofisticati metodi alternativi (ad es., tempo di reazione seriale 5-scelta compito [5- CSRTT]24 e segno-rilevamento25).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59070/59070fig1.jpg"> Figura 1: diagramma di un condizionamento prototipo camera. I componenti principali della camera condizionata includono: leva (1) sinistra, presa (2) cibo (dotate di laterale diodi infrarossi per rilevare le voci di testa), (3) la luce focalizzata, (4) altoparlanti per emissione di tono (vista posteriore), luce (5) casa (vista posteriore), cibo (6) erogatore. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59070/59070fig1large.jpg" target="_blank">Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.</a>

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:663px;" width="663">
	<tbody>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:216px;">25 Pin Cables</td>
			<td style="width:161px;">Med Associates</td>
			<td style="width:119px;">SG-213F</td>
			<td style="width:167px;">Connect smart control cards to smart control panels</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">40 Pin Ribbon Cable</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>DIG-700C</td>
			<td>Connects the computer with the interface cabinet</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Computer</td>
			<td>Dell Computer Company</td>
			<td>T8P8T-7G8MR-4YPQV-96C2F-7THHB</td>
			<td>For controlling and monitoring protocols&#8217; processes</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Conductor Cables</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>SG-210CP-8</td>
			<td>Provide power to the smart control panels via the rack mount power supply</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Food dispenser with pedestal</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-203M-45 (12937)</td>
			<td>Silently provides 45 mg food pellets&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Head-Entry Detector</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-254-CB</td>
			<td>Uses an infrared photo-beam to detect head entries into the food receptacle</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">House Light</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-215M</td>
			<td>For providing&#160; diffuse illumination inside the chamber&#160;&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Interface Cabinet</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>SG-6080D</td>
			<td>Pod that can hold up to eight smart control cards</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Med-PC IV Software</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>SOF-735</td>
			<td>Translate codes into commands for operating outputs and recording/storing input information</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Multiple tone generator&#160;</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-223 (597)</td>
			<td>For controlling the frequency of the tones</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Panel fillers</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-007-FP</td>
			<td>For filling modular walls when devices are not used</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Pellet Receptacle</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-200R2M</td>
			<td>Receives and holds food pellets delivered by the dispenser</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Rack Mount Power Supply</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>DIG-700F</td>
			<td>Provides power to the interface cabinet</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Retractable Lever</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-112CM (10455)</td>
			<td>Detects lever-pressing responses; projects into the chamber or retracts as needed</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Smart Control Cards</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>DIG-716</td>
			<td>Controls up to eight inputs and four outputs of a conditioning chamber&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Smart Control Panels</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>SG-716 (3341)</td>
			<td>Connect smart cards to the devices within the conditioning chambers</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Speaker&#160;</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-224AM</td>
			<td>For providing tones inside the chamber</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Standard Modular Chambers for Rat</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-008</td>
			<td>Made of aluminum channels designed to hold modular devices&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Standard sound-, light-, and temperature isolating shells</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-022MD</td>
			<td>Serve to harbor each conditioning chamber</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Stimulus Light</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-221M</td>
			<td>For providing a round focalized light stimulus</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Three Pin Cables</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>SG-216A-2</td>
			<td>Connects smart control panel with each of the input and output devices in the conditioning chambers</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

three laboratory procedures for assessing different manifestations of impulsivity in rats

Il presente articolo fornisce una guida per la conduzione e l'analisi di tre protocolli basati su condizionata per valutare impulsività in ratti. Impulsività è un concetto significativo perché è associato con patologie psichiatriche in esseri umani e con disadattivi in animali non umani. Si ritiene che l'impulsività è composta di fattori distinti. Ci sono protocolli di laboratorio ideati per valutare ognuno di questi fattori con strumenti automatizzati standardizzati. Attualizzazione di ritardo è associata con l'incapacità di essere motivati da esiti in ritardo. Questo fattore viene valutato attraverso protocolli intertemporali, che consistono di presentare l'individuo con una situazione di scelta che coinvolge una ricompensa immediata e una ricompensa più grande ma in ritardo. Deficit di inibizione di risposta è associata con l'incapacità di trattenere le risposte prepotente. Rinforzo differenziale di tassi bassi (DLR) e protocolli di caratteristica negativa discriminazione valutare il fattore di deficit di inibizione risposta di impulsività. L'ex impone una condizione ad un individuo motivato in cui la maggior parte aspettare un periodo minimo di tempo per una risposta di essere ricompensati. Quest'ultima valuta la capacità degli individui di astenersi dal cibo che cercano le risposte quando viene presentato un segnale di mancanza di cibo. Lo scopo di questi protocolli è quello di costruire una misura quantitativa obiettiva di impulsività, che serve per effettuare confronti inter-specie, consentendo la possibilità di ricerca traslazionale. I vantaggi di questi particolari protocolli includono loro facile set-up e l'applicazione, che deriva dalla quantità relativamente piccola di attrezzatura necessaria e la natura automatizzata di questi protocolli.

I tre protocolli descritti in questo articolo possono essere ciascuno condotto da solo o in combinazione con altre procedure; Questo dipenderà la domanda di ricerca, che a sua volta determinerà il disegno dello studio. Alcuni esempi di disegni di studio che sono compatibili con questi protocolli sono: gli studi di serie (1) il tempo, che mirano a descrivere cambiamenti longitudinali delle prestazioni; (2) quantificazione della variabilità individuale, che mira a determinare l'affidabil...

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Three Laboratory Procedures for Assessing Different Manifestations of Impulsivity in Rats

Tre procedure di laboratorio per valutare diverse manifestazioni di impulsività in ratti

Presentiamo tre protocolli che valutano le diverse forme di impulsività nei ratti e altri piccoli mammiferi. Le procedure intertemporali valutano la tendenza a sconto il valore dei risultati in ritardo. Rinforzo differenziale di tassi bassi e caratteristica negativa discriminazione valutare capacità di inibizione di risposta con e senza punizione per risposte inadeguate, rispettivamente.

The present article provides a guide for the conduction and analysis of three conditioning-based protocols to evaluate impulsivity in rats. Impulsivity is ...

Condurre procedure comportamentali per valutare l'impulsività nei ratti fornisce informazioni sulla base ambientale, neurofisiologia e neurochimica dell'impulsività, cioè sui fattori che innescano e sono alla base di tali comportamenti. Questo protocollo consente lo studio dell'impulsività con un buon equilibrio di efficienza e accessibilità, e l'istruzione di dati adatti all'analisi quantitativa. Le prestazioni in questi protocolli possono essere considerate come un analogo dell'impulsività nell'uomo.Quindi, le versioni umane di loro servono per la diagnosi e il trattamento di disturbi psichiatrici correlati come l'ADHD o il gioco d'azzardo patologico. A dimostrare la procedura con Patsy Moreno saranno Gustavo Lago, un tecnico, e Pablo Saavedra, uno studente universitario del nostro laboratorio. Dopo aver iniziato il regime di restrizione alimentare, aggiungere 60 pellet alimentari al contenitore alimentare per abituare la neofobia alimentare prima di introdurre i ratti nelle camere di condizionamento senza l'inizio di alcun protocollo per 30 minuti per abituare le risposte esplorative.Dopo la fase di assunzione, introdurre i ratti nelle camere di condizionamento per due sessioni giornaliere aggiuntive di 30 minuti di consegna di un pellet alimentare ogni 45 secondi per aiutare i ratti a identificare la fonte del pellet. Per la scelta intertemporale e il rinforzo differenziale di basse velocità di risposta, o protocolli DRL, posizionare una o due leve nella camera e consegnare cibo per ogni pressa di livello in combinazione con una consegna gratuita di pellet alimentare ogni 45 secondi. Per un protocollo di scelta intertemporale, selezionare i valori per il ritardo e l'entità della ricompensa.Ad esempio, le scelte per l'alternativa più grande o LL, consegnano cinque pellet alimentari dopo un ritardo fisso di 20 secondi e le scelte per l'alternativa piccola-prima, o SS, consegnano immediatamente un pellet alimentare. Selezionare un criterio di finitura e terminare automaticamente le sessioni dopo il completamento del criterio specificato, ad esempio dopo 40 prove di scelta o dopo 50 minuti. Combinare ogni alternativa con una leva all'interno della camera di condizionamento, controbilanciando la lateraletà delle alternative tra i soggetti, e rendere disponibili alternative SS e LL al raggiungimento di un programma a intervalli variabili.Nelle prove a libera scelta, quando una delle leve viene premuta dopo che è trascorso un certo intervallo, verrà attivata l'alternativa associata. Entrambe le leve verranno ritirate e la conseguenza associata alle alternative SS o LL dopo il raggiungimento di un programma a intervalli variabili di rinforzo verrà attivata. Dopo la consegna del premio, eseguire una condizione di time-out, regolando la durata di questa condizione per equiparare la durata media degli intervalli intertriali per entrambe le alternative.La prova di scelta successiva inizia dopo il completamento del time-out. Se un soggetto seleziona un'alternativa per due prove consecutive, il programma determinerà che la prossima prova sarà una prova forzata dell'alternativa rimanente, cioè, nella prossima prova, entrambe le leve saranno disponibili, ma solo una funzionerà per garantire che il soggetto sperimenta i risultati associati a entrambe le alternative. Per la programmazione DRL, selezionare il valore del tempo minimo dopo il quale rispondere produrrà una ricompensa.Dopo l'inizio di una sessione o dopo qualsiasi risposta di pressione della leva, avviare un timer di conto alla rovescia dal valore di tempo selezionato a zero. Se il soggetto visualizza una risposta prima che il timer raggiunga il valore di zero, il timer verrà reimpostato in modo che il soggetto debba attendere una nuova opportunità per ottenere una ricompensa. Se il soggetto emette una risposta dopo che il timer ha raggiunto il valore di zero, consegnare un pellet alimentare.Il timer verrà ripristinato dopo due secondi per consentire all'animale di consumare il pellet. Per la discriminazione feature-negativa, selezionare innanzitutto le durate degli stimoli, le durate dell'intervallo intertriale e i criteri di finitura per le sessioni. Dopo aver presentato uno stimolo A nelle prove A-plus, consegnare un pellet alimentare.Dopo aver presentato lo stesso stimolo A accompagnato da uno stimolo aggiuntivo X nelle prove AX-minus, non fornire cibo. Dopo aver installato i protocolli nel software del computer, pulire le pareti interne, il soffitto e il pavimento della griglia delle camere operanti con un'appropriata soluzione disinfettante per rimuovere gli odori dalle sessioni precedenti o dagli studi precedenti. Utilizzare il computer per attivare e monitorare manualmente gli input e le uscite cruciali per assicurarsi che funzionino e verificare che il distributore di cibo sia in possesso di cibo sufficiente per essere consegnato durante la sessione.Spostare le gabbie di alloggiamento con i ratti all'interno vicino alle camere di condizionamento e aprire la gabbia abitativa. Posizionare delicatamente il ratto nella corrispondente camera di condizionamento prima di chiudere le camere di condizionamento nei gusci isolanti. Avviare il programma e attendere fino al termine del programma.Se i dati non vengono salvati automaticamente, salvare i file di output della sessione nell'unità computer o altrove. Al termine del programma, riportare delicatamente i ratti nelle gabbie di alloggio corrispondenti e dare cibo complementare agli animali in base al regime di restrizione alimentare selezionato. In questa procedura di scelta intertemporale, il log-ratio del tasso di risposta della leva associato all'alternativa delle SS era più alto nei ratti spontaneamente ipertesi rispetto ai ratti di tipo selvatico, suggerendo che i ratti modello ADHD preferivano una ricompensa immediata a scapito di un'alternativa più ricca ma ritardata.In questo esperimento rappresentativo del protocollo DRL, i dati longitudinali di un singolo ratto con una limitazione temporale di 10 secondi nel rispondere dimostrano che nel tempo, l'animale ha acquisito esperienza nel compito, imparando infine a rispondere circa 10 secondi. Questo esperimento farmacologico ha testato se le prestazioni impulsive in una procedura DRL con una restrizione temporale di 10 secondi sono diminuite con un trattamento costituito da bassi livelli di un farmaco antipsicotico. I grafici a densità blu rappresentano la distribuzione delle risposte quando viene somministrata la soluzione salina, e le particelle di salmone rappresentano la distribuzione di tali risposte quando è stato somministrato aloperidolo.I grafici incorporati superiori mostrano i tassi di risposta e quelli più bassi mostrano tassi di ricompensa per salina e aloperidolo con lo stesso codice colore delle trame precedenti. Si può notare che il tasso di risposta è stato ridotto per tre o cinque soggetti, in particolare per quei soggetti con un'alta percentuale di risposte burst nella condizione salina. In genere, nel protocollo di discriminazione feature-negativa, rispondere durante il singolo stimolo più le prove alimentari e durante lo stimolo composto senza prove alimentari non differisce sostanzialmente nelle prime sessioni.Tuttavia, dopo alcune sessioni, i ratti rispondono in modo differenziato in entrambi i tipi di prove, rivelando che l'aggiunta di un secondo stimolo contrasta la tendenza di risposta controllata dal primo. È importante sottolineare che i soggetti mostrano differenze individuali piuttosto solide in entrambi i tipi di prove. Fare attenzione che i protocolli appropriati siano caricati nelle corrispondenti camere di condizionamento, che i ratti siano assegnati correttamente a ciascuna camera e che tutte le camere siano chiuse.Una volta completata una procedura di base, potrebbero essere somministrati trattamenti comportamentali, farmacologici o chirurgici per testarne l'effetto sulle prestazioni. I risultati non sono sempre conclusivi, quindi i ricercatori potrebbero voler considerare se i dati osservati dipendono dai parametri selezionati o sono di fatto indotti da fattori confondenti. Assicurati di maneggiare i ratti in modo appropriato per evitare di danneggiare i ratti ed evitare che i ratti ti danneggino.

Research

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