Name: three laboratory procedures for assessing different manifestations of impulsivity in rats
Uploaded: 2019-03-17T13:00:00
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Gostaríamos de agradecer a Florencia Mata, María Elena Chávez, Miguel Burgos e Alejandro Tapia para prestação de assistência técnica. Gostaríamos também de agradecer a Sarah Gordon Frances por seus comentários úteis sobre um rascunho anterior do presente artigo e Vladimir Orduña gentilmente fornecendo dados brutos de um artigo publicado. Graças a Claudio Nallen para criar o diagrama na Figura 1. Agradecemos a Dirección de Investigación da Universidad Iberoamericana Ciudad de México para financiamento de serviços de revisão/edição e vídeo produção de despesas.

Os três protocolos descritos nesta seção requerem o uso de ratos como sujeitos. Maioria das cepas de ratos de laboratório são adequados; por exemplo, Wistar, Long-Evans, Sprague-Dawley, etc. O Comitê de ética da Universidade Iberoamericana, seguindo o guia para o cuidado e o uso de animais de laboratório (Instituto de recursos de laboratório do Animal, Comissão sobre ciências da vida, National Research Council, 1996), aprovou os protocolos de laboratório a ser descrita.
1. preparaç?...

O presente artigo forneceu uma descrição de uma variedade de diversas protocolos para triagem de impulsividade em ratos. Argumenta-se que estes protocolos específicos são favorecidos por sua facilidade de programação e análise de dados e exigem menos dispositivos de funcionamento e estímulo do que outras alternativas disponíveis. Existem várias etapas cruciais para a eficaz implementação destes protocolos, tais como (1) produzindo uma pergunta de pesquisa (2) selecionar um projeto de estudo adequado, (3) o pr...

Impulsividade pode ser conceituada como uma dimensão comportamental associada com resultados mal-adaptativos1. Apesar do uso difundido deste termo, não há nenhum consenso universal em sua definição precisa. Na verdade, vários autores têm definido impulsividade dando exemplos de comportamentos impulsivos ou das suas consequências, em vez de delinear quais aspectos distintivos regulam o fenômeno. Por exemplo, impulsividade presume-se a envolver uma incapacidade de esperar, planejar, inibir comportamentos prepotent ou uma insensibilidade para resultados atrasada2, e tem sido considerada uma vulnerabilidade de núcleo para comportamento viciante3. Bari e Robbins4 têm caracterizado a impulsividade como a co-ocorrência de fortes impulsos, sendo desencadeada por variáveis disposicional e situacionais e processos inibitórios disfuncionais. Uma definição diferente foi fornecida por Dalley e Robbins, que afirmou que a impulsividade pode ser considerada uma predisposição para ações rápidas, muitas vezes prematuras, sem discernimento adequado5. Ainda, uma outra definição de impulsividade, proposta por Sosa e dos Santos6, é uma tendência de comportamento que se desvia de um organismo de maximizar recompensas disponíveis devido o controle adquirido exercida sobre o organismo respondendo por estímulos aliás relacionados com as recompensas.
Devido os processos comportamentais relacionados a impulsividade, o seu substrato neurofisiológico envolve estruturas em comum com os de comportamento motivado, tomada de decisão e valorizando a recompensa. Isto é suportado por estudos que mostram que estruturas da via córtico-estriadas (por exemplo, núcleo accumbens [NAc], [PFC] o córtex pré-frontal, amígdala e putâmen caudado [CPU]), bem como o sistema de neurotransmissores monoaminérgicos ascendente, participar na expressão do comportamento impulsivo7. No entanto, o substrato neural da impulsividade é mais complexo que isso. Embora NAc e PFC estão envolvidos no comportamento impulsivo, estas estruturas são parte de um sistema mais complexo e também são compostas por subestruturas que têm diferentes funções (para obter documentação, mais detalhadas, consulte Dalley e Robbins5).
Independentemente das controvérsias sobre sua natureza e o substrato biológico, esta dimensão comportamental é conhecido para variar entre os indivíduos, caso em que pode ser considerada como um traço, e dentro de indivíduos, caso em que pode ser considerada como um estado8. Impulsividade há muito tem sido reconhecida como uma característica de algumas condições psiquiátricas, tais como transtorno déficit/hiperatividade (TDAH), abuso de substâncias e episódios maníacos9. Parece haver um consenso de alto que a impulsividade é composta por vários fatores dissociável, incluindo a falta de vontade de esperar (ou seja, atrasar a descontar), incapacidade de se abster prepotent respostas (ou seja, défice inibitória), dificuldade para concentrar-se em relevante informações (i.e., desatenção) e uma tendência a se envolver em situações de risco (ou seja, sensação buscando)5,10,11. Cada um desses fatores pode ser avaliado através de tarefas comportamentais especiais, que normalmente são atribuídas a duas grandes categorias: escolha e resposta de inibição (estes podem ter diferentes rótulos entre cada taxonomias dos autores). Algumas características importantes dessas tarefas comportamentais são que eles poderiam ser aplicados em várias espécies animais2 e que permitem estudar a impulsividade em condições controladas de laboratório.
Modelagem de uma dimensão comportamental com animais de laboratório não-humanos tem uma série de vantagens, incluindo a possibilidade de medição tendências comportamentais específicas, operacionalizadas, permitindo que os pesquisadores em grande parte, reduzir variáveis de confundimento (por exemplo, contaminação pelos últimos eventos de vida4) e implementar manipulações experimentais tais como administração farmacológica crônica, realizando lesões neurotóxicas ou manipulações genéticas. A maioria desses protocolos tem versões analógicas para seres humanos, que fazem comparações fáceis5. Importante, usando análogos destes protocolos de laboratório em seres humanos é eficaz para auxiliar o diagnóstico das condições psiquiátricas, tais como TDAH (especialmente quando mais de um protocolo é aplicada12).
Como qualquer outra medida psicológica, protocolos de laboratório para avaliar a impulsividade devem respeitar critérios específicos a fim de alcançar o objetivo de fornecer insights sobre o fenômeno sob estudo. Para ser considerado como um modelo adequado de comportamento impulsivo, um laboratório de protocolo deve ser confiável e possuem (pelo menos, em algum grau) rosto, construção e/ou validade preditiva13. Confiabilidade pode implicar que um efeito sobre a medição seria replicar uma manipulação é conduzido duas ou mais vezes, ou que a medição seja consistente ao longo do tempo ou em diferentes situações de14,15. O antigo recurso seria especialmente útil para estudos experimentais, enquanto o último seria tão para busca de estudos14. Rosto de validade refere-se ao grau em que o que é medido assemelha-se o fenômeno que é suposto ser modelada, como sendo, por exemplo, afetaram as mesmas variáveis. Validade preditiva refere-se à capacidade de uma medida de previsão de desempenho futuro nos protocolos, que visam medir a mesma ou uma construção relacionada. Finalmente, a validade de constructo refere-se a se o protocolo reproduz o comportamento que é teoricamente sobre o processo ou processos supostos envolvidos no fenômeno em estudo. No entanto, embora estas são características altamente desejáveis, um deve ser cauteloso quando afirmando que um protocolo é válido baseado puramente nestes critérios16.
Existem vários protocolos para medir a impulsividade em configurações de laboratório. No entanto, o presente artigo apresenta somente três tais métodos: escolha intertemporais, reforço diferencial de taxas baixas e discriminação característica negativa. Intertemporais procedimentos visam avaliar o desconto de atraso (ou seja, a dificuldade de atrasadas resultados para controlar comportamento) componente de impulsividade. A lógica básica do presente protocolo é confrontar temas com duas recompensas que diferem em tanto magnitude e atraso de17. Uma alternativa fornece uma pequena recompensa imediata (denominados menor mais cedo, SS) e o outro fornece uma recompensa maior mas retardada (denominado maior mais tarde, LL). A proporção de respostas à alternativa de SS pode ser usada como um índice da impulsividade18. No diferencial reforço dos procedimentos de taxas baixas, o fator de impulsividade para ser avaliada é inibição da resposta (ou seja, incapacidade de reter prepotent respostas) quando há uma contingência de punição negativa sobre respondendo inadequado. A lógica do presente protocolo, apresentando temas uma situação em que a única maneira de obter recompensas pausar sua resposta19. Finalmente, procedimento de discriminação negativa característica avalia a inibição de resposta quando houver punição explícita sobre respondendo inadequado. A lógica do presente protocolo (também conhecido como Pavlovian condicionado inibição ou o A + AX-procedimento) é avaliar a capacidade dos indivíduos de reter respostas desnecessárias20.
Estes procedimentos se destacam em comparação aos outros como tendo algumas características convenientes. Por exemplo, os procedimentos aqui apresentados são adequados para ser conduzido em câmaras condicionado minimamente equipado (também conhecido como ' o Skinner box'). A Figura 1 mostra um diagrama de uma câmara de condicionamento típico. Câmaras de condicionamento são instrumentos de pesquisa útil devido a uma série de vantagens. Eles permitem a coleta automatizada de um volume relativamente grande de dados, maximizando o número de indivíduos avaliados por unidade de tempo e espaço21. Além disso, estudos comportamentais realizados em câmaras de condicionamento exigem intervenção mínima do pesquisador, que reduz o tempo e esforço investido pelo pessoal do laboratório, ao contrário de outros métodos disponíveis (por exemplo, não-automatizados T-labirintos, caixas de mudança de conjunto) 21. minimizando a intervenção dos pesquisadores também ajudam na redução do viés dos investigadores, diminuindo os efeitos da curva de aprendizado dos investigadores, e uma redução de induzida pela manipulação de stress22. Câmaras de condicionamento típico são razoavelmente padronizadas para serem utilizados com roedores de porte médios, tais como ratos (r. norvegicus), mas podem ser empregadas para estudar outros táxons, como marsupiais de tamanho semelhante (por exemplo, d. albiventris e L. crassicaudata 23). há também comercial condicionado câmaras adaptadas para menores (por exemplo, ratos [M. musculus]) e maiores (por exemplo, os primatas não-humanos) espécie. Criação e realização dos protocolos apresentados neste artigo exigem habilidades de programação mínimas e exigem um número muito baixo de entrada atingível e dispositivos de saída, ao contrário dos métodos alternativos mais sofisticados (por exemplo, tempo de reação serial 5-escolha tarefa [5- CSRTT]24 e rastreamento de sinal25).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59070/59070fig1.jpg"> Figura 1: diagrama de um condicionamento protótipo câmara. Os principais componentes da câmara condicionado incluem: alavanca (1) esquerda, receptáculo (2) comida (equipado com laterais díodos Infravermelhos para detectar entradas de cabeça), luz focalizadas (3) (4) alto-falante para emissão de Tom (vista traseira), luz (5) casa (vista traseira), comida (6) dispensador. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59070/59070fig1large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:663px;" width="663">
	<tbody>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:216px;">25 Pin Cables</td>
			<td style="width:161px;">Med Associates</td>
			<td style="width:119px;">SG-213F</td>
			<td style="width:167px;">Connect smart control cards to smart control panels</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">40 Pin Ribbon Cable</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>DIG-700C</td>
			<td>Connects the computer with the interface cabinet</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Computer</td>
			<td>Dell Computer Company</td>
			<td>T8P8T-7G8MR-4YPQV-96C2F-7THHB</td>
			<td>For controlling and monitoring protocols&#8217; processes</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Conductor Cables</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>SG-210CP-8</td>
			<td>Provide power to the smart control panels via the rack mount power supply</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Food dispenser with pedestal</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-203M-45 (12937)</td>
			<td>Silently provides 45 mg food pellets&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Head-Entry Detector</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-254-CB</td>
			<td>Uses an infrared photo-beam to detect head entries into the food receptacle</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">House Light</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-215M</td>
			<td>For providing&#160; diffuse illumination inside the chamber&#160;&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Interface Cabinet</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>SG-6080D</td>
			<td>Pod that can hold up to eight smart control cards</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Med-PC IV Software</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>SOF-735</td>
			<td>Translate codes into commands for operating outputs and recording/storing input information</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Multiple tone generator&#160;</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-223 (597)</td>
			<td>For controlling the frequency of the tones</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Panel fillers</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-007-FP</td>
			<td>For filling modular walls when devices are not used</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Pellet Receptacle</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-200R2M</td>
			<td>Receives and holds food pellets delivered by the dispenser</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Rack Mount Power Supply</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>DIG-700F</td>
			<td>Provides power to the interface cabinet</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Retractable Lever</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-112CM (10455)</td>
			<td>Detects lever-pressing responses; projects into the chamber or retracts as needed</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Smart Control Cards</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>DIG-716</td>
			<td>Controls up to eight inputs and four outputs of a conditioning chamber&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Smart Control Panels</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>SG-716 (3341)</td>
			<td>Connect smart cards to the devices within the conditioning chambers</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Speaker&#160;</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-224AM</td>
			<td>For providing tones inside the chamber</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Standard Modular Chambers for Rat</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-008</td>
			<td>Made of aluminum channels designed to hold modular devices&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Standard sound-, light-, and temperature isolating shells</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-022MD</td>
			<td>Serve to harbor each conditioning chamber</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Stimulus Light</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>ENV-221M</td>
			<td>For providing a round focalized light stimulus</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;">Three Pin Cables</td>
			<td>Med Associates</td>
			<td>SG-216A-2</td>
			<td>Connects smart control panel with each of the input and output devices in the conditioning chambers</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

three laboratory procedures for assessing different manifestations of impulsivity in rats

O presente artigo fornece um guia para a condução e a análise de três protocolos baseados em condicionado para avaliar a impulsividade em ratos. Impulsividade é um conceito significativo porque está associada com condições psiquiátricas nos seres humanos e com comportamento mal-adaptativos em animais não-humanos. Acredita-se que a impulsividade é composta de fatores separados. Existem protocolos de laboratório, planejados para avaliar cada um desses fatores usando equipamentos automatizados padronizados. Descontando o atraso está associado com a incapacidade de ser motivado por atrasados resultados. Este fator é avaliado por meio de protocolos de escolha intertemporais, que consistem em apresentar o indivíduo com uma situação de escolha envolvendo uma recompensa imediata e uma recompensa maior, mas atrasada. Défice de inibição de resposta está associado com a incapacidade de reter prepotent respostas. Reforço diferencial de taxas baixas (DLR) e protocolos de discriminação negativa característica avaliar o fator de défice de inibição de resposta de impulsividade. O primeiro impõe uma condição para uma pessoa motivada, em que a maioria espera um período mínimo de tempo para uma resposta ser recompensado. Este último avalia a capacidade dos indivíduos que se abstenham de alimentos buscando respostas quando é apresentado um sinal de falta de comida. A finalidade destes protocolos é construir uma medida quantitativa objetiva de impulsividade, que serve para fazer comparações entre espécies, permitindo a possibilidade de investigação de translação. As vantagens destes protocolos específicos incluem sua fácil instalação e aplicação, que decorre da relativamente pequena quantidade de equipamentos necessários e a natureza automatizada desses protocolos.

Os três protocolos descritos neste artigo podem ser cada um realizado isoladamente ou em conjunto com outros procedimentos; Isso vai depender da questão de investigação, que por sua vez, irá determinar o desenho do estudo. Alguns exemplos de projetos de estudo que são compatíveis com estes protocolos são: estudos de série (1) vez, cujo objectivo é descrever mudanças longitudinais no desempenho; (2) quantificação da variabilidade individual, que visa determinar a confiabilidad...

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Three Laboratory Procedures for Assessing Different Manifestations of Impulsivity in Rats

Três procedimentos de laboratório para avaliar diferentes manifestações de impulsividade em ratos

Apresentamos três protocolos que avaliam diferentes formas de impulsividade em ratos e outros pequenos mamíferos. Procedimentos de escolha intertemporais avaliam a tendência de desconto o valor dos resultados atrasados. Reforço diferencial de taxas baixas e discriminação negativa característica avaliar a capacidade de inibição de resposta com e sem punição para respostas inapropriadas, respectivamente.

The present article provides a guide for the conduction and analysis of three conditioning-based protocols to evaluate impulsivity in rats. Impulsivity is ...

A realização de procedimentos comportamentais para avaliar a impulsividade em ratos fornece uma visão da base ambiental, neurofisiológica e neuroquímica da impulsividade, ou seja, sobre os fatores que desencadeiam e fundamentam esses comportamentos. Este protocolo permite o estudo da impulsividade com um bom equilíbrio de eficiência e acessibilidade, e instrução de dados adequados para análise quantitativa. O desempenho nesses protocolos pode ser considerado como um análogo da impulsividade em humanos.Assim, as versões humanas delas servem para o diagnóstico e tratamento de transtornos psiquiátricos relacionados, como TDAH ou jogo patológico. Demonstrando o procedimento com Patsy Moreno estarão Gustavo Lago, técnico, e Pablo Saavedra, estudante de graduação do nosso laboratório. Após o início do regime de restrição alimentar, adicione 60 pelotas de alimentos ao recipiente de alimentos para habitar a neofobia alimentar antes de introduzir os ratos nas câmaras de condicionamento sem o início de qualquer protocolo por 30 minutos para habituar as respostas exploradas.Após a fase de habitação, introduza os ratos nas câmaras de condicionamento para duas sessões diárias adicionais de 30 minutos de entrega de uma pelota de comida a cada 45 segundos para ajudar os ratos a identificar a fonte das pelotas. Para escolha intertemporal e reforço diferencial de baixas taxas de resposta, ou protocolos DRL, coloque uma ou duas alavancas na câmara e entregue alimentos para cada prensa de nível em conjunto com uma entrega gratuita de pelotas a cada 45 segundos. Para um protocolo de escolha intertemporal, selecione os valores para o atraso e a magnitude da recompensa.Por exemplo, as opções para a alternativa maior-posterior, ou LL, fornecem cinco pelotas de alimentos após um atraso fixo de 20 segundos e escolhas para a alternativa pequena-mais cedo, ou SS, entregar uma pelota de alimentos imediatamente. Selecione um critério de acabamento e finalize as sessões automaticamente após a conclusão do critério especificado, por exemplo, após 40 testes de escolha ou após 50 minutos. Combine cada alternativa com uma alavanca dentro da câmara de condicionamento, contrabalanciando a lateralidade das alternativas entre os sujeitos, e disponibilize alternativas de SS e LL mediante a realização de um cronograma de intervalo variável.Em testes de livre escolha, quando uma das alavancas é pressionada após um certo intervalo ter transcorrido, a alternativa associada será ativada. Ambas as alavancas serão retraídas, e a consequência associada às alternativas SS ou LL após a realização de um cronograma de intervalo variável de reforço será ativada. Após a entrega da recompensa, realize uma condição de tempo de intervalo, ajustando a duração desta condição para igualar a duração média dos intervalos intertriais para ambas as alternativas.O próximo teste de escolha começa após a conclusão do intervalo. Se um sujeito selecionar uma alternativa para dois ensaios consecutivos, o programa determinará que o próximo julgamento será um julgamento forçado da alternativa restante, ou seja, no próximo julgamento, ambas as alavancas estarão disponíveis, mas apenas uma funcionará para garantir que o sujeito experimente os resultados associados às duas alternativas. Para a programação DRL, selecione o valor do tempo mínimo após o qual a resposta produzirá uma recompensa.Após o início de uma sessão ou após qualquer resposta de pressão de alavanca, inicie um temporizador de contagem regressiva do valor de tempo selecionado para zero. Se o sujeito exibir uma resposta antes que o temporizador atinja o valor de zero, o temporizador será reiniciado para que o sujeito deve esperar por uma nova oportunidade para obter uma recompensa. Se o sujeito emitir uma resposta após o temporizador atingir o valor de zero, entregue uma pelota de alimentos.O temporizador será reiniciado após dois segundos para permitir que o animal consuma a pelota. Para discriminação de características negativas, primeiro selecione durações de estímulos, durações de intervalo intertrial e critérios de acabamento para as sessões. Depois de apresentar um estímulo A em ensaios A-plus, entregue uma pelota de comida.Depois de apresentar o mesmo estímulo A acompanhado de um estímulo adicional X em ensaios AX-menos, não entregue nenhum alimento. Depois de configurar os protocolos no software do computador, limpe as paredes internas, o teto e o piso da grade das câmaras operantes com uma solução desinfetante apropriada para remover odores das sessões anteriores ou estudos anteriores. Use o computador para ativar e monitorar manualmente as entradas e saídas cruciais para garantir que funcionem e verifique se o distribuidor de alimentos contém alimentos suficientes para serem entregues durante a sessão.Mova as gaiolas de alojamento com os ratos dentro perto das câmaras de condicionamento, e abra a gaiola de alojamento. Coloque suavemente o rato em sua câmara de condicionamento correspondente antes de fechar as câmaras de condicionamento nas conchas isolantes. Inicie o programa e aguarde até que o programa seja concluído.Se os dados não forem salvos automaticamente, salve os arquivos de saída da sessão na unidade do computador ou em outro lugar. Quando o programa estiver concluído, devolva suavemente os ratos às suas respectivas gaiolas de habitação e dê alimentos complementares aos animais de acordo com o regime de restrição alimentar selecionado. Neste procedimento de escolha intertemporal, a razão de registro da taxa de resposta da alavanca associada à alternativa SS foi maior em ratos espontaneamente hipertensos em comparação com ratos do tipo selvagem, sugerindo que os ratos modelo TDAH preferem uma recompensa imediata às custas de uma alternativa mais rica, mas atrasada.Neste experimento representativo do protocolo DRL, os dados longitudinais de um único rato com uma restrição temporal de 10 segundos na resposta demonstram que, com o tempo, o animal adquiriu experiência na tarefa, eventualmente aprendendo a responder em torno de 10 segundos. Este experimento farmacológico testou se o desempenho impulsivo em um procedimento de DRL com uma restrição temporal de 10 segundos foi diminuído com um tratamento que consiste em baixos níveis de uma droga antipsicótica. As parcelas de densidade azul representam a distribuição de respostas quando a solução salina é administrada, e as parcelas de salmão representam a distribuição de tais respostas quando o haloperidol foi administrado.As parcelas embutidas superiores mostram taxas de resposta, e as mais baixas mostram taxas de recompensa para soro fisiológico e haloperidol com o mesmo código de cor das tramas anteriores. Pode-se notar que a taxa de resposta foi reduzida para três a cinco sujeitos, especificamente para aqueles sujeitos com alta proporção de respostas de explosão na condição salina. Normalmente, no protocolo de discriminação de características negativas, responder durante o estímulo único mais testes alimentares e durante os estímulos compostos sem ensaios alimentares não difere substancialmente nas primeiras sessões.No entanto, após algumas sessões, os ratos respondem diferencialmente em ambos os tipos de ensaios, revelando que a adição de um segundo estímulo neutraliza a tendência de resposta controlada pela primeira. É importante ressaltar que os sujeitos apresentam diferenças individuais bastante robustas em ambos os tipos de ensaios. Tome cuidado para que os protocolos apropriados sejam carregados nas câmaras de condicionamento correspondentes, que os ratos sejam corretamente atribuídos a cada câmara, e que todas as câmaras estejam fechadas.Após a conclusão de um procedimento de linha de base, tratamentos comportamentais, farmacológicos ou cirúrgicos podem ser administrados para testar seu efeito no desempenho. Os resultados nem sempre são conclusivos, por isso os pesquisadores podem querer considerar se os dados observados dependem dos parâmetros selecionados ou são de fato induzidos por fatores de confusão. Certifique-se de lidar com os ratos adequadamente para evitar prejudicar os ratos e evitar que os ratos o machuquem.

Research

JoVE Journal

Behavior

A Procedure to Study the Effect of Prolonged Food Restriction on Heroin Seeking in Abstinent Rats

Um procedimento para estudar o efeito da restrição alimentar prolongada em heroína Buscando em ratos abstinentes

In human drug addicts, exposure to drug-associated cues or environments that were previously associated with drug taking can trigger relapse during ...

Comportamento

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Um novo procedimento para avaliar as propriedades de reforço de Tastants em laboratório ratos: Intraoral auto-administração operante

This paper describes a novel method for studying the bio-behavioral basis of addiction to food. This method combines the surgical component of taste ...

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Um procedimento para Observar Renovação induzida por Contexto de pavloviano condicionado Comportamento Álcool-seeking em Ratos

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Operant Procedures for Assessing Behavioral Flexibility in Rats

Procedimentos operantes para avaliar a flexibilidade comportamental em ratos

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The Rodent Psychomotor Vigilance Test (rPVT): A Method for Assessing Neurobehavioral Performance in Rats and Mice

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O psicomotora Teste Rodent Vigilância (rPVT): um método para avaliar Neurobehavioral Desempenho em ratos e camundongos

The human Psychomotor Vigilance Test (PVT) is a widely used procedure for measuring changes in fatigue and sustained attention. The present article ...

The Knob Supination Task: A Semi-automated Method for Assessing Forelimb Function in Rats

A tarefa de supinação de botão: Um método semi-automático para avaliar a função do Forelimb em ratos

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Avaliação sistemática de bem-estar em camundongos para procedimentos com anestesia geral

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Noninvasive, In-pen Approach Test for Laboratory-housed Pigs

Não invasivo, teste de aproximação em caneta para suínos alojados em laboratório

Traumatic brain injury (TBI) incidences have increased in both civilian and military populations, and many researchers are adopting a porcine model for ...

A Laboratory Method to Measure Contagious Yawning in Rats

Um Método Laboratorial para Medir o Bocejo Contagioso em Ratos

Communication is an essential aspect of animal social life. Animals may influence one another and come together in schools, flocks, and herds. ...

Assessing the Autonomic and Behavioral Effects of Passive Motion in Rats using Elevator Vertical Motion and Ferris-Wheel Rotation

Avaliando os efeitos autônomos e comportamentais do movimento passivo em ratos usando movimento vertical do elevador e rotação de roda-gigante

The overall goal of this study is to assess the autonomic and behavioral effects of passive motion in rodents using the elevator vertical motion and ...